Nessun finanziamento da dichiarare.

La procedura muscolo scheletrico come descritto segue le linee guida della Appalachian State University Institutional Review Board. NOTA: Il gruppo è costituito da un operatore (dottorato o MD addestrato nella tecnica biopsia), e almeno uno, ma idealmente, tre o più tecnici. L&#39;operatore è responsabile della conduzione e supervisione di tutti gli aspetti della procedura di biopsia muscolare scheletrico. Un tecnico (tecnico # 1) è immediatamente incaricato di assistere l&#39;operatore, con tutti gli aspetti di estrazione muscolare. Questo include l&#39;essere &quot;mani non sterili&quot; e l&#39;applicazione di aspirazione con una siringa sterile. Un secondo tecnico (tecnico # 2) si impegna in una conversazione con il soggetto e massaggi gamba opposta del soggetto durante la procedura per ridurre al minimo l&#39;ansia del soggetto. Il terzo tecnico (tecnico 3 #) è responsabile per la gestione e l&#39;elaborazione del campione di muscolo scheletrico. Misure analitiche a valle dettare quanti Additionale tecnici sono necessari per la lavorazione / preparazione del campione di muscolo scheletrico. 1 Oggetto Preparazione <ol><li> Raccogliere, preparare e organizzare i materiali specificati per la procedura di biopsia muscolare (Tabella 1). Decontaminare e sterilizzare l&#39;ago Bergström (cannula esterna e trequarti interno) e lo stantuffo secondo la pratica standard 16. </li><li> Esaminare il modulo di consenso con il soggetto. La biopsia muscolare scheletrico parte del consenso a partecipare forma usata alla Appalachian State University è fornito in supplemento linea 1. <ol><li> Parlate con il soggetto sugli aspetti generali della procedura di biopsia muscolare con un focus sui possibili rischi della procedura, preparazione della cute, l&#39;applicazione dell&#39;anestetico, sensazioni tipiche. Chiedere al soggetto di leggere attentamente il consenso a partecipare forma e firmare per confermare che la progettazione e le procedure di studio sono comprese. </li></ol></li><li> Verificare che le salve non è allergico a &quot;___ Caine&quot; farmaci di tipo (ad esempio, lidocaina). </li><li> Istruire il soggetto a giacere supino su un tavolo imbottito con la coscia esposta. Posizionare due traverse assorbenti usa e getta in plastica con supporto sotto la gamba del soggetto. Posizionare la gamba in modo rilassato con un piccolo rullo asciugamano sotto il tallone, in modo che il ginocchio è completamente estesa (elevata ~ 1 cm), ponendo così vasto laterale in posizione accorciata. </li><li> Avere l&#39;operatore istruire il soggetto di contrarre momentaneamente il muscolo della coscia esposta in modo che il sito biopsia può essere visualizzato. Nota: Il vasto laterale sito biopsia è solo anteriore alla fascia lata (banda illiotibial), circa un terzo della distanza tra la parte superiore della rotula e il grande trocantere 7. </li><li> Hanno il marchio operatore appena sotto (~ 0.5 cm) il sito di incisione con una punta sottile pennarello indelebile. </li><li> Hanno l&#39;operatore determinare lo spessore delle pliche cutanee approssimativa pinching la plica. </li><li> Avere l&#39;operatore ei tecnici lavarsi le mani con acqua calda e sapone e indossare guanti monouso. </li><li> Avere l&#39;operatore rimuovere i capelli da una regione ~ 15 centimetri x 15 cm intorno al sito biopsia (via Clippers). Nota: ritaglio i capelli dal sito biopsia impedisce i capelli di entrare nella incisione durante la procedura e in chiusura, e la rimozione dei capelli permette un migliore contatto tra le chiusure nastro e la pelle (vedi 3.4). </li><li> Avere l&#39;operatore sterilizzare la zona con tamponi pre-imbevuto con un antisettico topico, (come il povidone-iodio o clorexidina gluconato per i soggetti allergici allo iodio / frutti di mare). Iniziare al centro e lavorare in cerchi concentrici verso il bordo esterno dell&#39;area ritagliata. Come minimo, ripetere due volte di più con un nuovo tampone pre-bagnato ogni volta. </li></ol> 2 Biopsia Procedura <ol><li> Avere l&#39;operatore togliere guanti, lavarsi le mani con acqua calda e sapone, e don sterile gl chirurgicaOves utilizzando una tecnica asettica. </li><li> Avere tecnico # 1 presente il telo fenestrato sterile per l&#39;operatore. Avere l&#39;operatore, utilizzando una tecnica asettica, inserire il drappo sopra il sito biopsia per mantenere un campo sterile. </li><li> Avere tecnico # 1 presente all&#39;operatore una siringa da 5 ml munito di un ago 21 G, pur mantenendo una tecnica asettica. Pulire la parte superiore del flaconcino lidocaina con un batuffolo imbevuto di alcool. <ol><li> Avere l&#39;operatore di ritirare immediatamente 5 ml di lidocaina. Rimuovere il G 21 ago dalla siringa e gettare l&#39;ago in un apposito contenitore. </li><li> Avere tecnico # 1 presente l&#39;operatore con un ago G-1 ½ pollice 25, pur mantenendo una tecnica asettica. Avere il posto operatore il pollice ago-1 ½ sulla siringa ed evacuare le bolle d&#39;aria dalla siringa. </li></ol></li><li> Avere tecnico 1 # spruzzo cloruro di etile sul sito di incisione (~ 0.5 cm sopra il segno di inchiostro indelebile sulla pelle) fino a visualizzare la pelle a &quot;sbiancare&quot;. <ol><li> Ahve inserire l&#39;operatore l&#39;ago di circa orizzontale per la pelle nel derma, aspirare l&#39;ago, e poi infiltrarsi con ~ 100 ml di lidocaina per produrre una &quot;bozza&quot; 2-4 mm di diametro. <ol><li> Avere l&#39;operatore l&#39;ago aspirato (leggermente ritirare lo stantuffo della siringa) per confermare che l&#39;ago non è stato inserito in un vaso sanguigno. Se il sangue compare nella siringa, togliere l&#39;ago, gettare in un apposito contenitore, e ricominciare a 2.3. </li><li> Avere l&#39;anticipo all&#39;operatore l&#39;ago nel tessuto sottocutaneo, aspirare l&#39;ago, e poi infiltrare il tessuto con ~ 1 ml di lidocaina per formare una bozza. Una volta che la bozza è placata, inserire l&#39;ago da 1 ½ pollice sulla siringa lidocaina-caricati verticalmente nel sito di incisione, fermandosi superficiale alla fascia. Nota: Il soggetto può avvertire una leggera sensazione di bruciore momentaneo sulla prima iniezione di lidocaina (simile a una puntura d&#39;ape). </li></ol></li><li> Assicurarsi che la operato non infiltrare il muscolo con lidocoine perché è miotossico 17-19. </li><li> Avere l&#39;operatore l&#39;ago aspirato e poi iniettare lentamente i restanti 4 ml di lidocaina mentre si ritira l&#39;ago dalla coscia. Posizionare una garza sterile su sito di iniezione e consentire al soggetto di rilassarsi mentre l&#39;anestetico locale ha effetto. </li></ol></li><li> Dopo 2-3 minuti, disporre tecnico # 1 presente all&#39;operatore un bisturi pur mantenendo una tecnica asettica. <ol><li> Avere l&#39;operatore leggermente sondare il sito biopsia con la punta del bisturi per confermare che l&#39;area è anestetizzato. Se necessario, iniettare altri 3-4 ml di lidocaina al sito di incisione, vedi 2.4.1.2. </li></ol></li><li> Avere l&#39;operatore fa un rettilineo di 1 cm di incisione attraverso la pelle ed i tessuti sottocutanei (~ 2-3 mm sopra il segno di inchiostro) parallelamente al femore. <ol><li> Avere inserire l&#39;operatore il bisturi più profondo di fare un&#39;incisione attraverso la fascia nel muscolo. Fate questo una volta in ogni direzione<html> . Nota: Il soggetto può sentire una fitta di pressione o con il taglio più profondo se la lama del bisturi nel muscolo. </li><li> Avere tecnico 2 # impegnare il soggetto in una conversazione e massaggiare la gamba opposta. </li></ol></li><li> Avere il posto operatore una quantità generosa di garza sterile sul sito di incisione e la biopsia e applicare pressione diretta per l&#39;incisione per ridurre il sanguinamento. <ol><li> Avere tecnico # 1 collegare il metallo rubinetto a 3 vie per la siringa monouso da 60 ml e il tubo di prolunga 30 cm (Figura 1). </li><li> Avere tecnico # 1 Collegare un&#39;estremità del tubo di plastica connettore conico nella estremità libera del tubo di estensione e saldamente inserire l&#39;altra estremità del tubo di plastica connettore conico nella grande finale di una punta di pipetta 200 microlitri con ~ 15-18 mm di la punta tagliata. </li></ol></li></ol>.jpg &quot;width =&quot; 500 &quot;/&gt; Figura 1 L&#39;ago Bergström. (A) L&#39;ago Bergström (5 mm) è composto dal (a) cannula esterna e (b) trocar interno, i componenti associati sono (c) pistone, (d) 200 microlitri punta della pipetta con ~ 15-18 mm tagliato , (e) conico connettore di plastica, (f) 3-way rubinetto in metallo, (g) tubo di prolunga 30 centimetri, e (h) monouso siringa da 60 ml. (B) L&#39;ago Bergström (5 mm) e relativi componenti assemblati. ( C) Il trequarti interno dell&#39;ago Bergström (5 mm) ritirato 1 cm circa apre la finestra della cannula esterna. <ol start="9"><li> Dopo che l&#39;emorragia si è placata, avere tecnico # 1 aprire il sacchetto sterilizzato in autoclave e presentare l&#39;ago biopsia 5 mm e trequarti interno (Figura 1) per l&#39;operatore, pur mantenendo una tecnica asettica. <ol><li> Hanno l&#39;operatore montare l&#39;ago (cannula esterna e interna trocar), controllare l&#39;allineamento e la scorrevolezza. </li> &lt;/ Ol&gt; </li><li> Avere l&#39;operatore tenere saldamente il gruppo ago (cannula esterna e trequarti interno) con entrambe le mani per evitare che il trocar interiore rotazione. Avete tecnico # 1 inserire con fermezza la punta della pipetta taglio nella parte superiore della porzione trocar interna della biopsia con un leggero movimento rotatorio verso il basso. Assicurarsi che tecnico # 1 non tocca l&#39;operatore o l&#39;ago biopsia, solo la punta della pipetta. </li><li> Avere l&#39;operatore introduce l&#39;ago biopsia nel tessuto attraverso l&#39;incisione. Individuare l&#39;incisione nella fascia (un &quot;feel&quot; acquisita) con la punta di un ago da biopsia. Avanzare l&#39;ago appena passato l&#39;angolo di fascia e quindi l&#39;ago verso il basso verso il pavimento come l&#39;ago viene fatto avanzare nel muscolo. Nota: I soggetti possono avvertire qualche lieve disagio (ad esempio, &quot;pressione profonda&quot;, o lieve sensazione di crampi), come l&#39;incisione attraverso la fascia si trova con la punta dell&#39;ago biopsia e l&#39;ago viene fatto avanzare nel muscolo. <ol> &lt;li&gt; Avere tecnico # 2 istruire il soggetto a restare &quot;rilassato&quot; e di non contrarre i muscoli della coscia mentre l&#39;operatore sta avanzando l&#39;ago nel muscolo. </li></ol></li><li> Una volta che l&#39;ago biopsia è in posizione, avere il segnale operatore tecnico # 1 per aprire la siringa monouso da 60 ml. <ol><li> Avere tecnico # 1 rapidamente tirare la siringa monouso da 60 ml aperto al marchio 40-50 cc per creare l&#39;aspirazione all&#39;interno l&#39;ago biopsia. </li><li> Avere l&#39;operatore tira il trequarti interno su circa 1 cm a aprire la finestra della cannula esterna mantenendo la posizione del trequarti esterno all&#39;interno del muscolo. Avere l&#39;operatore rapidamente chiudere il trocar interiore per tagliare (clip) e raccogliere il campione di muscolo. Avere il segnale di operatore tecnico # 1 per rilasciare aspirazione. </li><li> Avere tecnico # 1 aprire il rubinetto per la stanza per rilasciare l&#39;aspirazione. </li><li> Avere l&#39;operatore ruotare l&#39;ago biopsia di 90 ° e ripetere il processo. Se necessario, l&#39;operatore ha ripett la procedura di rotazione fino a 3 volte (per un totale di 4 clips). </li></ol></li><li> Avere l&#39;operatore applicare contro-pressione diretta al sito di incisione con garza sterile, mentre rimuovere l&#39;ago biopsia dalla coscia, facendo attenzione a non prendere fascia o pelle. Se si avverte resistenza significativa, ri-tagliare durante l&#39;applicazione di un movimento rotatorio al trocar interiore. </li><li> Alla rimozione dell&#39;ago bioptico dalla coscia, ha l&#39;operatore tira il trequarti interna posteriore 1 cm a ispezionare visivamente il lume della cannula esterna per stimare se una adeguata quantità di tessuto è stata raccolta. <ol><li> Avere la mano dell&#39;operatore l&#39;ago biopsia al tecnico 1 #. Per mantenere la tecnica asettica garantire che tecnico # 1 tocca solo l&#39;ago, non l&#39;operatore. Avere tecnico # 1 mano l&#39;ago biopsia al tecnico 3 #. </li></ol></li><li> Avere tecnico # 3 rimuovere il tessuto dal agobiopsia. <ol><li> Avere tecnico 3 # uso il pistone (figura 1) e un paio di pinze a punta fineper assicurare che tutto il tessuto muscolare viene rimosso dalla trequarti interno e cannula esterna. </li><li> Avere tecnico # 3 pesare rapidamente il campione per confermare che un&#39;adeguata quantità di tessuto muscolare è stato raccolto e posizionare i campioni su un blocco di dissezione ghiacciata. </li></ol></li><li> Avere tecnico # 3 sezionare con cura il tessuto connettivo e il grasso visibile dai campioni muscolari. Hanno tecnico # 3 preparare i campioni di muscolo per l&#39;archiviazione in base alle analisi a valle. Ad esempio, subito mettere i campioni in una provetta e il scatto congelamento in azoto liquido, montare e congelare per istologia, o posto in una provetta Microbank ™ con inibitore della RNasi, ecc </li><li> Se necessario, ripetere la procedura con un secondo ago biopsia sterilizzato, pur mantenendo una tecnica asettica. </li></ol> 3 Chiusura <ol><li> Avere l&#39;operatore applica una pressione diretta al sito biopsia con garza sterile e un impacco di ghiaccio per 10-15 minuti. </li><li> Una volta emostasi è raggiunto, l&#39;operatore ha l&#39;uso di alcol prpastiglie ep per rimuovere il sangue secco dalla zona intorno l&#39;incisione. </li><li> Avere tecnico # 1 presente un tubetto di colla chirurgica attualità e applicatore per l&#39;operatore. Avere l&#39;operatore assemblare il tubo di colla chirurgica e applicatore senza toccare la punta applicatore o la parte superiore del tubo. </li><li> Avere l&#39;operatore tira l&#39;incisione chiusa con una mano mentre l&#39;applicazione di un solo strato di adesivo chirurgico rispetto all&#39;inizio della incisione a secco con l&#39;altra mano. Dopo le cure adesivo (~ 90 sec), applicare del nastro closuresperpendicular per l&#39;incisione. In alternativa, chiudere l&#39;incisione con due sterili 4-0 punti di sutura. </li><li> Avere l&#39;operatore applicare pressione diretta mettendo Febbraio 03-04 &quot;x 2&quot; garze non sterili sul sito di incisione e fissare con della pellicola adesiva auto-aderente. </li><li> Avere l&#39;operatore fornisce il soggetto verbale e istruzioni scritte sulla cura delle ferite adeguata, reazioni normali e anormali, e le linee guida di attività per i seguenti da 1 a 4 giorni (vedi on line supplement 2). </li></ol>

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The authors have no conflicts of interest.

Questo video fornisce una sintesi step-by-step della procedura di biopsia muscolare scheletrico utilizzato alla Human Performance Laboratory ASU. Questa procedura, con piccole modifiche, è stato utilizzato per raccogliere circa 1.600 biopsie muscolari nel corso degli ultimi 13 anni. I campioni di biopsia muscolare hanno fornito dati importanti nelle indagini sulla base di nutrizione sportiva, portando a importanti scoperte della ricerca. Ci sono molte tecniche fondamentali per essere a cono...

La tecnica di biopsia percutanea o &#39;semi-aperto&#39; viene utilizzato per ottenere campioni di tessuto muscolare scheletrico di pazienti umani e soggetti di ricerca. Duchenne (1806-1875) è accreditato come il primo a costruire un ago con un trocar per ottenere muscolo scheletrico di soggetti viventi tramite biopsia percutanea 1. Nel 1960, Bergström ha introdotto un ago da biopsia percutanea simile a quella descritta da Duchenne 2-4. Venti anni più tardi, Evans et al. 5 modificato la tecnica applicando aspirazione attraverso il trocar taglio dell&#39;ago Bergström. Questa modifica può migliorare il rendimento del tessuto da 3 a 5 volte 6,7 e viene impiegato in contesti di ricerca clinica e biomedica. Questa tecnica ha e continuerà a promuovere la diagnosi di miopatie e la nostra comprensione della struttura e funzione del muscolo scheletrico. La tecnica di biopsia muscolare percutanea è straightforward. Se fatto correttamente, con la stretta aderenza alle tecniche asettiche, i rischi associati sono minimi. La procedura di biopsia muscolare è considerato come uno strumento di sperimentazione per progetti di ricerca. Alcune istituzioni accademiche permettono addestrati ricercatori docenti con un dottorato di ricerca, con la supervisione diretta del medico, per ottenere biopsie muscolari e altri richiedono un medico di bordo certificata per eseguire la tecnica. Il team biopsia ASU ha eseguito con successo oltre 1.600 biopsie muscolari nel corso degli ultimi 13 anni 8-15. Lo scopo di questo video è quello di descrivere l&#39;ago Bergström modificato muscolo tecnica di biopsia percutanea 5 per ottenere campioni di tessuto muscolare scheletrico dal vasto laterale di soggetti umani.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="969">
	<tbody>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:439px;">Name of Material / Equipment</td>
			<td style="width:185px;">Company</td>
			<td style="width:141px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:204px;">Comments /&#160; Description</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Bergstr&#246;m biopsy needle, 5 x 100mm</td>
			<td style="width:185px;">Stille Surgical Inc.</td>
			<td>119-29187-50</td>
			<td>1 ea</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Durasorb blue pad</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>22-031-340</td>
			<td>case of 300</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Prep Razor Disposable</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>89760</td>
			<td>1 ea</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Shave Cream</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>92869</td>
			<td>1 can</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Alcohol Swab</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>98721</td>
			<td>box/200</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Povidone-iodine Swabsticks (3 pack)</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>90691</td>
			<td>pack of 50</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Face masks</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>19-039-690</td>
			<td>case of 50</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Sterile Gloves; sz 6.5</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>68128</td>
			<td>box of 50 pairs</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Sterile Gloves; sz 7.0</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>68129</td>
			<td>box of 50 pairs</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Sterile Gloves; sz 8.5</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>68132</td>
			<td>box of 50 pairs</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Fenestrated Towel Drape</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>92712</td>
			<td>case of 50</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Lidocaine (1% HCl, w/o Epi</td>
			<td>Dealmed</td>
			<td>427902</td>
			<td>30cc vial</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Ethyl Chloride spray</td>
			<td>Dealmed</td>
			<td>386020</td>
			<td>3.5 fl. Oz. bottle</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">5 mL syringe w/ 21G needle</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>14-827-48</td>
			<td>case of 100</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">25G 5/8&#34; needle</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>14-826AA</td>
			<td>case of 100</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">25G 1 1/2&#34; needle</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>14-826-49</td>
			<td>case of 100</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Single-Use Scalpels&#160; w/ #11 blade</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>0-8927-5B</td>
			<td>box of 20</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">60 mL Syringe</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>13-689-8</td>
			<td>case of 40</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">~30 inch extension tubing</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>14-169-7A</td>
			<td>roll of 50ft</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Metal stopcock</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>01-290-38</td>
			<td>each</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Polypropylene tubing connector w/ tapered ends, 3.2 to 5.5 mm</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>15-315-28A</td>
			<td>case of 100</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Yellow pipette tips (1-200 &#181;L)</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>02-681-2</td>
			<td>cut off&#160; ~15-18 mm of the tip</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Topical surgical adhesive</td>
			<td>Medline</td>
			<td>MSC091076</td>
			<td>case of 36 tubes</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Topical surgical adhesive</td>
			<td>Medline</td>
			<td>MSC091076Z</td>
			<td>box of 6 tubes</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Butterfly stitches (adhesive strips) 1/2&#34; x 4&#34; (6 per pack)</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>93050</td>
			<td>box/300</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Bandadge, Strip, 3/4 x 3 in.</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>19-027-202</td>
			<td>pack of 100</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Adhesive bandage (5m rolls)</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>19-027-768</td>
			<td>case of 36</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">1&#34; paper surgical tape</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>19-027-761</td>
			<td>case of 12</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Sutures (4-0 reverse cutting, FS2)</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>82926</td>
			<td>box of 36</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">4 x 4 sterile gauze pads</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>66949</td>
			<td>pkg/50</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">2 x 2 non-sterile gauze pads</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>37336</td>
			<td>pkg/200</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">3 x 4 Non-Adherent Pads</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>74389</td>
			<td>bx/100</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Autoclave bags 3.5 x 9</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>40390</td>
			<td>box of 200</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Autoclave bags 5.25 x 10</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>40391</td>
			<td>box of 200</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Autoclave indicator tape</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>31608</td>
			<td>box of 250</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Lab Coats&#8212;small</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>23-900-520A&#160;</td>
			<td>10/pk</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Lab Coats&#8212;medium</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>23-900-520B&#160;</td>
			<td>10/pk</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Lab Coats&#8212;large</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>23-900-520C&#160;</td>
			<td>10/pk</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Germicidal Disposable Cloth Wipes</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>62879</td>
			<td>Can/160</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

human skeletal muscle biopsy procedures using the modified bergstr&#246;m technique

La tecnica di biopsia percutanea consente ai ricercatori e clinici per raccogliere campioni di tessuto muscolare scheletrico. La tecnica è sicura ed altamente efficace. Questo video descrive la tecnica di biopsia percutanea con un ago Bergström modificato per ottenere campioni di tessuto muscolare scheletrico dal vasto laterale di soggetti umani. L&#39;ago Bergström costituito da una cannula esterna con una piccola apertura (&#39;finestra&#39;) sul lato della punta e un trequarti interno con una lama di taglio all&#39;estremità distale. In condizioni asettiche e anestesia locale, l&#39;ago viene fatto avanzare nel muscolo scheletrico attraverso un&#39;incisione nella pelle, tessuto sottocutaneo e fascia. Successivamente, l&#39;aspirazione viene applicata alla trequarti interno, il trequarti esterno è tirato indietro, tessuto muscolare scheletrico viene aspirata nella finestra della cannula esterna con l&#39;aspirazione, e il trequarti interno viene rapidamente chiuso, riducendo così o ritaglio campione di tessuto muscolare scheletrico . L&#39;ago viene ruotato di 90 °60, e un altro taglio è fatta. Questo processo può essere ripetuto tre volte di più. Questa tecnica di taglio multiplo produce tipicamente un campione di 100-200 mg o più in soggetti sani e può essere fatto immediatamente prima, durante e dopo un attacco di esercizio o di altri interventi. A seguito di medicazione post-biopsia del sito di incisione, i soggetti tipicamente riprendere le loro attività quotidiane subito e possano partecipare pienamente vigorosa attività fisica entro 48-72 ore. I soggetti dovrebbero evitare l&#39;esercizio di resistenza pesante per 48 ore per ridurre il rischio di ernia del muscolo attraverso l&#39;incisione della fascia.

La procedura di biopsia muscolare come sopra descritto consente al ricercatore di raccogliere rapidamente e costantemente campioni di tessuto muscolare scheletrico. La resa tipica, soggetti atletici sani è di 200 mg o più in un unico passaggio con 3-4 clips. La procedura dura 15-20 minuti, la maggior parte dei quali viene speso in preparazione per l&#39;incisione. Negli studi esercizio-based, i campioni muscolari sono spesso prese pre e post-esercizio, con uno o due campioni raccolti durante il recupero. Con questo pr...

Watch this Scientific Journal Video about Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified BergstrÃ¶m Technique at JoVE.com

Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified Bergstr&amp;#246;m Technique

The purpose of this video is to present the modified Bergstr&#246;m skeletal muscle biopsy technique on human subjects.

Scheletrici Procedure biopsia muscolare dell&#39;uomo con la tecnica Bergström Modificato

The percutaneous biopsy technique enables researchers and clinicians to collect skeletal muscle tissue samples. The technique is safe and highly ...

human-skeletal-muscle-biopsy-procedures-using-modified-bergstrm

Research

JoVE Journal

Medicine

Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified Bergstr&#246;m Technique

39.5K Views.  Appalacian State University. The purpose of this video is to present the modified Bergström skeletal muscle biopsy technique on human subjects. 

Video: Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified Bergstr&#246;m Technique

Myo-mechanical Analysis of Isolated Skeletal Muscle

To assess the in vivo effects of therapeutic interventions for the treatment of muscle disease 1,2,3, quantitative methods are needed that measure force generation and fatigability in treated muscle. We describe a detailed approach to evaluating myo-mechanical properties in freshly explanted hindlimb muscle from the mouse. We describe the atraumatic harvest of mouse extensor digitorum longus muscle, mounting the muscle in a muscle strip myograph (Model 820MS; Danish Myo Technology), and the measurement of maximal twitch and tetanic tension, contraction time, and half-relaxation time, using a square pulse stimulator (Model S48; Grass Technologies). Using these measurements, we demonstrate the calculation of specific twitch and tetanic tension normalized to muscle cross-sectional area, the twitch-to-tetanic tension ratio, the force-frequency relationship curve and the low frequency fatigue curve 4. This analysis provides a method for quantitative comparison between therapeutic interventions in mouse models of muscle disease 1,2,3,5, as well as comparison of the effects of genetic modification on muscle function 6,7,8,9.

To assess the in vivo effects of therapeutic interventions for muscle disease, methods are needed to quantitate force generation and fatigability in treated muscle. We detail an approach to evaluating myo-mechanical properties in explanted mouse hindlimb muscle. This analysis provides a robust approach to quantitating the effects of genetic modification on muscle function, as well as comparison of therapies in mouse models of muscle disease.

Myo-meccanico Analisi dei isolata del muscolo scheletrico

To assess the in vivo effects of therapeutic interventions for the treatment of muscle disease 1,2,3, quantitative methods are needed that measure force ...

Ricerca

Medicina

Skeletal Muscle Gender Dimorphism from Proteomics

Gross contraction in skeletal muscle is primarily determined by a relatively small number of contractile proteins, however this tissue is also remarkably adaptable to environmental factors1 such as hypertrophy by resistance exercise and atrophy by disuse. It thereby exhibits remodeling and adaptations to stressors (heat, ischemia, heavy metals, etc.)2,3. Damage can occur to muscle by a muscle exerting force while lengthening, the so-called eccentric contraction4. The contractile proteins can be damaged in such exertions and need to be repaired, degraded and/or resynthesized; these functions are not part of the contractile proteins, but of other much less abundant proteins in the cell. To determine what subset of proteins is involved in the amelioration of this type of damage, a global proteome must be established prior to exercise5 and then followed subsequent to the exercise to determine the differential protein expression and thereby highlight candidate proteins in the adaptations to damage and its repair. Furthermore, most studies of skeletal muscle have been conducted on the male of the species and hence may not be representative of female muscle. 
In this article we present a method for extracting proteins reproducibly from male and female muscles, and separating them by two-dimensional gel electrophoresis followed by high resolution digital imaging6. This provides a protocol for spots (and subsequently identified proteins) that show a statistically significant (p &lt; 0.05) two-fold increase or decrease, appear or disappear from the control state. These are then excised, digested with trypsin and separated by high-pressure liquid chromatography coupled to a mass spectrometer (LC/MS) for protein identification (LC/MS/MS)5. This methodology (Figure 1) can be used on many tissues with little to no modification (liver, brain, heart etc.).

A straight-forward set of methods to isolate and determine the identity of the most abundant proteins expressed in skeletal muscle. About 800 spots are discerned on a two-dimensional gel from 10 mg muscle; this allows for the determination of gender-specific protein expression. These methods will give equivalent results in most tissues.

Sesso Dimorfismo muscolo scheletrico da Proteomica

Gross contraction in skeletal muscle is primarily determined by a relatively small number of contractile proteins, however this tissue is also remarkably ...

Skin Punch Biopsy Explant Culture for Derivation of Primary Human Fibroblasts

Tissues and cell lines derived from an individual with disease are ideal sources to study disease-related cellular phenotypes. Patient-derived fibroblasts in this protocol have been successfully used in the derivation of induced pluripotent stem cells to model disease1. Early passages of these fibroblasts can also be used for cell-based functional assays to study specific disease pathways, mechanisms2 and subsequent drug screening approaches. The advantage of the presented protocol over enzymatic procedures are 1) the reproducibility of the technique from small amounts of tissue derived from older patients, e.g. patients affected with Parkinson's disease, 2) the technically simple approach over more challenging methodologies using enzymatic treatments, and 3) the time consideration: this protocol takes 15-20 min and can be performed immediately after biopsy arrival. Enzymatic treatments can take up to 4 hr and have the problems of overdigestion, reduction of cell viability and subsequent attachment of cells when not handled properly. This protocol describes the dissection and preparation of a 4-mm human skin biopsy for derivation of a fibroblast culture and has a very high success rate which is important when dealing with patient-derived tissue samples. In this culture, keratinocytes migrate out of the biopsy tissue within the first week after preparation. Fibroblasts appear 7-10 days after the first outgrowth of keratinocytes. DMEM high glucose media supplemented with 20% FBS favors the growth of fibroblasts over keratinocytes and fibroblasts will overgrow the keratinocytes. After 2 passages keratinocytes have been diluted out resulting in relatively homogenous fibroblast cultures which expresses the fibroblast marker SERPINH1 (HSP-47). Using this approach, 15-20 million fibroblasts can be derived in 4-8 weeks for cell banking. The skin dissection takes about 15-20 min, cells are then monitored once a day under the microscope, and media is changed every 2-3 days after attachment and outgrowth of cells.

The fibroblast explant culture protocol from human skin punch biopsies is a technically robust and simple way to derive skin cells within 4-8 weeks for banking of about 15-20 million cells at a low passage number.

Pelle Punch Biopsia Espianto Cultura per la derivazione di fibroblasti umani primari

Tissues and cell lines derived from an individual with disease are ideal sources to study disease-related cellular phenotypes. Patient-derived fibroblasts ...

Tibial Nerve Transection - A Standardized Model for Denervation-induced Skeletal Muscle Atrophy in Mice

The tibial nerve transection model is a well-tolerated, validated, and reproducible model of denervation-induced skeletal muscle atrophy in rodents. Although originally developed and used extensively in the rat due to its larger size, the tibial nerve in mice is big enough that it can be easily manipulated with either crush or transection, leaving the peroneal and sural nerve branches of the sciatic nerve intact and thereby preserving their target muscles. Thus, this model offers the advantages of inducing less morbidity and impediment of ambulation than the sciatic nerve transection model and also allows investigators to study the physiologic, cellular and molecular biologic mechanisms regulating the process of muscle atrophy in genetically engineered mice. The tibial nerve supplies the gastrocnemius, soleus and plantaris muscles, so its transection permits the study of denervated skeletal muscle composed of fast twitch type II fibers and/or slow twitch type I fibers. Here we demonstrate the tibial nerve transection model in the C57Black6 mouse. We assess the atrophy of the gastrocnemius muscle, as a representative muscle, at 1, 2, and 4 weeks post-denervation by measuring muscle weights and fiber type specific cross-sectional area on paraffin-embedded histologic sections immunostained for fast twitch myosin.

The tibial nerve transection model is a well-tolerated, validated, and reproducible model of skeletal muscle atrophy. The model surgical protocol is described and demonstrated in C57Black6 mice. &#160;

Resezione del nervo tibiale - Un modello standardizzato per Denervation indotta scheletrico atrofia muscolare nei topi

The tibial nerve transection model is a well-tolerated, validated, and reproducible model of denervation-induced skeletal muscle atrophy in rodents. ...

Murine Cervical Heart Transplantation Model Using a Modified Cuff Technique

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are available to perform mechanistic in vivo studies. While heart transplantation models using a suture technique were first successfully developed in rats, the translation into an equally widespread used murine equivalent was never achieved due the technical complexity of the microsurgical procedure. In contrast, non-suture cuff techniques, also developed initially in rats, were successfully adapted for use in mice1-3. This technique for revascularization involves two major steps I) everting the recipient vessel over a polyethylene cuff; II) pulling the donor vessel over the formerly everted recipient vessel and holding it in place with a circumferential tie. This ensures a continuity of the endothelial layer, short operating time and very high patency rates4.
Using this technique for vascular anastomosis we performed more than 1,000 cervical heart transplants with an overall success rate of 95%. For arterial inflow the common carotid artery and the proximal aortic arch were anastomosed resulting in a retrograde perfusion of the transplanted heart. For venous drainage the pulmonary artery of the graft was anastomosed with the external jugular vein of the recipient5.
Herein, we provide additional details of this technique to supplement the video.

The murine cervical heart transplantation model is well suited for immunological as well as ischemia reperfusion injury studies. We modified the procedure using a non-suture cuff technique and performed more than 1,000 successful transplants with this approach.
Herein, we provide additional details of this technique to supplement the video.

Murino cervicale Cuore trapianto Modello utilizzando una tecnica Cuff Modificato

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are ...

High-throughput Flow Cytometry Cell-based Assay to Detect Antibodies to N-Methyl-D-aspartate Receptor or Dopamine-2 Receptor in Human Serum

Over the recent years, antibodies against surface and conformational proteins involved in neurotransmission have been detected in autoimmune CNS diseases in children and adults. These antibodies have been used to guide diagnosis and treatment. Cell-based assays have improved the detection of antibodies in patient serum. They are based on the surface expression of brain antigens on eukaryotic cells, which are then incubated with diluted patient sera followed by fluorochrome-conjugated secondary antibodies. After washing, secondary antibody binding is then analyzed by flow cytometry. Our group has developed a high-throughput flow cytometry live cell-based assay to reliably detect antibodies against specific neurotransmitter receptors. This flow cytometry method is straight forward, quantitative, efficient, and the use of a high-throughput sampler system allows for large patient cohorts to be easily assayed in a short space of time. Additionally, this cell-based assay can be easily adapted to detect antibodies to many different antigenic targets, both from the central nervous system and periphery. Discovering additional novel antibody biomarkers will enable prompt and accurate diagnosis and improve treatment of immune-mediated disorders.

Over the recent years, live cell-based assays have been used successfully to detect antibodies against surface and conformational antigens. Here, we describe a method using high-throughput flow cytometry enabling the analysis of large cohorts of patients. Detection of novel antibodies will improve diagnosis and treatment of immune-mediated disorders.

High-throughput Citometria a Flusso test cellulare per individuare gli anticorpi per N-metil-D-aspartato Receptor o dopamina-2 recettore nel siero umano

Over the recent years, antibodies against surface and conformational proteins involved in neurotransmission have been detected in autoimmune CNS diseases ...

Preparation and Respirometric Assessment of Mitochondria Isolated from Skeletal Muscle Tissue Obtained by Percutaneous Needle Biopsy

Respirometric profiling of isolated mitochondria is commonly used to investigate electron transport chain function. We describe a method for obtaining samples of human Vastus lateralis, isolating mitochondria from minimal amounts of skeletal muscle tissue, and plate based respirometric profiling using an extracellular flux (XF) analyzer. Comparison of respirometric profiles obtained using 1.0, 2.5 and 5.0 &#956;g of mitochondria indicate that 1.0 &#956;g is sufficient to measure respiration and that 5.0 &#956;g provides most consistent results based on comparison of standard errors. Western blot analysis of isolated mitochondria for mitochondrial marker COX IV and non-mitochondrial tissue marker GAPDH indicate that there is limited non-mitochondrial contamination using this protocol. The ability to study mitochondrial respirometry in as little as 20 mg of muscle tissue allows users to utilize individual biopsies for multiple study endpoints in clinical research projects.

Methods for biopsy of Vastus lateralis, preparation of purified mitochondria, and respirometric profiling are described. The use of small muscle volume makes this technique suitable for clinical research applications.

Preparazione e respirometrici valutazione dei mitocondri isolati dal tessuto muscolare scheletrico Ottenuto dalla biopsia percutanea

Respirometric profiling of isolated mitochondria is commonly used to investigate electron transport chain function. We describe a method for obtaining ...

Human Vastus Lateralis Skeletal Muscle Biopsy Using the Weil-Blakesley Conchotome

Percutaneous muscle biopsy using the Weil-Blakesley conchotome is well established in both clinical and research practice. It is a safe, effective and well tolerated technique. The Weil-Blakesley conchotome has a sharp biting tip with a 4 - 6 mm wide hollow. It is inserted through a 5 - 10 mm skin incision and can be maneuvered for controlled tissue penetration. The tip is opened and closed within the tissue and then rotated through 90 -180&#176; to cut the muscle. The amount of muscle obtained following repeated sampling can vary from 20 mg to 290 mg which can be processed for both histology and molecular studies. The wound needs to be kept dry and vigorous physical activity kept to a minimum for approximately 72 hr although normal levels of activity can restart immediately following the procedure. This procedure is safe and effective when close attention is paid to the selection of subjects, full asepsis and post procedure care. &#160;Both right and left vastus lateralis are suitable for biopsy dependent on participant preference.

Human Vastus Lateralis Skeletal Muscle Biopsy Using the Weil-Blakesley Conchotome

This video demonstrates the technique of percutaneous muscle biopsy of the human vastus lateralis using the Weil-Blakesley conchotome.

Umano<em&gt; vasto laterale</em&gt; Biopsia muscolare scheletrico Utilizzando la Weil-Blakesley Conchotome

Percutaneous muscle biopsy using the Weil-Blakesley conchotome is well established in both clinical and research practice. It is a safe, effective and ...

Phosphorus-31 Magnetic Resonance Spectroscopy: A Tool for Measuring In Vivo Mitochondrial Oxidative Phosphorylation Capacity in Human Skeletal Muscle

Skeletal muscle mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity, which is critically important in health and disease, can be measured in vivo and noninvasively in humans via phosphorus-31 magnetic resonance spectroscopy (31PMRS). However, the approach has not been widely adopted in translational and clinical research, with variations in methodology and limited guidance from the literature. Increased optimization, standardization, and dissemination of methods for in vivo 31PMRS would facilitate the development of targeted therapies to improve OXPHOS capacity and could ultimately favorably impact cardiovascular health. 31PMRS produces a noninvasive, in vivo measure of OXPHOS capacity in human skeletal muscle, as opposed to alternative measures obtained from explanted and potentially altered mitochondria via muscle biopsy. It relies upon only modest additional instrumentation beyond what is already in place on magnetic resonance scanners available for clinical and translational research at most institutions. In this work, we outline a method to measure in vivo skeletal muscle OXPHOS. The technique is demonstrated using a 1.5 Tesla whole-body MR scanner equipped with the suitable hardware and software for 31PMRS, and we explain a simple and robust protocol for in-magnet resistive exercise to rapidly fatigue the quadriceps muscle. Reproducibility and feasibility are demonstrated in volunteers as well as subjects over a wide range of functional capacities.

Phosphorus-31 Magnetic Resonance Spectroscopy: A Tool for Measuring In Vivo Mitochondrial Oxidative Phosphorylation Capacity in Human Skeletal Muscle

This work demonstrates the feasibility of an in vivo phosphorus-31 magnetic resonance spectroscopy (31PMRS) technique to quantify mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity in human skeletal muscle.

Fosforo-31 spettroscopia di risonanza magnetica: uno strumento per misurare<em&gt; In Vivo</em&gt; Capacità fosforilazione ossidativa mitocondriale nel muscolo scheletrico umano

Skeletal muscle mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity, which is critically important in health and disease, can be measured in vivo ...

Mouse Model for Pancreas Transplantation Using a Modified Cuff Technique

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the availability of the widest range of molecular probes and reagents to perform in vivo as well as in vitro studies. Based on our experience with various murine transplantation models, we developed a heterotopic pancreas transplantation model in mice with the intent to analyze mechanisms underlying severe ischemia reperfusion injury-associated early graft damage. In contrast to previously described techniques using suture techniques, herein we describe a new procedure using a non-suture cuff technique. 
In recent years, we have performed more than 300 pancreas transplantations in mice with an overall success rate of &gt;90%, a success rate never described before in mouse pancreas transplantation. The backbone of this non-suture cuff technique for graft revascularization consists of two major steps: (I) pulling the recipient vessel over a polyethylene/polyamide cuff and fixing it with a circumferential ligature, and (II) placing the donor vessel over the everted recipient vessel and fixing it with a second circumferential ligature. The resultant continuity of the endothelial layer results in less thrombogenic lesions with high patency rates and, finally, high success rates.
In this model, arterial anastomosis is achieved by pulling the abdominal aorta of the donor graft over the everted common carotid artery of the recipient animal. Venous drainage of the graft is achieved by pulling the portal vein of the graft over the everted external jugular vein of the recipient. This manuscript provides details and crucial steps of the organ recovery and organ implantation procedures, which will allow researchers with microsurgical skills to perform the transplantation successfully in their laboratories.

Among abdominal solid organ transplantation, pancreatic grafts are prone to develop severe ischemia reperfusion injury-associated graft damage, leading eventually to early graft loss. This protocol describes a model of murine pancreas transplantation using a non-suture cuff technique, ideally suited for analyzing these early, deleterious damages.