著者
お問い合わせ

サインイン

このコンテンツを視聴するには、JoVE 購読が必要です。 サインイン又は無料トライアルを申し込む。

この記事について

  • 要約
  • 要約
  • 概要
  • プロトコル
  • 結果
  • ディスカッション
  • 開示事項
  • 謝辞
  • 資料
  • 参考文献
  • 転載および許可

要約

ここでは、長尺の静電反発力 - 親水性相互作用クロマトグラフィー - タンデム質量分析（LERLIC-MS / MS）方法のステップバイステップのプロトコルを提示します。これは、ショットガンプロテオミクスによってグルタミンとアスパラギン脱アミド化アイソフォームを初めて定量および特徴付けのために有効に小説の方法論です。

要約

タンパク質脱アミド化の特性は、人間の病理および他の生化学的文脈におけるこのタンパク質の翻訳後の改変（PTM）の役割（複数可）と潜在的可能性を解読することが不可欠です。タンパク質の脱アミド化の特徴付けを行うために、我々は最近、グルタミン（Glnで）およびアスパラギン（ASN）アイソフォームを分離することができる新規な長尺静電反発力、親水性相互作用クロマトグラフィー - タンデム質量分析法（LERLIC-MS / MS）法を開発しました高度に複雑な生物学的サンプルにモデル化合物から脱アミドの製品。 LERLIC-MS / MSは、従って、Glnの脱アミド化アイソフォームの分離および定量のための最初のショットガンプロテオミクス戦略です。我々はまた、ここで概説試料処理プロトコルはLERLIC-MS / MSによって、その特徴付けを可能スクシンイミド中間体を安定化すること、ノベルティとして、実証します。この動画の記事に示されているようLERLIC-MS / MSの応用は、現在unknowを解明するのに役立つことができますタンパク質の脱アミドのN分子アレイ。また、LERLIC-MS / MSは、異なる生物学的背景に脱アミド化を包含する酵素反応のさらなる理解を提供します。

概要

脱アミド化は、タンパク質の翻訳後修飾アスパラギン（ASN）および/またはグルタミン（Glnの）残基1の変形を介してタンパク質主鎖に負電荷を導入する（PTM）です。 2：1の比率のAsn残基に影響を与える一方、この変形は、一般的な3で異性体生成物イソアスパラギン酸（isoAsp）およびN -アスパラギン酸（ASP）を生成します。それにもかかわらず、この比率は、修復酵素のL-イソアスパルチルメチルトランスフェラーゼ（PIMT）3、4の介入によって改変することができます。同様のGln残基の脱アミド化が期待1に異性体-γ-グルタミン酸（γ-Gluで）およびα-グルタミン酸アイソフォーム（α-Gluの）を生成する：7比3、 図5に示すように、この比は、の作用によってシフトさせることができますユビキタス酵素トランスグルタミナーゼ2及び他のトランスグルタミナーゼを含むトランスグルタミナーゼ1、E脳6の細胞外小胞に関連付けられているようnzyme最近同定されました。

脱アミド化の起点が自発的または酵素的のいずれかであることができ、前者は、トランスグルタミナーゼたのGln残基で特に一般的であり、他の酵素は、アミド交換を介して、内/分子間架橋を媒介する（いくつかの慢性中のGlnアミド交換とその影響について詳細については3を参照致命的なヒト疾患）。したがって、脱アミド化は影響を受け分子4、7、8の構造および機能に重大な波及を有し、9老化の分子時計としてのサービスなど、多様な生化学的結果に照らして、深い化学的特性3を必要とPTMであります。

アスパラギン残基の脱アミド化はされているが比較的ボトムアップショットガンプロテオミクスによって十分に特徴付け1、10、のGln残基の脱アミド化は、依然として電子系ラジカルフラグメンテーション11によってモデル化合物の困難な分析を越えて適切な特徴付け方法を持ちません。我々は最近、1回の分析で複雑な生物学的サンプルとモデル化合物からのGlnおよびAsn脱アミド化アイソフォームの分離を可能にする新規な一次元ショットガンプロテオミクス戦略（LERLIC-MS / MS）3を開発しました。 LERLIC-MS / MSは、長尺（50センチメートル）静電反発 - 親水性相互作用クロマトグラフィー（ERLIC）モードで作業イオン交換カラム（LAX）を用いてトリプシン消化ペプチドの分離に基づいており、タンデム質量分析に連結されています（LC- MS / MS）。この新しい分析戦略を特徴づけると、比較的人間の脳組織内の各脱アミド残基の度合いを定量するために使用されてきましたF "> 3。それにもかかわらず、ここで説明したプロトコルは、関心の生化学的文脈においてタンパク質脱アミド化の特殊性を研究することを目的としたLERLIC-MS / MSのビデオ画像を提供します。

倫理STATEMENT

このプロトコルのすべての手順は、シンガポールのナンヤン工科大学の施設内倫理委員会によって承認されていると制度のガイドラインに基づいて行われてきました。

プロトコル

ロング丈陰イオン交換（LAX）キャピラリカラムをパッキング1

（注：LAX列は家庭内、我々はこのプロトコルで説明したように充填し、LAX列も市販されていることができるが、詳細については材料および試薬の表を参照のこと）。

  1. スラリーを調製するために緩衝液 （ 表1） パッキングの3.5 mLの弱い陰イオン交換充填物質50mgを停止します。
  2. メス - メス金具、フェルールと雌ナットを使用して、 - キャピラリーカラム（200μmの内径（ID）チュービング長さ50cm）の端部を組み立てます。メス - メス継手内部の1ミクロンの細孔サイズの画面1/16" ODを置きます（注：ここで使用し、画面からの材料の漏れを防止するために梱包材の粒子径よりも小さな細孔径を持っている必要がありますカラム）。
  3. 4,500 psiで作動圧ポンプを用いてスラリーを毛細管を詰めます。 （注意：coluを梱包MN充填材がカラムのエントリに表示されるまで）。
  4. 点1.2に記載されているように、キャピラリカラムのもう一方の端を組み立てます。

2.試料の調製

このプロトコルは、モデルプロテオームとしてヒト脳組織を分析するためにLERLIC-MS / MSのアプリケーションの概要を示します。 （注：他の組織又はプロテオミクスサンプルを使用する場合には、サンプル調製手順を適合させるべきです。）

  1. 組織均質化：
    A。三回5分間、1×リン酸緩衝溶液で洗浄脳組織（50から100mg）。
    B。 1：1の組織をホモジナイズ2.5組織/金属ビーズ/ SDC均質化緩衝液 （ 表2）の比（W / w / v）の組織ホモジナイザーを使用して、最大強度で安全ロック管中、4℃で5分間。 （注：以前3に示すようにSDC均質化緩衝液は、プロテアーゼ阻害剤を含んでいてもよいです）
    C。あちこち得られ、組織ホモジネートを遠心10,000×gで、10分間、4℃で、前のステップを、mおよび新しい1.5mlチューブに上清を集めます。
    D。残りのペレットのためのBCの手順を繰り返し、何のペレットが観察されなくなるまで、必要に応じて何度でも上清を兼ね備えています。 （注意：あなたが2倍以上のBCの手順を繰り返している場合は、遠心分離工程中にサンプルの損失を防ぐために、新たな安全ロックチューブにサンプルとビーズを移動させます）。
    電子。ビシンコニン酸アッセイ（BCA）12により得られたホモジネートのタンパク質濃度を定量します。
  2. デオキシコール酸ナトリウム（SDC）は、脳ホモジネートの溶液内トリプシン消化13を -assisted。
    A。タンパク質ジスルフィド結合の還元を開始するために得られたホモジネートに（ 表3の溶液5に示されているストック溶液を使用して）、10mMのジチオスレイトール（DTT）の最終濃度を加えます。
    B。浴中で30分の間、ホモジネートをインキュベート60°Cで予備設定。
    C。ホモジネートを、表4の液7に示されているストック溶液を用いて20mMのヨードアセトアミド（IAA）の最終濃度を加えます。
    D。 45分間暗所で室温でIAAを含有ホモジネートをインキュベートします。
    電子。脳ホモジネート希釈緩衝液を用いた2折り目（ 表3の溶液6）を希釈します。
    F。 37℃で30分の間に第2還元工程のためにサンプルをインキュベートします。
    グラム。 （w / w）のタンパク質対酵素比1：50で表2の溶液2中に溶解し、配列決定グレードの修飾トリプシンを加えます。
    時間。 30°Cで一晩インキュベートすることによりトリプシンでホモジネートを消化。
    私。ギ酸（FA）の0.5％の最終濃度を添加することにより、翌日に酵素消化をクエンチします。 （注意：FAの添加は酸性条件下でSDC塩の沈殿の原因となります。）
    J。ゆっくりSDC precipiを含むサンプルをボルテックスtates。
    K。 10分の間、12,000×gでサンプルを遠心分離することにより、SDC塩をダウンペレット4°C。
    リットル。上清を収集し、きれいな新しいチューブに液体を移します。 （注：していない再懸濁および/またはSDCペレットから塩を収集するために、この段階のピペット操作の際に注意してください。）
    メートル。 1分間激しくボルテックス下SDC再溶解バッファー （ 表5）におけるSDCペレットを再溶解させます。
    n個。手順を繰り返し、沈殿したペプチドを回収し、上清を組み合わせることが二回JL。 （注：セラら見るここに適合SDC支援溶液内トリプシン消化プロトコルに関するさらなる詳細については、2016年13。）。
  3. トリプシンの脱塩は、サンプルを消化しました。
    A。 1グラムC-18カートリッジを用いて消化した試料の脱塩を行います。 （注：独立してサンプル中の残りのSDC塩の保証適切な洗浄前に得られたタンパク質の量の大きな体積カートリッジ（5 mL）を使用しLC-MS / MSに注入します。）
    B。アセトニトリル5ml（ACN）と1グラムC-18カートリッジのコンディショニングを行います。
    C。残りの有機溶媒を除去するために条件付け1グラムC-18カートリッジによりクリーンアップバッファ （ 表6）を5mLを渡します。
    D。 1グラムC-18カートリッジにサンプルをロードします。
    電子。 クリーンアップバッファ 5mLの各ステップを使用して、1グラムC-18カラムで試料に5クリーンアップ手順- 3を実行します。
    F。 溶出緩衝液の5mLの（ 表7）を使用して1グラムC-18カートリッジから脱塩したペプチドを溶出させます。
    グラム。真空濃縮で溶出されたペプチドを乾燥させます。
    C。 溶出緩衝液の200μLの最終体積で乾燥サンプルを再構成します。 （注：完全に注入緩衝液中で乾燥したペプチドを再懸濁するために30分の間、超音波処理浴内の後続の超音波処理に続いて使用活発と長い（> 10分）ボルテックスします。）
    D。 ANAにLERLIC-MS / MSのための試料の注入量を調整しますタンパク質の1〜3μgの間lyze。

3.一次元LERLIC-MS / MS分離

  1. 液体クロマトグラフィー条件：
    移動相：
    A：水中の0.1％FA（ 表8）。
    B：0.1％ACNでFA（ 表9）
    流量：0.4μL/分
    コラム：LAXのキャピラリカラム（長さ50cm - 200μmのID）
    A。 - 434分間、85％のB、85から522分間、70％B、70から124分間、35％B 35 - 45分間、3％B 40分95％B、95：次の1200分の勾配を使用し、5分間、3％B、3での定組成 - 7分かけて95％Bおよび23分間、95％Bでの定組成保ちます。
    B。セラ・Gallart-パラオらに示されているようにLAXキャピラリーを用いたペプチドの分離を行います。 3超高圧液体クロマトグラフィーを用いて。
  2. 質量分析計の設定：
    A。 betweを交互にデータ収集を実行するためにスキャンイベントの詳細を設定しますENフルフーリエ変換質量分析（FT-MS）及びフーリエ変換 - タンデム質量分析（FT-MS / MS）を以下のパラメータで：
    A.1。データ取得モード：正
    A.2 FT-MSパラメータ：
    質量範囲：350 - 2000メートル/ Z
    解像度：60,000
    マイクロスキャン：スペクトルあたり1
    自動ゲイン制御：1×10 6
    A.3 FT-MS / MSパラメータ：
    断片化モード：高エネルギー衝突解離（HCD）
    A.4質量範囲：150 - 2000メートル/ Z
    A.5解像度30,000
    10：トップNイオンA.6
    マイクロスキャン：スペクトルあたり1
    状態を充電してください：> 2+
    分離幅：2ダ
    A.7自動ゲイン制御：1×10 6
    B。 1.5キロボルトで働くナノエレクトロスプレーイオン源を備えたオービトラップ質量分析計を用いて3に示されるように、ペプチドの質量分析検出を行います。

4.データ解析

  1. proteを実行しますLERLIC-MS / MSにデータベース検索で特定プロテオミクスソフトウェアを使用して、以下のパラメータを使用してデータを得た：（注：詳細については3を参照）。
    A。イオン許容度：10 ppmの
    B。フラグメントイオンの許容範囲：0.05ダ
    C。偽発見率（FDR）：1％
    D。データベース：UniProtの人間のデータベース
    電子。修正された修正：CysでのCarbamydomethylation
    F。可変修飾（ソフトウェアにより必要な場合）：酸化（MET）、脱アミド化（AsnおよびGlnの）。
  2. 自信特性とLERLIC-MS / MSデータで異性脱アミド産物の定量：
    A。分析のためのspreedsheetソフトウェアにLERLIC-MS / MSからエクスポートしたデータベースの検索結果。
    B。脱アミド化ペプチドおよびその非脱アミド化対応のリスト全体を検索して抽出します。
    C。参照として得られたペプチドのリストを使用して、質量公差の5 ppmのappropiateソフトウェアを使用して、これらのペプチドのイオンクロマトグラム（XICs）を抽出します。 （注意：XICsの抽出に使用されているソフトウェアの更なる詳細については3を参照してください。）
    D。視覚的に示されている3などの異性体生成物の分離された二重ピーク溶出を識別するために、得られたXICsを調べます。 （注：MS / MSレベルで同定されたペプチドの異性体生成物を容易にデータベース検索結果内の2つの異なる保持時間の存在によって導か見出すことができます。）
    電子。各脱アミド化部位/ペプチドからの異性体生成物の相対的定量化は、得られたXICsで識別された各異性体のピーク面積に基づいて行わなければなりません。

結果

GlnおよびAsn残基の脱アミド化は、いくつかの慢性および致命的な病気14に関与する変性タンパク質修飾（DPM）であると考えられます。このPTMは、人体と同様の生物学的背景1、15に抗体および他の分子の半減期および分解状態を予測できることが実証されています。タンパク質脱アミド化の重要性は、実際?...

ディスカッション

このビデオ記事では、LERLIC-MS / MS 3、深い特徴付けを実行し、正確タンパク質脱アミド化の程度およびこのタンパク質の修飾に関与する酵素プロセスを決定するための方法のステップバイステップのプロトコルを提示します。 LERLIC-MS / MSは、静電反発-親水性相互作用クロマトグラフィー（ERLIC）27の原理の下で長尺（50センチメートル）LAXの使用に基づいて?...

開示事項

著者は、開示することは何もありません。

謝辞

シンガポール国立医学研究評議会（NMRC-OF-IRG-0003から2016）、およびNTU-NHGエイジング研究助成（：この作品は、一部には教育のシンガポール省（/ 15 ARC9を付与ティア2）からの助成金によってサポートされていましたグラントARG / 14017）。私たちは感謝の意を表したいと親切に博士アンドリュー・アルパートとポリICチームに最も誠実な感謝は、この研究を可能にした梱包資材を提供してくれました。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
PolyCAT 3µm 100-Å (bulk material)PolyLC Inc.Special order
Long-length ion exchange capillary column 50 cm - 200 µm IDPolyLC Inc.Special order
PEEKsil Tubing 1/16" OD x 200 µm ID x 50 cm lengthSGE Analytical Science under Trajan Scientific Australia 620050
Female-to-female fitting for 1/16" OD tubbingUpchurch ScientificUPCHF-125
Female nut for microferuleUpchurch ScientificUPCHP-416
MicroferuleUpchurch ScientificUPCHF-132
Pressure Bomb NanoBaumeWestern Fluids EngineeringSP-400
Shimadzu Prominence UFLC systemShimadzuProminence UFLC
Bullet BlenderNext AdvanceBBX24
Safe-lock tubesEppendorf T9661-1000EA
Stainless steel beads. 0.9 – 2.0 mm. 1 lb. Non-sterile.Next AdvanceSSB14B
Table-top centrifuge Hettich ZentrifugenRotina 380 R
Standard Digital Heated Circulating Bath, 120VACPolyScience 8006 6L8006A11B
Sep-pack c18 desalting cartridge 50 mgWatersWAT020805
Vacumm concentratorEppendorf Concentrator Plus System
Dionex UltiMate 3000 UHPLC DionexUltiMate 3000 UHPLC 
Orbitrap Elite mass spectrometerThermo Fisher Scientific Inc.ORBITRAP ELITE
Michrom Thermo CaptiveSpray Michrom-Bruker Inc.TCSI-SS2
Incubator INCUCELL MMM GroupINCUCELL111
Sequencing-grade modified trypsinPromegaV5111
Protease inhibitor cocktail tabletsRoche11836170001 (ROCHE)
Phosphate buffer solution 10X (diluted to 1x)Sigma-AldrichP5493
Ammonium acetateSigma-AldrichA1542
Sodium deoxycholateSigma-AldrichD6750
DithiothreitolSigma-AldrichD0632
IodoacetamideSigma-Aldrichi6125
Formic acidSigma-AldrichF0507 (HONEYWELL)
Ammonium hydroxideSigma-Aldrich338818 (HONEYWELL)
Acetonitrile HPLC gradeSigma-Aldrich675415
Isopropanol HPLC gradeSigma-Aldrich675431
Water HPLC gradeSigma-Aldrich14263

参考文献

  1. Hao, P., Adav, S. S., Gallart-Palau, X., Sze, S. K. Recent advances in mass spectrometric analysis of protein deamidation. Mass Spectrom Rev. , (2016).
  2. Geiger, T., Clarke, S. Deamidation, isomerization, and racemization at asparaginyl and aspartyl residues in peptides. Succinimide-linked reactions that contribute to protein degradation. J Biol Chem. 262 (2), 785-794 (1987).
  3. Serra, A., Gallart-Palau, X., Wei, J., Sze, S. K. Characterization of Glutamine Deamidation by Long-Length Electrostatic Repulsion-Hydrophilic Interaction Chromatography-Tandem Mass Spectrometry (LERLIC-MS/MS) in Shotgun Proteomics. Anal Chem. , (2016).
  4. Reissner, K. J., Aswad, D. W. Deamidation and isoaspartate formation in proteins: unwanted alterations or surreptitious signals. Cell Mol Life Sci. 60 (7), 1281-1295 (2003).
  5. Capasso, S., Mazzarella, L., Sica, F., Zagari, A. First evidence of spontaneous deamidation of glutamine residue via cyclic imide to [small alpha]- and [gamma]-glutamic residue under physiological conditions. JChem Soc, Chem Commun. (23), 1667-1668 (1991).
  6. Gallart-Palau, X., Serra, A., Sze, S. K. Enrichment of extracellular vesicles from tissues of the central nervous system by PROSPR. Mol Neurodegener. 11 (1), 41 (2016).
  7. Gallart-Palau, X., et al. Gender differences in white matter pathology and mitochondrial dysfunction in Alzheimer's disease with cerebrovascular disease. Mol Brain. 9, 27 (2016).
  8. Gallart-Palau, X., et al. Temporal lobe proteins implicated in synaptic failure exhibit differential expression and deamidation in vascular dementia. Neurochem Int. 80, 87-98 (2015).
  9. Robinson, N. E., Robinson, A. B. Molecular clocks. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 98 (3), 944-949 (2001).
  10. Hao, P., et al. Enhanced separation and characterization of deamidated peptides with RP-ERLIC-based multidimensional chromatography coupled with tandem mass spectrometry. J Proteome Res. 11 (3), 1804-1811 (2012).
  11. Li, X., Lin, C., O'Connor, P. B. Glutamine deamidation: differentiation of glutamic acid and gamma-glutamic acid in peptides by electron capture dissociation. Anal Chem. 82 (9), 3606-3615 (2010).
  12. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Anal Biochem. 150 (1), 76-85 (1985).
  13. Serra, A., et al. Plasma proteome coverage is increased by unique peptide recovery from sodium deoxycholate precipitate. Anal Bioanal Chem. , 1-11 (2016).
  14. Gallart-Palau, X., Serra, A., Sze, S. K. Uncovering Neurodegenerative Protein Modifications via Proteomic Profiling. Int Rev Neurobiol. 121, 87-116 (2015).
  15. Liu, Y. D., van Enk, J. Z., Flynn, G. C. Human antibody Fc deamidation in vivo. Biologicals. 37 (5), 313-322 (2009).
  16. Serra, A., et al. Commercial processed soy-based food product contains glycated and glycoxidated lunasin proteoforms. Sci Rep. 6, 26106 (2016).
  17. Serra, A., et al. A high-throughput peptidomic strategy to decipher the molecular diversity of cyclic cysteine-rich peptides. Sci Rep. 6, 23005 (2016).
  18. Leo, G., et al. Deamidation at asparagine and glutamine as a major modification upon deterioration/aging of proteinaceous binders in mural paintings. Anal Chem. 83 (6), 2056-2064 (2011).
  19. Wilson, J., van Doorn, N. L., Collins, M. J. Assessing the extent of bone degradation using glutamine deamidation in collagen. Anal Chem. 84 (21), 9041-9048 (2012).
  20. Buszewski, B., Noga, S. Hydrophilic interaction liquid chromatography (HILIC)--a powerful separation technique. Anal Bioanal Chem. 402 (1), 231-247 (2012).
  21. Alpert, A. J., Hudecz, O., Mechtler, K. Anion-exchange chromatography of phosphopeptides: weak anion exchange versus strong anion exchange and anion-exchange chromatography versus electrostatic repulsion-hydrophilic interaction chromatography. Anal Chem. 87 (9), 4704-4711 (2015).
  22. Adav, S. S., et al. Dementia-linked amyloidosis is associated with brain protein deamidation as revealed by proteomic profiling of human brain tissues. Mol Brain. 9 (1), 20 (2016).
  23. Golde, T. E., Borchelt, D. R., Giasson, B. I., Lewis, J. Thinking laterally about neurodegenerative proteinopathies. J Clin Invest. 123 (5), 1847-1855 (2013).
  24. Gallart-Palau, X., Ng, C. H., Ribera, J., Sze, S. K., Lim, K. L. Drosophila expressing human SOD1 successfully recapitulates mitochondrial phenotypic features of familial amyotrophic lateral sclerosis. Neurosci Lett. 624, 47-52 (2016).
  25. Ouellette, D., Chumsae, C., Clabbers, A., Radziejewski, C., Correia, I. Comparison of the in vitro and in vivo stability of a succinimide intermediate observed on a therapeutic IgG1 molecule. mAbs. 5 (3), 432-444 (2013).
  26. Kumar, S., et al. Unexpected functional implication of a stable succinimide in the structural stability of Methanocaldococcus jannaschii glutaminase. Nat Commun. 7, 12798 (2016).
  27. Alpert, A. J. Electrostatic Repulsion Hydrophilic Interaction Chromatography for Isocratic Separation of Charged Solutes and Selective Isolation of Phosphopeptides. Anal Chem. 80 (1), 62-76 (2008).
  28. Hao, P., Ren, Y., Alpert, A. J., Sze, S. K. Detection, Evaluation and Minimization of Nonenzymatic Deamidation in Proteomic Sample Preparation. Mol Cell Proteomics. 10 (10), 111 (2011).
  29. Hao, P., Ren, Y., Datta, A., Tam, J. P., Sze, S. K. Evaluation of the effect of trypsin digestion buffers on artificial deamidation. J Proteome Res. 14 (2), 1308-1314 (2015).
  30. Liu, S., Moulton, K. R., Auclair, J. R., Zhou, Z. S. Mildly acidic conditions eliminate deamidation artifact during proteolysis: digestion with endoprotease Glu-C at pH 4.5. Amino Acids. 48 (4), 1059-1067 (2016).

転載および許可

このJoVE論文のテキスト又は図を再利用するための許可を申請します

許可を申請

さらに記事を探す

122 ERLIC LERLIC DPM PTM LAX HILIC

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

個人情報保護方針

利用規約

一般データ保護規則

お問い合わせ

図書館への推薦

JoVE ニュースレター

研究

教育

著者

図書館員

JoVEについて

Copyright © 2023 MyJoVE Corporation. All rights reserved