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要約

We describe a targeted RNA sequencing-based method that includes preparation of indexed cDNA libraries, hybridization and capture with custom probes and data analysis to interrogate selected transcripts for gene expression, mutations, and gene fusions. Targeted RNAseq permits cost-effective, rapid evaluation of selected transcripts on a desktop sequencer.

要約

RNA配列（RNAseq）は、遺伝子発現、突然変異、遺伝子融合、および非コードRNAを検出し、特徴付けるために使用することができる汎用性の高い方法です。億シーケンシング読み取り、そのようなmRNAおよび非コードRNAなどの複数のRNA産物を含めることができます - 標準RNAseq 30が必要です。我々は、ターゲットを絞ったRNAseq（キャプチャ）は、デスクトップ・シーケンサーを使用して、選択したRNA産物にフォーカスされた研究を可能にする方法を示します。 RNAseqキャプチャは、そうでなければ、伝統的なRNAseq方法を使用してミスの可能性があることを、注釈なしの低い、または一時的に発現転写産物を特徴づけることができます。ここでは、細胞株からのRNAの抽出、リボソームRNAの枯渇、cDNA合成、バーコードのライブラリ、ハイブリダイゼーションおよびデスクトップ・シーケンサー上のターゲット転写産物と多重シーケンシングのキャプチャの準備について説明します。我々はまた、品質管理評価、整列、融合検出、遺伝子発現の定量化および単NUCの識別を含むコンピュータ解析パイプラインを、概要leotide変種。このアッセイは、遺伝子発現、遺伝子融合、および変異を特徴付ける標的転写物配列決定を可能にします。

概要

Whole transcriptome or RNA sequencing (RNAseq) is an unbiased sequencing method to assess all RNA products. The goal of targeted RNAseq (Capture) is a focused evaluation of selected transcripts with increased sensitivity, dynamic range, reduced cost or scale, and increased throughput compared to standard RNAseq. Similar to standard RNAseq, targeted enrichment approaches can be used to evaluate gene expression, multiple RNA species such as mRNA, microRNA (miRNA), lncRNA1, other noncoding RNAs2, gene fusions3, and mutations4-6.

Capture involves hybridization of complementary oligonucleotides to enrich cDNA libraries for sequencing. The rationale for RNAseq Capture is similar to microarray approaches where complementary oligonucleotides or probes are hybridized to samples and then measured for relative abundance. For microarray technologies, expression is based on relative signal measured for transcripts binding to these probes. Microarrays are thus limited by range, potential background noise from non-specific binding, and cross-hybridization of probes. Furthermore, arrays have limited dynamic range for low and highly expressed transcripts compared to RNAseq1. Microarrays are widely utilized due to their reduced cost and high throughput capacity compared to RNAseq.

Here, we demonstrate a method for RNAseq Capture that offers a middle ground between RNAseq and microarray approaches for evaluating the transcriptome. RNAseq Capture has intermediate throughput, greater dynamic range and sensitivity, and is scaled for fast turnaround on desktop sequencers. RNAseq Capture also requires reduced computational resources in terms of storage space and data processing.

プロトコル

注：このプロトコルは、4つのサンプルの同時処理および分析について説明します。この方法は、細胞から単離されたRNA、新鮮凍結組織及びホルマリン固定パラフィン包埋組織（FFPE）と互換性があります。各試料についてのRNA入力を開始するの千ngの（250推奨NG） - このプロトコルは50で始まります。

RNA手順の1. rRNAの枯渇とフラグメンテーション

  1. rRNAを枯渇
    1. 室温-20℃と融解からの溶出、プライム、フラグメントミックス、rRNAを除去ミックス、rRNAの結合緩衝液および再懸濁緩衝液を除去します。 4°Cから溶出​​バッファー、rRNAを除去ビーズおよびRNA / cDNAの特定の常磁性ビーズを除去し、室温にもたらします。
    2. PCRチューブにRNAの0.25μgのを追加します。 10μlの総最終体積にヌクレアーゼフリーの超純水で全RNAを希釈します。各チューブに結合緩衝液rRNAの5μlを添加し、その後のrRNA除去ミックスの5μlを添加し、穏やかにpipett電子上下に混合します。蓋付きサーマルサイクラーに入れチューブは、RNAを変性させ、5分間68℃まで100℃とプログラムサーマルサイクラーに予め加熱しました。
    3. RNAの変性後、サーマルサイクラーからチューブを除去し、1分間室温でインキュベートします。渦のrRNA除去ビーズチューブを激しくビーズを再懸濁します。新しいチューブにrRNAを除去ビーズの35μlを添加して、rRNAを除去ビーズを含むチューブにRNAの変性反応（20μl）を転送します。
    4. すぐに45μlのピペットにピペットを調整し、20倍のダウンミックスします。 1分間室温でチューブをインキュベートします。その後、1分間、室温で磁気スタンドにチューブを配置します。新たに標識PCRチューブに上清を移し、1分間室温で磁気スタンドに再びこれらのチューブを配置します。これにはビーズが転送されていないことを保証します。新たに標識PCRチューブに上清を移します。
    5. 渦RNA / cDNAの特定の常磁性ビーズと各チューブにビーズの99μlを添加します。静かにピペット全体ミックスする上下10倍のボリューム。劣化し-RNAで始まる場合は、各チューブに十分に混合されたRNA / cDNAの特定の常磁性ビーズの193μlを添加します。室温で15分間インキュベートします。その後、5分間、室温で磁気スタンドにチューブを配置します。削除し、上清を捨てます。
    6. 新たに調製した70％エタノール（EtOH）中の200μlのを追加します。磁気スタンドにチューブを保持し、ビーズを乱さないように注意してください。 30秒間室温でインキュベートし、その後、上清を除去し、廃棄します。乾燥するために10分 - 管が5室温で放置します。
    7. 遠心分離機は、5秒間600×gで室温の溶出緩衝液を解凍しました。各チューブに溶出バッファー11μLを加え、穏やかにアップピペットと10倍のダウンミックスします。 2分間室温でチューブをインキュベートします。 5分間、室温で磁気スタンドにチューブを入れます。新たに標識PCRチューブに上清の8.5μLを移します。
  2. rRNAを枯渇RNAの断片化
    1. 8.5μlのエルを追加UTE、8.5μlのプライム、および各チューブに8.5μlの断片ミックス。静かにアップピペットと10倍のダウンミックスします。プログラム以下とサーマルサイクラーに入れチューブ：8分、100℃、94℃に予熱した蓋をし、4°Cホールド。
      注：この手順は、155塩基対の平均インサートサイズを生成するように設計されています。 RNAサンプルの平均断片サイズは200 bpのより低い場合は、このステップをスキップし、第一鎖cDNA合成に進みます。

2. cDNA合成

  1. ファーストストランドcDNAを合成
    1. -20°Cから第一鎖合成ミックスを外し、室温で解凍。
    2. 次の設定でプリプログラムサーマルサイクラー：10分間予熱蓋オプションと100℃に設定し、その後、25℃、42℃、15分間、70℃で15分間、4℃で保持します。このプログラムを保存し、「合成する第1ストランド。」
    3. 600＆＃での遠心分離解凍-第一鎖合成ミックスチューブ215; 5秒間グラム。 1μlのは、第一鎖合成ミックスの9μlの逆転写酵素を混ぜます。
    4. 第一鎖合成の8μlを添加し、各チューブに転写酵素ミ​​ックスを逆転、優しくアップピペットミックスダウンする6倍速。 4秒間遠心管は、底部に液体をもたらすために6.0×gで一定速度ミニ卓上遠心分離機を使用して。サーマルサイクラーにチューブを配置し、合成する第1ストランドを選択します。サーマルサイクラーを4℃に達すると、チューブを除去し、第二鎖cDNAを合成するためにすぐに進んでください。
  2. 第二鎖cDNAを合成
    1. 蓋付きの16℃に予熱サーマルサイクラーを30℃に予熱。氷の上の第二鎖マスターミックス、再懸濁バッファーを解凍します。事前に、4°Cから常磁性ビーズのボトルを除去し、室温にそれらをもたらすために少なくとも30分間放置しました。
    2. 各PCRチューブに再懸濁緩衝液の5μlを添加します。 600での遠心分離の第二鎖マスターミックス5秒間グラム×各PCRチューブに20μlを添加します。 1時間16℃で予熱したサーマルサイクラーにチューブを入れます。インキュベーションが完了すると、サーマルサイクラーから削除して、チューブを室温にさせます。
    3. 渦常磁性ビーズは、それらが十分に分散するまで。各チューブによく混合された常磁性ビーズの90μlを添加します。穏やかに混合するには、上下10倍のボリューム全体をピペット。室温で15分間チューブをインキュベートします。 5分間室温で磁気スタンドにチューブを入れます。
    4. エタノール洗浄を行うために、磁気スタンドにチューブを残して上清の135μLを取り外し、廃棄します。 30秒間室温でインキュベートした後に、新たにビーズを乱すことなく各チューブに80％エタノールを用意し、200μlのを追加します。それぞれからの上清のすべてを削除し、破棄します。 2 80％エタノール洗浄の合計のために繰り返します。
    5. 磁気スタンド上で乾燥させる10分 - 管が5室温で放置します。遠心分離機解凍した部屋のtemperatur5秒間600×gでの電子の再懸濁緩衝液。磁気スタンドからPCRチューブを外します。各PCRチューブに17.5μlの再懸濁緩衝液を加え、穏やかに完全に混合するには、上下10倍のボリューム全体をピペット。室温で2分間チューブをインキュベートします。
    6. 5分間、室温で磁気スタンドの上に置いてチューブは、その後、0.2ミリリットルのPCRストリップチューブに15μlの上清（二本鎖cDNA）を転送します。
      注：これは、cDNAは、7日間まで-20℃で保存することができるように、安全な停止点です。

3.ライブラリの準備

  1. アデニル3 '末端
    1. 室温-20℃と融解から-テーリングミックスを削除します。次の設定でプリプログラムサーマルサイクラー：プレヒートリッドオプションを選択した後、30分間37℃に設定し、100℃、70℃に設定し、5分間、4℃で保持します。このプログラムを保存」ATAIL70。」
    2. 再懸濁の2.5μLを追加各チューブにバッファー。その後、解凍したA-テーリングミックスの12.5μlを添加します。静かに完全に混合するには、上下10倍のボリューム全体をピペット。サーマルサイクラーにチューブを配置し、ATAIL70を選択します。サーマルサイクラーの温度は4℃である場合には、サーマルサイクラーからPCRチューブを削除し、アダプタを連結するためにすぐに進んでください。
  2. ライゲーションアダプタ
    1. 、適切なRNAアダプターチューブを外し、-20℃からライゲーションバッファーおよび再懸濁緩衝液を停止し、室温で解凍。プロトコルにそうするように指示があるまで-20°Cからライゲーション混合管を削除しないでください。 4°Cから常磁性ビーズのボトルを取り外し、室温にもたらすために少なくとも30分間放置しました。
    2. 30℃にサーマルサイクラーを事前に加熱して、プレヒートリッドオプションを選択して、100℃に設定してください。遠心分離機5秒間600×gで解凍したRNAアダプタチューブは。使用直前に、-20°Cからライゲーションミックスチューブを削除ストレージ。
    3. 各サンプルチューブに再懸濁緩衝液の2.5μlを添加します。連結混合物の2.5μLを加えます。ライゲーション混合管を使用した後、直ちに-20°Cストレージにを返します。各サンプルチューブに解凍したRNAアダプタ指数の2.5μlを添加します。静かに完全に混合するには、上下10倍のボリューム全体をピペット。
    4. 6.0×gで一定速度ミニ卓上遠心分離機を用いて、4秒間遠心管。予熱したサーマルサイクラーにチューブを入れます。蓋を閉め、30℃で10分間インキュベートします。
    5. サーマルサイクラーからチューブを外し、連結を不活性化するために各チューブにストップ連結緩衝液の5μlを添加します。静かに完全に混合するには、上下10倍のボリューム全体をピペット。
    6. 混合常磁性ビーズの42μLを使用して、79.5μlの上清を捨て、2.2.4 - 2.2.3に記載されているように繰り返し洗浄。 10分 - 磁気スタンドにチューブでは、5室温でサンプルを空気乾燥してみましょう。
    7. からPCRストリップチューブを削除します磁気スタンドと各チューブに52.5μlの再懸濁緩衝液を追加します。静かに完全に混合するには、上下10倍のボリューム全体をピペット。 2分間室温で管をインキュベートします。 5分間、または液体が透明になるまで室温で磁気スタンドにチューブを入れます。新しい0.2ミリリットルのPCRストリップチューブに各チューブから50μlの上清を移します。ビーズを乱さないように注意してください。
    8. 混合常磁性ビーズを50μlを使用し、95μlの上清を捨て、2.2.4 - 2.2.3に記載されているように繰り返し洗浄。 10分 - 磁気スタンドにチューブを使用すると、5 RTでサンプルは空気乾燥してみましょう。
    9. 磁気スタンドからPCRストリップチューブを取り外し、各チューブに22.5μlの再懸濁緩衝液を追加します。静かに完全に混合するには、上下10倍のボリューム全体をピペット。
    10. 2分間室温でチューブをインキュベートします。 5分間、または液体が透明になるまで室温で磁気スタンドにチューブを入れます。に各チューブから20μlの上清を移し新しい0.2ミリリットルのPCRストリップチューブ。ビーズを乱さないように注意してください。これは、安全な停止点であり、cDNAは7日間まで-20℃で保存することができます。

4.ライブラリーの増幅

  1. DNA断片を豊かに
    1. 室温-20℃の保存と融解からのPCRマスターミックス、PCRプライマーのカクテルと再懸濁緩衝液を除去します。 4°Cストレージから常磁性ビーズのボトルを取り外し、室温にもたらすために少なくとも30分間放置しました。
    2. 次の設定でプリプログラムサーマルサイクラー：プレヒートリッドオプションを選択して、100℃に設定し、その後10秒間、30秒間、98℃で、98℃での変性の15サイクルを初期変性を設定し、アニーリング30秒、5分間72℃で1最終伸長サイクルおよび72℃で30秒間、および伸長のために60℃で、4℃で保持します。このプログラムを保存し、「PCR」。
    3. 解凍したPCRマスターを遠心5秒間600×gでチューブを混合し、PCRプライマー。各サンプルチューブに解凍したPCRプライマーの5μlを添加します。各サンプルチューブに解凍したPCRマスターミックス25μlのを追加します。静かに完全に混合するには、上下10倍のボリューム全体をピペット。
    4. 事前にプログラムされたサーマルサイクラーでキャップされたPCRストリップチューブを置きます。蓋を閉じて、PCRプログラムを実行します。 PCRが完了すると、サーマルサイクラーからチューブを除去し、氷上に保ちます。
    5. 混合常磁性ビーズを50μlを使用し、95μlの上清を捨て、2.2.4 - 2.2.3に記載されているように繰り返し洗浄。 10分 - 磁気スタンドにチューブでは、5室温でサンプルを空気乾燥してみましょう。
    6. 磁気スタンドからチューブを外し、各サンプルチューブに32.5μlの再懸濁緩衝液を追加します。静かに完全に混合するには、上下10倍のボリューム全体をピペット。 2分間室温でインキュベートします。 5分間、または液体が透明になるまで室温で磁気スタンドにPCRチューブを置きます。その後、30μlのsuコマンドを転送新鮮0.2ミリリットルのPCRチューブにpernatant。
    7. 蛍光光度計7を用いてcDNAの定量化を行い、キャピラリー電気泳動システム8を用いてcDNAの品質を決定します。
      注：これは、安全な停止点であり、cDNAを7日間まで-20℃で保存することができます。注：このライブラリはRNAseqライブラリーであると考えられます。
      その後の工程は、キャプチャー・ライブラリーにつながります。

5.ハイブリダイゼーション、キャプチャおよびシーケンシング

  1. 多重化されたハイブリダイゼーション
    1. -20°Cからカスタム水和プローブ、簡易ベッド-1 DNA、ユニバーサルブロッキングオリゴ、およびアダプター固有のブロッキングオリゴを削除し、氷上で解凍。
    2. 低バインド1.5mlチューブでは、500 ngのDNA結合（サンプルあたり125 ngのを多重する場合4サンプル）、5μlの簡易ベッド-1 DNA（1μgの/μl）を、1ULユニバーサルブロッキングオリゴ、0.5μlのP7（6ヌクレオチド）特定のアダプタブロッキングオリゴ（この量は、多重conditiに応じて調整する必要があるかもしれませんオリゴを遮断するアドオン）と0.5μlのP7（8ヌクレオチド）アダプタ固有の（この量は、マルチプレックスの条件に応じて調整する必要があるかもしれません）。
    3. 回転の反対方向を向いたキャップオープンで真空濃縮器でサンプルチューブを置きます。 20分間または液体の完全蒸発するまで45℃で乾燥した内容。
    4. 8.5μlの2×ハイブリダイゼーション緩衝液、3.4μlのハイブリダイゼーション成分Aと1.1μlのヌクレアーゼを含まない水で乾燥したコンテンツを再懸濁します。再懸濁し、ボルテックス毎に2.5分間、10分を許可します。 0.2ミリリットルのPCRチューブに再懸濁させ、材料を移し、サーマルサイクラーで95℃で10分間インキュベートします。
    5. サーマルサイクラーからハイブリダイゼーションサンプルチューブを外し、1.5ピコモル/μlの濃度で再懸濁したカスタムプローブの2μlを添加します。また、0.75ピコモル/μlの濃度で再懸濁したカスタムプローブの4μlを添加します。 65°Cで - （24時間16）で一晩ハイブリダイゼーション反応をインキュベートします。
      注：プローブさまざまなベンダーから購入したのを使用してもよいし、メーカーの指示に従ってください。ハイブリダイゼーション工程の時間も変えることができます。
  2. ビーズの調製とキャプチャ
    1. 4°Cからストレプトアビジン結合常磁性ビーズのボトルを取り外し、室温で30分間平衡化。 1倍ワーキングソリューションを作成するために、10倍の洗浄緩衝液（I、II、III、および厳格な）と2.5倍ビーズ洗浄緩衝液を希釈します。
    2. 新しい1.5 mlチューブにに小分けし、1×洗浄バッファー140μlの私は。私は、少なくとも2時間、ヒートブロックで65℃で1×洗浄緩衝液の1×厳しいバッファと分量の全量を加熱します。
    3. 1.5mlチューブに小分けし、キャプチャあたりストレプトアビジン結合常磁性ビーズを100μl。磁石上に置き、上清を捨てます。 10秒間100μlのビーズとボルテックスあたり200μlのビーズ洗浄バッファーを追加します。 5分または上清が透明になるまで - 2用の磁石上に置きます。上清が透明になったら、それを破棄して再2回の洗浄の合計のためにもう一度泥炭。
    4. ビーズ洗浄バッファーを除去した後、最初の出発ボリュームとして等量のビーズ洗浄バッファーを追加する（ すなわち 、1つの捕捉のための100μl）を。再懸濁し、0.2ミリリットルのPCRチューブに移します。 5分または上清が透明になるまで - 2のための磁気ラックにチューブを置きます。上清を捨てます。
    5. 65℃のサーマルサイクラーでのハイブリダイゼーションサンプルとビーズの両方で、混合するために上下10倍のビーズチューブやピペットにハイブリダイゼーション混合物を転送します。 、45分間65℃でインキュベートし、ボルテックスし、一定速度（6.0 XG）卓上ミニ遠心機を用いて、4秒間のサンプルをスピンダウン。
  3. ビーズウォッシュ
    1. サーマルサイクラーからキャプチャチューブを外し、混合する10秒間のチューブとボルテックスに100μlの予熱した1×洗浄バッファーIを追加します。新鮮な低バインド1.5mlチューブに混合物を転送します。磁気分離ラックにチューブを置き、2許可 - 分離のためまたは上清が透明になるまで5分。 Discard上清。
    2. 200μlの予熱1×リンジェント洗浄バッファーを添加し、混合するためにダウンして10回をピペットと。 5分間65℃でインキュベートします。磁気分離ラックにチューブを置き、2許可 - 分離のためまたは上清が透明になるまで3分。上清を捨てます。 2回の洗浄の合計のためにもう一度ストリンジェントな洗浄を繰り返します。
    3. 200μlの室温の1倍を追加混合する2分間Iと渦を洗浄緩衝液。磁気分離ラックにチューブを置き、2可能 - 分離のためまたは上清が透明になるまで5分。上清を捨てます。
    4. 200μlの室温の1倍を追加混合する1分間のバッファIIと渦を洗います。磁気分離ラックにチューブを置き、2可能 - 分離のためまたは上清が透明になるまで5分。上清を捨てます。
    5. 200μlの室温の1倍を追加混合する30秒間バッファIIIと渦を洗います。分離のためまたは上清まで5分 - 2を可能にする磁気分離ラックにチューブを置きます明らかです。上清を捨てます。
    6. 磁気分離ラックからチューブを外し、ビーズを再懸濁し、20μlのヌクレアーゼフリー水を追加します。ピペッティングにより、10回上下徹底的に混ぜます。
  4. ポストキャプチャPCR増幅
    1. 4°Cから常磁性ビーズを除去し、室温で30分間平衡化。
    2. RTで-20℃と融解からのホットスタートPCRレディ・ミックス（2×）およびPCRプライマーミックスを削除した後、氷上に置きます。 （これらのボリュームが1、ハイブリダイゼーションライブラリー+ 10％過剰のためのものである）PCRプライマー1の2.75μlのとPCRプライマー2の2.75μlの2倍ホットスタートPCRレディ・ミックスの27.5μLを組み合わせることにより、ライブラリー増幅マスターミックスを準備します。
    3. セットアップ20ビーズのμlを加えて全量50μlのためのライブラリーの増幅マスターミックス30μlので捕捉されたDNAを添加することにより、PCRチューブでの反応。キャップチューブを適切と混合する渦。固定速度ミニタブを使用して、4秒間遠心管6.0×gでルトップ遠心分離機。
      1. 以下のPCRプログラムをセットアップします： - 65で15秒、アニーリング98℃での変性の12サイクルプレヒートリッドオプションを選択して、100℃に設定してから、45秒、10のために98℃での初期変性を設定60秒間72℃で30秒、延長、1回の最終伸長60秒間72℃でのサイクルと4℃で保持するための°C。
    4. サーモサイクラーからサンプルを削除し、75μlの常磁性ビーズを追加します。よく混合し、室温で15分間インキュベートします。
    5. 2室温で磁石にチューブを入れる - 3分、その後、上清を除去します。その後、上清を除去する30秒間インキュベートし、200μlの80％エタノールを添加することにより、磁石にビーズを洗浄します。 2 80％の洗浄の合計のために繰り返します。
    6. ビーズを乾燥させるために10分 - 5 RTでインキュベートします。割れに乾燥しないで下さい。トリスEDTA pHが8.0（1×TE溶液）22μlの再懸濁ビーズおよび溶出のために3分を可能にします。 5分目 - 3用磁石上にサンプルを置きます転送全くビーズを確保していない新鮮な低バインド1.5mlチューブに溶出した製品を20μl、エン引き継がれます。
    7. 蛍光光度計7を用いて捕捉するcDNAの定量化を行い、キャピラリー電気泳動システム8を使用してキャプチャするcDNAの品質を決定します。
  5. デスクトップシーケンサは手順9のロード
    1. 氷上で、0.1％のTween 20を解凍10 N NaOHおよびハイブリダイゼーション緩衝液10mMのトリス-Cl pHが8.5を用いて、4 nMの最終濃度まで取り込まれたcDNAライブラリーを希釈します。使用前に約30分間、RTの水にデスクトップシーケンサv2の試薬キットボックス1を解凍。 MAXの充填ライン10の上方に記入しないでください。これはシーケンシングプラットフォーム固有の手順で、製造元の指示によって異なる場合がありますのでご注意ください。
    2. マイクロ遠心チューブ（常に新鮮な準備）に980μlのヌクレアーゼを含まない水で20μlの10NのNaOHを組み合わせることにより、0.2 N NaOHを1ミリリットルを準備します。 4 nmのことでPHIXライブラリ（ライブラリ制御）を希釈0.1％Tween 20で3μlの10mMのトリス-Cl pHが8.5と10 nMのライブラリ制御の2μLを組み合わせます。
    3. 混合するために簡単に5 0.2 N NaOHをμlの渦に4nmのライブラリーの5μLを組み合わせることにより、最終的なライブラリとライブラリ制御を変性させます。 6.0×gで一定速度ミニテーブルトップ遠心機を用いて4秒間遠心管。 5分のライブラリーを変性させ、室温でインキュベートします。
    4. 変性ライブラリの10μLを含むチューブに予冷したハイブリダイゼーション緩衝液990μLを加えます。これは、20 pMのライブラリになります。マーク日付で変性20 pMのライブラリとは、-20℃で3週間まで保存することができます。
    5. 12.5 pMのライブラリ制御をもたらすように予冷したハイブリダイゼーション緩衝液および希釈されたライブラリ制御の225μlの20 pMのライブラリ制御の375μLを混ぜます。溶液を混合するために数回転倒。
    6. 12.5 pMの変性ライブラリ制御と混合する渦の6μlの変性の最終ライブラリーの594μLを兼ね備えています。組み合わせSAMPを設定脇氷の上ルライブラリとライブラリ制御サンプルは、デスクトップシーケンサ試薬カートリッジにロードする準備が整うまで。

6.データ解析

  1. シーケンス品質評価
    1. シーケンスの品質評価11を使用して、生の配列データ（FASTQファイル）の品質を計算します。
      注：この手順は、それがさらに下流の分析に供される前にデータを評価するのに役立ちます。ソフトウェアは、内蔵のパラメータを指定して実行され、各FASTQファイルのメトリックのセットを生成します。
  2. アラインメント
    1. シーケンスがGTFファイルとして既知の転写産物を提供しながら、Tophat2 12（バージョン2.0.10）を使用して参照ヒトゲノムのhg19とトランスクリプトームに（FASTQファイル）を読み込む合わせます。出力は、BAMファイルと呼ばれるバイナリアライメント形式の形態です。
    2. Samtools 13（バージョン0.1.19を使用して、並べ替えやインデックスなどの後処理手順を実行します）BAMファイルに。 SAMを並べ替え、マーキング複製を実行し、サイズの計算とピカールツール14（バージョン1.84）を用いた再生グループを追加または交換を挿入します。
  3. RNAseq品質評価
    1. RNAseq品質評価を使用してRNAseqデータの品質管理指標のシリーズを計算します。このソフトウェアへの入力はTophat2配向からBAMファイル15です。出力は合計読取り回数、重複を一覧表示したHTMLファイルで、とりわけ、 などの読み取り率とのrRNAの割合を、マッピングされました。
  4. バリアントコーリング
    1. 位置合わせのためにSTAR（バージョン2.4.0）16を使用し、単一のヌクレオチド呼び出すバリアントフラグにGATKの（バージョン3.3から0）HaplotypeCaller 17 .Follow GATK BAM後処理工程およびフィルタリング基準を使用して、出力から偽陽性を削除します。
  5. 遺伝子発現
    1. 遺伝子発現USIを計算しますタキシード・スイート18からngのカフスソフトウェア（バージョン2.1.1）。
      注：入力がTophat2アライメントツールからBAMファイルです。出力は式がFPKMのように計算されたアイソフォーム、遺伝子や転写物のレベル、（百万あたりのキロベースあたりの断片はマップされた読み込み）で生成されます。
  6. フュージョンコーリング
    1. ChimeraScan 19（バージョン0.4.5）、トップハットフュージョン20カスタムおよびTRUP 21を用いて、各試料からの融合を呼び出します。 Oncofuse 22（バージョン1.0.9b2）を使用して、ドメインの融合に注釈を付けます。

結果

RNAseqキャプチャの模式的ハイライトの重要なステップは、図1に示されている。既知の変異を有する四癌細胞株がRNAseqキャプチャ手法の有効性を実証するために使用された（K562 ABL1融合 、RET融合とLC2と、EOL1 PDGFRalpha融合およびRT-でFGFR3融合 4）。 4つのサンプルを一緒にプールし、100 bpのはFASTQファイルを生成し、デスクトップ・...

ディスカッション

RNAseq CaptureはRNAseqとマイクロアレイとの間の中間の戦略は、トランスクリプトームの選択した部分を評価するためのアプローチです。キャプチャの利点は、デスクトップ・シーケンサー、高スループット、およびゲノム変化の検出にコスト削減、迅速なターンアラウンドタイムを含みます。この方法は、RNAスプライシングを調べ、単一ヌクレオチド変異体を4-6を検出し 、遺?...

開示事項

S.R. receives funding from Novartis and Ariad Pharmaceuticals for conduct of clinical trials. S.R. immediate family members own stock in Johnson and Johnson.

謝辞

We give special thanks to Ezra Lyon, Eliot Zhu, Michele Wing, Esko Kautto and Eric Samorodnitsky for technical support. We would also like to thank Jenny Badillo for her administrative support for our team. We acknowledge the Ohio Supercomputer Center (OSC) for providing disk space, processing capacity, and support to run our analyses. We thank the Comprehensive Cancer Center (CCC) at The Ohio State University Wexner Medical Center for their administrative support of this work. S.R. and Team are supported by the American Cancer Society (MRSG-12-194-01-TBG), a Prostate Cancer Foundation Young Investigator Award, NHGRI (UM1HG006508-01A1), Fore Cancer Research Foundation, American Lung Association, and Pelotonia.

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Thermomixer REppendorf21516-166
Centrifuge 5417REppendorf5417R
miRNeasy Mini KitQiagen217004
Molecular Biology Grade EthanolSigma AldrichE7023-6X500ML
Thermoblock 24 x 1.5 mlEppendorf21516-166
MiSeq Reagent Kit v2 (300-cycles)IlluminaMS-102-2002
MiSeq Desktop SequencerIllumina
PhiX Control v3IlluminaFC-110-3001
TruSeq Stranded Total RNA Kit with RiboZero Gold SetAIlluminaRS-122-2301
25 rxn xGen® Universal Blocking Oligo - TS-p5IDT127040822
25 rxn xGen® Universal Blocking Oligo - TS-p7(6nt)IDT127040823
25 rxn xGen® Universal Blocking Oligo - TS-p7(8nt)IDT127040824
Agencourt® AMPure® XP - PCR Purification beads Beckman-CoulterA63880
Dynabeads® M-270 StreptavidinLife Technologies65305
COT Human DNA, Fluorometric Grade, 1 mgRoche Applied Science05480647001
Qubit® Assay Tubes Life TechnologiesQ32856
Qubit® dsDNA HS Assay KitLife TechnologiesQ32851
SeqCap® EZ Hybridization and Wash Kits  (24 or 96 reactions)Roche NimbleGen 05634261001 or 05634253001 
Qubit® 2.0 Fluorometer Life TechnologiesQ32866
10 x 2 ml IDTE pH 8.0 (1x TE Solution)IDT
Tween20 BioXtraSigmaP7949-500ML
Nuclease Free WaterLife TechnologiesAM9937
C1000 Touch™ Thermal Cycler with 96–Well Fast Rection ModuleBiorad185-1196
SeqCap EZ Hybridization and Wash KitsRoche Applied Science05634253001
SuperScript II Reverse Transcription 200 U/μlLife Technologies18064-014
D1000 ScreenTapeAgilent Technol. Inc.5067-5582
Agencourt RNAClean XP - 40 mlBeckman Coulter IncA63987
RNA ScreenTapeAgilent Technol. Inc.5067-5576
RNA ScreenTape LadderAgilent Technol. Inc.5067-5578
RNA ScreenTape Sample BufferAgilent Technol. Inc.5067-5577
Sodium HydroxideSigma72068-100ML
DynaBeads MyOne Streptavidin T1Life Technologies65602
DYNAMAG -96 SIDE EACHLife Technologies12331D
ChloroformSigmaC2432-1L
KAPA HotStart ReadyMixKAPA BiosystemsKK2602
NanoDrop 2000 SpectrophotometerThermo Scientific
My Block Mini Dry BathBenchmarkBSH200
D1000 ReagentsAgilent Technol. Inc.5067- 5583
Vacufuge PlusEppendorf022829861 

参考文献

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114 RNA RNAseq

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