この方法は、硬いコロニーを維持し、ダニ生物学または宿主ベクター病原体相互作用を研究したり、これらの医学的に重要な属性の異なる制御尺度を評価するのに適している。これらの技術の主な利点は、そのシンプルさと短い期間です。そして最も重要な研究の実験ニーズに従って、修正される能力。
この方法は、実験室のウサギのハードダニの異なるライフステージを供給するために使用することができますが。また、羊などの他のホストシステムに適応することができます。溶け込み時の偶発的な剥離を最小限に抑えるために、外側のコーナーを丸めるEVA Foamのシートから適切なサイズのカプセルフレームを切断することから始めます。
自己接着フックテープの幅8ミリメートルのストリップを4枚カットし、フレームの側面にストリップを取り付けます。自己接着ループテープから同じサイズのストリップをカットし、フレーム上のフックテープにバインドします。次に、フレームを覆うのに十分な大きさの松の蚊のメッシュをカットし、必要に応じて張り出した材料をトリミングし、自己接着ループストリップにメッシュを貼り付けます。
カプセルの準備ができたら、ウサギを手動で拘束し、動物の背中と側面の実験領域を剃ります。速乾性非刺激性ラテックス接着剤を、調製したカプセルの全面に塗布し、1分後にカプセルを皮膚に軽く押し付けます。プロトコルの最も重要なステップは、皮膚にカプセルのフィールドアタッチメントです。
そのため、特に少なくとも3分間は角部でウサギの皮にカプセルの一定の圧力が必要となる。3分後、カプセルを少し持ち上げて、スパチュラを使って付着を視覚的に確認し、取り付けられていない部品に接着剤を塗布します。カプセルが固定されたら、ジャケットの損傷を防ぐために後足に保護テープを貼り、前脚を前のジャケットの開口部を通して、動物とジャケットの間の1本の指幅にジャケットの首を締めます。
ダニの侵入を開始するには、まず、カットオフチップで注射器にプラスチック綿栓のプランジャーエンドにダニを追加します。次に、カプセルの片隅からメッシュを持ち上げ、注射器をカプセルの奥深くに入れ、開口部を通ります。スポイトにプランジャーを挿入して、動物にダニをはびかせます。
その後、ゆっくりとカプセルからプランジャーを引っ張り出しながら、残りのダニを取り除くために皮膚に向かってプランジャーをねじります。すべてのティックが配信されたら、フックとループテープを再取り付けします。ジャケットの裏側をジッピングしてジャケットを閉じ、ウサギの後ろ足を後部弾性エンクロージャに挿入します。
その後、そのケージにウサギを返します。適切な実験時に、ウサギをベンチに移し、ジャケットを解凍します。ウサギを穏やかに拘束し、カプセルを開き、鉗子を使用して完全に魅了された成人とダニのツイスターを収集して、部分的に供給された成人を収集します。
エンゴージド幼虫とニンフは、皿にそれらをブラッシングすることによって収集することができます。次に、実験的に適切であればカプセルを再び閉じる。実験の最後に、ジャケットを外さずにカプセルから蚊のメッシュを完全に取り除きます。
3~4週間後、片方の角をそっとトリミングしてカプセルを取り除きます。カプセルを取り外したら、ジャケットを取り外し、ウサギがケージの中で回復できるようにします。プロトコルと実験が許せば、回収されたウサギを再利用するか、または採用のために提供することができます。
このプロトコルは、同じホスト上の複数のティック群の大量飼育を含む様々なタイプの実験に適しています。EVA発泡カプセルシステムは、様々なハードダニ種の異なる発達段階を供給する際に非常に成功することが証明されています。また、羊などの他のタイプの実験室の宿主に適応してもよい。
さらに、この多目的な方法は、宿主上のカプセルの変更可能な数、形状および組成に基づいて、様々な異なる実験設定の作成を容易にする。この手順では、実験後のウサギのホストの完全な回復も可能になります。このプロトコルは面倒ではなく、この技術に慣れるには集中的な訓練は必要ありません。
また、実験動物への材料、ステップおよびストレスの最小限の量が必要です。
