パート1:RNAからcDNA合成
- アンビオンアミノアリルMessageAmp IIキットを使用する前に、洗浄バッファーに100%エタノールの推奨量を追加します。
- PCR反応チューブに、100ngの間にT7オリゴ(dT)プライマーのトータルRNAと1μlのの5μgに追加します。ヌクレアーゼフリー水で12μlにボリュームを起動します。
- 70でサンプルをインキュベート℃でサーマルサイクラーで10分間。
- ° Cと遠心簡単に70からRNAサンプルを削除します。氷の上に置きます。
- 第1ストランド合成のマスターミックスを調製し、(エラーをピペッティングするための10%超過付き)、室温でおいてください。(表1)
- ミックスして、手短に遠心して静かにピペットでマスターミックスまたはフリックします。
- 各RNAサンプルにマスターミックスの8μlを転送する。 3〜4回上下にピペッティングして混ぜる。
- サーマルサイクラーで2時間、42℃でインキュベートする。
- 氷上で遠心サンプルの短時間と場所。すぐに二本鎖DNAの合成の次のステップに進みます。
- 氷上で2 回目のストランドの合成マスターミックス(エラーをピペッティングするための10%超過と)。(表2)を準備
- ミックスして、手短に遠心して静かにピペットでマスターミックスまたはフリックします。
- 各サンプルに80μlを移し、軽く3,4回上下にピペッティングして混ぜる。
- サーマルサイクラーで2時間16℃でインキュベートする。
- 2時間のインキュベーションの後、cDNAを、クリーンアップ手順を続行または-20℃で直ちに凍結する
パート2:二本鎖cDNAをクリーンアップ
- 冷蔵庫からcDNAピュアを取り外して、使用前に30分間室温に平衡化することができます。完全に使用前に磁気のcDNA結合ビーズを再懸濁するためにボトルを振る。
- 1.5mlチューブ50〜60℃でインキュベートC前の2時間インキュベーション中に少なくとも10分間に分注しヌクレアーゼフリー水。
- 各サンプルのcDNAの純粋の180μlを追加し、徹底的に上下にピペッティングにより混合する。 96ウェル丸底プレートにサンプルを移す。
- 静かに少なくとも2分間オービタルシェーカー上でプレートを振とうしてサンプルをミックスし続ける。
- 磁気ビーズを捕捉する磁気スタンドにプレートを移動します。約6分間、または混合物が透明になり、結合ビーズをペレット化されるまで、スタンドにプレートを残す。
- 慎重に磁気ビーズを乱すことなく真空アスピレーターで上清を吸引除去する。また、注意深くピペットで上清を除去し、上清を捨てる。
- 磁気スタンドからプレートを取り外します。
- 各ウェルに150μLcDNAを洗浄バッファーを追加し、適度なスピードでオービタルシェーカー上で1分間プレートを振る。ビーズは、洗浄緩衝液の低い表面張力により、このステップで分散されません。
- 磁気ビーズを捕捉する磁気スタンドにプレートを移動します。
- 慎重に磁気ビーズを乱すことなく真空アスピレーターで上清を吸引除去する。また、注意深くピペットで上清を除去し、上清を捨てる。
- 磁気スタンドからプレートを取り外します。
- 150μLcDNAを洗浄バッファーで洗浄2回目のタイムを繰り返します。
- 第2回洗浄した後、最高速度でオービタルシェーカーで2分間プレートを振とうしてビーズを乾燥させる。乾燥し過ぎたしないでください!
- 各サンプルに予熱のNuclease - Free Water18μlを加えることによりビーズからcDNAを溶出させる。
- 精力的にオービタルシェーカー上で3分間プレートを横に振ると、磁性ビーズが十分に分散されている確認してください。されていない場合は、揺れ続ける。
- 磁気ビーズが完全に分散した後、磁気ビーズを捕捉する磁気スタンドにプレートを移動します。
- 慎重に(〜16μl)溶出したcDNAは、新たなPCRプレート(またはPCRチューブ)に移す。
- 次の手順に直接進む、または-20℃にてcDNAを凍結する
パート3:in vitro転写 (IVT)
- 室温でIVTマスターミックスを調製する。(表3)
- 穏やかに混合し、手短に遠心してマスターミックスや映画をピペット。
- 各サンプルに24μl追加し、軽く3,4回上下にピペッティングして混ぜる。
- サーマルサイクラーで14時間、37℃でインキュベートし、その後次のステップのため° Cまでの準備4で保持する。
パート4:aRNAのクリーンアップIVTの後に
- 簡単に渦RNA結合ビーズを使用前であっても混合物を得ること。
- 室温でaRNAの結合ミックスを準備する(表4)これは、事前に行うことができます- 。プリペアド結合ミックスは、最大1週間まで室温で保存することができます。
- ボルテックスでよく混ぜる。
- 少なくとも10分間、50〜60℃で1.5mlチューブとインキュベートに分注しaRNAの溶出バッファー。
- aRNAの結合ミックスの70μlを追加各サンプルにして3,4回上下にピペッティングしてよく混ぜる。
- PCRプレートから96ウェル丸底プレートにサンプルを移す。
- 各サンプルに100%イソプロパノール50μlのを追加し、3,4回上下にピペッティングしてよく混ぜる。
- やさしく徹底的にサンプルを混ぜるために、少なくとも2分間オービタルシェーカー上でプレートを振る。
- 磁気ビーズを捕捉する磁気スタンドにプレートを移動します。混合物が透明になり、結合ビーズをペレット化されるまで、スタンドにプレートを残す。
- 慎重に磁気ビーズを乱すことなく真空アスピレーターで上清を吸引除去する。また、注意深くピペットで上清を除去し、上清を捨てる。
- 磁気スタンドからプレートを取り外します。
- 各ウェルに100μlのaRNAの洗浄液を追加し、適度なスピードでオービタルシェーカー上で1分間プレートを振る。ビーズは、完全にこの段階では分散されないことがあります。
- 磁気ビーズを捕捉する磁気スタンドにプレートを移動します。
- 慎重に磁気ビーズを乱すことなく真空アスピレーターで上清を吸引除去する。また、注意深くピペットで上清を除去し、上清を捨てる。
- 磁気スタンドからプレートを取り外します。
- 100μlのaRNAの洗浄溶液で洗浄2回目のタイムを繰り返します。
- 第2回洗浄した後、最高速度でオービタルシェーカー上で1分間プレートを振とうしてビーズを乾燥させる。サンプルを乾燥し過ぎたしないでください!
- 各サンプルに40μlの予熱aRNAの溶出バッファーを添加することによりビーズからaRNAのを溶出する。
- 精力的に3分間オービタルシェーカー上でプレートを横に振ると、磁性ビーズが十分に分散されている確認してください。されていない場合は、揺れ続ける。
- 磁気ビーズが完全に分散した後、磁気ビーズを捕捉する磁気スタンドにプレートを移動します。上清は、取り込まれたaRNAのがクリーンアップされたアミノアリルが含まれています。
- 慎重に新たなPCRプレート(またはPCRチューブ)に溶出されたaRNAを転送します。
- (オプションの手順)は、光度計分光光度計に1.5μlずつを測定することにより、サンプルのRNAの濃度を確認してください。
- すぐに次のステップに引き続き、または-80 aRNAの℃にて保存してください。
表1:cDNAの第1のストランドの合成マスターミックス
試薬 | 1反応量 |
10Xファーストストランドバッファー | 2μlの |
dNTPミックス | 4μlの |
リボヌクレアーゼ阻害剤 | 1μL |
配列スクリプト | 1μL |
表2:cDNAの第2鎖合成のマスターミックス
試薬 | 1反応量 |
ヌクレアーゼフリー水 | 63μlの |
10Xセカンドストランドバッファー | 10μlの |
dNTPミックス | 4μlの |
DNAポリメラーゼ | 2μlの |
RNase H活性 | 1μL |
表3:IVTマスターミックス
試薬 | 1反応量 |
aaUTP溶液(75mMの) | 2μlの |
ATP、CTP、GTPミックス(25 mM)を | 12μlの |
T7 UTPソリューション(75 mM)を | 2μlの |
T7 10X反応バッファー | 4μlの |
T7酵素ミックス | 4μlの |
表4:aRNAのバインディングミックス
試薬 | 1反応量 |
RNA結合ビーズ* | 10μlの |
ビーズの再懸濁ソリューション* | 4μlの |
100%イソプロパノール** | 6μlの |
aRNAの結合バッファー濃縮液 | 50μlの |
*最初のビーズ懸濁液でRNA結合ビーズをミックス。
**イソプロパノールを追加し、aRNAの結合バッファー濃縮液を添加する前によく混ぜる。