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この記事について

  • 要約
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  • 資料
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要約

盲腸に皮下腫瘍の一部の盲腸壁や移植に癌の細胞懸濁液の注入:2つのテクニックは、このモデルを確立するために使用することができます。このモデルでは、大腸癌の自然な進行を勉強し、大腸癌に対する新しい治療薬をテストするのに便利です。

要約

従来の皮下腫瘍モデルでは、大腸癌を研究するための理想的とは言えません。彼らの自然な場所で成長してがん細胞を特徴と大腸癌の同所性マウスモデルは、、高忠実度で人間の病気を複製する。 2つの手法は、このモデルを確立するために使用することができます。両方の手法は類似しており、盲腸の露出のためのマウスの麻酔や開腹を必要とする。一つの技術は盲腸壁に大腸癌の細胞懸濁液の注入を含む。がん細胞が最初に、培養で増殖するときにサブコン収穫し、単一の細胞懸濁液として調製されています。細胞の小音量は漏れを避けるためにゆっくりと注入されます。他のテクニックは、盲腸に皮下腫瘍の一部の移植を含む。以前に確立された皮下大腸の腫瘍を持つマウスを安楽死され、腫瘍は無菌操作を用いて除去される。腫瘍部分は、別のマウスへの移植のための小さな断片に分割されています。移植前に、盲腸壁は軽く腫瘍細胞の浸潤を促進するために破損している。原発腫瘍と肝転移を開発する時間はテクニック、細胞株、および使用されるマウスの種によって異なります。この同所マウスモデルでは、大腸癌の自然な進行を勉強し、大腸癌に対する新しい治療薬をテストするのに便利です。

プロトコル

I.細胞の調製

  1. 大腸がん細胞を培養中で成長し、時サブコン収穫されています。
  2. 単一の細胞懸濁液をリン酸で調製される緩衝生理食塩水と氷上で保存。

II。腫瘍の準備

  1. 以前に確立された皮下大腸の腫瘍を持つマウスを安楽死されている。
  2. 皮下腫瘍は​​無菌操作を用いて除去し、2〜3mmの部分に分かれています。
  3. 腫瘍部分は氷の上にリン酸緩衝生理食塩水に保存されています。

III。マウスの準備

注:私たちのラボでは、マウスを麻酔イソフルラン吸入使用し、別の方法として、同じ効果を達成するために注射麻酔薬を使用することができます

  1. 麻酔の深さはつま先のピンチを利用して評価されます。つま先のピンチと反射撤退はないはずです。
  2. 抗生物質はこの時点で与えることができる。
  3. 以前に剃毛された麻酔マウスは、、適切に配置されている。
  4. 腹部はbetadine液で整形処理されています。
  5. 腹部と手術部位を無菌的に覆われている。

IV。開腹術

  1. 小さなニックネームは、皮膚で作られています
  2. 腹壁の筋肉組織が把握して持ち上げられる
  3. 腹腔が入力され、はさみの単一のブレードは、離れて、腹腔内のコンテンツをプッシュするために使用され
  4. 切開は2〜3 cmに拡張されています

盲腸のV.露出

  1. その盲目のエンディングのポーチと盲腸を同定し、体外され
  2. 盲腸は、プレカット、滅菌ガーゼを使用してマウスの残りの部分から絶縁されています
  3. 温かい生理食塩水は、盲腸の潤いを保つために使用されます。

VI。盲腸壁への細胞の注入

  1. 27 Gまたは細かい針は、盲腸壁に細胞の50μLボリュームをインジェクトするために使用されます
  2. 針は削除されます
  3. 注射部位は、漏れのないことを確認するために検査され
  4. 盲腸を腹腔内に返されます。

VII。盲腸上腫瘍の移植

注:盲腸壁に細胞を注入することに加えて、別のアプローチは、盲腸に腫瘍を移植することです。

  1. 8ステッチの数字は6から0または7から0サイズの縫合糸を使用して盲腸に配置されます
  2. 盲腸壁は軽く損傷している
  3. その後、腫瘍の一部が配置されている
  4. ステッチは縛られている
  5. 盲腸を腹腔内に返されます。

VIII。マウス腹壁閉鎖と回復

  1. マウス腹壁は、次の3つの3-0で使用して、中断されたステッチや4から0サイズの縫合糸を使用してクローズされ
  2. 別の方法として、単純なランニングステッチを使用することができます
  3. 術後鎮痛薬と流体のボーラスは、この時点で与えることができる
  4. マウスは、麻酔から回復するために許可されます。

注:吸入麻酔薬で、これは一般的に30秒かかる

IX。結果 - 原発巣と肝転移

figure-protocol-1775figure-protocol-1839figure-protocol-1903
原発腫瘍は - その場で示すように()と血管新生の証拠(B)と、H&E染色で、腫瘍は局所浸潤性があります(C)

figure-protocol-2044
肝転移 - 示されてex vivoで(D)

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ディスカッション

マウス皮下腫瘍モデルを確立し、監視も簡単ですが、それはこのモデルは、大腸癌の元解剖学的部位を複製できないことは明らかである。微小環境の違いにより、皮膚の下に成長している大腸癌細胞は、それらの表現型を変更し、ほとんどの場合1,2の進行と転移に失敗することが示されている。実際には、治療に対する腫瘍の反応は、がん細胞が異所性(皮下)対同所場所3に注入されてい?...

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謝辞

外科、カリフォルニア大学、サンフランシスコ
レイモンドシャヒーン、MD

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資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Cell culture media and componentswill vary depending on cell line used
Phosphate Buffered SalineBioWhittaker17-512Falso sold by a number of other vendors
15 mL centrifuge tubes, polypropyleneCorning430790
6 well plates with lidBD Biosciences353046
Iris forceps, straight, serrated tipsWorld Precision Instruments, Inc.15914best to have a pair of these instruments
Iris dissecting scissors, straight, sharpWorld Precision Instruments, Inc.14393
Needle Holder (regular)World Precision Instruments, Inc.14109
Needle Holder (Castroviejo)World Precision Instruments, Inc.14137
Cidex PlusWorld Precision Instruments, Inc.7364instruments should be autoclaved periodically, but may also be sterilized by soaking in Cidex
6-0 or 7-0 suturefor cecum; courtesy of Department of Surgery, UCSF
3-0 or 4-0 suturefor abd wall; courtesy of Department of Surgery, UCSF
Anesthetic machine / IsofluraneJ.A. Baulch and Associates3206also sold by a number of other vendors
Heating Pad, disposable, 6" x 6"Prism Technologies20419
Tape, orange, 13 mm x 13 mFisher Scientific15901Ffor restraining anesthetized mouse
Pro-Cord/Cordless TrimmerOster Professional Products78997-010for shaving mouse fur
BetadineFisher Scientific19-027132may also be purchased at any medical supply store
2 x 2 gauze, 3-plyJohnson & Johnson7635may also be purchased at any medical supply store
Sterile Field, Barrier, 16" x 29"Johnson & Johnson0905may also be purchased at any medical supply store
Cotton tipped applicators, 6"Fisher Scientific14-960-3Qmay also be purchased at any medical supply store
Syringe, 10 cc, Luer lock tipBD Biosciences309604
Syringe, 1 cc, tuberculin, slip tipBD Biosciences309602
27 1/2 G needleBD Biosciences305109
30 G needleBD Biosciences305106

参考文献

  1. Heijstek, M. W., Kraneburg, O., Rinkes Borel, I. H. Mouse models of colorectal cancer and liver metastases. Dig Surg. 22, 16-25 (2005).
  2. Kobaek-Larsen, M., Thorup, I., Diederichsen, A., Fenger, C., Hoitinga, M. R. Review of colorectal cancer and its metastases in rodent models: comparative aspects with those in humans. Comp Med. 50, 16-26 (2000).
  3. Wilmanns, C., Fan, D., O'Brian, C. A., Bucana, C. D., Fidler, I. J. Orthotopic and ectopic organ environments differentially influence the sensitivity of murine colon carcinoma cells to doxorubicin and 5-fluorouracil. Int J Cancer. 52, 98-104 (1992).
  4. Kashtan, H., Rabau, M., Mullen, J. B., Wong, A. H. C., Roder, J. C., Shiptz, B., Stern, H. S., Gallinger, S. Intra-rectal injection of tumor cells: a novel animal model of rectal cancer. Surg Oncol. 1, 251-256 (1992).

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