JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Обсуждение
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Подробный протокол описан для визуализации реального времени формирования комплексов репарации ДНК в Сенная Bacillus Клеток.

Аннотация

Оба прокариоты и эукариоты ответ на повреждение ДНК через сложный набор физиологических изменений. Изменения в экспрессии генов, перераспределения существующих белков и сборку новых белковых комплексов можно стимулировать с помощью различных повреждений ДНК и несовпадающих пар оснований ДНК. Люминесцентной микроскопии был использован в качестве мощного экспериментального инструмент для визуализации и количественной оценки этих и других ответов на повреждения ДНК и контролировать состояние репликации ДНК в комплексе архитектуры субклеточных живой клетке. Поступательное слияния между флуоресцентных белков репортер и компоненты репликации ДНК и ремонт техники были использованы для определения сигналов, предназначенных для восстановления ДНК белков на их родственные поражения

протокол

Рост культур клеток для микроскопии

1. Один или два дня до визуализации, подготовки B. Сенная штамм содержащие поступательного белка слияния вы хотите визуализировать. Судебная раундов шаги 1А и 1В будет необходимо определить, какой рост условие обеспечивает лучшие изображения вашего напряжения. В большинстве случаев, камеры должны быть отображены в экспоненциальной фазе роста.

  1. Для некоторых B. Сенная штаммов (в частности, штаммы, которые растут плохо из-за интеграции поступательного слияние гена GFP и на ее эндогенного локуса), начальный рост за два дня до визуализации необходима для изображения высокого качества. В первый день, полоса B. Сенная напрягаться, чтобы быть отображены на LB агар с селективной антибиотика (ов) и инкубировать в течение ночи при 30 ° C. На второй день, привить 100 мкл 0,85% физиологического раствора с одной колонии и выполнять три 10-кратный серийных разведений на пластинах LB агар (с выборочным антибиотики), покрытие 100 мкл каждого разведения, после инкубации в течение ночи при температуре 30 ° C. На третий день, выберите разбавления пластины светом сплошной рост клеток. Свет сплошной рост на тарелку обеспечит рост среде с здоровыми, экспоненциально растущей стартер посевной потенциально доходность отличные результаты томографии (см. шаг 4). Этот шаг является особенно полезным для высокого качества снимков мембраны с пятном FM4-64.
  2. Другие Б. Сенная штаммы могут просто быть применены к селективной среде агара LB для одной колонии с стерильных палку день до визуализации и инкубировать в течение ночи при 30 ° C. На следующий день, клеток на этой пластинке будет достаточно для использования в качестве посевного для работы с изображениями (см. шаг 4).

    ПРИМЕЧАНИЕ: Для Б. Сенная, ночевка культур в жидкой среде не подходят из-за сочетания образования спор и кворум ответов, которые вызовут длительный период лаг-фазы роста 1.

2. В первой половине дня с изображениями, место 10 мл 50 S7 1-3 среду в 125 мл стерильной колбе Эрленмейера.

3. Ресуспендируют клетки до 2 мл 50 S7 среду из пластин LB агар с одной колонии или свет сливной клетки для получения посевной.

4. Добавьте достаточно S7 50 средних ячейки посевной в колбу, содержащую 10 мл 50 S7 среда для культуры с начальной оптической плотности измеряется при 600 нм (ОП 600) от ~ 0,08 до 0,1. На этом этапе важно иметь как минимум 10-кратное воздух средней кратности. Таким образом, мы используем 10 до 12,5 мл прививку среды в 125 мл колбе Эрленмейера.

5. Расти каждой культуры при 30 ° С до культуры достигает OD 600 ~ 0,5-0,8. Shaking водяные бани являются предпочтительными с оборотов в минуту от 150-200. Культуры вызов с агентами ДНК повреждения или несоответствия вызывающие должны быть на ранней экспоненциальной фазе роста OD 600, что клетки достигнет целевого OD 600 с дополнительным периодом роста, который требуется для лечения (см. Таблицу 1)
Например, 2-аминопурин требуется один час лечения, и, следовательно, культура рассматривается с 2-аминопурин должна быть диаметром 600 ~ 0,3-0,4, например, что один час лечения / рост результатов в OD 600 ~ 0.5-0.8, которой клетки готовы для работы с изображениями.

Подготовка образцов

1. Внесите 300 мкл культивируемых клеток в 1,5 мл трубки микроцентрифужных.

2. Если изображения клеточных мембран требуется, добавьте 1:1000 разбавления FM4-64 мембраны пятна (Invitrogen) для каждого образца от 1 мг / мл маточного раствора. Титрования FM4-64 могут потребоваться для достижения желаемого сигнала флуоресценции. Типичный диапазон титрования составляет 1:100, 1:1000 и 1:10000.

3. Разрешить образцы сидеть при комнатной температуре в течение десяти минут или во время слайд готовится с 1% агарозы в 1X среду Spizizens, как описано ниже (см. шаг 1 "слайд подготовки").

4. Если концентрация клеток не требуется, мы предпочитаем фильтрация клеток с использованием 0,2 мкм фильтр с вакуумным аппаратом. Клетки могут быть затем аккуратно промыть водой с поверхности фильтра с PBS, другой соответствующий буфер или среднего до визуализации.

Подготовка слайдов

1. Подготовка 1% агарозном с 1X Spizizens.

Добавьте 5 мл 10X фондовом Spizizens до 45 мл ddH2O наряду с 0,5 г агарозы, и микроволновая печь растопить. Горячий расплавленный агарозном трудно пипетки и затвердевшей агарозы не войдет пипетки. Агарозном должны быть доведены в водяной бане до температуры ~ 55-65 ° C для его вступления пипетки без затвердевания в течение наконечник.

2. Ничья 20 мкл Spizizens с 1% агарозы в расплавленный кончика пипетки. Внесите ни капли (примерно 1-2 мкл) раствора агарозы в каждом слайде хорошо (мы используем 15-и слайды, см. таблицу 2) в форме мелкой колодки агарозы. Агарозном укрепит немедленно. Слайды должны быть сделаны непосредственно перед применением клеток. Если агарозном колодки оставляют при комнатной температуре в одиночку, они могут обезвоживают в течение нескольких минут и становятся непригодными для использования.

Агарозном подушки должны быть в центре и заполнить каждую лунку, но имеют минимальную высоту, чтобы избежать нарушения покровное, если капли слишком высоко (пузырь-подобные), или если образец распространяется за пределы и границы, просто проведите хорошо чистить Kimwipe и применить новые агарозном площадку.

3. Применить все 300 мкл образца (см. шаг 6) на слайд, распространяемую на верхней части каждой площадки агарозы. Такое количество клеток должно быть достаточным для покрытия каждой скважины на слайде.

4. Разрешить слайд загружается с клетками сидеть при комнатной температуре (23 ° С) в течение примерно десяти минут. Этот шаг позволит клеткам оседать на площадке агарозном становятся неподвижными и готов для работы с изображениями. Для нужд специализированных этой температуре возможно, должны быть изменены, например, при проведении экспериментов, требующих температурный сдвиг 4.

5. Аспирируйте излишки среды из каждой лунки, не снимая колодки сами.

6. Применить покровное к слайду, нажимая твердо и равномерно, но мягко, по области слайда. Убедитесь, что крышка скольжения против слайдов и что покровное стекло не поднимается выше слайде.

Визуализация клеток

1. Много различных флуоресцентных микроскопов будет хорошо работать. Очень важно, чтобы объектив 100X иммерсионного масла. Симмонс Лаборатория использует:

  • Olympus BX61 Микроскоп оснащен 1,45 NA TIRFM 100X нефти объектив погружения
  • Hamamatsu ORCAR 2 ПЗС-камеры охлаждения
  • Lumen 200 дуги металла (До) источника света.
  • Для обнаружения GFP (FITC), фильтр возбуждения и испускания 460-500 510-560
  • Для обнаружения FM4-64 (TRITC), фильтров возбуждения и испускания 510-560 572-648.
  • Изображения были получены с помощью SlideBook 4,2 (рис. 1)

2. Принесите клетки в центре внимания с использованием белого света.

3. Захват изображения с помощью соответствующих фильтров для каждого флуорофора.

Представитель Результаты

Представитель изображений показаны (рис. 1). GFP очаги должны быть четко определены, в то время FM4-64 окрашивания должен быть ярким и ясным 4-7. GFP или мембраны изображения могут быть псевдо цвета с любым цветом, чтобы обеспечить высочайшее качество изображения, которое будет представлено без потери данных.

figure-protocol-8187
Рисунок 1: представитель изображений GFP Б. Сенная поступательного слитых белков. GFP белка отображаются зеленым цветом, в то время FM4-64 мембраны окрашивания отображается красным цветом. Белая полоса масштаба указывает 3 мкм () MutS-GFP [соответствующего генотипа: mutS - GFP (SPC), amyE:: Pspac mutL (кот)]. В присутствии 600 мкг / мл, 2-аминопурин и 1 мМ IPTG. FM4-64 сигнал не представлены, с тем чтобы более четко показать MutS-GFP очагов (B) MutL-GFP [соответствующего генотипа: mutL:: mutL-GFP (SPC)].. В присутствии 2-аминопурин (С) DnaX-GFP [соответствующего генотипа: dnaX:: dnaX-GFP (SPC)]. (D) RecA-GFP [соответствующего генотипа: гесА:: гее-GFP (SPC)] в присутствии 20 нг / мл митомицин С (Е) TagC-GFP [соответствующего генотипа: tagC:: tagC-GFP (SPC) ] в присутствии 1 мкг / мл митомицин С.

Лечение / концентрация или количество Функция Время инкубации
Митомицин С (MMC) [20 до 150 нг / мл] ДНК алкилирующим агентом 1 час
2-аминопурин (2-AP) [600 мкг / мл] Несоответствие индуцирующих 1 час
Гидроксимочевина (HU) истощает дНТФ 3 часа
ультрафиолетовый свет (УФ) 20 Дж/м2 Тимин-тимин димеров и 6-4 фотопродуктов варьируется в зависимости от источника, обычно 20 секунд
серый (ионизирующее излучение) от 5 до 100 Гр Дважды разрывов ДНК, разрывами одноцепочечной и сайтов базовый урон варьируется в зависимости от источника
"> Таблица 1. Резюме ДНК повреждения и лечения несоответствие индуцирующих

Название реагента Компания Номер в каталоге Комментарии (необязательно)
MultiTest слайд, 15-а Депутат Biomedicals 6041505E
Стекло микроскопа Обложка Рыболов 12-544-B
Агароза Рыболов BP160-500
Митомицин C Сигма M0503-2 мг мутаген, наденьте перчатки
2-аминопурин Сигма A3509-250мг перчатки
Гидроксимочевина Сигма H8627-25G перчатки
FM4-64 Invitrogen T13320 светочувствительный

Таблица 2. Список специфических реагентов и оборудования:

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Обсуждение

Методом проб и ошибок требуется найти воздействия условий для высокого качества изображения для каждого штамма, мы находим, что 1 миллисекунду подходит для белых изображений света, в то время как воздействие от 100 до 2000 мс подходят для GFP (FITC) и FM4-64 (TRITC ) изображения. Экспозиция будет меня?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Благодарности

Авторы хотели бы поблагодарить д-ра. Philina С. Ли и Алан Д. Гроссман для Первоначально обучение ЛАГ в флуоресцентной микроскопии. Авторы также благодарят доктора. Мелани Беркмен и Hajime Кобаяси за помощь и советы для работы с изображениями. Эта работа была поддержана запуска средства из Колледжа литературы, науки и искусства и от Департамента молекулярном, клеточном и биологии развития в Университете штата Мичиган.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Материалы

Конкретные рецепты раствор 1:

10x S7 50 солей
0,5 М MOPS
100 мМ сульфата аммония
50 мМ фосфата калия Монокальцийфосфат
Фильтры стерилизации, и оберните S7 50 средств массовой информации в фольгу перед хранением

100x Металлы
0,2 М MgCl 2
70 мМ CaCl 2
5 мМ MnCl 2
0,1 мМ ZnCl 2
100 мкг / мл, тиамин HCl
2 мМ HCl
0,5 мМ FeCl 3 *
дН 2 O, чтобы конечный объем
* FeCl 3 следует добавить, наконец, для предотвращения осадков.
После стерилизации фильтр, оберните 100x Металл решение в фольге.

S7 50 средств массовой информации
1x S7 50 солей
1x металла
1% глюкозы
0,1% Глутамат
40 мкг / мл Триптофан
40 мкг / мл Фенилаланин
дистиллированной H 2 O, чтобы конечный объем

10x Spizizens (г / л)
151,4 мМ сульфата аммония (20 г / л)
803,8 мМ фосфата калия Монокальцийфосфат (140 г / л)
440,9 мМ фосфата калия Диаммоний (60 г / л)
34,0 мМ цитрата натрия (10 г / л)
16,6 мМ MgSO 4 (2 г / л)
дН 2 O, чтобы конечный объем
Фильтры стерилизовать

Ссылки

  1. Hardwood, C. R., Cutting, S. M. Molecular Biological Methods for Bacillus. , John Wiley and Sons. Chichester. (1990).
  2. Berkmen, M. B., Grossman, A. D. Spatial and temporal organization of the Bacillus subtilis replication cycle. Mol. Microbiol. 62, 57-71 (2006).
  3. Simmons, L. A., Grossman, A. D., Walker, G. C. Clp and Lon proteases occupy distinct subcellular positions in Bacillus subtilis. J. Bacteriol. 190, 6758-6768 (2008).
  4. Simmons, L. A., Grossman, A. D., Walker, G. C. Replication is required for the RecA localization response to DNA damage in Bacillus subtilis. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 104, 1360-1365 (2007).
  5. Simmons, L. A., Davies, B. W., Grossman, A. D., Walker, G. C. b Clamp Directs Localization of Mismatch Repair in Bacillus subtilis. Mol. Cell. 29, 291-301 (2008).
  6. Simmons, L. A. Comparison of responses to double-strand breaks between Escherichia coli and Bacillus subtilis reveals different requirements for SOS induction. J. Bacteriol. 191, 1152-1161 (2009).
  7. Smith, B. T., Grossman, A. D., Walker, G. C. Visualization of mismatch repair in bacterial cells. Mol. Cell. 8, 1197-1206 (2001).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

36GFPSOSFM4 64

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены