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  • 参考文献
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要約

Rotifers are microscopic zooplankton used as models in ecotoxicological and aging studies. Here we provide a protocol for powerful and reproducible measurement of survival time in Brachionus rotifers. Synchronization of culture conditions over several generations is of particular importance because maternal condition affects life history of offspring.

要約

Rotifers are microscopic cosmopolitan zooplankton used as models in ecotoxicological and aging studies due to their several advantages such as short lifespan, ease of culture, and parthenogenesis that enables clonal culture. However, caution is required when measuring their survival time as it is affected by maternal age and maternal feeding conditions. Here we provide a protocol for powerful and reproducible measurement of the survival time in Brachionus rotifers following a careful synchronization of culture conditions over several generations. Empirically, poor synchronization results in early mortality and a gradual decrease in survival rate, thus resulting in weak statistical power. Indeed, under such conditions, calorie restriction (CR) failed to significantly extend the lifespan of B. plicatilis although CR-induced longevity has been demonstrated with well-synchronized rotifer samples in past and present studies. This protocol is probably useful for other invertebrate models, including the fruitfly Drosophila melanogaster and the nematode Caenorhabditis elegans, because maternal age effects have also been reported in these species.

概要

ワムシは門ワムシ1を構成する微細な国際的な動物プランクトン(<1ミリメートル)です。彼らは、約1,000体細胞から成るシンプルなボディープランだけでなく、特徴的な車輪状の毛様体装置が移動し、給餌のために使用されているコロナと呼ばれています。ほとんどのワムシはそれぞれ2、約1600と500種を含むクラスMonogonontaまたはヒルガタワムシ綱に属します。 bdelloidワムシが義務付け単為生殖3によって再生するMonogonontワムシは、一般的に、両方の性的および無性生殖相(循環的単為生殖を)持っています。実験において高い再現性を保証する、遺伝的に同一のワムシの個体を得ることができます。さらに、それらは、短い寿命、培養の容易さ、ゲノム及びトランスクリプトーム配列データ4-7の可用性、およびから離れユニークな系統発生位置などのモデル生物のようないくつかの他の利点を有しますrthropodsと線虫8。ワムシは、したがって、生態系における無脊椎動物のモデルを有望な毒物学、および研究9-12を老化されています。

環境ストレスや化学物質への曝露下での生存時間は、これらの研究分野13-19で頻繁に測定されたパラメータです。ワムシの生存時間を測定する場合、それは母親の環境条件に敏感であるためしかし、注意が必要です。すなわち、monogonontワムシBrachionus manjavacas高齢者の母親からの女性の子孫は、若い母親からのものよりも短い寿命を持っています。しかし、母体のカロリー制限(CR)は、部分的に高齢出産20の有害な影響を相殺します。 B.plicatilis、母体のCRは、子孫の長寿、飢餓の下で長い生存期間、および抗酸化酵素21,22の発現増強に伴う高い酸化ストレス耐性を提供します。母体の年齢効果またbdelloidワムシ23で観察されています。したがって、実験ワムシの条件は慎重に生存時間の測定の前に数世代にわたって同期する必要があります。

ここでは、数世代にわたって培養条件の同期以下のBrachionusのワムシでの生存時間を測定するためのプロトコルを提供します。間欠絶食(IF)、ワムシは、定期的に供給されるCRの変化は、原因寿命22,24にIFのよく知られた効果のために、同期の影響を明らかにするために適用しました。

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プロトコル

メディアの調製

注意:使用して、塩分16.5 PPT(PSU)の半希釈Brujewicz人工海水を。他の人工海水にも頻繁に文化Brachionusのワムシ25,26に使用されています。

  1. 454のNaCl、26のMgCl 2、27mMのMgSO 4を、10のKCl、および10mMのCaCl 2(最終容量は5 Lになります)の蒸留水4.5 Lに追加します。また、脱イオン希釈水の代わりに蒸留水を使用しています。すべての他の塩を溶解させた後のCaCl 2を追加ます。
  2. 0.48 MのNaHCO 3ストック溶液(200倍濃度)を準備します。上記の溶液に25mlのを追加します。 NaHCO 3を最終濃度が2.4 mmです。
  3. 0.4 MのNaBr原液(500X濃度)を準備します。上記の溶液に10mlのを追加します。 NaBrの最終濃度は0.8 mmです。蒸留水で5 Lにメイクアップ。
  4. 0.45μmのメンブレンフィルターで溶液をフィルタリングします。(v / v)を使用前に滅菌水で2回希釈します。
    注:原液としてBrujewicz人工海水の2倍の濃度とすることができます。

2.一般的な培養条件

  1. 培養実験室で上昇または20と30℃の間の滅菌100ミリリットルのビーカー内の野生捕獲さワムシ。温度が高いほど短い寿命と加速再生につながります。実験の便宜のために25°Cを使用してください。ワムシ密度または人工海水の量は、ここで大きな問題ではありません。
  2. 人工海水11中の文化食物微細藻類種。詳細は11のためにスネルら。(2014)を参照してください。一般的に、Tetraselmisのtetrathele(〜2×10 5細胞/ mlの27,28)、T使用ダイエット藻類(種、培養コンディットので、suecica(〜6×10 5細胞/ mlの25,29)、およびNannochloropsisのoculata(〜7×10 6細胞/ mlの30,31)。イオン、生化学的組成物)は大幅にすべての実験群では、微細藻類の同一ロットを使用し、Brachionusのワムシの生存期間に影響を与えます。
  3. 供給し、( 例えば 、2日毎に供給し、毎週接種)時折メディアを変更することにより、バッチ培養におけるワムシの株式集団をキープ。ワムシは、最適な条件である場合、多くの新生児2-3卵を有する成人を観察することができます。
    注意:実験的なワムシを取得する別の方法は、安静時の卵を孵化することです。休んで卵から孵化しワムシはよく同期させることが考えられ、その寿 ​​命は倍数性単為生殖の卵11から孵化ワムシのそれとは大きく異なっていないされています。しかし、安静時の卵からのワムシは倍数性単為生殖の卵からのものよりも早く再生を開始します。このように、注意が彼らの繁殖形質の測定のために必要とされます。

前培養によるワムシの3同期

  1. 目から単一のワムシを選択実験に使用される亜集団を確立するために、2.1〜2.3で説明したように、人口培養OCK。典型的には、2週間の培養。
  2. (実験に使用される個人の二重数を収集する)サブ集団から卵ベアリングワムシを集めます。単一のコホートとしての文化、それらを(密度:〜50人/ ml)を不断給餌下で新鮮な培地に2.1から2.3に記載されているように6ウェル培養プレートインチ馴化培地はBrachionusのワムシ32,33の生殖生理学に影響を与えるため、人口密度を制御することが重要です。
  3. 新たに用意した培養培地に大人の最初の卵から孵化した新生児を転送します。 2-3世代を超えて、この手順を繰り返します。
  4. 生存時間を測定するための一定期間( 例えば 、<3 ​​時間)以内に孵化した新生児を使用してください。単一の個人の選択の可能性バイアスを避けるために、非常にありそうにないものの、いくつかのINDEを使用して再現性を確認しますペンダントのサブ集団。
    注:ワムシは、通常、この条件の下でのみ無性再現するように、何人の男性が、実験を通して存在しないことを確認します。男性は新生児よりも小さく、一般的に速い女性より移動します。 Mictic女性が一定の条件の29の下で倍数性単為生殖の雌は異なる寿命を持っています。

生存期間の4測定

  1. プラスチックプレートに入れ新生児(人工海水の各ウェルを含む1ミリリットルで、通常、24または48ウェルプレート、)。
  2. 24時間の間隔で、より高い温度(上記30℃以上)であれば、新たに調製した培養培地に、または12時間の間隔でワムシを転送します。子孫の数を記録し、各個人が死んでいるか生きているかどうか。コロナの繊毛の動きが完全に停止したときに死んだとしてワムシを記録します。
    注:ワムシは、多くの場合、ウェルの側壁に付着します。水の穏やかなピペッティングは、それらを見つけるのに役立ちます。ワムシが見つかり又はArされていない場合電子誤ってピペット操作によって損傷を受け、ない「死んだ」として、「検閲」としてそれらを記録。
  3. 実験ワムシが積極的に再現しているときに新生児を削除します。新生児は急速に成長し、実験ワムシと区別することが困難な場合があります。

5.データ解析

  1. X軸上のY軸と時間の累積生存率をプロットしたカプラン・マイヤー生存曲線( 図1及び2)を作成します 。これは、生存データの最も一般的な表現です。生存期間34の統計的比較のために(もマンテル-コックスのテストと呼ばれる)ノンパラメトリックログランク検定を使用してください。ログランク検定はまた、JMPおよびR.などの他の標準的な統計パッケージに含まれています
    注意:正規分布は、通常、生存データ35によって満たされていないため、スチューデントのt検定またはパラメトリック多重比較に続いて分散分析(ANOVA)を使用しないでください。また、これらのメトDSのアカウントに検閲個人を取ることはありません。何打ち切りデータが存在しない場合はマンホイットニーU検定を使用することができます。

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結果


図1は不十分同期集団(2つの複製のうち)の代表的な生存曲線を示しています。この実験では、ワムシは、供給された日常の[ 自由摂取 (AL)グループ]または隔日(グループIF)のいずれかでした。生存期間中央値はそれぞれ、ALおよびIFグループで13と18日でした。よくIFは、ワムシの寿命を延長することが知られているが、この実験では、ALと...

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ディスカッション

現在のプロトコルはBrachionusのワムシの生存時間を測定するための方法が記載されています。重要なステップは、数世代にわたるワムシ条件の同期です。実験ワムシはよく同期化されるとき、典型的なタイプIの生存曲線は、いくつかの以前の研究18,24,37,38で報告されたように、非常に小さな初期の死亡率が観察されます。彼らの生存時間の標準偏差が高いため、統計的パワーで?...

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開示事項

The authors have nothing to disclose.

謝辞

私たちは、撮影中の彼らの助けのために、ジョージ・ジャービス、マーサボック、およびベティヒーコックス-リー、海洋生物学研究所に感謝しています。

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資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Sodium chlorideWako190-13921
Magnesium chlorideWako136-03995
Magnesium sulfateWako131-00427
Potassium chlorideWako168-22111
Calcium chlorideWako035-00455
Sodium bicarbonateWako199-05985
Sodium bromideWako190-01515
Membrane filter (0.45 µm pore size)MilliporeHAWP04700
Culture plate, 6-well, non-treatedThomas Scientific6902D01Flat bottom
Culture plate, 48-well, non-treatedThomas Scientific6902D07Flat bottom
Tetraselmis, LivingCarolina Biological Supply Company152610
PRISM 6GraphPad SoftwareVersion 6.0d

参考文献

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