JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Мы описываем протокол для выполнения теста сердечной стресс, вызванный добутамином и контролируется катетеризации сердца у нормальных мышей. Также мы показываем его применения, чтобы разоблачить субклинических сердечных заболеваний в высоким содержанием жиров вызванных ожирением мышами.

Аннотация

Dobutamine является β-адренергических агонистов с аффинностью выше рецептора выражается в сердце (β 1), чем к рецепторам выражено в артериях (β 2). При системном введении, он увеличивает сердечный спроса. Таким образом, добутамин разоблачает ненормальный ритм или ишемический областей потенциального риска инфаркта.

Мониторинг функции сердца во время сердечного стресс-теста может быть выполнена либо ecocardiography или катетеризации сердца. Последний является инвазивной, но более точный и информативный метод, который первым.

Сердечная тест стресс, вызванный добутамином и контролируется катетеризации сердца осуществляется, как описано здесь позволяет, в одном эксперименте, измерения следующих параметров гемодинамики: частота сердечных сокращений (ЧСС), систолическое давление, диастолическое давление, конечного диастолического давления, максимальное положительное давление развития (дР / dtmax) и максимальной отрицательной прессыЮр развития (др / дТ мин), на базовых условиях и при увеличении дозы добутамина.

Как и ожидалось, у нормальных мышей наблюдалось добутамин дозозависимое увеличение HR, др / дТ Макс и др / дТ мин. Кроме того, на самом высоком дозе (12 нг / г / мин), сердечная декомпенсация высоким содержанием жиров вызванных ожирением мышей был разоблачен.

протокол

Протокол был одобрен Комитетом этики Facultad-де-Медицина Клиника Alemana-Университет-дель-Desarrollo.

I. Подготовка Dobutamine Инфузионные

  1. Растворите 10 мг добутамина в 20 мл стерильной дистиллированной водой, для того, чтобы получить исходный раствор 500 мкг / мл добутамина. Алиготе и хранить при температуре -20 ° C. Это решение может быть использовано по крайней мере, в течение 3 месяцев.
  2. Оттепель аликвоты добутамин раствора при комнатной температуре.
  3. Развести добутамин раствора в стерильный 0,9% NaCl, чтобы получить добутамин рабочий раствор, концентрация которого рассчитывается по формуле: добутамина (мкг / мл) = масса тела х 0,2.
  4. Заполнить 1 мл шприц 29Gx1 / 2 "с добутамином рабочего раствора.
  5. Введите иглу шприца в 20 см PE-10 трубы.
  6. Отрегулируйте шприц в инфузионный насос следующие инструкции производителя.
  7. Установка рампы вливания в шагеК шагу формате с увеличением на 10 мкл / мин на каждый шаг, за 6 шагов.

II. Подготовка датчика давления

  1. Чтобы свести к минимуму дрейф сигнала, датчик давления погружаются в стерильной воде при 37 ° С в течение 15 мин. Не замачивать катетера более чем на 0,5 см в глубину, в целях предупреждения, что гидростатическое давление влияет на датчик давления.
  2. Электронно калибровки датчика давления при 25 и 100 мм рт. Электрическая мощность (Вольт) преобразуется в сигнал давления (мм рт.ст.).
  3. Установите частоту дискретизации 2 к / с и использовать фильтр низких частот с отрезанными на частоте 100 Гц. Установить сигнал давления к нулю мм рт.
  4. Отметить катетер 15 мм от кончика. Дистанционное дойти до сердца от внедрения точка была оценена с помощью эхокардиографии, обнаружения присутствия катетер в левом ventricule.

III. Подготовка мышь для катетеризации

  1. Вес C57BL / 6 мышей-самцов, 30-32 недельных.
  2. Inject внутрибрюшинно 60 мкг / кг кетамина и 4 мкг / кг ксилазина 1. Примечание: другие анестетики могут быть использованы, например: 350 - 450 мкг / кг Avertin, 50 мкг / кг фенобарбитала или 1,5 - 2% изофлурана 2-3.
  3. Бритье шеи с электрической бритвой.
  4. Положите под наркозом мыши в положении лежа на нагретых изотермической пластины отопления. Закрепите свои конечности с бумажной ленте.
  5. Выполните ноги щепотку, чтобы подтвердить полное успокоение.
  6. Аккуратно вставьте ректального датчика для контроля температуры тела. Использование vaselinized зонд рекомендуется.
  7. Если температура тела отличается от 37 ° C ± 0,5 ° C, отрегулируйте его с помощью нагревательного элемента.
  8. Положите мышь морда у кислорода.
  9. Поместите мышь области шеи под стереомикроскопа.

IV. Сбор данных

  1. В LabChartPro 7 программного обеспечения, выберите один канал для давления регистрацию и один канал для сердечных сокращений (ЧСС)регистрации. Для последних, выберите опцию "Циклические измерения" и настройка измерений, как скорость.
  2. Для давление в канале установить масштаб диапазон: от 0 до 150 мм рт.
  3. Для HR канала установлен диапазон измерения: от 200 до 600 ударов в минуту.
  4. Нажмите кнопку Пуск, чтобы начать регистрацию.
  5. Вставьте комментарии с указанием процедур, выполняемых, например: анестезия администрации, начала инфузии добутамина, добутамин концентрации, дыхательные изменения.

В. катетеризации сердца 4,5

  1. Выполните небольшой разрез на правой стороне рядом с челюстью. С ножницами отделить кожу-мышечной соединительной ткани.
  2. Выполнение продольного рассечения (1,5 - 2 см) на правой стороне трахеи. Отделить соединительной ткани, жира и мышц с изогнутым пинцетом, чтобы разоблачить правой сонной артерии вблизи трахеи.
  3. Поместите расширителя в животном правой стороны, чтобы разоблачить сонной артерии. ПульсирующийДавление, создаваемое сердцем облегчает идентификацию артерии. Яремную вену, которая является темно-красный, находится на правом.
  4. Отделить артерии от прилегающих тканей с изогнутым пинцетом. Блуждающий нерв, который напоминает белую нить, лежит вдоль артерии.
  5. Отрежьте 20 см кусок 6/0 шелковые нити и "двойные" его.
  6. Пропустите "двойной" нить под артерии слева направо. Обрежьте нить, с целью получения отдельного концами.
  7. Передайте третий поток (10 см) ниже артерии.
  8. Завяжите тугой узел в цепочке расположены близко к голове, и свободно один в более дистальных поток.
  9. Привяжите свободный узел в середине потока, и исправить правый конец середине потока грелку с бумажной лентой.
  10. Держите сонной артерии влажные путем отказа от стерильного 0,9% NaCl. Вытрите избыток жидкости с ватными палочками.
  11. Растяните нижнюю нить с кровоостанавливающего зажима.
  12. Исправить положение кровоостанавливающего ножницами через ртолчковой кожу живота, растяжение верхней нити для того, чтобы закрывать кровотока. Убедитесь, что соединительная ткань вокруг артерии была удалена. Артерия должна быть полна крови и лишили импульса. Предотвращение темы от производства крутящего момента силы на артерии.
  13. Сделать сечение ник в нижней части артерии с Vannas микро-ножниц. Капли крови будет пролито.
  14. Вставьте катетера в сонную артерию. Будьте уверены, чтобы ввести весь датчик давления. Убедитесь, что нет никакой потери крови.
  15. Аккуратно настроить середине узла нити, с тем чтобы провести катетер на месте. Не сжимать слишком много, датчик давления очень хрупкая.
  16. Отпустите кровоостанавливающего ножницами от животного живота.
  17. Держите катетер с руки и нажмите на среднюю нить, чтобы избежать потери крови. Примечание: артерии должны быть полны крови.
  18. Начало записи сигналов давления.
  19. Когда катетер находится внутри,артериальное давление сигнала колеблется от 60-70 до 100-120 мм рт. Форма сигнала давления показана на рис 1.A. Примечание: если вы заинтересованы в, в этот момент времени вы можете записать артериального давления, если сигнал является стабильным в течение по крайней мере 5 мин. HR значения были получены от давления сигналов учетом интервалом 30 секунд записи сигнала. Можно также использовать метод ЭКГ для прямого измерения HR, в соответствии с исследованием целей.
  20. Аккуратно надавите на катетер до наблюдать изменение формы сигнала давления (рис. 1.В). Как только катетер находится внутри левого желудочка, сигнал давления колеблется от 0 до 100-120 мм рт. Если это трудно сдвинуть катетер, щепотка животного грудь двумя пальцами.
  21. Постоянный контроль частоты дыхания, температуры тела, анестезия уровня и давления. Все они должны оставаться стабильными.

VI. Настой Dobutamine

  1. Для яремную вену катетеризации обязательно отогните жировой ткани вокруг вены, чтобы предотвратить ее перфорации. Хирургические процедуры вены окклюзии похожа на процедуру, указанную на сонной артерии.
  2. Представьте PE-10 трубка в вену. Убедитесь, что поток крови не заблокирован движется в обратном поршень шприца.
  3. Dobutamine вливания начинается с 10 мкл / мин и закончить с 60 мкл / мин. В каждом шагу, скорость инфузии сохраняется в течение 2 мин 6.
  4. После введения последней дозы добутамина, усыпить животное с передозировкой наркоза.

VII. Анализ данных

  1. Для анализа данных, выбрать раздел записанные данные вашего интереса. Будьте уверены, чтобы рассмотреть временной интервал, когда сигнал давления стабильное.
  2. Выберите Установка в модуль артериального давления. Укажите выбранный тип сигнала давления.
  3. Автоматически LabChartPro 7 дисплеев программного обеспечения означает, максимальнаяи минимальные значения для HR, систолическое давление (P макс), диастолическое давление (P мин), конечного диастолического давления (EDP), максимальное положительное развитие давления (дР / dtmax) и максимальное отрицательное давление развития (др / дТ мин). Кроме того, сердечные параметры могут быть изображены на давление следа.

Результаты

Артериальное давление сигнала определяется систолическое и диастолическое давление. Когда датчик давления в левом желудочке, давление (LVP) сигнал характеризуется падением к нулю диастолического давления и появлению левого предсердия до желудочков сокращение сокращение (рис. 1).

Обсуждение

Сердечная тест стресс, вызванный добутамином и контролируется катетеризации сердца является трудоемким. Тем не менее, в соответствии с протоколом здесь описывать и с коротким временем обучения, то можно оценить шесть гемодинамики в одном эксперименте, который длится около одного час?...

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Мы благодарим доктора Helio Сальгадо, Рената Lataro и Мауро де Оливейра, Школа медицины Рибейран-Прету, Университет Сан-Паулу и д-р Бен Янссен, сердечно-сосудистые научно-исследовательский институт Маастрихт, Maastricht University, за щедрую помощь в настройке процесса.

Эта работа была поддержана грантом FONDECYT N ° 11090114 на SDC

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Реагенты
PE-50/10 Warner Instruments 64-0752
Шелковая нить 6/0 HR17 Tagum SN0713K
Xylacin 20 мг / мл Laboratorio Centrovet
Кетамин 100 мг / мл Drag Pharma
Натрия хлорид 0,9% Лаборатория Сандерсон SA
Добутамина гидрохлорида Sigma-Aldrich D0676
Шприц U-100 Инсулин 29G х ½ " Terumo Медицинский Co
Пинцеты Анатомический Micro 11,5 см Стиль 7 ЛоутонMedizintechnik 09-0959
Грефе пинцет CVD 0.7мм 7см Лоутон Medizintechnik 62-0263
Зажимы Dieffenbach бульдог Cl Str 38 мм Лоутон Medizintechnik 60-010
Vannas ножницы 8 см ул Fh Лоутон Medizintechnik 63-1400
Оборудование
SPR-671 Микро-Tip давления катетер Миллар инструменты 840-6719
PCU-2000 Пульт управления давлением Миллар инструменты 880-0129
PowerLab 4/30 ADInstruments Pty ООО ML866
LabChartPro 7 ADInstruments Pty ООО MLU260 / 7
Legato200 инфузионный насос KdScientific KD-KDS210P
TCAT-2LV контроллер температуры и изотермического нагрева пластин PhysiTemp инструменты Инк
Медицинское снабжение кислородом Индура
Ректальный зонд ADInstruments Pty ООО MLT1404
Тринокулярный микроскоп, осевое освещение LW Научная Z2B-TRI-Этне, ILP-1502-LTS1, ILP-1502-DGGF

Ссылки

  1. Hart, C. Y., Burnett, J. C., Redfield, M. M. Effects of avertin versus xylazine-ketamine anesthesia on cardiac function in normal mice. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 281, H1938-H1945 (2001).
  2. Janssen, B. J., et al. Effects of anesthetics on systemic hemodynamics in mice. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 287, H1618-H1624 (2004).
  3. Lorenz, J. N. A practical guide to evaluating cardiovascular, renal, and pulmonary function in mice. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 282, R1565-R1582 (2002).
  4. Lorenz, J. N., Robbins, J. Measurement of intraventricular pressure and cardiac performance in the intact closed-chest anesthetized mouse. Am. J. Physiol. 272, H1137-H1146 (1997).
  5. Nemoto, S., DeFreitas, G., Carabello, B. A. Cardiac catheterization technique in a closed-chest murine model. Contemp. Top. Lab Anim. Sci. 42, 34-38 (2003).
  6. Daniels, A., et al. Impaired cardiac functional reserve in type 2 diabetic db/db mice is associated with metabolic, but not structural, remodelling. Acta Physiol. (Oxf). 200, 11-22 (2010).
  7. De Celle, T., et al. Long-term structural and functional consequences of cardiac ischaemia-reperfusion injury in vivo in mice. Exp. Physiol. 89, 605-615 (2004).
  8. Huntgeburth, M., et al. Transforming growth factor beta oppositely regulates the hypertrophic and contractile response to beta-adrenergic stimulation in the heart. PLoS One. 6, e26628 (2011).
  9. Reddy, A. K., et al. Cardiac function in young and old Little mice. J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 62, 1319-1325 (2007).
  10. Christoffersen, C., et al. Cardiac lipid accumulation associated with diastolic dysfunction in obese mice. Endocrinology. 144, 3483-3490 (2003).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

72General

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены