JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Протокол Vaccinia заражения клеток HeLa и анализ хозяина и вирусных экспрессии генов. Часть 2 из 3.

Аннотация

Семья

протокол

Часть 1: синтеза кДНК из РНК

  1. Перед использованием Амбион Amino Аллил MessageAmp II комплекта, добавьте рекомендуемый объем в размере 100% этанола, мыть буферов.
  2. В трубке реакции ПЦР, добавьте между 100ng к 5 мкг тотальной РНК и 1 мкл Т7 олиго (дТ) грунт. Довести объем до 12μl с нуклеазы без воды.
  3. Инкубируйте образцы при температуре 70 ° С в течение 10 мин в амплификаторе.
  4. Удалить РНК образцов от 70 ° С и центрифуги кратко. Место на льду.
  5. Подготовка 1-й Strand Синтез мастер перемешать и хранить при комнатной температуре (с 10% превышения для пипетирования ошибка). (Таблица 1)
  6. Аккуратно пипетки Mix Master или фильм перемешать, а затем центрифуги кратко.
  7. Передача 8μl из Master Mix к каждой пробе РНК. Смешать с помощью пипетки вверх и вниз по 3-4 раза.
  8. Инкубировать при 42 ° С в течение 2 часов в амплификаторе.
  9. Центрифуга образцы на короткое время и место на льду. Сразу же переходите к следующему шагу синтеза двухцепочечной ДНК.
  10. Подготовка 2-й Strand Синтез мастер смеси на льду (с 10% превышения для пипетирования ошибка). (Табл. 2)
  11. Аккуратно пипетки Mix Master или фильм перемешать, а затем центрифуги кратко.
  12. Передача 80μl к каждому образцу и осторожно перемешать с помощью пипетки вверх-вниз 3-4 раза.
  13. Инкубировать при 16 ° С в течение 2 часов в амплификаторе.
  14. После 2 часов инкубации, приступить к кДНК очистке шаг или немедленно заморозить при -20 ° C.

Часть 2: двухцепочечной кДНК очистке

  1. Удалить кДНК Чистый из холодильника и дайте ему, чтобы уравновесить до комнатной температуры в течение 30 минут перед использованием. Встряхните бутылку, чтобы полностью ресуспендирования магнитного кДНК обязательным бисер перед использованием.
  2. Алиготе нуклеазы без воды в 1,5 мл трубки и инкубировать при 50-60 ° С в течение минимум 10 минут в течение предыдущего 2hr инкубации.
  3. Добавить 180μl кДНК Чистая для каждого образца, и тщательно перемешать с помощью пипетки вверх и вниз. Передача образцов для 96-луночного круглым дном тарелку.
  4. Продолжайте смешивать образцы, осторожно покачивая пластину на орбитальном шейкере в течение 2 минут.
  5. Перемещение пластины для магнитного стоять, чтобы захватить магнитных бус. Оставьте пластину на стенде в течение приблизительно 6 минут, или пока смесь не станет прозрачной и обязательным бисера гранулированный.
  6. Тщательно аспирата супернатанта с вакуумным аспиратором, не нарушая магнитных бус. Кроме того, осторожно удалите супернатант с пипеткой и отбросить супернатант.
  7. Удалите пластину из магнитного стенда.
  8. Добавить 150 мкл кДНК промывочного буфера в каждую лунку и встряхните пластине в течение 1 минуты на орбитальном шейкере при умеренной скорости. Бисер НЕ разойдутся на этом этапе, в связи с низким поверхностным натяжением из промывочного буфера.
  9. Перемещение пластины для магнитного стоять, чтобы захватить магнитных бус.
  10. Тщательно аспирата супернатанта с вакуумным аспиратором, не нарушая магнитных бус. Кроме того, осторожно удалите супернатант с пипеткой и отбросить супернатант.
  11. Удалите пластину из магнитного стенда.
  12. Повторите мыть 2-й раз с 150 мкл кДНК промывочного буфера.
  13. После 2-й вымыть, обсушить бисером встряхиванием пластины в течение 2 минут на орбитальном шейкере при максимальной скорости. Не пересушить!
  14. Элюировать кДНК из бисера, добавив 18μl из разогретой нуклеазы без воды каждого образца.
  15. Энергично встряхните пластине в течение 3 минут на орбитальном шейкере, а затем проверить, чтобы убедиться, магнитных шариков полностью рассеялись. Если нет, то продолжать дрожать.
  16. После магнитных шариков полностью рассеяны, перемещать пластину магнитного стоять, чтобы захватить магнитных шариков.
  17. Тщательно передачи элюировали кДНК (~ 16μl) для новой пластинкой ПЦР (или ПЦР).
  18. Перейдем непосредственно к следующему шагу, или заморозить кДНК при температуре -20 ° C.

Часть 3: в пробирке транскрипции (ИВТ)

  1. Подготовьте смесь IVT мастер при комнатной температуре. (Табл. 3)
  2. Аккуратно пипетки Mix Master или фильм перемешать, и центрифуга кратко.
  3. Добавить 24μl для каждого образца, и осторожно перемешать с помощью пипетки вверх-вниз 3-4 раза.
  4. Инкубировать при 37 ° С в течение 14 часов в амплификаторе, затем, удерживая при 4 ° С до готовности для следующего шага.

Часть 4: Арна очистке после IVT

  1. Vortex связывание РНК бисером кратко получить даже смесь перед использованием.
  2. Подготовка Арна Связывание Смешать при комнатной температуре (табл. 4) Это может быть сделано загодя -. Подготовлены обязательным смесь можно хранить при комнатной температуре на срок до одной недели.
  3. Хорошо перемешайте на вортексе.
  4. Алиготе буфера Арна Элюирование в 1,5 мл трубки и инкубировать при 50-60 ° С в течение не менее 10 минут.
  5. Добавить 70μl из Арна обязательным смесидля каждого образца и хорошо перемешать с помощью пипетки вверх и вниз по 3-4 раза.
  6. Передача образца от пластины ПЦР для 96-луночного круглым дном тарелку.
  7. Добавить 50 мкл 100% изопропанола к каждому образцу и хорошо перемешать с помощью пипетки вверх-вниз 3-4 раза.
  8. Осторожно встряхните пластину на орбитальный шейкер, по крайней мере 2 минуты для тщательного перемешивания образцов.
  9. Перемещение пластины для магнитного стоять, чтобы захватить магнитных бус. Оставьте пластину на стенде, пока смесь не станет прозрачной и обязательным бисера гранулированный.
  10. Тщательно аспирата супернатанта с вакуумным аспиратором, не нарушая магнитных бус. Кроме того, осторожно удалите супернатант с пипеткой и отбросить супернатант.
  11. Удалите пластину из магнитного стенда.
  12. Добавить 100 мкл Арна промывочного раствора в каждую лунку и встряхните пластине в течение 1 минуты на орбитальном шейкере при умеренной скорости. Бусины могут не расходиться на этот шаг.
  13. Перемещение пластины для магнитного стоять, чтобы захватить магнитных бус.
  14. Тщательно аспирата супернатанта с вакуумным аспиратором, не нарушая магнитных бус. Кроме того, осторожно удалите супернатант с пипеткой и отбросить супернатант.
  15. Удалите пластину из магнитного стенда.
  16. Повторите мыть 2-й раз с 100 мкл промывочного раствора Арна.
  17. После 2-й вымыть, обсушить бисером встряхиванием пластины в течение 1 минуты на орбитальном шейкере при максимальной скорости. Не пересушить образцы!
  18. Элюировать Арна из бисера, добавив 40μl разогретой Элюирование Арна буфера для каждого образца.
  19. Энергично встряхните пластину на орбитальном шейкере в течение 3 минут, а затем проверить, чтобы убедиться, магнитных шариков полностью рассеялись. Если нет, то продолжать дрожать.
  20. После магнитных шариков полностью рассеяны, перемещать пластину магнитного стоять, чтобы захватить магнитных шариков. Супернатант содержит очищенный амино-аллил включены Арна.
  21. Тщательно передачи элюировали Арна к новой пластинкой ПЦР (или ПЦР).
  22. (Необязательный шаг) Проверьте концентрацию РНК образцов путем измерения 1.5μl на NanoDrop спектрофотометр.
  23. Сразу же продолжать на следующий шаг, и не храните Арна при температуре -80 ° C.

Таблица 1: 1-й кДНК Strand Синтез Master Mix

Реагент Сумма за 1 реакция
10X первый буфер Strand 2 мкл
дНТФ Mix 4 мкл
Ингибитор рибонуклеазы 1 мкл
Массив сценарий 1 мкл

Таблица 2: 2-й кДНК Strand Синтез Master Mix

Реагент Сумма за 1 реакция
Нуклеазы свободной воды 63 мкл
Второй 10X буфера Strand 10 мкл
дНТФ Mix 4 мкл
ДНК-полимераза 2 мкл
РНКазы Н 1 мкл

Таблица 3: IVT Master Mix

Реагент Сумма за 1 реакция
aaUTP решение (75 мм) 2 мкл
АТФ, CTP, GTP смеси (25 мМ) 12 мкл
T7 UTP решение (75 мм) 2 мкл
T7 10X буфера реакции 4 мкл
T7 ферментов Mix 4 мкл

Таблица 4: Связывание Арна Mix

Реагент Сумма за 1 реакция
Связывание РНК бисер * 10 мкл
Бусы ресуспендирования Решение * 4 мкл
100% изопропанола ** 6 мкл
Арна Связывание Концентрат буфера 50 мкл

* Смешать связывание РНК бисер с борта решение ресуспендирования в первую очередь.
** Добавьте изопропанола и хорошо перемешать перед добавлением Арна обязательным концентрат буфера.

Обсуждение

Критические Шаги

Второй тур усиления не рекомендуется в качестве смещения в массиве данных не наблюдалось. Смешивание тщательно на каждом шагу ферментативной (1-й и 2-й цепи кДНК синтеза, IVT) имеет решающее значение для получения хороших урожаев усиления, как и?...

Раскрытие информации

The authors have nothing to disclose.

Благодарности

Уайтхед Институт стипендиаты фондов

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Amino Allyl MessageAmp II aRNA amplification kitReagentApplied BiosystemsAM1753For 20 reactions
Amino Allyl MessageAmp II aRNA amplification kitReagentApplied BiosystemsAM1821For 100 reactions, in a 96-well format
NanoDrop ND-1000 UV-VIS spectrophotometerOtherNanoDropND-1000Or equivalent spectrophotometer

Ссылки

  1. Rubins, K. H., Hensley, L. E., Bell, G. W., Wang, C., Lefkowitz, E. J., Brown, P. O., Relman, D. A. Comparative analysis of viral gene expression programs during poxvirus infection: a transcriptional map of the vaccinia and monkeypox genomes. PLoS ONE. 3 (7), e2628-e2628 (2008).
  2. Assarsson, E., Greenbaum, J. A., Sundström, M., Schaffer, L., Hammond, J. A., Pasquetto, V., Oseroff, C., Hendrickson, R. C., Lefkowitz, E. J., Tscharke, D. C., Sidney, J., Grey, H. M., Head, S. R., Peters, B., Sette, A. Kinetic analysis of a complete poxvirus transcriptome reveals an immediate-early class of genes. Proc. Natl. Acad. Sci. 105 (6), 2140-2145 (2008).
  3. Satheshkumar, P. S., Moss, B. Poxvirus transcriptome analysis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, E62-E62 (2008).
  4. Assarsson, E., Greenbaum, J. A., Sundström, M., Schaffer, L., Hammond, J. A., Pasquetto, V., Oseroff, C., Hendrickson, R. C., Lefkowitz, E. J., Tscharke, D. C., Sidney, J., Grey, H. M., Head, S. R., Peters, B., Sette, A. A. Reply to Satheshkumar and Moss: Poxvirus transcriptome analysis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, E63-E64 (2008).
  5. Guerra, S., López-Fernández, L. A., Pascual-Montano, A., Muñoz, M., Harshman, K., Esteban, M. Cellular gene expression survey of vaccinia virus infection of human HeLa cells. J Virol. 77 (11), 6493-6506 (2003).
  6. Guerra, S., López-Fernández, L. A., Conde, R., Pascual-Montano, A., Harshman, K., Esteban, M. Microarray analysis reveals characteristic changes of host cell gene expression in response to attenuated modified vaccinia virus Ankara infection of human HeLa cells. J Virol. 78 (11), 5820-5824 (2004).
  7. Guerra, S., López-Fernández, L. A., Pascual-Montano, A., Nájera, J. L., Zaballos, A., Esteban, M. Host response to the attenuated poxvirus vector NYVAC: upregulation of apoptotic genes and NF-kappaB-responsive genes in infected HeLa cells. J Virol. 80 (2), 985-998 (2006).
  8. Guerra, S., Nájera, J. L., González, J. M., López-Fernández, L. A., Climent, N., Gatell, J. M., Gallart, T., Esteban, M. Distinct gene expression profiling after infection of immature human monocyte-derived dendritic cells by the attenuated poxvirus vectors MVA and NYVAC. 81 (16), 8707-8721 (2007).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

26VacciniaHeLaTRIzolMicroarrayAmino MessageAmpII

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены