JoVE Logo

サインイン

このコンテンツを視聴するには、JoVE 購読が必要です。 サインイン又は無料トライアルを申し込む。

この記事について

  • 要約
  • 要約
  • プロトコル
  • ディスカッション
  • 開示事項
  • 謝辞
  • 資料
  • 参考文献
  • 転載および許可

要約

in vitroで神経堤幹細胞(NCSC)を育成するために、特殊な培地(NCSCM)が必要です。 NCSCMの本質的な部分は、ニワトリ胚抽出物(CEE)です。ここでは、分離、浸軟、遠心分離、およびろ過プロセスなどの詳細を含む、純粋で高品質CEEの最大化量を、生成する正確なテクニックを説明します。

要約

神経堤は、胚発生中に神経外胚葉から発生し、一時的にしか保持されます。初期の実験は、すでに神経堤1の重要部分であると多能性前駆細胞をへのドア。表現型、神経堤幹細胞(NCSC)を同時に神経堤2,3,4,5から、その移行中にP75(低アフィン神経成長因子受容体、LNGFR)とSOX10の発現によって定義されます。これらの前駆細胞は平滑筋細胞、クロム親和性細胞、神経細胞とグリア細胞だけでなく、メラノサイト、軟骨や骨6,7,8,9に分化することができる。 in vitroで NCSCを育成するために、特別な神経堤幹細胞の培地(NCSCM)が10必要です。 NCSCMの最も複雑な部分は、NCSCのためだけでなく、神経外植片の他の種​​類の成長因子の本質的なソースを表すニワトリ胚抽出物(CEE)の準備です。 CEEの横にある他のNCSCM成分は市販されている。それは分離、浸軟、遠心分離、およびろ過プロセスなどの挑戦的な詳細を知るために非常に重要であるCCE使用して実験室の標準機器を生産。このプロトコルでは、純粋かつ高品質CEEの最大化の量を生産するために、正確なテクニックを説明します。

プロトコル

動物実験は動物実験で定められている実験的な手続きと規制のための動物の管理と使用に関するNI​​Hのガイドラインに従って、欧州共同体理事会指令(86/609/EEC)に準拠して行われたという著者らの状態ケアとデュースブルク - エッセン大学(ドイツ)での委員会(IACUC)を使用してください。

パート1:(ビデオで示されていない)の設定

(インキュベータから卵を取る前に)材料と溶液の調製

  • 卵は37℃で11日間の加湿インキュベーター中でインキュベートする必要があります° C(100 ° F)。
  • 70%エタノールのスプレー、クリーンプレート、正確な清潔なピンセットを用い、4℃(40 ° F)冷滅菌氷上でDMEM、60 mLの滅菌シリンジ
  • 50 mLの滅菌コーニングチューブには、° C、コールドDMEMは1:1の比率(:DMEM浸軟質量)で浸軟した胚を混在させる4を半分埋める必要があります。早く卵がニワトリ胚のインキュベータの解剖から取り出されているとして起動する必要があります。
  • オートクレーブや解剖の日に解剖ツールを殺菌、20分間70%エタノールでツールを浸す。

第2部:ニワトリ胚の解剖(ビデオで実証)

  1. 少なくとも30秒間、70%エタノールを噴霧インキュベート卵を湿らせ、過度に卵を振っていないがきれいで柔らかなペーパータオルで慎重にそれらを乾燥させます。
    注:私たちは、同時に60以上のニワトリ胚を解剖することはお勧めしません。
  2. 鋭いエッジに対して破線で慎重に卵を開いて、卵黄の袋またはニワトリ胚自体を破壊しない、注意して胚を取り出す。
  3. すぐに臍帯の開始のための検索と卵黄の袋または少し船を破壊することなく明確なラッピングを開きます。その後、正確な清潔なピンセットを用い、へその緒を解剖。
  4. 卵黄の袋から胚を取り出す。
    注:胚が(ビデオに示されていない)すぐに断頭してください。
  5. 4で最小必須培地で胚を収集℃に

パート3:ニワトリ胚のマセラシオン

  1. 60 mLの滅菌注射器の外プランジャーを取る。
  2. one 60mLのシリンジに約10胚を転送します。
  3. 浸軟物質を失うリスクにしないために慎重に戻ってシリンジにプランジャーを置く。
  4. プランジ​​ャーを押し下げることによって痩せ衰えさせる。
  5. 準備コーニングチューブ1:1(:DMEM浸軟質量)の比でDMEMで半分満たさで浸軟した質量を収集する。約25 mLの量が生産される10の胚を使用する。
  6. 4℃45分℃でシェーカーで混合物を置かない

第4部:ニワトリ胚の遠心分離 - DMEMサスペンション

  1. ニワトリ胚を移す - DMEM懸濁液を遠心管に。
  2. 胚の25 mg当たり1ミリグラムの濃度で滅菌ヒアルロニダーゼを追加。
  3. 非常に正確に風袋遠心分離チューブ。
    注:遠心操作は非常に高いg力および材料または不均衡なチューブを使用する場合は、遠心機が発生する可能性の損傷時に実行されるため、この手順は慎重に行われるべき。すべてのチューブの小数点以下をDMEMで不足額を調整することで受信する必要があります後に3つのポジションについて、マシンに基づいて秤量精度の高い。
  4. 4に遠心分離機の温度を下げる℃に
    注:また、遠心分離ローターは、一晩冷却室または冷蔵庫に保管してください。
  5. 少なくとも180.000 xgx時間にわたって6時間を遠心注:単相の分離に関する優れた結果を得るためには266.000 xgx hを使用する可能であれば、バキューム調整を使用してください。

第5部:ニワトリ胚抽出物のろ過

遠心分離後、3つのフェーズは気づいたことができる:脂肪のフラグメントを持つ上層薄汚い液相、中央にある透明な液体の相と遠心チューブの下部にあるペレットを注:遠心混合物の振動や移動活発になる必 ​​要がありますこれは明確な中心的な液相​​を失うことによって遠心分離のステップの結果を破壊するように厳密に、避けて。

注:すべての次の手順では、層流のベンチを使用して無菌条件下で実行する必要があります。

  1. 0.45μmの細孔を有するフィルターシステムに明確な液相をピペット。その後、接続された真空ポンプのスイッチをオンにします。
    注:下部にあるペレットに触れないでください。これは、抽出液とフィルターシステムの閉塞の汚染につながる。
  2. 0.22μmのと接続された真空ポンプのスイッチを再度の細孔を持つフィルターシステムに事前に抽出して転送する。
  3. 注し達成ニワトリ胚エキス滅菌15mlのコーニングチューブインチ
  4. 迅速° C(-62 ° F)-80分注して保存する。注:-80で保存した場合最長2年間の最後のCEE℃に

ディスカッション

このプロトコルは過去10,11に記載されている手順の変更に基づいています。前者の出版物に加えて、我々はここで、プロセスの個々の異なるステップより多くの拡張を示します。これが正しい手続きで信頼性の高い成果を保証する重要な詳細と実験者をサポートしています。さらに、解剖プロセスとして我々は細部に卵黄の袋から胚を取り出すの手順を記述するCEEの抽出の重要な部分...

開示事項

利害の衝突は宣言されません。

謝辞

マルクスPajtlerとロバートボーラーのサポートやアドバイスは、このプロトコルの可視化のための非常に貴重でした。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
11 days incubated chicken eggsSorries-Trockels Vermehrungszucht GmbH
Alcoholic disinfection spraySchülke Mayr GmbH
DMEMGlutamaxGIBCO, by Life Technologies
Syringe sterile (60 ml)BD Biosciences
Tubes sterile (50; 15 ml)Greiner Bio-One
Pipet tips sterileStarlab GmbH
Hyaluronidase typeIV-SSigma-Aldrich
Milipore stericups sterile (0.45; 0.22 μl)Fisher Scientific
Pipettes sterile (25; 10; 5 ml)Greiner Bio-One
Centrifuge L5-50Rotor type Ti-45

参考文献

  1. Bronner-Fraser, M., Fraser, S. E. Cell lineage analysis reveals multipotency of some avian neural crest cells. Nature. 335, 161-164 (1988).
  2. Stemple, D. L., Anderson, D. J. Isolation of a stem cell for neurons and glia from the mammalian neural crest. Cell. 71, 973-985 (1992).
  3. Rao, M. S., Anderson, D. J. Immortalization and controlled in vitro differentiation of murine multipotent neural crest stem cells. J Neurobiol. 32, 722-746 (1997).
  4. Paratore, C., Goerich, D. E., Suter, U., Wegner, M., Sommer, L. Survival and glial fate acquisition of neural crest cells are regulated by an interplay between the transcription factor Sox10 and extrinsic combinatorial signaling. Cell. 128, 3949-3961 (2001).
  5. Kim, J., Lo, L., Dormand, E., Anderson, D. J. SOX10 maintains multipotency and inhibits neuronal differentiation of neural crest stem cells. Neuron. 38, 17-31 (2003).
  6. Anderson, D. J., Groves, A., Lo, L., Ma, Q., Rao, M., Shah, N. M., Sommer, L. Cell lineage determination and the control of neuronal identity in the neural crest. Review Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 62, 493-504 (1997).
  7. Dorsky, R. I., Moon, R. T., Raible, D. W. Environmental signals and cell fate specification in premigratory neural crest. Review Bioessays. 22, 708-716 (2000).
  8. Sieber-Blum, M. Factors controlling lineage specification in the neural crest. Int Rev Cytol. 197, 1-33 (2000).
  9. Dupin, E., Real, C., Ledouarin, N. The neural crest stem cells: control of neural crest cell fate and plasticity by endothelin-3. Int Rev Cytol. 73, 533-545 (2001).
  10. Maurer, J., Fuchs, S., Jäger, R., Kurz, B., Sommer, L., Schorle, H. Establishment and controlled differentiation of neural crest stem cell lines using conditional transgenesis. Differentiation. 75, 890-891 (2007).
  11. Wu, Y. Y., Mujtaba, T., Rao, M. S. Isolation of stem and precursor cells from fetal tissue. Methods Mol Biol. 198, 29-40 (2002).

転載および許可

このJoVE論文のテキスト又は図を再利用するための許可を申請します

許可を申請

さらに記事を探す

45

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

個人情報保護方針

利用規約

一般データ保護規則

研究

教育

JoVEについて

Copyright © 2023 MyJoVE Corporation. All rights reserved