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要約

我々はドブタミンにより誘導され、正常マウスにおける心臓カテーテル検査によって監視心臓ストレステストを実行するためのプロトコルを記述します。また、我々は、高脂肪食誘発肥満マウスでは無症候性心疾患のマスクを解除するために、そのアプリケーションを示しています。

要約

ドブタミンは、動脈(β2)で発現する受容体よりも心(β1)に発現した受容体に対して高い親和性を有するβ-アドレナリン受容体アゴニストである。全身的に投与する場合は、心臓の需要を増加させます。したがって、ドブタミンは、心筋梗塞のリスクが潜在的に異常なリズムや虚血領域のマスクを解除。

心臓ストレステスト中に心機能のモニタリングがecocardiographyまたは心臓カテーテル検査のいずれかによって行うことができます。後者は前者、その侵襲性がより正確かつ有益な手法である。

心拍数(HR)、収縮期血圧、拡張期血圧、拡張終期圧、最大正圧:心臓ストレステストドブタミンによって誘導され、ここで説明したように達成心臓カテーテル検査によって監視は、単一の実験では、以下の血行動態パラメータの測定では、でき開発(DP / dtmax)および最大否定的な報道URE開発(dP / dtの )、ベースライン条件でとドブタミンの漸増用量の下で。

予想されたように、正常マウスで我々は、HR、dP / dtの最大値およびdP / dtのでドブタミン用量依存性の増加を観察した。また、試験した最高用量(12 ng / gの/ min)で高脂肪食餌誘導性肥満マウスの心臓の代償不全がアンマスクされました。

プロトコル

プロトコルはAlemana-ティコ大学Desarrollo FacultadデMedicinaのクリニカの倫理委員会によって承認された。

I.はドブタミン投与の準備

  1. 500μg/ mlのドブタミンの原液を得るために、滅菌蒸留水20mlにドブタミン10mgを溶解します。 -20℃でアリコートとストアこのソリューションは、3ヶ月間、少なくとも使用することができます。
  2. 室温でドブタミンストック溶液のアリコートを解凍します。
  3. ドブタミン(μg/ ​​ml)を=体重X 0.2:計算式を用いて算出される濃度ドブタミン実用的なソリューションを得るためには、滅菌0.9%NaCl中ドブタミン原液を希釈します。
  4. ドブタミン作業溶液で1 mlシリンジ29Gx1 / 2 "を記入してください。
  5. 20センチメートルPE-10チューブに注射器の針を挿入します。
  6. メーカーの指示に従って、輸液ポンプ、シリンジを調整します。
  7. ステップでランプ注入を設定6つのステップでは、ステップごとに10μl/分の増加に伴って形式をツーステップ実行します。

Ⅱ。圧力センサの準備

  1. 少なくとも15分間37℃で滅菌水における信号ドリフト、水没圧力センサを最小限に抑えます。その静水圧が圧力センサに影響を与えないようにするために、0.5以上cm深いカテーテルを浸してはいけません。
  2. 電子的に25〜100 mmHgの時に圧力センサーのキャリブレーションを行います。電気入力(ボルト)が圧力信号(mmHg)のに変換されます。
  3. 2 K / sのサンプリング·レートを設定し、100 Hzのカットオフでローパスフィルタを使用しています。ゼロmmHgに圧力信号を設定します。
  4. 先端からカテーテル15ミリメートルをマークします。導入ポイントから心臓に到達することは遠い左ventriculeにカテーテルの存在を検出し、心エコー検査により推定した。

Ⅲ。カテーテル検査のためにマウスを準備する

  1. 重量のC57BL / 6雄マウス、30から32週齢。
  2. 腹腔内に60μg/ kgのケタミンと4μg/ kgのキシラジン1を注入します 。注:その他の麻酔薬は、例えば、使用されるかもしれません:350から450μg/ kgのAVERTIN、ペントバルビタールまたは1.5 50μg/ kgの- 2%イソフルレン2-3。
  3. 電気かみそりで首を剃る。
  4. 暖められた等温加熱プレート上に仰臥位で麻酔マウスを置きます。紙テープとその手足を固定します。
  5. 完全鎮静状態を確認するためにつま先のピンチを実行します。
  6. 穏やかに体温を監視するために直腸プローブを挿入します。 vaselinizedプローブを使用することをお勧めします。
  7. 体温が37から異なる場合℃±0.5℃、加熱板を介してそれを調整してください。
  8. 酸素供給の近くにマウスの鼻を入れてください。
  9. 実体顕微鏡下でマウスの頸部領域に配置します。

Ⅳ。データ収集

  1. LabChartPro 7ソフトウェアでは、圧力登録および心拍数(HR)の1チャネルごとに1つのチャネルを選択する登録。後者については、オプションの "巡回測定"やレートなどのセットアップの測定を選択します。
  2. 0から150 mmHgの圧力:チャネルのスケール範囲を設定します。
  3. 200から600 BPM:人事チャンネル、スケール範囲を設定してください。
  4. 登録を開始し、スタートキーを押します。
  5. 例えば実行手順を示すコメントを挿入:麻酔の投与は、変更を呼吸し、ドブタミン投与、ドブタミン濃度の開始。

4,5 Vの心臓カテーテル検査

  1. 顎付近の右側に小さな切開を行います。ハサミで皮膚、筋肉、結合組織を分離します。
  2. 気管の右側にある - 縦郭清(2センチメートル1.5)を実行します。気管の近くに右頸動脈を露出させるために、湾曲したピンセットで結合組織、脂肪と筋肉を分離する。
  3. 頸動脈を露出させるために動物右側にパンダを置きます。脈打つ心臓によって発生した圧力は、動脈の同定を容易にする。暗赤色である頸静脈は、右側にあります。
  4. 湾曲したピンセットで隣接組織から動脈を分離します。白い糸に似ている迷走神経は、動脈に沿って位置しています
  5. 6/0絹糸と、それを "二重"の20cmの部分を切り取ります。
  6. 左から右への動脈の下に "二重"のスレッドを渡します。別の端を得るために、スレッドをカット。
  7. 動脈下の3番目のスレッド(10センチ)を渡します。
  8. 頭の近くに位置してスレッド、より遠位の糸が緩んでいない1でタイトな結び目を作る。
  9. 真ん中のスレッドで緩い結び目を作る、紙のテープで加熱パッドの真ん中のスレッドの右端に固定してください。
  10. 滅菌0.9%NaClをドロップすることにより、頸動脈の潤いを保つ。綿棒で液体の過剰をふいて乾かす。
  11. 止血クランプで下糸を伸ばす。
  12. pによって止血はさみの位置を固定する血流を閉塞するために、上糸を伸ばし、腹部の皮膚をインチング。動脈周囲の結合組織が削除されていることを確認します。動脈は血液の完全かつパルスを奪わなければなりません。動脈のトルク力を発生させるからスレッドを防ぐ。
  13. Vannasマイクロシザーと動脈の下部付近断面ニックネームを作成します。血滴がこぼれされます。
  14. 頸動脈にカテーテルを挿入します。全体の圧力センサーを導入するようにしてください。は血液の損失がないことを確認します。
  15. 優しく場所にカテーテルを保持するために、中央の糸の結び目を調整します。あまりにも圧縮されません、圧力センサは、非常に壊れやすいです。
  16. 動物の腹部から止血はさみを放します。
  17. 血液の損失を避けるために、手でカテーテルを保持し、真ん中のスレッドを押し込みます。注意:動脈が血でいっぱいにする必要があります。
  18. 記録圧力信号を開始します。
  19. カテーテルが内側にある場合には、動脈圧の信号が60から70 100から120 mmHgに変動します。圧力信号の形状は、 図1.A.ノートで示されています:あなたがオンに興味を持っている場合、信号が少なくとも5分間安定していれば、この時点では、動脈圧を記録することができます。 HRの値は、記録信号の30秒の間隔を考慮した圧力波形から得られた。これは、調査の目標に応じて、人事の直接測定のためにも、心電図の方法を用いることができる。
  20. 優しく圧力信号( 図1.B)の形状の変化を観察するためにカテーテルを押し上げる。カテーテルは左心室の内側になると、圧力信号は0 100から120 mmHgに変動します。それはカテーテルをスライドさせることが困難な場合は、2本の指で動物の胸をつまむ。
  21. 継続的に呼吸数、体温、麻酔レベルと圧力信号を制御します。それらのすべてが安定している必要があります。

Ⅵ。ドブタミンの点滴

  1. 頚静脈カニュレーションの場合、その穿孔を防ぐために、静脈の周りに戻って皮脂肪組織に確認してください。静脈閉塞のための外科的処置は、頸動脈のために示した手順と同様です。
  2. 静脈内に、PE-10チューブをご紹介します。血流が後方シリンジのプランジャーを動かすブロックされていないことを確認します。
  3. ドブタミン投与は10μl/分で開始し、60μl/分で仕上げてください。すべての工程において、注入速度は2分6のために維持されます。
  4. 最後ドブタミンの投与後、麻酔の過剰投与で動物を安楽死させる。

Ⅶ。データ解析

  1. データ解析のために、あなたの興味のある記録データのセクションを選択します。圧力信号が安定している場所の時間間隔を考慮してください。
  2. 血圧モジュールのセットアップ]アイコンを選択します。圧力信号の選択されたタイプを示しています。
  3. 自動的にLabChartPro 7ソフトウェアが表示されたら意味、最大人事、収縮期血圧(P max)は、拡張期血圧(P )、拡張末期圧(EDP)、最大正圧開発(DP / dtmax)および最大負圧開発(dP / dtのmin)の値と最小値。また、心臓のパラメータが圧力トレースに描写することができます。

結果

動脈圧信号は収縮期血圧と拡張期血圧で定義されています。圧力センサは、左心室の内側にある場合には、その圧力(LVP)波形は拡張期血圧と心室収縮( 図1)の前に左心房収縮の出現にゼロに低下することを特徴とする。ベースライン状態、ケタミン-キシラジン麻酔下正常マウスで280のHRを持っていた±24、107のP 最大 ±8、5のP ±1、14のEDP±2、6081のdP / dtの...

ディスカッション

ドブタミンにより誘導され、心臓カテーテル検査によって監視心臓ストレステストは面倒である。それにもかかわらず、プロトコルに従うと、ここで説明するとトレーニングの短い時間で、それは最後の約1時間、その単一の実験で6血行動態パラメータを評価することが可能です。

ここに提示されたプロトコルの重要なステップは、血管のcannulationsです。頸動脈のカニュ...

開示事項

特別な利害関係は宣言されません。

謝辞

我々は博士エリオサルガド、レナータLataroとマウロ·デ·オリベイラ、設定プロセス中に寛大な支援のためのリベイラウンプレト、サンパウロ、博士ベンヤンセン、心臓血管研究所マーストリヒト、マーストリヒト大学、大学の医学部に感謝します。

この作品は、SDCにFONDECYT助成N°11090114によってサポートされていました

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
試薬
PE-50/10 ワーナー·インスツルメンツ 64から0752
絹糸6/0 HR17 Tagum SN0713K
Xylacin 20 mg / mlのラボラトリのCentrovet
ケタミン100 mg / mlのドラッグファーマ
塩化ナトリウム0.9パーセントラボサンダーソンのSA
塩酸ドブタミンシグマアルドリッチ D0676
注射器U-100のインスリン29G X½ " テルモメディカル株式会社
マイクロ11.5cmのスタイル7の解剖鉗子ロートンMedizintechnik 09から0959
グレーフェ鉗子CVD 0.7ミリメートル7センチメートルロートンMedizintechnik 62から0263
クランプディーフェンバハブルドッグClでのStr 38ミリメートルロートンMedizintechnik 60から010
Vannasはさみ8センチメートル筋力FhのロートンMedizintechnik 63から1400
機器
SPR-671-ミクロ先端圧力カテーテルミラー楽器 840-6719
PCU-2000圧力制御ユニットミラー楽器 880-0129
PowerLabの4月30日 ADinstruments Pty Ltdの ML866
LabChartPro 7 ADinstruments Pty Ltdの MLU260 / 7
Legato200輸液ポンプ KdScientific KD-KDS210P
TCAT-2LV温度コントローラと等温加熱板 PhysiTempインスツルメンツ株式会社
医療用酸素供給 Indura
直腸プローブ ADinstruments Pty Ltdの MLT1404
三眼顕微鏡、軸方向の照明 LW科学 Z2B-TRI-ETNE、ILP-1502-LTS1、ILP-1502-DGGF

参考文献

  1. Hart, C. Y., Burnett, J. C., Redfield, M. M. Effects of avertin versus xylazine-ketamine anesthesia on cardiac function in normal mice. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 281, H1938-H1945 (2001).
  2. Janssen, B. J., et al. Effects of anesthetics on systemic hemodynamics in mice. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 287, H1618-H1624 (2004).
  3. Lorenz, J. N. A practical guide to evaluating cardiovascular, renal, and pulmonary function in mice. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 282, R1565-R1582 (2002).
  4. Lorenz, J. N., Robbins, J. Measurement of intraventricular pressure and cardiac performance in the intact closed-chest anesthetized mouse. Am. J. Physiol. 272, H1137-H1146 (1997).
  5. Nemoto, S., DeFreitas, G., Carabello, B. A. Cardiac catheterization technique in a closed-chest murine model. Contemp. Top. Lab Anim. Sci. 42, 34-38 (2003).
  6. Daniels, A., et al. Impaired cardiac functional reserve in type 2 diabetic db/db mice is associated with metabolic, but not structural, remodelling. Acta Physiol. (Oxf). 200, 11-22 (2010).
  7. De Celle, T., et al. Long-term structural and functional consequences of cardiac ischaemia-reperfusion injury in vivo in mice. Exp. Physiol. 89, 605-615 (2004).
  8. Huntgeburth, M., et al. Transforming growth factor beta oppositely regulates the hypertrophic and contractile response to beta-adrenergic stimulation in the heart. PLoS One. 6, e26628 (2011).
  9. Reddy, A. K., et al. Cardiac function in young and old Little mice. J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 62, 1319-1325 (2007).
  10. Christoffersen, C., et al. Cardiac lipid accumulation associated with diastolic dysfunction in obese mice. Endocrinology. 144, 3483-3490 (2003).

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