ケンタッキー州の大学、生物学科、学部及び芸術科学大学のOfficeでサポート。

1。はじめザリガニ後腸の最新の包括的な概要については、セロトニン変調と神経支配（Musolf ら 、2009年に主に焦点を当てた博士バーバラE. Musolf（2007年、ジョージア州立大学、アトランタ、ジョージア州、米国）、で論文に遵守され）。甲殻類のhindgutsは、最初に彼らの神経支配の様々な側面を説明するAlexandrowicz、比較解剖学の先駆者（Alexandrowicz、1909）、100年以上も前に検討した。研究は、全体の動物のための浸透圧調節における後腸の全体的な機能に対処する、筋肉の層とアーキテクチャの種類を識別する、長年にわたって継続し、そして種々の化合物（Musolf、2007年までのレビューを参照）により、後腸の収縮の調節制御を検討。それは後腸の肛門部分が糞を排出するだけでなく、浸透圧調節のための環境から水を取ることだけでなく、働くことに注意することは興味深い。腸内のこの領域は、前方に受けるか、動物のニーズに応じて、蠕動運動を逆にすることができます。 Alexandrowicz（1909）甲殻類の後腸、内側の神経叢と後の神経伝達物質を同定し、特徴付けるための豊富な情報源であることが証明外側叢を、支配するtwo神経叢を同定した。 1950年代に博士エルンストフローリーでザリガニ後腸に対する薬理学的研究のシリーズを開始し、収縮はアセチルコリンとその関連化合物によって、また、エピネフリンとノルエピネフリン（フローリー、1954）によって変調されることを実証した。フローリー、として知られている抑制物質の発見者&quot;因子- Iは、&quot;ザリガニのGIシステム（フローリー、1961）を含む種々の製剤、この物質の効果を調べた。因子- Iは、後でGABAであることが示された。このように、ザリガニ後腸は、​​シナプス抑制の初期の研究において重要な役割を果たした。 GABAの発見に続いて、他の推定トランスミッタはまた、後腸の神経叢に関連付けられていることが示され、生理学的反応を誘発する。 、proctolin（RYLPG - OH。メルシエら 1997）は、2つorcokininペプチド（NFDEIDRSGFGFNとAFDEIDRSGFGFN。Bungart ら1994;。。Dircksenら 2000）、このような送信機は（Elofsson ら1968。Elekesら 1988）ドーパミンが含まれています、orcomyotropin（FDAFTTGFamide;。Dircksenら 2000）とmyosuppressinのペプチド（メルシェら1997;。。。おそらくpQDLDHVFLRFamide、CF Stemmler ら 2007）。これらの物質の各々は、自発的な腸の収縮を変調し、GABAを除くすべては、興奮性のように見える。後腸はまた（。ジョーンズ、1962;間違ったら、2003）グルタミン酸とキスカルに応答しますが、グルタミン酸作動性神経支配のための明確な証拠は報告されていない。様々な送信機の効果を仲介細胞内のメッセンジャーは、主に未踏、しかし収縮（Knotz＆メルシエ、1995）強化するドーパミンの能力におけるcAMPの関与の証拠があるされています。 自発的に以下の除神経甲殻類の後腸の契約ですが、そのような収縮は、一般的に（; Winlow＆ラベラック、1972aウェールズ、1982）弱いと無秩序です。ぜん動運動は、明らかに最後の腹部神経節に由来する中枢神経系、（Winlow＆ラベラック、1972a、b、c）をより調整モーターの出力を必要とします。ザリガニでは、モータの出力は、細胞体の最後の腹部神経節（近藤＆久田、1986）に局在している75の軸索を含む7日腹部ルート、通過後腸に運ばれる。少なくともペプチドのいくつかは、最後の腹部神経節由来の神経細胞から後腸神経叢に供給されるように見えます（Dircksen ら2000;。。メルシエら 1991b; Siwicki＆ビショップ、1986）が、ドーパミンは、より多くのの神経細胞によって供給される前神経節（メルシエら 1991a）。 第 7 回腹部ルートを介してモーターの出力が大きい、協調収縮のために必要なので、上記の推定送信機の一部またはすべてが蠕動運動に何らかの形で貢献している可能性があります。それらの相対的な寄与は、しかし、知られていない。いくつかの洞察力は、別々に円形と縦筋（メルシエ＆リー、2002年）に及ぼす影響を研究することによって得られます。 未消化の食物の動きの制御に加えて、甲殻類の後腸に関連する神経叢には、脱皮に関連する重要な内分泌機能を果たしている。カニ、Carcinus maenas、の後腸は水の吸収の役割を示唆し、脱皮に関連する腫れ、脱皮（ウェブスターら、2000）中に、甲殻類の血糖上昇ホルモンとその関連する前駆体のペプチドを放出内分泌細胞が含まれています。このように、甲殻類の後腸は、いくつかの重要な生理学的プロセスに参加しています。 このレポートは、主に先進的な高等学校や実験に参加生理学コースの学部学生のための教育ツールです。重要性だけでなく、後腸の契約や機能が学生によって対処することができる方法の背後にある潜在的なメカニズム。薬理学的作用物質、神経伝達物質、および神経ホルモンが使用され、用量反応曲線は、生理学的および薬理学的データを取得し、解釈する方法で学生を従事れる、構築されます。アゴニストおよびアンタゴニストに関する受容体の機能の一般的な理解も達成することができます。学生はまた、統計分析のためのグラフィカル形式でデータを提示する方法を学習します。 ザリガニ後腸から収縮を細かく分析し、記録するのは非常に簡単です。解剖の準備では、腸が簡単に外因性物質にさらされています。蠕動運動の変化を視覚的にまたはまた収縮の力を監視することができる力変換器、と監視することができます。ためにバイオアッセイの準備として、そのシンプルさと信頼性から、ザリガニ後腸は、​​蠕動運動のメカニズムは、モーターの出力と筋収縮の調節、および受容体の機能に関する多くの研究課題を調査するため、まだ非常に便利です。後腸は、アクションの特定のメカニズムのために殺虫剤、crustaceancides、および汚染物質をテストする場合にも便利です。 2。の方法 2.1）材料<ul><li>ザリガニ</li><li>ザリガニ生理食塩水</li><li>解剖の楽器（粗い＆細かいハサミ、粗い＆細かい鉗子） </li><li> Sylgard底ペトリ皿</li><li>ピンを解剖鋼</li><li>ビーカー（薬液を保持する） </li><li>パラフィルム（ソリューションをカバー＆ミキシング用） </li></ul> 2.2）解剖<ol><li>ボディの長さが6〜10センチメートルを測定ザリガニ（ ザリガニ ） は解剖が始まる前に動物を麻酔するために5〜10分間氷上に置く必要があります。 </li><li>片手で爪の背後から麻酔ザリガニを保持する。迅速に、目のソケットから両側頭部の中央にカットし、ザリガニ（注：準備から血液が完了したときときに乾くので、ツールを洗うスティッキーになるだろう）を刎ねる。 <img src="/files/ftp_upload/2324/2324fig1.jpg" alt="図1" /> 図1：ザリガニの斬首</li><li> chelipedsと歩いて足を切り取ります。 </li><li>唯一中央の尾翼（腹肢を）残して、左と右のtailfinsを切り取ります。 </li><li>ザリガニの背側で背側クチクラの左側と右側の両方に腹側にカット。 <img src="/files/ftp_upload/2324/2324fig2.jpg" alt="図2" /> 図2：背キューティクルの除去</li><li>カットはその後、背側腹部表皮の下の部分を削除GIへの損傷を防ぐために浅いことを確認し、キューティクルの背側に横方向にカット。 </li><li> Sylgard裏地皿に切除したザリガニを置きます。 </li><li>尾翼の先端に皿にザリガニを固定。一つは、身体を保持するために必要に応じてGIの両側に多くのピンを使用することができます。 </li><li> GIは、継続的にピペットを用いて生理食塩水でGIを消すために確認してください網羅ザリガニの生理食塩水で皿を埋める。 5.3 mMの塩化カリウム; 13.5 mmのCaCl 2を 2H 2 O、2.45 mMのMgCl 2 · 6H 2 O、生理食塩水は、205 mMのNaClで作られている修正ヴァンHarreveldのソリューション（1936年）であり、5mMのHEPES、pHを7.4に調整する。解剖ザリガニは、図3に示すように表示されます。 <img src="/files/ftp_upload/2324/2324fig3.jpg" alt="図3" /> 図3：そのままGIとディテールに秘められたザリガニ。 </li></ol> 2.3）実験 2.3.1）、動物の収縮<ol><li>準備や入浴の生理食塩水と同じ温度で試験される化合物の解決策を持っている。には、セロトニンの個々の溶液（100 nMの、1microM）、グルタミン酸（1microM）、そしてテストされる出発物質として、ザリガニの生理食塩水で行われたドーパミン（1microM）を使用する場合があります。 </li><li>約10分間ザリガニのソリューションに座って切開ザリガニが、それが解剖と生理食塩水暴露の衝撃に調整したりすることができます。後腸からゆっくりと蠕動の収縮が発生して開始する必要があります。 </li><li>収縮が開始すると、30秒（：つまり蠕動のタイプ、または痙性、及びいかなる蠕動波の方向に発生する収縮の種類に注意）で発生する収縮の数を記録。 表1：ザリガニ生理食塩水の収縮 <table border="1"><tbody><tr><td> 収縮の数 </td><td> 収縮の種類 </td></tr><tr><td></td><td></td></tr></tbody></table></li><li> πを使用するpetteは、ザリガニの露出腹部の空洞内に生理食塩水を削除し、後腸に直接検査する物質を含む生理食塩水を適用します。 </li><li>すぐに解決策を追加した後、30秒後に発生する収縮の数を記録し（すなわち蠕動、または痙性）が発生収縮の種類に注意してください。 表2：化合物への曝露による収縮 <table border="1"><tbody><tr><td> 化合物は、テスト </td><td> 濃度 </td><td> 収縮の数 </td><td> 収縮の種類 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table></li><li>すぐに被験物質に対する応答を記録した後、通常のザリガニの生理食塩水でGIを数回すすいでください。ザリガニの生理食塩水で30秒ごとに約すすぎながら、準備は、5分間放置する。 </li><li>ピペットを用いて、検査される、次の化合物または後腸に直接テストした最後の物質の様々な濃度を含むいくつかの生理食塩水を置きます。低濃度及び高濃度までの作業を1つの方法で開始するのが最善です。 </li><li>すぐにそれぞれの新しい物質や、それぞれの新しい濃度​​を追加した後、30秒後に発生する収縮の数を記録し、収縮の種類に注意してください。 </li></ol> 2.3.2）摘出した製剤中の収縮の記録部隊<img src="/files/ftp_upload/2324/2324fig4.jpg" alt="図4" /> 図4：設定<ol><li>ブリッジのポッドにトランスデューサを取り付けます。 </li><li> PowerLab 26Tにブリッジのポッドを取り付けます。 </li><li>コンピュータのUSBポートにPowerLabの26Tを取り付けます。 </li><li>デスクトップ上のlabchart7アイコンをクリックして[開くLabChart7、。 <ul><li> LabChartウェルカムセンターボックスが開いているポップアップ表示されます。それを閉じます。 </li><li>セットアップをクリックしてください</li><li>チャンネルの設定をクリックしてください。 [OK]を押す（ボックスの左下）を1にチャネル数を変更します。 </li><li>チャートの左上に約2kに秒あたりのサイクル数を設定します。約500または200 mVにボルト（y軸）を設定します。 </li><li>チャートの右側にチャンネル1をクリックしてください。入力アンプをクリックしてください。シングルエンド、AC結合、および反転（必要に応じて信号を反転します）、およびアンチエイリアス、チェックされます：。設定がいることを確認してください</li><li>記録のプレススタートを開始する。 </li></ul></li><li>準備をピックアップし、胸部と腹部の間に岐路に消化管をカット。その後、慎重に尾の尾節の部分の周りにカット。解剖ザリガニから消化管を取り外し、Sylgard皿に入れてください。消化管の背側面に沿って走る血管があります。慎重に消化管から離れてこれを引っ張る。準備の上に新鮮なザリガニの生理食塩水を注ぐ。 </li><li>解剖ザリガニの近くにクランプの力変換器を置きます。 </li><li>図5に示すように、ザリガニGIで力変換器を引っ掛けます。 <img src="/files/ftp_upload/2324/2324fig5.jpg" alt="図5" /> 図5：力変換器のフックに接続されている生理食塩水でザリガニの隔離された後腸</li><li> GIは、契約を開始するまで待って、とLabChart7でスタートを押してください。 </li><li>プログラムは約20秒間実行してみましょう。 &quot;生理食塩水のみ&quot;、&quot;、停止&quot;とラベルの付いたコメントを追加押し込みます。表4に必要事項を記入。 表4：目的の化合物と収縮 <table border="1"><tbody><tr><td> 収縮の数 </td><td> 収縮の振幅（mVの） </td></tr><tr><td></td><td></td></tr></tbody></table></li><li>興味の試験化合物を追加し、直ちにLabChart7で&quot;start&quot;を押してください。 </li><li>プログラムは約20秒間実行してみましょう。プッシュは、&quot;停止&quot;とどのような物質を添加し、その濃度にされたチャートのファイルに直接コメントを追加。下の表に記入してください。 表5：_________化合物と収縮 <table border="1"><tbody><tr><td> 収縮の数 </td><td> 収縮の振幅（mVの） </td></tr><tr><td></td><td></td></tr></tbody></table></li><li>ピペットを使用してザリガニの生理食塩水と準備を洗い流す。 </li><li>同様に他の物質や種々の濃度を追加。すぐにLabChart7で&quot;start&quot;を押してください。 </li><li>プログラムは約20秒間実行してみましょう。 &quot;、停止&quot;と直接Cを示すグラフファイルのコメントとラベルを追加するプッシュ使用すると濃度ompound。 </li></ol> 3。データ解析<ol><li>実験の2.3.1から、グラフの各溶液（生理食塩水、セロトニン、グルタミン酸）対時間から収縮の数。傾向を説明する。 </li><li>実験の2.3.2から、グラフの各溶液（生理食塩水、セロトニン、グルタミン酸）対mVで収縮の振幅から収縮の数。傾向を説明する。 </li></ol>収縮の速度と力の測定3.1） インデックスに収縮の速度はたわみで先頭から次の開始までの時間を測定したり、分または2つ以上の総たわみを数えることができます。値は、それらが発生しているか迅速に応じて毎分または毎秒収縮の条件に入れることができます。 インデックスに収縮の力が相対的な尺度は、異なる条件を比較するために使用することができる。保存されたファイル上の1つはマーカー&quot;M&quot;を使用することができますし、ベースラインに移動。その後、たわみのピークにカーソルと移動を使用し、デルタ値（Mからピークまでの差）として画面の右上に記載されている値をメモしておいてください。カーソルが変化の測定のための静止状態に維持する必要がある注意してください。その後、関心の次の波の形にMを移動し、測定を繰り返します。

<ol>
	<li>Alexandrowicz, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zur+Kenntnis+des+sympathischen+Nervensystems+der+Crustaceae.">Zur Kenntnis des sympathischen Nervensystems der Crustaceae.</a> Jena Z. Naturw. 45, 395-444 (1909).</li><li>Bungart, D., Dircksen, H., Keller, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+determination+and+distribution+of+the+myotropic+neuropeptide+orcokinin+in+the+nervous+system+of+astacidean+crustaceans.">Quantitative determination and distribution of the myotropic neuropeptide orcokinin in the nervous system of astacidean crustaceans.</a> Peptides. 15, 393-400 (1994).</li><li>Dircksen, H., Burdzik, S., Sauter, A., Keller, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two+orcokinins+and+the+novel+octapeptide+orcomyotropin+in+the+hindgut+of+the+crayfish+Orconectes+limosus:+identified+myostimulatory+neuropeptides+originating+totether+in+neurons+of+the+terminal+abdominal+ganglion.">Two orcokinins and the novel octapeptide orcomyotropin in the hindgut of the crayfish Orconectes limosus: identified myostimulatory neuropeptides originating totether in neurons of the terminal abdominal ganglion.</a> J. Exp. Biol. 203, 2807-2818 (2000).</li><li>Elekes, K., Florey, E., Cahil, M. A., Hoeger, U., Geffard, M., Salanki, J., Rosza, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morphology,+synaptic+connections+and+neurotransmitters+of+the+efferent+neurons+of+the+crayfish+hindgut.">Morphology, synaptic connections and neurotransmitters of the efferent neurons of the crayfish hindgut.</a> Neurobiology of Invertebrates. 36, 129-146 (1988).</li><li>Elofsson, R., Kauri, T., Nielsen, S. O., Stroemberg, J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Catecholamine-containing+nerve+fibres+in+the+hindgut+of+the+crayfish+Astacus+astacus+L.">Catecholamine-containing nerve fibres in the hindgut of the crayfish Astacus astacus L.</a> Experentia. 24, 1159-1160 (1968).</li><li>Florey, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Uber+die+wirkung+von+acetylcholin,+adrenalin,+nor-adrenalin,+faktor+I+und+anderen+substanzen+auf+den+isolierten+enddarm+des+flusskrebses+Cambarus+clarkii+Girard.">Uber die wirkung von acetylcholin, adrenalin, nor-adrenalin, faktor I und anderen substanzen auf den isolierten enddarm des flusskrebses Cambarus clarkii Girard.</a> Z. Vergl. Physiol. 36, 1-8 (1954).</li><li>Florey, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+test+preparation+for+bio-assay+of+Factor+I+and+gamma-aminobutyric+acid.">A new test preparation for bio-assay of Factor I and gamma-aminobutyric acid.</a> J. Physiol. 156, 1-7 (1961).</li><li>Jones, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+action+of+L-glutamic+acid+and+of+structurally+related+compounds+on+the+hind+gut+of+the+crayfish.">The action of L-glutamic acid and of structurally related compounds on the hind gut of the crayfish.</a> J. Physiol. (London). 164, 295-300 (1962).</li><li>Knotz, S., Mercier, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=cAMP+mediates+dopamine-evoked+hindgut+contractions+in+the+crayfish,+Procambarus+clarkii.">cAMP mediates dopamine-evoked hindgut contractions in the crayfish, Procambarus clarkii.</a> Comp. Biochem. Physiol. 111A, 59-64 (1995).</li><li>Kondoh, Y., Hisada, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuroanatomy+of+the+terminal+(sixth+abdominal)+ganglion+of+the+crayfish,+Procambarus+clarkii.">Neuroanatomy of the terminal (sixth abdominal) ganglion of the crayfish, Procambarus clarkii.</a> Cell. Tiss. Res. 243, 273-288 (1986).</li><li>Mercier, A. J., Lange, A. B., TeBrugge, V., Orchard, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evidence+for+proctolin-like+and+FMRFamide-like+neuropeptides+associated+with+the+hindgut+of+the+crayfish,+Procambarus+clarkii.">Evidence for proctolin-like and FMRFamide-like neuropeptides associated with the hindgut of the crayfish, Procambarus clarkii.</a> Can. J. Zool. 75, 1208-1225 (1997).</li><li>Mercier, A. J., Lee, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+effects+of+neuropeptides+on+circular+and+longitudinal+muscles+of+the+crayfish+hindgut.">Differential effects of neuropeptides on circular and longitudinal muscles of the crayfish hindgut.</a> Peptides. 23, 1751-1757 (2002).</li><li>Mercier, A. J., Orchard, I., Schmoeckel, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Catecholaminergic+neurons+supplying+the+hindgut+of+the+crayfish,+Procambarus+clarkii.">Catecholaminergic neurons supplying the hindgut of the crayfish, Procambarus clarkii.</a> Can. J. Zool. 69, 2778-2785 (1991).</li><li>Mercier, A. J., Orchard, I., TeBrugge, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=FMRFamide-like+immunoreactivity+in+the+crayfish+nervous+system.">FMRFamide-like immunoreactivity in the crayfish nervous system.</a> J. exp. Biol. 156, 519-538 (1991).</li><li>Mercier, A. J., Orchard, I., TeBrugge, V., Skerrett, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+two+FMRFamide-related+peptides+from+crayfish+pericardial+organs.">Isolation of two FMRFamide-related peptides from crayfish pericardial organs.</a> Peptides. 14, 137-143 (1993).</li><li>Musolf, B. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Serotonergic+modulation+of+the+crayfish+hindgut:+Effects+on+hindgut+contractility+and+regulation+of+serotonin+on+hindgut.">Serotonergic modulation of the crayfish hindgut: Effects on hindgut contractility and regulation of serotonin on hindgut.</a> Biol Bull. , (2007).</li><li>Musolf, B. E., Spitzer, N., Antonsen, B. L., Edwards, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Serotonergic+modulation+of+crayfish+hindgut.+Biol+Bull.+217(1),+50-64+(2009).">Serotonergic modulation of crayfish hindgut. Biol Bull. 217(1), 50-64 (2009).</a> Biol Bull. 217, 50-64 (2009).</li><li>Shuranova, Z. P., Burmistrov, Y. M., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+hundred+years+ago+and+now:+A+short+essay+on+the+study+of+the+crustacean+hindgut.+(Vor+hundert+Jahren+und+nun:+Eine+kurze+Geschichte+von+die+Forschung+des+Hinterdarmes+der+Crustaceen.">A hundred years ago and now: A short essay on the study of the crustacean hindgut. (Vor hundert Jahren und nun: Eine kurze Geschichte von die Forschung des Hinterdarmes der Crustaceen.</a> Crustaceana. 76, 755-670 (2003).</li><li>Shuranova, Z. P., Burmistrov, Y. M., Strawn, J. R., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evidence+for+an+Autonomic+Nervous+System+in+Decapod+Crustaceans.">Evidence for an Autonomic Nervous System in Decapod Crustaceans.</a> International Journal of Zoological Research. 2 (3), 242-283 (2006).</li><li>Siwicki, K. K., Bishop, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mapping+of+proctolinlike+immunoreactivity+in+the+nervsou+systems+of+lobster+and.">Mapping of proctolinlike immunoreactivity in the nervsou systems of lobster and.</a> 243, 435-435 (1986).</li><li>Stemmler, E. A., Cashman, C. R., Messinger, D. I., Gardner, N. P., Dickinson, P. S., Christie, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-mass-resolution+direct-tissue+MALDI-FTMS+reveals+broad+conservation+of+three+neuropeptides+(APSGFLGMRamide,+GYRKPPFNGSIFamide+and+pQDLDHVFLRFamide)+across+members+of+seven+decapod+crustaean+infraorders.">High-mass-resolution direct-tissue MALDI-FTMS reveals broad conservation of three neuropeptides (APSGFLGMRamide, GYRKPPFNGSIFamide and pQDLDHVFLRFamide) across members of seven decapod crustaean infraorders.</a> Peptides. 28, 2104-2115 (2007).</li><li>Wales, W., Sandeman, D. C., Atwood, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Control+of+mouthparts+and+gut.">Control of mouthparts and gut.</a> The Biology of Crustacea. 4, 165-191 (1982).</li><li>Webster, S. G., Dircksen, H., Chung, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endocrine+cells+in+the+gut+of+the+shore+crab+Carcinus+maenas+immunoreactive+to+crustacean+hyperglycaemic+hormone+and+its+precursor-related+peptide.">Endocrine cells in the gut of the shore crab Carcinus maenas immunoreactive to crustacean hyperglycaemic hormone and its precursor-related peptide.</a> J. Exp. Biol. 300, 193-205 (2000).</li><li>Winlow, W., Laverack, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+control+of+hindgut+motility+in+the+lobster+Homarus+gammarus+(L.).+1.+Analysis+of+hindgut+movements+and+receptor+activity.">The control of hindgut motility in the lobster Homarus gammarus (L.). 1. Analysis of hindgut movements and receptor activity.</a> Mar. Behav. Physiol. 1, 1-28 (1972).</li><li>Winlow, W., Laverack, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+control+of+hindgut+motility+in+the+lobster+Homarus+gammarus+(L.).+2.+Motor+output.">The control of hindgut motility in the lobster Homarus gammarus (L.). 2. Motor output.</a> Mar. Behav. Physiol. 1, 29-47 (1972).</li><li>Winlow, W., Laverack, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+control+of+hindgut+motility+in+the+lobster+Homarus+gammarus+(L.).+3.+Structure+of+the+sixth+abdominal+ganglion+(6+A.G.)+and+associated+ablation+and+microelectrode+studies.">The control of hindgut motility in the lobster Homarus gammarus (L.). 3. Structure of the sixth abdominal ganglion (6 A.G.) and associated ablation and microelectrode studies.</a> Mar. Behav. Physiol. 1, 93-121 (1972).</li><li>Wrong, A. D., Sammahin, M., Richardson, R., Mercier, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pharmacological+properties+of+glutamate+receptors+associated+with+the+crayfish+hindgut.">Pharmacological properties of glutamate receptors associated with the crayfish hindgut.</a> J. Comp. Physiol. 189, 371-378 (2003).</li></ol>

利害の衝突は宣言されません。

関連するムービーとテキストで提供される詳細情報は、 その場で同様にin vitroでのザリガニの後腸の活動を記録するために必要な主要な手順を説明します。私たちの報告書の一つの目標は、生理学や薬理学の基本的な概念を教えるの調査研究室を学生実行するにはこの準備の可能性への意識を高めることです。 これらの製剤は、腸の生理機能の理解につながる実験的な質問の数を調査するために使用することができます。蠕動波とその反転の制御のメカニズムはまだ知られていない。全体の消化管の高い制御のためのメカニズムも十分に理解されていない。高次中枢が直接GIシステムを制御する自律神経出力で彼らの活動を統合する方法の質問は、調査のオープンエリア（シュラーノワら 、2006）のまま。さらに、甲殻類の後腸と脱皮し、環境ストレス時の浸透圧調節の機能の浸透圧調節機能が十分に解明されていない。この準備の答えを待っている多くの疑問が残っています。

<ol><li>ザリガニ（ ザリガニ ）。アチャファラヤ生物サプライ（株）、レースランド、LA。、米国。 </li><li>標準的なザリガニ生理食塩水：ヴァンHarreveldのソリューション（1936）から変更された。 （mMで）205のNaCl、5.3 KClを、13.5のCaCl 2 2H 2 O、2.45のMgCl 2 · 6H 2 O、5 HEPES、pHを7.4に調整。セロトニン、グルタミン酸とドーパミンは、ザリガニの生理食塩水で作られています。すべての化学物質は、シグマケミカル社（セントルイス、MO）から入手されています。 </li><li>解剖ツール：ファイン＃5ピンセット、細かいはさみ、ナイフの刃ホルダー、＃26002から20虫ピン（すべてのファイン科学のツール（米国）、（株）、373 - Gビンテージパークドライブ、フォスターシティー、CA 94404から1139から取得） </li><li> Sylgard底ペトリ皿</li><li>ビーカー（薬液を保持する） </li><li>電気信号は、コンピュータにPowerLab 26Tインタフェース（ADInstruments、コロラドスプリングズ、コロラド州、米国）への行に記録されます。我々は、チャートまたはScopeというADInstrumentsから標準のソフトウェアを使用してください。 <li>力変換器のブリッジポッド（別の橋のポッドの力変換器の種類に応じて必要とされる）。 </li><li> MLT0402（2グラム）力変換器は、ビデオに示されている研究のグレードです。 MLT 0210 / D（10mgを - 25グラム）とMLT 500 /（0〜500グラム）の教育のグレードのトランスデューサー（ADInstruments）です。 </li></ol>

physiological experimentation with the crayfish hindgut: a student laboratory exercise

レポートの目的は、ザリガニ後腸を準備するために解剖の技術を記述すると、収縮の強さを監視する力変換器との生理学的記録を作成する方法を説明することです。さらに、我々は視覚的に様々なペプチド、生体アミンと神経伝達物質のバイオアッセイとして使用できる蠕動運動を、監視する方法を示します。この準備は、生理学で、学生に薬理学的概念を実証するための学生の研究室に適している。この準備は、100年以上にわたって使用されていて、それはまだ蠕動リズムの生成と規制を調査し、その変調のメカニズムを記述するためのモデルとして多くを提供しています。現在でも研究に貢献する腸で50年以上前に開始された薬理学的アッセイと受容体のサブタイピング。この堅牢な調製は、生理学や薬理学の訓練の学生に適しています。

Watch this Scientific Journal Video about Physiological Experimentation with the Crayfish Hindgut: A Student Laboratory Exercise at JoVE.com

Physiological Experimentation with the Crayfish Hindgut: A Student Laboratory Exercise

本報告書では、ザリガニの後腸の生物を調査するために使用できる手法を示します。私たちは、ザリガニの腹部を解剖し、関連する解剖学、生理学および活性の調節を研究する方法を示します。収縮の蠕動運動と強さは力変換器を用いて測定している。

ザリガニ後腸との生理学的実験：学生実験室実習

The purpose of the report is to describe dissection techniques for preparing the crayfish hindgut and to demonstrate how to make physiological recordings ...

physiological-experimentation-with-crayfish-hindgut-student

Research

JoVE Journal

Neuroscience

15.7K ビュー.  University of Kentucky. 本報告書では、ザリガニの後腸の生物を調査するために使用できる手法を示します。私たちは、ザリガニの腹部を解剖し、関連する解剖学、生理学および活性の調節を研究する方法を示します。収縮の蠕動運動と強さは力変換器を用いて測定している。

ビデオ: Physiological Experimentation with the Crayfish Hindgut: A Student Laboratory Exercise

Recording Behavioral Responses to Reflection in Crayfish

Social behavior depends on sensory input from the visual, mechanical and olfactory systems. One important issue concerns the relative roles of each sensory modality in guiding behavior. The role of visual inputs has been examined by isolating visual stimuli from mechanical and chemosensory stimuli. In some studies (Bruski &amp; Dunham, 1987: Delgado-Morales et al., 2004) visual inputs have been removed with blindfolds or low light intensity, and effects of remaining sensory modalities have been elucidated. An alternative approach is to study the effects of visual inputs in the absence of any appropriate mechanical and chemosensory cues. This approach aims to identify the exclusive role of visual inputs. 
We have used two methods to provide visual stimuli to crayfish without providing chemical and mechanical cues. In one method, crayfish are videotaped in an aquarium where half of the walls are covered in mirrors to provide a reflective environment, and the other half are covered in a non-reflective (matte finish) plastic. This gives the crayfish a choice between reflective and non-reflective environments. The reflective environment provides visual cues in the form of reflected images of the crayfish as it moves throughout half of the tank; these visual cues are missing from the non-reflective half of the tank. An alternative method is to videotape the behavior of crayfish in an aquarium separated by a smaller chamber at each end, with a crayfish in one small chamber providing visual cues and an inert object in the opposite small chamber providing visual input from a non-moving, non-crayfish source. 
Our published results indicate that responses of crayfish to the reflective environment depend on socialization and dominance rank. Socialized crayfish spent more time in the reflective environment and exhibited certain behaviors more frequently there than in the non-reflective environment; isolated crayfish showed no such differences. Crayfish that were housed in same-sex pairs developed a social rank of either dominant or subordinate. Responses to reflection differed between dominant and subordinate crayfish (May &amp; Mercier, 2006; May &amp; Mercier, 2007). Dominant crayfish spent more time on the reflective side, entered reflective corners more frequently and spent more time in reflective corners compared to the non-reflective side. Subordinate crayfish walked in reverse more often on the reflective side than on the non-reflective side. Preliminary data suggest similar effects from visual cues provided by a crayfish in a small adjoining chamber (May et al., 2008).

We have developed two methods for studying effects of visual cues on behavior in the absence of tactile and chemical cues. One method involves videotaping responses of crayfish to reflective walls in an aquarium; the other examines effects of visual inputs provided by a live crayfish behind a transparent partition.

ザリガニのリフレクションに行動反応の記録

Social behavior depends on sensory input from the visual, mechanical and olfactory systems.  One important issue concerns the relative roles of each ...

神経科学

A Procedure for Studying the Footshock-Induced Reinstatement of Cocaine Seeking in Laboratory Rats

The most insidious aspect of drug addiction is the high propensity for relapse. Animal models of relapse, known as reinstatement procedures, have been used extensively to study the neurobiology and phenomenology of relapse to drug use. Although procedural variations have emerged over the past several decades, the most conventional reinstatement procedures are based on the drug self-administration (SA) model. In this model, an animal is trained to perform an operant response to obtain drug. Subsequently, the behavior is extinguished by withholding response-contingent reinforcement. Reinstatement of drug seeking is then triggered by a discrete event, such as an injection of the training drug, re-exposure to drug-associated cues, or exposure to a stressor 1.
Reinstatement procedures were originally developed to study the ability of acute non-contingent exposure to the training drug to reinstate drug seeking in rats and monkeys 1, 2. Reinstatement procedures have since been modified to study the role of environmental stimuli, including drug-associated cues and exposure to various forms of stress, in relapse to drug seeking 1, 3, 4.
Over the past 15 years, a major focus of the reinstatement literature has been on the role of stress in drug relapse. One of the most commonly used forms of stress for studying this relationship is acute exposures to mild, intermittent, electric footshocks. The ability of footshock stress to induce reinstatement of drug seeking was originally demonstrated by Shaham and colleagues (1995) in rats with a history of intravenous heroin SA5. Subsequently, the effect was generalized to rats with histories of intravenous cocaine, methamphetamine, and nicotine SA, as well as oral ethanol SA 3, 6.
Although footshock-induced reinstatement of drug seeking can be achieved reliably and robustly, it is an effect that tends to be sensitive to certain parametrical variables. These include the arrangement of extinction and reinstatement test sessions, the intensity and duration of footshock stress, and the presence of drug-associated cues during extinction and testing for reinstatement. Here we present a protocol for footshock-induced reinstatement of cocaine seeking that we have used with consistent success to study the relationship between stress and cocaine seeking.

Animal models of relapse, known as reinstatement procedures, have been used extensively to study the role of stress in relapse to drug seeking. Here, we report on a method for inducing the reinstatement of cocaine seeking in laboratory rats via acute exposures to mild, intermittent electric footshock.

実験用ラットに求めてコカインのフットショック誘発性回復を勉強するための手順

The most insidious aspect of drug addiction is the high propensity for relapse.  Animal models of relapse, known as reinstatement procedures, have been ...

Physiological Recordings of High and Low Output NMJs on the Crayfish Leg Extensor Muscle

We explain in detail how to expose and conduct electrophysiological recordings of synaptic responses for high (phasic) and low (tonic) output motor neurons innervating the extensor muscle in the walking leg of a crayfish. Distinct differences are present in the physiology and morphology of the phasic and tonic nerve terminals. The tonic axon contains many more mitochondria, enabling it to take a vital stain more intensely than the phasic axon. The tonic terminals have varicosities, and the phasic terminal is filiform. The tonic terminals are low in synaptic efficacy but show dramatic facilitated responses. In contrast, the phasic terminals are high in quantal efficacy but show synaptic depression with high frequency stimulation. The quantal output is measured with a focal macropatch electrode placed directly over the visualized nerve terminals. Both phasic and tonic terminals innervate the same muscle fibers, which suggests that inherent differences in the neurons, rather than differential retrograde feedback from the muscle, account for the morphological and physiological differentiation.

This article demonstrates how to conduct electrophysiological recordings of synaptic responses on the extensor muscle in the walking leg of a crayfish and how the nerve terminals are visualized to show the gross morphological differences of high- and low-output nerve terminals.

ザリガニの脚の伸筋に高と低出力NMJsの生理的録音

We explain in detail how to expose and conduct electrophysiological recordings of synaptic responses for high (phasic) and low (tonic) output motor ...

Membrane Potentials, Synaptic Responses, Neuronal Circuitry, Neuromodulation and Muscle Histology Using the Crayfish: Student Laboratory Exercises

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that influence a cell's membrane potential and which we address in these experiments are: (1) Ion concentration of K+ on the outside of the membrane, and (2) the permeability of the membrane to specific ions. The crayfish abdominal extensor muscles are in groupings with some being tonic (slow) and others phasic (fast) in their biochemical and physiological phenotypes, as well as in their structure; the motor neurons that innervate these muscles are correspondingly different in functional characteristics. We use these muscles as well as the superficial, tonic abdominal flexor muscle to demonstrate properties in synaptic transmission. In addition, we introduce a sensory-CNS-motor neuron-muscle circuit to demonstrate the effect of cuticular sensory stimulation as well as the influence of neuromodulators on certain aspects of the circuit. With the techniques obtained in this exercise, one can begin to answer many questions remaining in other experimental preparations as well as in physiological applications related to medicine and health. We have demonstrated the usefulness of model invertebrate preparations to address fundamental questions pertinent to all animals.

The experiments demonstrate an easy approach for students to gain experience in examining muscle structure, synaptic responses, the effects of ion gradients and permeability on membrane potentials. Also, a sensory-CNS-motor-muscle circuit is presented to show a means to test effects of compounds on a neuronal circuit.

膜電位、シナプス応答、神経回路、ニューロモデュレーションとザリガニを使用して筋肉の組織学：学生研究室の演習

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that ...

Muscle Receptor Organs in the Crayfish Abdomen: A Student Laboratory Exercise in Proprioception

The primary purpose of this experiment is to demonstrate primary sensory neurons conveying information of joint movements and positions as proprioceptive information for an animal. An additional objective of this experiment is to learn anatomy of the preparation by staining, dissection and viewing of neurons and sensory structures under a dissecting microscope. This is performed by using basic neurophysiological equipment to record the electrical activity from a joint receptor organ and staining techniques. The muscle receptor organ (MRO) system in the crayfish is analogous to the intrafusal muscle spindle in mammals, which aids in serving as a comparative model that is more readily accessible for electrophysiological recordings. In addition, these are identifiable sensory neurons among preparations. The preparation is viable in a minimal saline for hours which is amenable for student laboratory exercises. The MRO is also susceptible to neuromodulation which encourages intriguing questions in the sites of modulatory action and integration of dynamic signals of movements and static position along with a gain that can be changed in the system.

The primary purpose of this experiment is to understand how primary sensory neurons convey information of joint movements and positions as proprioceptive information for an animal. An additional objective of this report is present the anatomy of the preparation by dissection and viewing of neurons under a dissecting microscope.

ザリガニ腹部の筋肉の受容体の臓器：固有感覚の学生の研究室の演習

The primary purpose of this experiment is to demonstrate primary sensory neurons conveying information of joint movements and positions as proprioceptive ...

VisualEyes: A Modular Software System for Oculomotor Experimentation

Eye movement studies have provided a strong foundation forming an understanding of how the brain acquires visual information in both the normal and dysfunctional brain.1 However, development of a platform to stimulate and store eye movements can require substantial programming, time and costs. Many systems do not offer the flexibility to program numerous stimuli for a variety of experimental needs. However, the VisualEyes System has a flexible architecture, allowing the operator to choose any background and foreground stimulus, program one or two screens for tandem or opposing eye movements and stimulate the left and right eye independently. This system can significantly reduce the programming development time needed to conduct an oculomotor study. The VisualEyes System will be discussed in three parts: 1) the oculomotor recording device to acquire eye movement responses, 2) the VisualEyes software written in LabView, to generate an array of stimuli and store responses as text files and 3) offline data analysis. Eye movements can be recorded by several types of instrumentation such as: a limbus tracking system, a sclera search coil, or a video image system. Typical eye movement stimuli such as saccadic steps, vergent ramps and vergent steps with the corresponding responses will be shown. In this video report, we demonstrate the flexibility of a system to create numerous visual stimuli and record eye movements that can be utilized by basic scientists and clinicians to study healthy as well as clinical populations.

Neural control and cognitive processes can be studied through eye movements. The VisualEyes software allows an operator to program stimuli on two computer screens independently using a simple, custom scripting language. The system can stimulate tandem eye movements (saccades and smooth pursuit) or opposing eye movements (vergence) or any combination.

VisualEyes：眼球運動実験のためのモジュラ式のソフトウェアシステム

Eye movement studies have provided a strong foundation forming an understanding of how the brain acquires visual information in both the normal and ...

Odorant-induced Responses Recorded from Olfactory Receptor Neurons using the Suction Pipette Technique

Animals sample the odorous environment around them through the chemosensory systems located in the nasal cavity. Chemosensory signals affect complex behaviors such as food choice, predator, conspecific and mate recognition and other socially relevant cues. Olfactory receptor neurons (ORNs) are located in the dorsal part of the nasal cavity embedded in the olfactory epithelium. These bipolar neurons send an axon to the olfactory bulb (see Fig. 1, Reisert &amp; Zhao1, originally published in the Journal of General Physiology) and extend a single dendrite to the epithelial border from where cilia radiate into the mucus that covers the olfactory epithelium. The cilia contain the signal transduction machinery that ultimately leads to excitatory current influx through the ciliary transduction channels, a cyclic nucleotide-gated (CNG) channel and a Ca2+-activated Cl- channel (Fig. 1). The ensuing depolarization triggers action potential generation at the cell body2-4.
In this video we describe the use of the "suction pipette technique" to record odorant-induced responses from ORNs. This method was originally developed to record from rod photoreceptors5 and a variant of this method can be found at jove.com modified to record from mouse cone photoreceptors6. The suction pipette technique was later adapted to also record from ORNs7,8. Briefly, following dissociation of the olfactory epithelium and cell isolation, the entire cell body of an ORN is sucked into the tip of a recording pipette. The dendrite and the cilia remain exposed to the bath solution and thus accessible to solution changes to enable e.g. odorant or pharmacological blocker application. In this configuration, no access to the intracellular environment is gained (no whole-cell voltage clamp) and the intracellular voltage remains free to vary. This allows the simultaneous recording of the slow receptor current that originates at the cilia and fast action potentials fired by the cell body9. The difference in kinetics between these two signals allows them to be separated using different filter settings. This technique can be used on any wild type or knockout mouse or to record selectively from ORNs that also express GFP to label specific subsets of ORNs, e.g. expressing a given odorant receptor or ion channel.

Olfactory receptor neurons (ORNs) convert odor signals first into a receptor current that in turn triggers action potentials that are conveyed to second order neurons in the olfactory bulb. Here we describe the suction pipette technique to record simultaneously the odorant-induced receptor current and action potentials from mouse ORNs.

吸引ピペット技術を用いた嗅覚受容ニューロンから記録匂い物質誘発性応答

Animals sample the odorous environment around them through the chemosensory systems located in the nasal cavity. Chemosensory signals affect complex ...

Proprioception and Tension Receptors in Crab Limbs: Student Laboratory Exercises

The primary purpose of these procedures is to demonstrate for teaching and research purposes how to record the activity of living primary sensory neurons responsible for proprioception as they are detecting joint position and movement, and muscle tension. Electrical activity from crustacean proprioceptors and tension receptors is recorded by basic neurophysiological instrumentation, and a transducer is used to simultaneously measure force that is generated by stimulating a motor nerve. In addition, we demonstrate how to stain the neurons for a quick assessment of their anatomical arrangement or for permanent fixation. Staining reveals anatomical organization that is representative of chordotonal organs in most crustaceans. Comparing the tension nerve responses to the proprioceptive responses is an effective teaching tool in determining how these sensory neurons are defined functionally and how the anatomy is correlated to the function. Three staining techniques are presented allowing researchers and instructors to choose a method that is ideal for their laboratory.

Physiological and anatomical techniques are demonstrated to address function and structure for joint proprioceptors and muscle tension receptors in crustacean walking limbs.

カニ手足の固有感覚と緊張受容体：学生実験室の練習

The primary purpose of these procedures is to demonstrate for teaching and research purposes how to record the activity of living primary sensory neurons ...

Functional Analysis of the Larval Feeding Circuit in Drosophila

The serotonergic feeding circuit in Drosophila melanogaster larvae can be used to investigate neuronal substrates of critical importance during the development of the circuit. Using the functional output of the circuit, feeding, changes in the neuronal architecture of the stomatogastric system can be visualized. Feeding behavior can be recorded by observing the rate of retraction of the mouth hooks, which receive innervation from the brain. Locomotor behavior is used as a physiological control for feeding, since larvae use their mouth hooks to traverse across an agar substrate. Changes in feeding behavior can be correlated with the axonal architecture of the neurites innervating the gut. Using immunohistochemistry it is possible to visualize and quantitate these changes. Improper handling of the larvae during behavior paradigms can alter data as they are very sensitive to manipulations. Proper imaging of the neurite architecture innervating the gut is critical for precise quantitation of number and size of varicosities as well as the extent of branch nodes. Analysis of most circuits allow only for visualization of neurite architecture or behavioral effects; however, this model allows one to correlate the functional output of the circuit with the impairments in neuronal architecture.

Functional Analysis of the Larval Feeding Circuit in Drosophila

The feeding circuit in Drosophila melanogaster larvae serves a simple yet powerful model that allows changes in feeding rate to be correlated with alterations in the stomatogastric neural circuitry. This circuit is composed of central serotonergic neurons that send projections to the mouth hooks as well as the foregut.

幼虫給電回路の機能解析ショウジョウバエ</i

The serotonergic  feeding circuit in Drosophila  melanogaster larvae can be used to investigate neuronal substrates of  critical importance during the ...

Measuring Oral Fatty Acid Thresholds, Fat Perception, Fatty Food Liking, and Papillae Density in Humans

Emerging evidence from a number of laboratories indicates that humans have the ability to identify fatty acids in the oral cavity, presumably via fatty acid receptors housed on taste cells. Previous research has shown that an individual&#39;s oral sensitivity to fatty acid, specifically oleic acid (C18:1) is associated with body mass index (BMI), dietary fat consumption, and the ability to identify fat in foods. We have developed a reliable and reproducible method to assess oral chemoreception of fatty acids, using a milk and C18:1 emulsion, together with an ascending forced choice triangle procedure. In parallel, a food matrix has been developed to assess an individual&#39;s ability to perceive fat, in addition to a simple method to assess fatty food liking. As an added measure tongue photography is used to assess papillae density, with higher density often being associated with increased taste sensitivity.

Oral chemoreception of fatty acids and the association with diet and fatty food preferences may enable the identification of mechanisms involved with the development of obesity and why dietary changes may be difficult for many individuals.

オーラル脂肪酸しきい値、脂肪知覚、脂肪食品嗜好、およびヒトにおける乳頭密度を測定

Emerging evidence from a number of laboratories indicates that humans have the ability to identify fatty acids in the oral cavity, presumably via fatty ...