このコンテンツを視聴するには、JoVE 購読が必要です。 サインイン又は無料トライアルを申し込む。
Method Article
詳細なプロトコルは、イメージングのためのDNA修復複合体のリアルタイムの形成を説明しています枯草菌細胞。
原核生物と真核生物の両方の生理的変化の複雑なセットを介してDNA損傷に応答する。遺伝子発現、既存の蛋白質の再分配、及び新たなタンパク質複合体のアセンブリの変化は、DNAの損傷とミスマッチDNAの塩基対の種々の方法によって刺激することができる。蛍光顕微鏡は、DNA損傷にと生きている細胞の複雑な細胞内のアーキテクチャの中でDNAの複製の状態を監視するために、これらおよび他の応答を可視化し定量化するための強力な実験ツールとして用いられている。蛍光レポータータンパク質とDNA複製と修復機構のコンポーネント間の翻訳融合は、手がかりを決定するために使用されているその同族病変の標的DNA修復タンパク質
顕微鏡の細胞の成長文化
1。一または二日には、イメージングの前に、Bを用意する枯草菌では、可視化したい翻訳融合タンパク質を含む菌株。ステップ1Aおよび1Bの試験のラウンドは、成長条件があなたの株の最高の画像を提供しているかを判断するために必要となります。ほとんどの場合、細胞は対数増殖期の間に撮像することがあります。
2。イメージング、125mLの滅菌三角フラスコにS7 50 1から3培地の代わりに10mLの日の朝。
3。接種を得るために、単一コロニーまたは光コンフルエントの細胞を含むLB寒天プレートからS7 50培地2 mLまでの細胞を再懸濁します。
4。 0.1〜〜0.08の600nmで測定された初期の光学密度(OD 600)との文化のための10mLのS7 50培地を入れた三角フラスコに十分なS7 50中期細胞接種を追加。このステップでは、それは少なくとも10倍空気媒質の比にしておくことが重要です。従って、我々は125 mLの三角フラスコに接種した培地を10〜12.5mlのを使用してください。
5。文化は、OD 600を 〜0.5から0.8に達するまで30℃でそれぞれの文化を育てる。揺れ水浴を150から200までから毎分回転数で好ましい。 DNA損傷または不整合誘導剤で攻撃の文化は(表1参照)初期の指数増殖期細胞は、治療のために必要とされる成長の追加の期間でOD 600のターゲットに到達するようにOD 600になっているはず
例えば、2 -アミノプリンは、治療の一時間を必要とするため、2 -アミノプリンで治療された文化は、OD 600になっているはず〜0.3から0.4まで、このようなOD 600の治療/成長の結果の一時間いる〜0.5から0.8、それによって細胞がイメージングのための準備が整いました。
サンプル準備
1。ピペット1.5 mlマイクロ遠心チューブに培養細胞を300μl。
2。細胞膜のイメージングが必要な場合は、1 mg / mLの原液から各サンプルに汚れFM4 - 64膜(Invitrogen社)の1:1000希釈を追加。 FM4 - 64の滴定は、所望の蛍光信号を達成するために必要な場合があります。典型的な滴定の範囲は1:100、1:1000、および1:10,000です。
3。サンプルは最大10分間、室温で座ることを許可またはスライドは以下に述べるように培地1X Spizizensの1%アガロース("スライドの準備"のステップ1を参照)を用いて調製されている間。
4。細胞の濃度が必要な場合、我々は、真空装置と、0.2μmフィルターを用いてフィルタリングセルを好む。その後、細胞を穏やかにPBS、別の適切な緩衝液または可視化に先立って培地とフィルターの表面から洗浄することができます。
スライドの準備
1。 1X Spizizensを1%アガロースを準備します。
5 0.5 Gアガロースと共に10X SpizizensストックのmLの45ミリリットルddH2Oに、そして溶融にマイクロ波を追加。ホット溶融アガロースは、ピペッティングすることは困難であり、アガロースがピペットの先端を入力しません固化。アガロースが〜55から65までの温度° Cまで、それは内に固化せずにピペットチップを入力するための水浴中で平衡化してください先端。
2。 1%はピペットの先端にアガロースを融解とSpizizensの20μlを描く。ピペット浅いアガロースパッドを形成するために、各スライドにアガロース溶液の一滴(約1〜2μL)も(我々は15ウェルスライドを使用して、表2を参照)。アガロースは、すぐに固化される。スライドは、細胞のアプリケーションの直前に行う必要があります。アガロースパッドを単独で室温で放置されている場合、それらは数分で脱水し、使用できなくなることがあります。
アガロースパッドが中央にしても、それぞれを埋めるがカバースリップの中断を回避するために最小の高さを持っている必要があります。、液滴が高すぎる(バブル的)またはサンプルはうまく境界を越えて広がる場合キムワイプでよくきれいなだけでスワイプして、適用新しいアガロースパッド。
3。各アガロースパッドの上に分散し、スライド全体を300μlのサンプルを(ステップ6を参照)を適用します。細胞のこの量は、スライド上の各ウェルをカバーする十分なはずです。
4。約10分間(23℃)、室温で座っているセルを搭載したスライドを許可する。このステップでは、アガロースパッドが撮像のために動かないで準備に落ち着くために細胞が可能になります。特別なニーズのためにこの温度は、温度シフト4を必要とする実験を行う際に、例えば、変更が必要な場合があります。
5。パッド自体を削除せずに、各ウェルからの過剰なメディアを離れて吸引除去する。
6。スライドの領域を越え、しっかりと均等に、かつ慎重に押して、スライドにカバースリップを適用します。カバーガラスがスライドに対して、カバースリップがスライド上に上げていないことが確認してください。
細胞の可視化
1。多くの異なる蛍光顕微鏡で問題なく動作します。それは、100X油浸レンズを持つことが重要です。シモンズラボは、使用しています。
2。白色光を使用してフォーカスに細胞をもたらす。
3。各蛍光体のために適切なフィルタを使用してイメージをキャプチャします。
代表的な結果
代表的なイメージが(図1)が表示されます。 FM4 - 64染色4-7を明るくクリアになるはずですがGFP病巣は、明確に定義する必要があります。 GFPまたは膜の画像は、データを失うことなく、提示される最高品質の画像を可能にするために、任意の色を持つ擬似着色することができます。
図1:Bの代表的なGFPの画像 FM4 - 64膜の染色が赤で表示されている間、 枯草菌の翻訳融合タンパク質を。GFPタンパク質は、緑色で表示されます。白いスケールバーは3μmを示している()MutS - GFP [関連する遺伝子型:mutS - GFP(SPC)、amyE::Pspac mutL(猫 )] 600μg/ mLの2 -アミノプリンおよび1mMのIPTGの存在下で行われる。 FM4 - 64信号がより明確にMutS - GFP病巣を示すために提示されない(B)MutL - GFP [関連する遺伝子型:mutL::mutL - GFP(SPC)]。。2 -アミノプリンの存在下で(C) DnaX - GFP [関連する遺伝子型:dnaX::dnaX - GFP(SPC)]。 (D)のRecA - GFP [関連する遺伝子型:recAの::recAの- GFP(SPC)] 20 ng / mLのマイトマイシンCの(E)TAGC - GFP [関連する遺伝子型の存在下で:TAGC::TAGC - GFP(SPC) 】1μg/ mLのマイトマイシンCの存在下で
治療/濃度または量 | 機能 | インキュベーションの時間 |
マイトマイシンC(MMC)[20〜150 ng / mLの] | DNAアルキル化剤 | 1時間 |
2 - アミノプリン(2 - AP)[600μg/ mLの] | ミスマッチの誘導 | 1時間 |
ヒドロキシウレア(HU) | dNTPを枯渇させる | 3時間 |
紫外線(UV)20 J/m2 | チミン - チミンダイマーと6-4光産物 | 20秒通常は、ソースによって異なります |
グレー(電離放射線)5〜100 Gyの | 二本鎖切断、一本鎖切断及び塩基損傷部位 | ソースによって異なります |
試薬の名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント(省略可能) |
Multitest社スライド、15ウェル | MPのバイオメディカル | 6041505E | |
顕微鏡のカバーガラス | フィッシャー | 12から544 - B | |
アガロース | フィッシャー | BP160 - 500 | |
マイトマイシンC | シグマ | M0503 - 2mgを | 変異原性、摩耗の手袋 |
2 - アミノプリン | シグマ | A3509 - 250mgの | 手袋 |
ヒドロキシウレア | シグマ | H8627 - 25G | 手袋 |
FM4 - 64 | インビトロジェン | T13320 | 敏感な光 |
表2。特定の試薬 と機器のリスト:
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
試行錯誤は、各株の最高品質の画像の露光条件を見つけるために必要とされ、我々は100〜2000ミリ秒のエクスポージャーはGFP(FITC)とFM4 - 64(TRITCに適している間に1ミリ秒は、白色光の画像に適していることを見つける)のイメージ。露光時間は、使用するイメージング機器によって異なります。複数の系統が同じスライド上に存在する場合、パッドの国境から細胞のパッドの品質と拡散は、...
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
著者は、博士に感謝したい。最初に蛍光顕微鏡でLASを訓練するためのPhilina S.リーとアランD.グロスマン。著者らはまた、博士に感謝します。ヘルプとイメージングのためのヒントについてはメラニーBerkmenと肇小林。この作品は、文学、科学芸術の大学から、ミシガン大学、分子細胞、および発生生物学の部門からの資金投入を開始することによってサポートされていました。
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
特定のソリューションのレシピ1:
10倍S7 50塩
0.5 MのMOPS
100mMの硫酸アンモニウム
50mMのリン酸二水素カリウム
滅菌フィルター処理、および保管前にラップS7箔で50メディア
100xの金属
0.2 MのMgCl 2
70 mMのCaCl 2を
5mMのMnCl 2を
0.1mMのZnCl 2を
100μg/ mlのチアミン塩酸
2mMの塩酸
0.5mMのFeCl 3の *
最終的なボリュームへのdH 2 O
*のFeCl 3を沈殿を防ぐために、最後に追加する必要があります。
箔のフィルターの滅菌後、ラップ100 ×メタルソリューション。
S7 50メディア
1X S7 50塩
1X金属
1%のグルコース
0.1%グルタミン酸
40μg/ mLのトリプトファン
40μg/ mLのフェニルアラニン
最終的なボリュームに蒸留H 2 O
10倍Spizizens(グラム/ L)
151.4 mMの硫酸アンモニウム(20グラム/ L)
803.8 mMのリン酸二水素カリウム(140グラム/ L)
440.9 mMリン酸カリウム二塩基性(60グラム/ L)
34.0 mMクエン酸ナトリウム(10グラム/ L)
16.6 mMのMgSO 4を (2G / L)
最終的なボリュームへのdH 2 O
滅菌フィルタリング
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
このJoVE論文のテキスト又は図を再利用するための許可を申請します
許可を申請This article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2023 MyJoVE Corporation. All rights reserved