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要約

hemozoinの常磁性特性は後期を分離するために使用されている熱帯熱マラリア原虫(Plasmodium falciparum)感染した赤血球は、文化の中で成長しています。方法は、シンプルで早いのが特長です、寄生虫のその後の侵襲的な機能に影響を与えません。

要約

他の原虫種とは異なり、P.熱帯熱マラリア原虫は、その研究1を容易実験室で培養することができる。達成寄生虫は≈40%の限界に達することができますが、治験責任医師は、通常約10%の割合を維持します。多くの場合、それが文化を豊かにし、与えられた実験を続行し、感染していないものから寄生虫含有赤血球細胞(赤血球)を単離することが必要である。

ときはP.熱帯熱マラリア原虫が赤血球に感染する寄生虫が低下し、ヘモグロビン2,3から供給されます。しかし、寄生虫は非常に有毒な鉄を含有するヘム部分4,5に対処する必要があります。寄生虫はhaemozoin 6,7と呼ばれる不活性液晶ポリマーにヘムを変換することによって、その毒性は見逃されている。この鉄含有分子は、その食胞に格納されており、その中に金属がヘム8のものと異なる酸化状態を有している。ヘム鉄の鉄状態ozoinはそれに感染していない赤血球中に存在しない常磁性を付与する。侵略の寄生虫が成熟に達すると、haemozoinの内容もPの最新のステージでさらに常磁性を授けている、9を増加赤血球内部の熱帯熱マラリア

この常磁性、Pの最新の段階に基づいてfalciparum感染、赤血球は、磁気ビーズを含むカラムを通して文化を通過させることによって分離することができる。それらを含む列がマグネットホルダ上に配置された場合、これらのビーズは、磁気になる。フロースルーは、ほとんどの部分、非感染赤血球および寄生虫の含有するもの初期段階のため、含まれていながら、常磁性に起因する感染した赤血球は、その後、列の中に閉じ込められます。

ここで、我々は良い寄生虫の生存率10を維持た磁気カラムを持つ後期寄生虫の人口を豊かにするための方法論を記述している。この手順を実行した後、付着していない文化が残っている寄生虫が成長し続けることができるようにインキュベーターに戻すことができます。

プロトコル

プロトコルのすべてのステップは、遠心分離を除いて、サンプルを無菌に保つためにフード内に実施されるべきである。

1。 Pの後期段階の分離熱帯熱マラリア原虫感染赤血球

寄生虫で常磁性を付与hemozoinが、属に共通の代謝物であるので、マラリア原虫感染赤血球のすべての後期段階では、この方法論で区切ることができます。文化の高い寄生虫(3-10%)はこのプロトコルを使用してより良い収率を得るために推奨される、典型的な文化は2-4%のヘマトクリット(赤血球容積率)、1〜8%の寄生虫血症(感染の割合が含まれますが、赤血球)。トレガとヤンセン1で説明したように寄生虫は培養することができる。

  1. シンプル、マルチパートの設定はすべてのシゾント分離手順のために組み立てる必要があります。このために、LSの列、磁気MidiMACSセパレータとミルテニーバイオテク( 図1からMACS MultiStand )を使用されています。まず、金属スタンドに磁気分離器をアタッチし、セパレータに磁気カラムを配置します。
  2. 別のチューブに(全体で50ミリリットルconicalsを使用)、RPMI1640の23.2ミリリットルと作業ソリューションを作成する7.5%の炭酸水素ナトリウム750μlを混合します。廃棄するため手で追加のチューブを持っていると寄生虫文化のフロースルー収集。
  3. それを平衡化するために列に作業溶液3mlを追加し、フロースルーチューブには廃棄してください。
  4. Pの8ミリリットルを追加列に熱帯熱マラリア原虫は、文化、できるだけ早く作業ソリューションの最後の部分として培養による列から押し出されていることを確認して、受信したチューブは、結合していない文化のリカバリを開始する収集で置き換えられます。これは、任意のさらなる文化を希釈を避けるために必要です。
  5. コラムを通じて文化の流れが止まった後、列の残りの赤血球を押し出すために、作業溶液1mlを加える。
  6. ステップを洗濯:列に作業ソリューションの別の3ミリリットルを追加し、他のチューブにフロースルーとして保存されている文化を希釈避けるために、 "廃棄"チューブに流れる液体を収集します。
  7. 溶出:3ミリリットルがカラムを通過した後は、スタンドから後者を切り離し、15 mlチューブの上に置きます。
  8. 繰り返しになりますが、列に作業溶液3mlを加える。このステップでは、列のビーズに閉じ込められた後期原虫感染赤血球を溶出する。

注:この時点で、必要に寄生虫の量に応じて、元の文化の中で寄生虫の限界に明らかに被写体コレクションの別のラウンド/ sを開始します。流れが定常状態を維持している列であれば再利用することができます。

  1. 収集された寄生虫の濃度:室温で150×gで5分間溶出液を含む15 mlチューブを遠心寄生された赤血球から濃いペレットを形成する。
  2. (以下の手順2を参照してください)​​非常に小さいサンプルを取り、顕微鏡を通して濃度と総収量を決定するのに十分な液体残して上清を取り除きます。
  3. 後期原虫の分離と回収が十分に達成されている場合は、この時点では、新鮮な培地を再び回収した培養をインキュベートする。
  4. その後の実験に必要なボリュームと溶液中で収集された寄生虫を希釈します。

2。純度や歩留まり解析

  1. 血球計数器を用いて、光学顕微鏡下でカウントした寄生虫の濃度を確認します。カウントするには、血球計数器のカバースリップの下で収集寄生虫やメディアミックスの10μlを添加する。血球計数器の4つの象限の寄生虫の数を数えて、4で合計数を割る。感染した電子の濃度を得るために、10 4によって、その数を掛けるmlあたりrythrocytes。

ノート:a)混合物の濃度が、多かれ少なかれ、培地を加えて、ペレットを再懸濁した瞬間にユーザによって決定される。作業濃度がμlあたり5.5×10 4 schizontes(これは一般的に収集された寄生虫に100から300μlを添加することによって達成される)が示唆された。この濃度の20μlをメディアや赤血球100μlのミックスの最終容量に追加された場合は、代表的な4%ヘマトクリット文化で約1%の寄生虫血が得られるであろう。 B)血球計算板の下にカウントは、赤血球がチャンバ内の試料が乾燥として溶解開始以来、迅速でなければならない。過半数であるべき感染赤血球は、非感染のものからそれらを区別するダークスポットの内側を、表示されます。

  1. 薄層を実行ギムザ、それらを乾燥させ、10%メタノールで非常に急速にスライドを固定することによって、コレクションの純度を評価するために染色し、tを浸漬ギムザの20%溶液で裾を蒸留水で希釈した染色。彼らは空気で乾燥した後、顕微鏡下で検査できるようになるまでの10分間、スライドを染色する。よく70%以上の寄生虫は達成可能である必要があります。

結果

図2では、磁気カラムを通過する文化が前(A)と手順(B)後、表示されます。矢印は、 図2Aの感染赤血球を指すと、 図2に示すように、1〜2感染赤血球は通常100X倍率分野で見られる。典型的な手順では、5%の寄生虫血症( 図2A)で培養を皮切りに、この手順のパフォーマンスは、通常97パーセント-100%( 図2B?...

ディスカッション

マラリア原虫P.の in vitro 培養における熱帯熱マラリア原虫は、より文化の最高増殖時点で感染していない赤血球の半分以下で、限られた寄生虫血症を呈する。ほとんどの研究実験のためには、感染赤血球でのみ動作することが望ましい。この目的を達成するために、分離技術は、感染によると文化を分割することが必要である。便利なメソッドは非感染赤血球11と二つの...

開示事項

我々は、開示することは何もない。

謝辞

この作品は、CSおよびSecretaríaナシオナルデCiencia yをTecnología(SENACYT)からLCに博士課程奨学金、パナマへの助成PRB-009によって賄われていた。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
試薬の名称 会社 カタログ番号 コメント(オプション)
修正したRPMI 1640ヘペスシグマアルドリッチ R4130 10%ヒト血清、2%グルコース、0.2%炭酸水素ナトリウムを補充
MidiMACSセパレータ MACSミルテニーバイオテク 130-042-302
MACS MultiStand MACSミルテニーバイオテク 130-042-303
LSの列 MACSミルテニーバイオテク 130-042-401
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参考文献

  1. Jensen, J. B., Trager, W. Plasmodium falciparum in culture: use of outdated erythrocytes and description of the candle jar method. J. Parasitology. 63 (5), 883-886 (1977).
  2. Guzman, I. Y., Francis, S. E., Oksman, A., Smith, C. E., Duffin, K. L., Goldberg, D. E. Order and specificity of the Plasmodium falciparum hemoglobin degradation pathway. J. Clin. Invest. 93, 1602-1608 (1994).
  3. Rosenthal, P. J., Meshnick, S. R. Hemoglobin catabolism and iron utilization by malaria parasites. Mol. Biochem. Parasitol. 83 (2), 131-139 (1996).
  4. Fitch, C. D., Chevli, R., Kanjananggulpan, P., Dutta, P., Chevli, K., Chou, A. C. Intracellular ferriprotoporphyrin IX is a lytic agent. Blood. 62 (6), 1165-1168 (1983).
  5. Hebbel, R. P., Eaton, J. W. Pathobiology of heme interaction with the erythrocyte membrane. Semin. Hematol. 26 (2), 136-149 (1989).
  6. Egan, T. J. Haemozoin formation. Mol. Biochem. Parasitol. 157 (2), 127-136 (2008).
  7. Hempelmann, E., Marques, H. M. Analysis of malaria pigment from Plasmodium falciparum. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 32 (1), 25-30 (1994).
  8. Fitch, C. D., Kanjananggulpan, P. The state of ferriprotoporphyrin IX in malaria pigment. J. Biol. Chem. 262 (32), 15552-15555 (1987).
  9. Moore, L. R., Fujioka, H., Williams, P. S., Chalmers, J. J., Grimberg, B., Zimmerman, P. A., Zborowski, M. Hemoglobin degradation in malaria-infected erythrocytes determined from live cell magnetophoresis. FASEB J. 20 (6), 747-749 (2006).
  10. Spadafora, C., Gerena, L., Kopydlowski, K. M. Comparison of the in vitro invasive capabilities of Plasmodium falciparum schizonts isolated by Percoll gradient or using magnetic based separation. Malaria J. 10, 96 (2011).
  11. Jackson, K. E., Spielmann, T., Hanssen, E., Adisa, A., Separovic, F., Dixon, M. W., Trenholme, K. R., Hawthorne, P. L., Gardiner, D. L., Gilberger, T., Tilley, L. Selective permeabilization of the host cell membrane of Plasmodium falciparum-infected red blood cells with streptolysin O and equinatoxin II. Biochem. J. 403, 167-175 (2007).
  12. Goodyer, I. D., Johnson, J., Eisenthal, R., Hayes, D. J. Purification of mature-stage Plasmodium falciparum by gelatine flotation. Ann. Trop. Med. Parasitol. 88 (2), 209-211 (1994).
  13. Pasvol, G., Wilson, R. J., Smalley, M. E., Brown, J. Separation of viable schizont-infected red cells of Plasmodium falciparum from human blood. Ann. Trop. Med. Parasitol. 72, 87-88 (1978).
  14. Pertoft, H. Fractionation of cells and subcellular particles with Percoll. J. Biochem. Biophys. Methods. 44 (1-2), 1-30 (2000).
  15. Paul, F., Roath, S., Melville, D., Warhurst, D. C., Osisanya, J. O. S. Separation of malaria-infected erythrocytes from whole blood: use of a selective high-gradient magnetic separation technique. The Lancet. 318, 70-71 (1981).
  16. Trang, D. T., Huy, N. T., Kariu, T., Tajima, K., Kamei, K. One-step concentration of malarial parasite-infected red blood cells and removal of contaminating white blood cells. Malar. J. 3, 7 (2004).
  17. Nillni, E. A., Londner, M. V., Spira, D. T. A simple method for separation of uninfected erythrocytes from those infected with Plasmodium berghei and for isolation of artificially released parasites. Z. Parasitenkd. 64, 279-284 (1981).

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73 Plasmodium falciparum Hemozoin

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