JoVE Logo

Accedi

È necessario avere un abbonamento a JoVE per visualizzare questo. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Protocollo
  • Discussione
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

Due tecniche possono essere usate per stabilire questo modello: l'iniezione di una sospensione di cellule tumorali nella parete del cieco o il trapianto di un pezzo di tumore sottocutaneo sul cieco. Questo modello è utile per studiare la naturale progressione del tumore del colon-retto e test nuovi agenti terapeutici contro il cancro del colon-retto.

Abstract

Il tradizionale modello di tumore sottocutaneo è proprio l'ideale per lo studio del cancro del colon-retto. Ortotopico modelli murini di cancro del colon-retto, che presentano le cellule tumorali in crescita nella loro posizione naturale, replicare malattia umana con l'alta fedeltà. Due tecniche possono essere usate per stabilire questo modello. Entrambe le tecniche sono simili e richiedono l'anestesia del mouse e laparotomia per l'esposizione del cieco. Una tecnica prevede l'iniezione di una sospensione di cellule di cancro del colon-retto nella parete del cieco. Le cellule cancerose vengono prima crescere in coltura, raccolto quando subconfluent e pronta come una sospensione di cellule singole. Una piccola quantità di cellule viene iniettato lentamente per evitare perdite. L'altra tecnica prevede il trapianto di un pezzo di tumore sottocutaneo sul cieco. Un mouse con un precostituito tumore del colon-retto per via sottocutanea è eutanasia e il tumore è stato rimosso con tecnica sterile. Il pezzo tumore è diviso in piccoli pezzi per il trapianto di un altro mouse. Prima del trapianto, la parete del cieco è leggermente danneggiato per facilitare l'infiltrazione delle cellule tumorali. Il tempo per lo sviluppo di tumori primari e delle metastasi epatiche varia a seconda della tecnica, linea cellulare, e le specie utilizzate il mouse. Questo modello murino ortotopico è utile per studiare la naturale progressione del tumore del colon-retto e test nuovi agenti terapeutici contro il cancro del colon-retto.

Protocollo

I. Preparazione cellulare

  1. Le cellule tumorali del colon-retto sono cresciuti in coltura e raccolta quando subconfluent.
  2. Una sospensione singola cella viene preparato in tampone fosfato e tenuta in ghiaccio.

II. Preparazione del tumore

  1. Un mouse con un precostituito tumore del colon-retto per via sottocutanea è eutanasia.
  2. Il tumore sottocutaneo viene rimosso utilizzando una tecnica sterile e diviso in 2-3 pezzi millimetri
  3. I pezzi del tumore sono tenuti in tampone fosfato salino sul ghiaccio.

III. Preparazione del mouse

Nota: Nel nostro laboratorio usiamo per via inalatoria isoflurano per anestetizzare il mouse, in alternativa, si può usare anestetici iniettabili per ottenere lo stesso effetto

  1. La profondità di anestesia viene valutata usando un pizzico piedi. Non ci dovrebbero essere ritirarsi reflex con un pizzico punta.
  2. Gli antibiotici può essere somministrato a questo punto.
  3. Il mouse anestetizzato, che in precedenza era rasata, sia posizionata correttamente.
  4. L'addome viene preparato con una soluzione di Betadine.
  5. Dell'addome e del sito chirurgico sono drappeggiati in modo sterile.

IV. Laparotomia

  1. Un piccolo nick è realizzata in pelle
  2. La muscolatura della parete addominale è colto ed elevato
  3. La cavità addominale è entrato e una singola lama delle forbici è usato per spingere l'intra-addominale contenuti via
  4. L'incisione è estesa a 2-3 cm

L'esposizione V. del cieco

  1. Il cieco con il suo sacchetto finale cieco è identificato e esteriorizzato
  2. Il cieco è isolato dal resto del mouse utilizzando un pre-taglio, garza sterile
  3. Salina calda viene utilizzata per mantenere umido il cieco

VI. L'iniezione di cellule nella parete del cieco

  1. A 27 G o un ago sottile viene usato per iniettare un volume di 50 ml di cellule nella parete del cieco
  2. L'ago viene rimosso
  3. Il sito di iniezione è controllato per garantire l'assenza di perdite
  4. Il cieco è tornato alla cavità addominale

VII. Il trapianto di Tumore sulla Cieco

Nota: oltre a iniettare le cellule nel muro del cieco, un approccio alternativo consiste nel trapianto di tumore sul cieco

  1. Una figura di 8 punti è posizionato sul cieco utilizzando 6-0 o 7-0 sutura dimensioni
  2. La parete del cieco è leggermente danneggiato
  3. Poi, il pezzo tumorale è posizionata
  4. Il punto è legato
  5. Il cieco è tornato alla cavità addominale

VIII. Chiusura del mouse parete addominale e di recupero

  1. La parete addominale del mouse è chiuso con tre punti di sutura interrotta utilizzando 3-0 o 4-0 sutura dimensioni
  2. In alternativa, si può usare un punto semplice esecuzione
  3. Post-operatorio analgesici e un bolo fluido può essere data a questo punto
  4. Il mouse è permesso di recuperare l'anestesia.

Nota: con anestetici inalatori questo richiede in genere 30 secondi

IX. Risultati - tumore primitivo e metastasi epatiche

figure-protocol-3534figure-protocol-3598figure-protocol-3662
Tumore primario - mostrato in situ (A) e con evidenza di neovascolarizzazione (B); alla colorazione H & E, i tumori localmente invasivi (C)

figure-protocol-3888
Metastasi al fegato - mostrato ex vivo (D)

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussione

Anche se il mouse modelli di tumore sottocutaneo sono facili da stabilire e controllare, è chiaro che questo modello non può replicare il sito originale anatomica del tumore colorettale. A causa della differenza di microambiente, le cellule del cancro colorettale in crescita sotto la pelle hanno dimostrato di cambiare il loro fenotipo e quasi sempre non riescono a progredire e metastasi 1,2. In realtà, la risposta del tumore alla terapia può variare notevolmente a seconda che le cellule tumorali sono impiantate in un ectopica...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Riconoscimenti

Dipartimento di Chirurgia, Università di California, San Francisco
Raymond Shaheen, MD

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
Cell culture media and componentswill vary depending on cell line used
Phosphate Buffered SalineBioWhittaker17-512Falso sold by a number of other vendors
15 mL centrifuge tubes, polypropyleneCorning430790
6 well plates with lidBD Biosciences353046
Iris forceps, straight, serrated tipsWorld Precision Instruments, Inc.15914best to have a pair of these instruments
Iris dissecting scissors, straight, sharpWorld Precision Instruments, Inc.14393
Needle Holder (regular)World Precision Instruments, Inc.14109
Needle Holder (Castroviejo)World Precision Instruments, Inc.14137
Cidex PlusWorld Precision Instruments, Inc.7364instruments should be autoclaved periodically, but may also be sterilized by soaking in Cidex
6-0 or 7-0 suturefor cecum; courtesy of Department of Surgery, UCSF
3-0 or 4-0 suturefor abd wall; courtesy of Department of Surgery, UCSF
Anesthetic machine / IsofluraneJ.A. Baulch and Associates3206also sold by a number of other vendors
Heating Pad, disposable, 6" x 6"Prism Technologies20419
Tape, orange, 13 mm x 13 mFisher Scientific15901Ffor restraining anesthetized mouse
Pro-Cord/Cordless TrimmerOster Professional Products78997-010for shaving mouse fur
BetadineFisher Scientific19-027132may also be purchased at any medical supply store
2 x 2 gauze, 3-plyJohnson & Johnson7635may also be purchased at any medical supply store
Sterile Field, Barrier, 16" x 29"Johnson & Johnson0905may also be purchased at any medical supply store
Cotton tipped applicators, 6"Fisher Scientific14-960-3Qmay also be purchased at any medical supply store
Syringe, 10 cc, Luer lock tipBD Biosciences309604
Syringe, 1 cc, tuberculin, slip tipBD Biosciences309602
27 1/2 G needleBD Biosciences305109
30 G needleBD Biosciences305106

Riferimenti

  1. Heijstek, M. W., Kraneburg, O., Rinkes Borel, I. H. Mouse models of colorectal cancer and liver metastases. Dig Surg. 22, 16-25 (2005).
  2. Kobaek-Larsen, M., Thorup, I., Diederichsen, A., Fenger, C., Hoitinga, M. R. Review of colorectal cancer and its metastases in rodent models: comparative aspects with those in humans. Comp Med. 50, 16-26 (2000).
  3. Wilmanns, C., Fan, D., O'Brian, C. A., Bucana, C. D., Fidler, I. J. Orthotopic and ectopic organ environments differentially influence the sensitivity of murine colon carcinoma cells to doxorubicin and 5-fluorouracil. Int J Cancer. 52, 98-104 (1992).
  4. Kashtan, H., Rabau, M., Mullen, J. B., Wong, A. H. C., Roder, J. C., Shiptz, B., Stern, H. S., Gallinger, S. Intra-rectal injection of tumor cells: a novel animal model of rectal cancer. Surg Oncol. 1, 251-256 (1992).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Ristampe e Autorizzazioni

Richiedi autorizzazione per utilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE

Richiedi Autorizzazione

Esplora altri articoli

Biologia Cellularenumero 10ortotopicoMousecolorettaleil cancro

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Riservatezza

Condizioni di utilizzo

Politiche

Ricerca

Didattica

CHI SIAMO

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Tutti i diritti riservati