JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Чтобы вырастить нервного гребня стволовых клеток (NCSC) в пробирке, специальные среды (NCSCM) не требуется. Значительная часть NCSCM является куриного эмбриона экстракт (ЦВЕ). Мы здесь описать точных методов для получения максимальной суммы чистого и высокого качества Центральной и Восточной Европы, в том числе детали, как изоляция, мацерации, центрифугирования и фильтрации процессов.

Аннотация

Нервного гребня возникает из-за нервно-эктодермы в период эмбриогенеза и сохраняется только на время. Первые эксперименты уже проверенные плюрипотентных клеток-предшественников, чтобы быть неотъемлемой частью нервного гребня 1. Фенотипически, нервного гребня стволовых клеток (NCSC) определяются одновременно выразив p75 (низкий аффинных фактора роста нервов рецепторов, LNGFR) и SOX10 во время их миграции из нервного гребня 2,3,4,5. Эти клетки-предшественники могут дифференцироваться в клетки гладкой мускулатуры, хромаффинных клеток, нейронов и глиальных клеток, а также меланоцитов, хрящевой и костной 6,7,8,9. Чтобы вырастить NCSC в пробирке, специальные нервного гребня стволовых клеток среды (NCSCM) требуется 10. Наиболее сложной частью NCSCM является подготовка куриного эмбриона экстракт (ЦВЕ), представляющий собой важный источник роста факторов NCSC, а также для других типов нейронных эксплантов. Другие ингредиенты NCSCM рядом с Центральной и Восточной Европы имеются в продаже. Производство CCE с использованием лабораторных стандартной комплектации он имеет большое значение, чтобы знать о сложных деталей, как изоляция, мацерации, центрифугирования и фильтрации процессов. В этом протоколе описываются точных методов для получения максимальной суммы чистого и высокого качества ЦВЕ.

протокол

Авторы утверждают, что эксперименты на животных были проведены в соответствии с Европейскими сообществами Директивы Совета (86/609/EEC), следующие руководящие принципы в отношении НИЗ уход и использование животных для экспериментальных процедур и правил, установленных Институциональные животных Уход и использование комитета (IACUC) в университете Дуйсбург-Эссен (Германия).

Часть 1: Настройка (не показано на видео)

ПОДГОТОВКА МАТЕРИАЛОВ И ПУТИ ИХ РЕШЕНИЯ (до принятия яйца из инкубатора)

  • Яйца должны быть инкубировали во влажной инкубаторе в течение 11 дней при температуре 37 ° C (100 ° F).
  • 70% этанола, спрей, чистые тарелки, точный чистый пинцет, 4 ° C (40 ° F) холодного стерильного DMEM на льду и 60 мл стерильные шприцы
  • 50 мл стерильные пробирки Corning должны быть наполовину заполненной с 4 ° С холодным DMEM смешать вымоченных эмбрионов в соотношении 1:1 (вымоченных масса: DMEM). Как только яйца выводятся из рассечение инкубатор куриных эмбрионов должен быть запущен.
  • Стерилизовать рассечение инструментов в автоклаве или в день вскрытия, погрузить инструменты в 70% этаноле в течение 20 минут.

Часть 2: Препарирование куриных эмбрионов (демонстрируется на видео)

  1. Влажные инкубационных яиц с 70% этанола спрея в течение по крайней мере, 30 секунд и высушите их осторожно чистой мягкой салфеткой при этом не качая яйца чрезмерно.
    Примечание: Мы рекомендуем не рассекает более чем на 60 куриных эмбрионов одновременно.
  2. Открытое яйца тщательно лихой против острого края и выньте эмбриона с осторожностью, не разрушая мешок желтка или куриного эмбриона себя.
  3. Поиск начале пуповины быстро и открытых ясно упаковки, не разрушая мешок желтка или любой мало судов. Затем рассекают пуповину с точным чистым пинцетом.
  4. Возьмите эмбриона из мешка желтка.
    Примечание: Эмбрионы должны быть обезглавленным быстро (не показано на видео).
  5. Сбор эмбрионов в минимальной необходимой среде при температуре 4 ° C.

Часть 3: мацерация куриных эмбрионов

  1. Возьмите поршень из 60 мл стерильного шприца.
  2. Передача примерно 10 эмбрионов в одном 60 мл шприца.
  3. Поместите поршень тщательно обратно в шприц, чтобы не потерять вымоченных материала.
  4. Размочите, нажав на поршень.
  5. Сбор вымоченных массу в подготовленные трубки Corning наполовину заполненной с DMEM в соотношении 1:1 (вымоченных масса: DMEM). Использование 10 эмбрионов объемом около 25 мл производится.
  6. Поместите смесь в шейкере в течение 45 мин при 4 ° C.

Часть 4: Центрифугирование куриного эмбриона - DMEM Подвеска

  1. Передача куриного эмбриона - DMEM суспензии в центрифугирования труб.
  2. Добавить стерильной гиалуронидазы в концентрации 1 мг на 25 мг эмбриона.
  3. Тара центрифугирования труб очень точно.
    Примечание: Этот шаг следует выполнять с осторожностью, так как центрифугирование запускается при очень высоких перегрузок и повреждения материала или центрифуги могут возникнуть при использовании несбалансированной труб. С высокой точностью весов соответствии отношении трех позиций после десятичной точки для всех труб должна быть получена путем корректировки недостающую сумму с DMEM.
  4. Уменьшить температуру центрифуге до 4 ° C.
    Примечание: Также центрифугирования ротора должны храниться в холодильной камере или холодильнике в течение ночи.
  5. Центрифуга 6 часов по крайней мере, 180,000 х ^ Х ч. Примечание: Для получения превосходных результатов в отношении разделения отдельных фаз использовать 266,000 х ^ Х ч. Если это возможно, использовать вакуум регулировки.

Часть 5: Фильтрация Извлечение куриного эмбриона

После центрифугирования, три фазы можно заметить: верхний темный жидкой фазы с жирными фрагменты, ясно жидкой фазы в середине и осадок на дне трубки центрифугирования. Примечание: встряхивания или оживленной перемещения центрифугировали смеси должна быть строго избегать, так как это разрушит результате центрифугирования шаг за потери ясно центральной жидкой фазы.

Примечание: Все следующие шаги должны быть выполнены в стерильных условиях с использованием ламинарного потока воздуха скамьи:

  1. Внесите ясно жидкой фазы в фильтр с порами 0,45 мкм. Затем включите связано вакуумного насоса.
    Примечание: Не прикасайтесь гранул на дне. Это привело бы к загрязнению извлекать и блокирование системы фильтров.
  2. Передача предварительно распакован в фильтр с порами 0,22 мкм и переключиться на подключенном вакуумный насос снова.
  3. Алиготе достигнута экстракт куриного эмбрионав стерильные 15 мл Corning труб.
  4. Быстро хранить аликвоты при -80 ° C (-62 ° F). Примечание: Центральной и Восточной Европе продлится до двух лет при условии хранения при температуре -80 ° C.

Обсуждение

Этот протокол основан на модификации процедуры, которые были описаны в прошлом 10,11. В дополнение к бывшим публикациях мы здесь, показывают отдельные различные этапы процесса более расширены. Это подтверждает экспериментатор с важной детали обеспечения правильного разбирательс?...

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Поддержку и советы Маркус Pajtler и Роберт Борер были бесценны для визуализации этого протокола.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
11 days incubated chicken eggsSorries-Trockels Vermehrungszucht GmbH
Alcoholic disinfection spraySchülke Mayr GmbH
DMEMGlutamaxGIBCO, by Life Technologies
Syringe sterile (60 ml)BD Biosciences
Tubes sterile (50; 15 ml)Greiner Bio-One
Pipet tips sterileStarlab GmbH
Hyaluronidase typeIV-SSigma-Aldrich
Milipore stericups sterile (0.45; 0.22 μl)Fisher Scientific
Pipettes sterile (25; 10; 5 ml)Greiner Bio-One
Centrifuge L5-50Rotor type Ti-45

Ссылки

  1. Bronner-Fraser, M., Fraser, S. E. Cell lineage analysis reveals multipotency of some avian neural crest cells. Nature. 335, 161-164 (1988).
  2. Stemple, D. L., Anderson, D. J. Isolation of a stem cell for neurons and glia from the mammalian neural crest. Cell. 71, 973-985 (1992).
  3. Rao, M. S., Anderson, D. J. Immortalization and controlled in vitro differentiation of murine multipotent neural crest stem cells. J Neurobiol. 32, 722-746 (1997).
  4. Paratore, C., Goerich, D. E., Suter, U., Wegner, M., Sommer, L. Survival and glial fate acquisition of neural crest cells are regulated by an interplay between the transcription factor Sox10 and extrinsic combinatorial signaling. Cell. 128, 3949-3961 (2001).
  5. Kim, J., Lo, L., Dormand, E., Anderson, D. J. SOX10 maintains multipotency and inhibits neuronal differentiation of neural crest stem cells. Neuron. 38, 17-31 (2003).
  6. Anderson, D. J., Groves, A., Lo, L., Ma, Q., Rao, M., Shah, N. M., Sommer, L. Cell lineage determination and the control of neuronal identity in the neural crest. Review Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 62, 493-504 (1997).
  7. Dorsky, R. I., Moon, R. T., Raible, D. W. Environmental signals and cell fate specification in premigratory neural crest. Review Bioessays. 22, 708-716 (2000).
  8. Sieber-Blum, M. Factors controlling lineage specification in the neural crest. Int Rev Cytol. 197, 1-33 (2000).
  9. Dupin, E., Real, C., Ledouarin, N. The neural crest stem cells: control of neural crest cell fate and plasticity by endothelin-3. Int Rev Cytol. 73, 533-545 (2001).
  10. Maurer, J., Fuchs, S., Jäger, R., Kurz, B., Sommer, L., Schorle, H. Establishment and controlled differentiation of neural crest stem cell lines using conditional transgenesis. Differentiation. 75, 890-891 (2007).
  11. Wu, Y. Y., Mujtaba, T., Rao, M. S. Isolation of stem and precursor cells from fetal tissue. Methods Mol Biol. 198, 29-40 (2002).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

Neuroscience45

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены