Name: a push-pull protocol to reduce colonization of bird nest boxes by honey bees
Uploaded: 2016-09-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 3 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees at JoVE.com

Our study was conducted with the permission of United States Sugar Corporation. We want to thank R. Raid, S. Raid and T. Lang for their assistant. We also M. Stanback and three anonymous reviewers for suggestions that improved this manuscript.

スウォームトラップボックスの1建設注：1.1と1.2のステップとして群れトラップ構築のための2つの代替のプロトコルが含まれています。トラップボックスを構築することができたいくつかの追加の方法があります。我々は実験でそれらをテストしていると、彼らは成功しているので、次の2つの方法がここに提示されています。どちらのプロトコルの場合は、厚さ2cm非圧力処理された合板に1.3センチメートルを使用しています。 <ol><li>スウォームトラッププロトコルオプション1の構築：トラップボックスの構築<ol><li>合板30センチのx 30 cmの6枚をカット。 </li><li>釘やネジと一緒にボックスの四辺を取り付けます。 </li><li>釘やネジによって底部片を取り付けます。 </li><li>ネジやステープルでトップピースを取り付けます。 <ol><li>トップを保護するために釘を使用しないでください。トップは蜂を取得し、ボックスをきれいに除去可能でなければなりません。 </li></ol></li><li> 2.5センチメートル下端からトラップボックスの一面の中央2.5cmの穴を開けます。 </li><li>プライマーを適用し、sのealant、または天候から木材を保護するために、トラップボックスの外側にペイントします。 <ol><li>トラップボックスの内部には塗料やシーラントを適用しないでください。これは、撥やミツバチへの毒性することができました。 </li></ol></li></ol></li><li>スウォームトラップボックスプロトコルオプション2の構築：標準ディープハイブボディの使用<ol><li>ローカル蜂の供給の店から、標準的​​な10フレームの深いハイブ体を得ました。 </li><li>ワイド41.3センチメートルすることにより、各測定50.8センチメートル長い合板からの頂部と底部をカットします。 </li><li>釘やネジによって底部片を取り付けます。 </li><li>ネジやステープルでトップピースを取り付けます。 <ol><li>トップを保護するために釘を使用しないでください。トップは蜂を取得し、ボックスをきれいに除去可能でなければなりません。 </li></ol></li><li> 2.5センチメートル下端からトラップボックスの一方の側に途中2.5cmの穴を開けます。 </li><li>天候から木材を保護するために、トラップボックスの外側にプライマー、シーラント、またはペイントを適用します。 <ol><li>への塗料やシーラントを適用しないでくださいトラップボックスの内側。これは、撥やミツバチへの毒性することができました。 </li></ol></li></ol></li></ol>フェロモンルアーの調製<ol><li> 2：1の比でシトラールおよびゲラニオールの混合物を準備します。 </li><li>スナップトップ1.5ミリリットルのポリプロピレンマイクロ遠心チューブにこの混合物の1ミリリットルを置きます。 </li><li>光から保護するためにアルミホイルでルアーを包みます。 注：遠心分離チューブのキャップは、プッシュピンで穿刺され、それが取り付けられた群れト​​ラップ内に置かれたとき。 注：ルアーは、室温で暗所で、またはCの冷凍庫-10℃での長期保存のために保存することができます。 </li></ol>スウォームトラップボックスの3.インストール注：ステップ3.1と3.2で提示群れトラップボックスの設置のための2つの代替のプロトコルがあります。 <ol><li>ポストへのインストール：スウォームトラップボックスプロトコルオプション1のインストール<ol><li>地面に10cmの圧力処理木材のフェンスの支柱10センチ置き10メートルへ鳥の巣箱が置かれている場所から15メートル。 </li><li> 20センチメートル、20 cmの1.3センチメートル厚い圧力処理木材の吊り下げボードを構築します。 </li><li>ボックスの上部より10 CMと、トラップボックスの一辺の中央に吊り下げボードを合わせます。ボードの両側に少なくとも二つの釘やネジで箱にボードを固定します。 </li><li>トラップボックスはミツバチによって植民地化されたときに除去するための安全かつ容易である（3メートルに1.5メートル）の高さでポストでのトラップボックスを配置します。ハンギングボードを取り付けることにより、ポストにあるボックスをねじ込みます。約5cmハンギング・ボードの上面の下にネジを配置し、所定の位置にねじ込みます。 <ol><li>彼らは除去するのが困難であるため、釘を使用しないでください。 </li></ol></li></ol></li><li>ツリーへのインストール：スウォームトラップボックスプロトコルオプション2のインストール<ol><li>ボックスの各側面の上部背面の角にある5ミリメートルの穴を開けます。 </li><li>穴を通してワイヤーを通します。 注：このプロトコルを使用している場合、それはEASIになりますerがボックスの上部を固定する前に、穴を通してワイヤーを置くために。 </li><li>鳥の巣箱が置かれている場所から約10メートルから15メートル離れたツリーを選択します。 <ol><li>誰かが鳥のボックスのステータスにチェックしたときに、ミツバチが定着トラップボックスが守備になるためにミツバチを引き起こして邪魔することができるので、鳥のボックスと同じ木にトラップボックスを置かないでください。 </li></ol></li><li> 1.5メートル地面メートル3に木の周りにワイヤーを固定します。 注：ツリーを保護するために、形成層セーバーは、ワイヤの周りに使用することができます。 <ol><li>それが転倒しないようにボックスがレベル​​で安全であることを確認してください。利用可能な場合は、このボックスには、追加された安定性のために木の枝に載置することができます。 </li></ol></li></ol></li></ol>フェロモンルアーの4追加<ol><li>セクション2から先に調製したルアーを取り、プッシュピンと管の上部に穴を開ける。 </li><li> instの後の入り口付近底部にトラップボックス内のルアーを配置ボックスを取り付けている間は脱落しないようにするallation。 </li></ol>ペルメトリンと鳥の巣箱の5治療<ol><li>唯一の家禽または愛玩鳥での使用のために標識されたペルメトリンの製品を選択します。 </li><li>混合およびアプリケーションのためのラベルの指示に従ってください 注意：ラベルの勧告上の任意の個人用保護ガイドラインに従ってください。 </li><li>液体は3.7 Lハンドポンプ噴霧器を使用して、箱の側面をオフに実行する時点まで、完全に巣箱の内部をスプレーします。 注：巣箱は、前またはインストール後に処理することができます。 </li></ol>ミツバチによって占有トラップボックスの6取り外し<ol><li>小さなタオルで玄関ホールを差し込みます。 注意：ミツバチから刺されを防ぐために、適切な防護服を着用してください。 <ol><li>群れは殺されるのであれば、できるだけ早く発見としてそう。群れを利用する場合は、ミツバチが完全にそれらを削除しようとする前に、トラップボックスを植民地化することを可能にする（Usually約2週間）。可能な場合は、（すべてのミツバチが内側にある場合）夜間占有トラップボックスを削除します。トラップ入口は夜間にプラグインすることができ、その後、ボックスには、日光の下で、次の朝に除去しました。 注：夜にミツバチの周りに作業する場合、赤色フィルタされた光を使用してください。 </li></ol></li><li>ポストからボックスを外したり、ツリーにあるボックスを保持するワイヤーをカット。 </li><li>その新しい場所にボックスを移動します（少なくとも4キロ離れた）とアウトエントランスホールからタオルを引っ張ります。 </li></ol>トラップボックス内の蜂コロニーの7.破壊注：Africanizedミツバチを維持することは違法である地域では、植民地の破壊が正当化されうる。そうであれば、2つのプロトコルは、ここに提示されています。 <ol><li>コロニーをソラリゼーション<ol><li>小さなタオルで玄関ホールを差し込みます。 注意：ミツバチから刺されを防ぐために、適切な防護服を着用してください。 </li><li>ポストからボックスを外したり、ツリーにあるボックスを保持するワイヤーをカット。 </li><li> EncloSEとビニール袋に完全にトラップボックスを密閉し、数日間完全日に残します 注意：ミツバチから刺されを防ぐために、適切な防護服を着用してください。 </li><li>死んだ蜂やコームを除去することにより、ボックスを一掃。 </li></ol></li><li>殺虫剤スプレーの使用<ol><li>トラップボックス内に噴霧するためにミツバチを殺すために使用するための標識された殺虫剤のスプレーを使用してください。 注意：殺虫剤のラベルの指示に従い、ミツバチから刺されを防ぐために、適切な個人保護具を使用します。 </li><li>入り口を差し込み、24時間のボックスを残します。 </li><li>死んだ蜂やコームを除去することにより、ボックスを一掃。 注：残留殺虫剤を除去するために、石鹸水溶液で内部を掃除トラップボックスを再利用します。よくすすぎ、再インストールする前に完全に乾燥させます。 </li></ol></li><li>殺虫剤の泡の使用<ol><li>洗剤系発泡体で占められ、トラップの空洞全体を埋めます。 （注意：INSECのラベルの指示に従ってくださいミツバチから刺されを防ぐためにticideと適切な個人保護具を使用し、適切な防護服を着用してください）​​。 注：フォームは、市販の害虫駆除泡発生器や圧縮空気消火器で適用することができます。 注：消火器使用しての場合：9.5 L消火器への水の場所3.8 Lを、発泡剤（または食器洗い用洗剤）の190ミリリットルを追加し、消火器を密封し、100から125ポンド/平方に加圧します。インチ（psi）。直前に、使用することを激しく撹拌し、その後トラップが溢れなるまで泡を適用します。 注：泡が気門を入ると気管をブロックすることにより、60秒以内にミツバチを殺します。 </li><li>入り口を差し込み、24時間のボックスを残します。 </li><li>死んだ蜂やコームを除去することにより、ボックスを一掃。 注：残留殺虫剤を除去するために、石鹸水溶液で内部を掃除トラップボックスを再利用します。よくすすぎ、再インストールする前に完全に乾燥させます。&lt;/李&gt; </ol></li></ol>

<ol>
	<li>Winston, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+biology+and+management+of+Africanized+honey+bees.">The biology and management of Africanized honey bees.</a> Annu Rev Entomol. 37, 173-193 (1992).</li><li>Schmidt, J. O., Hurley, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selection+of+nest+cavities+by+Africanized+and+European+honey+bees.">Selection of nest cavities by Africanized and European honey bees.</a> Apidologie. 26, 467-475 (1995).</li><li>Eadie, J., Sherman, P., Semel, B., Casro, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Conspecific+Brood+Parasitism,+Population+Dynamics,+and+the+Conservation+of+Cavity-Nesting+Birds.">Conspecific Brood Parasitism, Population Dynamics, and the Conservation of Cavity-Nesting Birds.</a> In: Behavioral Ecology and Conservation Biology. , 306-340 (1998).</li><li>Newton, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+nest+sites+in+limiting+the+numbers+of+hole-nesting+birds:+a+review.">The role of nest sites in limiting the numbers of hole-nesting birds: a review.</a> Biol Conserv. 70, 265-276 (1994).</li><li>White, T. H., Abreu-Gonz&#225;lez, W., Toledo-Gonz&#225;lez, M., Torres-B&#225;ez, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=From+the+field:+artificial+nest+cavities+for+Amazona+parrots.">From the field: artificial nest cavities for Amazona parrots.</a> Wildl Soc Bull. 33, 756-760 (2005).</li><li>Vaughan, C., Nemeth, N., Marineros, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ecology+and+management+of+natural+and+artificial+Scarlet+Macaw+(Ara+macao)+nest+cavities+in+Costa+Rica.">Ecology and management of natural and artificial Scarlet Macaw (Ara macao) nest cavities in Costa Rica.</a> Ornitol Neotrap. 14, 381-396 (2003).</li><li>WCS Guatemala Program. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrated+interventions+to+conserve+Scarlet+Macaws+as+flagships+for+the+Maya+Biosphere+Reserve,+Guatemala.">Integrated interventions to conserve Scarlet Macaws as flagships for the Maya Biosphere Reserve, Guatemala.</a> 2009-2010 Report to BBC Wildlife Fund. , (2011).</li><li>Fish and Wildlife Service. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Puerto Rican Parrot (Amazona vittata) 5-Year Review: Summary and Evaluation. , (2008).</li><li>Berkunsky, I., DiazLuque, J. A., Kacoliris, F. P., Daniele, G., Milpacher, S., Gilardi, J. D., Martin, S., Eckles, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=10+Years:+Blue-throated+Macaw+Conservation.">10 Years: Blue-throated Macaw Conservation.</a> PsittaScene. 24, 3-5 (2012).</li><li>Synder, N., McGowen, P., Gilardi, J. D., Grajal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Parrots: Status Survey and Conservation Action Plan 2000-2004. , (2000).</li><li>Delnicki, D. E., Bolen, E. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+Black-Bellied+Whistling+duck+nest+sites+by+other+species.">Use of Black-Bellied Whistling duck nest sites by other species.</a> SW Naturalist. 22, 275-277 (1977).</li><li>Twedt, D. J., Henne-Kerr, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Artificial+Cavities+Enhance+Breeding+Bird+Densities+in+Managed+Cottonwood+Forests.">Artificial Cavities Enhance Breeding Bird Densities in Managed Cottonwood Forests.</a> Wildl Soc Bull. 27, 680-687 (2001).</li><li>Carlile, N., Priddel, D., Zino, F., Natividad, C., Wingate, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+four+successful+recovery+programmes+for+threatened+sub-tropical+petrels.">A review of four successful recovery programmes for threatened sub-tropical petrels.</a> Mar Ornithol. 31, 185-192 (2003).</li><li>Oldroyd, B. P., Lawler, S. H., Crozier, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Do+feral+honey+bees+(Apis+mellifera)+and+regent+parrots+(Polytelis+anthopeplus)+compete+for+nest+sites.">Do feral honey bees (Apis mellifera) and regent parrots (Polytelis anthopeplus) compete for nest sites.</a> Aust J Ecol. 19, 444-450 (1994).</li><li>Downs, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Artificial+nest+boxes+and+wild+Cape+Parrots+Poicephalus+robustus:+persistence+pays+off.">Artificial nest boxes and wild Cape Parrots Poicephalus robustus: persistence pays off.</a> Ostrich. 76, 222-224 (2005).</li><li>Seeley, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+Nest+Cavity+Volume+by+the+Honey+Bee+(Apis+mellifera).">Measurement of Nest Cavity Volume by the Honey Bee (Apis mellifera).</a> Behav Ecol Sociobiol. 2, 201-227 (1977).</li><li>Schneider, S. S., DeGrandi-Hoffman, G., Smith, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+African+Honey+Bee:+Factors+contributing+to+a+successful+biological+invasion.">The African Honey Bee: Factors contributing to a successful biological invasion.</a> Annu Rev Entomol. 49, 351-376 (2004).</li><li>Seely, T. D., Visscher, P. K., Passino, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Group+decision+making+in+honey+bee+swarms.">Group decision making in honey bee swarms.</a> Behav Ecol Sociobiol. 94, 220-229 (2006).</li><li>Taylor, K. S., Waller, G. D., Crowder, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impairment+of+a+classical+conditioning+response+of+the+honey+bee+(Apis+mellifera+L.)+by+sublethal+doses+of+synthetic+pyrethroid+insecticides.">Impairment of a classical conditioning response of the honey bee (Apis mellifera L.) by sublethal doses of synthetic pyrethroid insecticides.</a> Apidologie. 18, 243-252 (1987).</li><li>Ingram, E. M., Augustin, J., Ellis, M. D., Siegfried, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluating+sub-lethal+effects+of+orchard-applied+pyrethroids+using+viedo-tracking+software+to+quantify+honey+bee+behaviors.">Evaluating sub-lethal effects of orchard-applied pyrethroids using viedo-tracking software to quantify honey bee behaviors.</a> Chemosphere. 135, 272-277 (2015).</li><li>Rieth, J. P., Levin, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+repellent+effect+of+two+pyrethroid+insecticides+on+the+honey+bee.">The repellent effect of two pyrethroid insecticides on the honey bee.</a> Physiol Entomol. 13, 213-218 (1988).</li><li>Efstathion, C. A., Bardunias, P. M., Boyd, J. D., William, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+push-pull+integrated+pest+management+scheme+for+preventing+use+of+parrot+nest+boxes+by+invasive+Africanized+honey+bees.">A push-pull integrated pest management scheme for preventing use of parrot nest boxes by invasive Africanized honey bees.</a> J Field Ornithol. 86, 65-72 (2015).</li><li>Seeley, T. D., Morse, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nest+site+selection+by+the+honey+bee,+Apis+mellifera.">Nest site selection by the honey bee, Apis mellifera.</a> Insect Sco. 25, 323-337 (1978).</li><li>Schmidt, J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Attraction+of+reproductive+honey+bee+swarms+to+artificial+nests+by+nasonov+pheromone.">Attraction of reproductive honey bee swarms to artificial nests by nasonov pheromone.</a> J Chem Ecol. 20, 1053-1056 (1994).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

非常に成功した侵襲性の昆虫17としては、AHBは、その範囲にわたって樹洞営巣鳥類のための主要な競争相手を構成しています。ここで紹介するプロトコルは、AHBによって鳥の巣箱のコロニー形成率を低減するように設計されています。この設計の主な構成要素1を含む）忌避の使用や鳥セーフ殺虫剤、ペルメトリン; 2）ミツバチの代替営巣地の提供;および3）トラップボックス内の誘引...

1957年1サンパウロ、ブラジルに2ダース以上のアフリカミツバチの女王の偶然の導入以来、これらの昆虫は（あまりよく適合したヨーロッパのミツバチを奪うと交換、中南米全体とアップ米国南部に広がっています野生個体群におけるEHB）。これらのハイブリッドAfricanizedミツバチ（AHB）は、人間と野生動物の両方との競合に入れて形質を持っています。彼らは非常に防衛的な行動を示す、非常に高速再生し、彼らが家に1,2を行う場所についてはあまり選択的です。 巣箱は、長いキャビティネスティング鳥3,4によって繁殖を増強するために鳥類学者によって使用されてきたが、それらの使用は、熱帯5,6に脅かさ及び絶滅危惧オウムの繁殖を増強するために特に有効であることが示されています。残念ながら、Africanizedミツバチは、多くの場合、これらの同じ巣箱を選択する - 時には、乗員を殺します秒。彼らは巣の研究を行っているときにさらに、これらのAHBは、生物学者への重大な脅威となっています。 AHBが確立されている南米の地域では、いくつかのオウムの保全プロジェクトは、AHB 7-10によって占有され、それらの人工巣箱を見てきました。ミツバチと巣箱のための競争が広まっているとオウムに限定されるものではありません。新と旧世界の両方で他の多くの鳥種は11月15日に影響を与えています。これらの侵襲AHBの脅威を軽減するための努力がなければ、オウムの保全の最近の成功が失われる可能性があります。 ミツバチからの競争を管理するための現在の慣行は、すぐにシーズン8、または巣箱15の外側への化学物質の適用を繁殖した後、巣の入り口を閉じ、手動で群れを取り除く、ペルメトリン7を繰り返し、高用量の使用を含みます。労働関与し、生物学者への危険性は最適とは言えないこれらの戦略をレンダリングします。 preventioの開発n個のプロトコルが保証されています。 ミツバチのコロニーは、古い女王が働きバチ16の最大3/4で植民地を離れるとき、群がるとして知られるプロセスを介して乗算します。 Africanizedミツバチ」の高い繁殖率は、彼らがEHB（毎年一度か二度群れ）17よりも頻繁に（年間4〜8倍）の群れすることができます。また、AHBは、年間を通じてではなく、EHBのような特定の季節に群れがあります。その結果、AHBはすぐに指定された領域に適した入れ子のサイトのほとんどを占めることができます。 蜂蜜蜂の家の狩猟行動は巣サイトの彼らの選択に影響を与えるために利用することができます。群れでミツバチのごく一部は、見つけて、新しい潜在的な巣の部位を検査するために飛んでいきます。いくつかの潜在的な巣のサイトが同時にためにスカウトされています。これらのスカウト蜂が群れに戻り、部位の位置を示すためにダンスを行います。 SCOの強い踊りがサイトにある、より速く数utのミツバチは、そのサイト18で構築します。したがって、ミツバチは平凡か悪いの部位に比べて、より良い品質のサイトのための強力な踊り。定足数しきい値に達すると、群れが離陸し、新しい選択されたホームサイト18に飛びます。 殺虫剤ペルメトリンのサブ致死接触用量は、配向させ、その活動レベル19,20を減らすためにスカウト蜂の能力を妨げます。最初は巣箱の内部ペルメトリンのアプリケーションは量を減少させる、化学的劣化、箱の彼らの評価中にペルメトリンにさらさスカウトミツバチが、強い募集のダンスを実行する能力が低いレンダリングされるべきであるミツバチ21、および残業を偵察するために忌避されるべきですサイトに動員スカウトミツバチの。より適切な（理想的なキャビティ容積、下部に位置する小さな入り口ホール、およびフェロモン誘引）代替巣サイトはミツバチのトラップボックスの形で提供されます。この優れたトラップサイトは、より高速な定足数に達する必要があります殺虫剤処理された鳥のボックスよりも、鳥のボックスの上にトラップボックスを選択する群れをリード。 例として、我々は南フロリダのサトウキビ畑でAHBによってメンフクロウ人工巣箱の定着を低減するための実験を​​説明します。我々の目的は、フェロモン餌群れトラップに向かって「プル」、それらを殺虫剤で処理されたフクロウの巣箱から離れてミツバチを「プッシュ」となりますプッシュプル方式を使用しての有効性を試験することでした。

<table><tbody><tr><td>Citral (ACROS Organics)</td><td>Fisher Scientific</td><td>AC11044-1000</td><td></td></tr><tr><td>Geraniol (ACROS Organics)</td><td>Fisher Scientific</td><td>AC41090-1000</td><td></td></tr><tr><td>PermaCap CS</td><td>BASF</td><td></td><td>controlled release permethrin</td></tr></tbody></table>

a push-pull protocol to reduce colonization of bird nest boxes by honey bees

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. These bees select cavities that are suitable nest sites for birds, resulting in competition. The difficulty of removing bees and their defensive behavior makes a prevention protocol necessary. Here, we describe a push-pull integrated pest management protocol to deter bees from inhabiting bird boxes by applying a bird safe insecticide, permethrin, to repel bees from nest boxes, while simultaneously attracting them to pheromone-baited swarm traps. Shown here is an example experiment using Barn Owl nest boxes. This protocol successfully reduced colonization of Barn Owl nest boxes by Africanized honey bees. This protocol is flexible, allowing adjustments to accommodate a wide range of bird species and habitats. This protocol could benefit conservation efforts where AHB are located.

ブラジルで行われ、以前の小規模なパイロットプッシュプル研究が有効であったとオウムの巣箱22の蜂の職業を減少群れトラップを示しました。プッシュプル法は、AHBによって鳥の巣箱のコロニー形成を減少させるために、より大きなスケールで有効であることができるかどうかを決定するために、我々は南部フロリダ州、米国のサトウキビ畑での現地調査を...

Watch this Scientific Journal Video about A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees at JoVE.com

A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees

侵襲Africanizedミツバチによって鳥の巣箱のコロニー形成を防止することが巣サイト限られた鳥の保護活動のために重要です。私たちは「プッシュ」ミツバチ離れた巣箱から撥殺虫剤、ペルメトリンとの統合害虫管理のアプローチを提供し、フェロモン餌群れトラップに向かって、それらを「プル」。

ミツバチによって植民地化鳥の巣箱を削減するためのプッシュプルプロトコル

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. ...

a-push-pull-protocol-to-reduce-colonization-bird-nest-boxes-honey

Research

JoVE Journal

Environment

8.6K ビュー.  University of Florida. 侵襲Africanizedミツバチによって鳥の巣箱のコロニー形成を防止することが巣サイト限られた鳥の保護活動のために重要です。私たちは「プッシュ」ミツバチ離れた巣箱から撥殺虫剤、ペルメトリンとの統合害虫管理のアプローチを提供し、フェロモン餌群れトラップに向かって、それらを「プル」。 

ビデオ: A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees

Empirical, Metagenomic, and Computational Techniques Illuminate the Mechanisms by which Fungicides Compromise Bee Health

Growers often use fungicide sprays during bloom to protect crops against disease, which exposes bees to fungicide residues. Although considered &#34;bee-safe,&#34; there is mounting evidence that fungicide residues in pollen are associated with bee declines (for both honey and bumble bee species). While the mechanisms remain relatively unknown, researchers have speculated that bee-microbe symbioses are involved. Microbes play a pivotal role in the preservation and/or processing of pollen, which serves as nutrition for larval bees. By altering the microbial community, it is likely that fungicides disrupt these microbe-mediated services, and thereby compromise bee health. This manuscript describes the protocols used to investigate the indirect mechanism(s) by which fungicides may be causing colony decline. Cage experiments exposing bees to fungicide-treated flowers have already provided the first evidence that fungicides cause profound colony losses in a native bumble bee (Bombus impatiens). Using field-relevant doses of fungicides, a series of experiments have been developed to provide a finer description of microbial community dynamics of fungicide-exposed pollen. Shifts in the structural composition of fungal and bacterial assemblages within the pollen microbiome are investigated by next-generation sequencing and metagenomic analysis. Experiments developed herein have been designed to provide a mechanistic understanding of how fungicides affect the microbiome of pollen-provisions. Ultimately, these findings should shed light on the indirect pathway through which fungicides may be causing colony declines.

Microbial consortia within bumble bee hives enrich and preserve pollen for bee larvae. Using next generation sequencing, along with laboratory and field-based experiments, this manuscript describes protocols used to test the hypothesis that fungicide residues alter the pollen microbiome, and colony demographics, ultimately leading to colony loss.

実証、メタゲノムと計算手法を照らす殺菌剤妥協ミツバチ健康メカニズム

Growers often use fungicide sprays during bloom to protect crops against disease, which exposes bees to fungicide residues. Although considered ...

環境学

Evaluating the Effect of Environmental Chemicals on Honey Bee Development from the Individual to Colony Level

The presence of pesticides in the beekeeping environment is one of the most serious problems that impacts the life of a honey bee. Pesticides can be brought back to the beehive after the bees have foraged on flowers that have been sprayed with pesticides. Pesticide contaminated food can be exchanged between workers which then feed larvae and therefore can potentially affect the development of honey bees. Thus, residual pesticides in the environment can become a chronic damaging factor to honey bee populations and gradually lead to colony collapse. In the presented protocol, honey bee feeding methods are described and applied to either an individual honey bee or to a colony. Here, the insect growth regulator (IGR) pyriproxyfen (PPN), which is widely used to control pest insects and is harmful to the development of honey bee larvae and pupae, is used as the pesticide. The presenting procedure can be applied to other potentially harmful chemicals or honeybee pathogens for further studies.

Herein we present a method to feed pesticide contaminated food to both an individual honey bee and a beehive colony. The procedure evaluates the pesticide effect on individual honey bees by in vivo feeding of basic larval diet and also on the natural condition of beehive colony.

個々のコロニーレベルにミツバチ開発に関する環境化学物質の影響を評価します

The presence of pesticides in the beekeeping environment is one of the most serious problems that impacts the life of a honey bee. Pesticides can be ...

Video Tracking Protocol to Screen Deterrent Chemistries for Honey Bees

The European honey bee, Apis mellifera L., is an economically and agriculturally important pollinator that generates billions of dollars annually. Honey bee colony numbers have been declining in the United States and many European countries since 1947. A number of factors play a role in this decline, including the unintentional exposure of honey bees to pesticides. The development of new methods and regulations are warranted to reduce pesticide exposures to these pollinators. One approach is the use of repellent chemistries that deter honey bees from a recently pesticide-treated crop. Here, we describe a protocol to discern the deterrence of honey bees exposed to select repellent chemistries. Honey bee foragers are collected and starved overnight in an incubator 15 h prior to testing. Individual honey bees are placed into Petri dishes that have either a sugar-agarose cube (control treatment) or sugar-agarose-compound cube (repellent treatment) placed into the middle of the dish. The Petri dish serves as the arena that is placed under a camera in a light box to record the honey bee locomotor activities using video tracking software. A total of 8 control and 8 repellent treatments were analyzed for a 10 min period with each treatment was duplicated with new honey bees. Here, we demonstrate that honey bees are deterred from the sugar-agarose cubes with a compound treatment whereas honey bees are attracted to the sugar-agarose cubes without an added compound.

The loss of honey bee colonies presents a challenge to crop pollination services. Current pollinator protection practices warrant an alternative approach to minimize the contact of honey bees to harmful pesticides using repellent chemistries. Here, we provide detailed methods for a visual tracking protocol to screen deterrents for bees.

ハチミツの抑止化学物質をスクリーニングするためのビデオトラッキングプロトコル

The European honey bee, Apis mellifera L., is an economically and agriculturally important pollinator that generates billions of dollars annually. Honey ...

A Proboscis Extension Response Protocol for Investigating Behavioral Plasticity in Insects: Application to Basic, Biomedical, and Agricultural Research

Insects modify their responses to stimuli through experience of associating those stimuli with events important for survival (e.g., food, mates, threats). There are several behavioral mechanisms through which an insect learns salient associations and relates them to these events. It is important to understand this behavioral plasticity for programs aimed toward assisting insects that are beneficial for agriculture. This understanding can also be used for discovering solutions to biomedical and agricultural problems created by insects that act as disease vectors and pests. The Proboscis Extension Response (PER) conditioning protocol was developed for honey bees (Apis mellifera) over 50 years ago to study how they perceive and learn about floral odors, which signal the nectar and pollen resources a colony needs for survival. The PER procedure provides a robust and easy-to-employ framework for studying several different ecologically relevant mechanisms of behavioral plasticity. It is easily adaptable for use with several other insect species and other behavioral reflexes. These protocols can be readily employed in conjunction with various means for monitoring neural activity in the CNS via electrophysiology or bioimaging, or for manipulating targeted neuromodulatory pathways. It is a robust assay for rapidly detecting sub-lethal effects on behavior caused by environmental stressors, toxins or pesticides.
We show how the PER protocol is straightforward to implement using two procedures. One is suitable as a laboratory exercise for students or for quick assays of the effect of an experimental treatment. The other provides more thorough control of variables, which is important for studies of behavioral conditioning. We show how several measures for the behavioral response ranging from binary yes/no to more continuous variable like latency and duration of proboscis extension can be used to test hypotheses. And, we discuss some pitfalls that researchers commonly encounter when they use the procedure for the first time.

The Proboscis Extension Response (PER) conditioning protocol, developed for the honey bee (Apis mellifera), provides an ecologically-relevant and easily quantifiable means for studying several different mechanisms of learning in many insect species.

昆虫に行動可塑性を調査するためのテングザルの拡張レスポンスプロトコル：基本、生物医学および農業研究への応用

Insects modify their responses to stimuli through experience of associating those stimuli with events important for survival (e.g., food, mates, threats). ...

神経科学

Preparation of Single-cohort Colonies and Hormone Treatment of Worker Honeybees to Analyze Physiology Associated with Role and/or Endocrine System

Honeybee workers are engaged in various tasks related to maintaining colony activity. The tasks of the workers change according to their age (age-related division of labor). Young workers are engaged in nursing the brood (nurse bees), while older workers are engaged in foraging for nectar and pollen (foragers). The physiology of the workers changes in association with this role shift. For example, the main function of the hypopharyngeal glands (HPGs) changes from the secretion of major royal jelly proteins (MRJPs) to the secretion of carbohydrate-metabolizing enzymes. Because worker tasks change as the workers age in typical colonies, it is difficult to discriminate the physiological changes that occur with aging from those that occur with the role shift. To study the physiological changes in worker tissues, including the HPGs, in association with the role shift, it would be useful to manipulate the honeybee colony population by preparing single-cohort colonies in which workers of almost the same age perform different tasks. Here we describe a detailed protocol for preparing single-cohort colonies for this analysis. Six to eight days after single-cohort colony preparation, precocious foragers that perform foraging tasks earlier than usual appear in the colony. Representative results indicated role-associated changes in HPG gene expression, suggesting role-associated HPG function. In addition to manipulating the colony population, analysis of the endocrine system is important for investigating role-associated physiology. Here, we also describe a detailed protocol for treating workers with 20-hydroxyecdysone (20E), an active form of ecdysone, and methoprene, a juvenile hormone analogue. The survival rate of treated bees was sufficient to examine gene expression in the HPGs. Gene expression changes were observed in response to 20E- and/or methoprene-treatment, suggesting that hormone treatments induce physiological changes of the HPGs. The protocol for hormone treatment described here is appropriate for examining hormonal effects on worker physiology.

Here we describe our detailed protocol for the preparation of single-cohort honeybee colonies&#160;&#8211; a useful tool for analyzing the role-associated worker physiology. We also describe detailed protocols for treating workers with juvenile hormone and ecdysone to evaluate the involvement of these hormones in the regulation of worker behavior and/or physiology.

シングルコホートコロニーと労働者ミツバチのホルモン治療の準備は役割および/または内分泌系との生理学関連を分析します

Honeybee workers are engaged in various tasks related to maintaining colony activity. The tasks of the workers change according to their age (age-related ...

Neuropharmacological Manipulation of Restrained and Free-flying Honey Bees, Apis mellifera

Honey bees demonstrate astonishing learning abilities and advanced social behavior and communication. In addition, their brain is small, easy to visualize and to study. Therefore, bees have long been a favored model amongst neurobiologists and neuroethologists for studying the neural basis of social and natural behavior. It is important, however, that the experimental techniques used to study bees do not interfere with the behaviors being studied. Because of this, it has been necessary to develop a range of techniques for pharmacological manipulation of honey bees. In this paper we demonstrate methods for treating restrained or free-flying honey bees with a wide range of pharmacological agents. These include both noninvasive methods such as oral and topical treatments, as well as more invasive methods that allow for precise drug delivery in either systemic or localized fashion. Finally, we discuss the advantages and disadvantages of each method and&#160;describe common hurdles and how to best overcome them. We conclude with a discussion on the importance of adapting the experimental method to the biological questions rather than the other way around.

Neuropharmacological Manipulation of Restrained and Free-flying Honey Bees, Apis mellifera

This manuscript describes several protocols for administering pharmacological agents to honey bees, including simple noninvasive methods for free-flying bees, as well as more invasive variants that allow precise localized treatment of restrained bees.

拘束と自由飛行ミツバチの神経薬理学的操作、<em&gt;アピスミツバチ</em

Honey bees demonstrate astonishing learning abilities and advanced social behavior and communication. In addition, their brain is small, easy to visualize ...

Monitoring Colony-level Effects of Sublethal Pesticide Exposure on Honey Bees

The effects of sublethal pesticide exposure to honey bee colonies may be significant but difficult to detect in the field using standard visual assessment methods. Here we describe methods to measure the quantities of adult bees, brood, and food resources by weighing hives and hive parts, by photographing frames, and by installing hives on scales and with internal sensors. Data from these periodic evaluations are then combined with running average and daily detrended data on hive weight and internal hive temperature. The resulting datasets have been used to detect colony-level effects of imidacloprid applied in a sugar syrup as low as 5 parts per billion. The methods are objective, require little training, and provide permanent records in the form of sensor output and photographs.

Sublethal doses of pesticides may affect colonies in ways that are difficult to detect using only periodic or visual methods. Methods to measure total adult bee mass, brood, and food resources by weighing hives and hive parts, photographing frames, and installing sensors, are provided. Data analysis is also addressed.

致死の農薬暴露の蜂蜜の蜂のコロニー レベルの効果を監視

The effects of sublethal pesticide exposure to honey bee colonies may be significant but difficult to detect in the field using standard visual assessment ...

生物学

A 3D Printed Pollen Trap for Bumble Bee (Bombus) Hive Entrances

To verify the plant sources from which bumble bees forage for pollen, individuals must be collected to remove their corbicular pollen loads for analysis. This has traditionally been done by netting foragers at nest entrances or on flowers, chilling the bees on ice, and then removing the pollen loads from the corbiculae with forceps or a brush. This method is time and labor intensive, may alter normal foraging behavior, and can result in stinging incidents for the worker performing the task. Pollen traps, such as those used on honey bee hives, collect pollen by dislodging corbicular pollen loads from the legs of workers as they pass through screens at the nest entrance. Traps can remove a large quantity of pollen from returning forager bees with minimal labor, yet to date no such trap is available for use with bumble bee colonies. Workers within a bumble bee colony can vary in size making size selection of entrances difficult to adapt this mechanism to commercially reared bumble bee hives. Using 3D printing design programs, we created a pollen trap that successfully removes the corbicular pollen loads from the legs of returning bumble bee foragers. This method significantly reduces the amount of time required by researchers to collect pollen from bumble bee foragers returning to the colony. We present the design, results of pollen removal efficiency tests, and suggest areas of modifications for investigators to adapt traps to a variety of bumble bee species or nest box designs.

A 3D Printed Pollen Trap for Bumble Bee Bombus Hive Entrances

We present a non-lethal and automated mechanism to collect pollen from bumble bee (Bombus) workers returning to a hive. Instructions for producing, preparing, installing and using the devices are included. By using 3D-printed objects, modification to the design was timely, efficient and allowed for quick turnaround for testing.

バンブルビー(ボンバス)ハイブ入口のための3Dプリント花粉トラップ

To verify the plant sources from which bumble bees forage for pollen, individuals must be collected to remove their corbicular pollen loads for analysis.  ...

Collection and Identification of Pollen from Honey Bee Colonies

Researchers often collect and analyze corbicular pollen from honey bees to identify the plant sources on which they forage for pollen or to estimate pesticide exposure of bees via pollen. Described herein is an effective pollen-trapping method for collecting corbicular pollen from honey bees returning to their hives. This collection method results in large quantities of corbicular pollen that can be used for research purposes. Honey bees collect pollen from many plant species, but typically visit one species during each collection trip. Therefore, each corbicular pollen pellet predominantly represents one plant species, and each pollen pellet can be described by color. This allows the sorting of samples of corbicular pollen by color to segregate plant sources. Researchers can further classify corbicular pollen by analyzing the morphology of acetolyzed pollen grains for taxonomic identification. These methods are commonly used in studies related to pollinators such as pollination efficiency, pollinator foraging dynamics, diet quality, and diversity. Detailed methodologies are presented for collecting corbicular pollen using pollen traps, sorting pollen by color, and acetolyzing pollen grains. Also presented are results pertaining to the frequency of pellet colors and taxa of corbicular pollen collected from honey bees in five different cropping systems.

We describe methods for collecting corbicular pollen from honey bees as well as protocols for color sorting, acetolysis, and microscope slide preparation of pollen for taxonomic identification. In addition, we present pellet color and taxonomic diversity of corbicular pollen collected from five cropping systems using pollen traps.

ミツバチのコロニーからの花粉の収集と同定

Researchers often collect and analyze corbicular pollen from honey bees to identify the plant sources on which they forage for pollen or to estimate ...

Assessing Agrochemical Risk to Mated Honey Bee Queens

Current risk assessment strategies for honey bees rely heavily upon laboratory tests performed on adult or immature worker bees, but these methods may not accurately capture the effects of agrochemical exposure on honey bee queens. As the sole producer of fertilized eggs inside a honeybee colony, the queen is arguably the most important single member of a functioning colony unit. Therefore, understanding how agrochemicals affect queen health and productivity should be considered a critical aspect of pesticide risk assessment. Here, an adapted method is presented to expose honey bee queens and worker queen attendants to agrochemical stressors administered through a worker diet, followed by tracking egg production in the laboratory and assessing first instar eclosion using a specialized cage, referred to as a Queen Monitoring Cage. To illustrate the method&#39;s intended use, results of an experiment in which worker queen attendants were fed diet containing sublethal doses of imidacloprid and effects on queens were monitored are described.

This protocol was developed to enhance the understanding of how agrochemicals affect honey bee (Apis mellifera) reproduction by establishing methods to expose honey bee queens and their worker caretakers to agrochemicals in a controlled, laboratory setting and carefully monitoring their relevant responses.

交配ミツバチクイーンズへの農薬リスクの評価

Current risk assessment strategies for honey bees rely heavily upon laboratory tests performed on adult or immature worker bees, but these methods may not ...

ミツバチによって植民地化鳥の巣箱を削減するためのプッシュプルプロトコル

要約

さらに動画を探す

この動画の章

実証、メタゲノムと計算手法を照らす殺菌剤妥協ミツバチ健康メカニズム

個々のコロニーレベルにミツバチ開発に関する環境化学物質の影響を評価します

ハチミツの抑止化学物質をスクリーニングするためのビデオトラッキングプロトコル

昆虫に行動可塑性を調査するためのテングザルの拡張レスポンスプロトコル：基本、生物医学および農業研究への応用

シングルコホートコロニーと労働者ミツバチのホルモン治療の準備は役割および/または内分泌系との生理学関連を分析します

拘束と自由飛行ミツバチの神経薬理学的操作、

致死の農薬暴露の蜂蜜の蜂のコロニーレベルの効果を監視

バンブルビー(ボンバス)ハイブ入口のための3Dプリント花粉トラップ

ミツバチのコロニーからの花粉の収集と同定

交配ミツバチクイーンズへの農薬リスクの評価

ミツバチによって植民地化鳥の巣箱を削減するためのプッシュプルプロトコル

要約

さらに動画を探す

この動画の章

実証、メタゲノムと計算手法を照らす殺菌剤妥協ミツバチ健康メカニズム

個々のコロニーレベルにミツバチ開発に関する環境化学物質の影響を評価します

ハチミツの抑止化学物質をスクリーニングするためのビデオトラッキングプロトコル

昆虫に行動可塑性を調査するためのテングザルの拡張レスポンスプロトコル：基本、生物医学および農業研究への応用

シングルコホートコロニーと労働者ミツバチのホルモン治療の準備は役割および/または内分泌系との生理学関連を分析します

拘束と自由飛行ミツバチの神経薬理学的操作、

致死の農薬暴露の蜂蜜の蜂のコロニー レベルの効果を監視

バンブルビー(ボンバス)ハイブ入口のための3Dプリント花粉トラップ

ミツバチのコロニーからの花粉の収集と同定

交配ミツバチクイーンズへの農薬リスクの評価

致死の農薬暴露の蜂蜜の蜂のコロニーレベルの効果を監視