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현재 비디오는 개발 zebrafish의 forebrain에서 개별 신경 전구 세포에 대한 라이브 영상을 수행할 수 electroporation과 공촛점 현미경의 조합을 활용하는 방법을 보여줍니다. 생체내에서 분석이 방법으로 얻을 수 있습니다.
분할, 마이 그 레이션 및 신경 전구 세포의 분화의 정확한 패턴을 적절한 두뇌 개발과 기능 1,2에 중요한 있습니다. 생체내 환경에서 복잡한에서 신경 전구 세포의 동작을 이해하기 위해서는 두뇌에 손상 신경 전구 세포의 시간 경과 라이브 영상이 매우 필요합니다. 이 비디오에서는, 우리는 생체내에 forebrain 신경 전구 세포의 발전을 시각화하는 zebrafish 배아의 고유한 기능을 이용. 우리는 유전자 및 띄엄띄엄 라벨 개별 신경 전구 세포에 electroporation을 사용합니다. 간단히, DNA가 형광 표식에 대한 코딩 구조 22 시간 게시물 수정 (HPF) zebrafish 배아의 전기 펄스가 즉시 배달되었고,의 forebrain의 뇌실로 주입했다. 여섯 시간 후, electroporated zebrafish의 배아는 유리 바닥 문화 요리 낮은 용융 점 아가로 오스와 함께 장착했다. 찬란 표시 신경 전구 세포는 다음 물 수영 객관적인 렌즈를 사용하여 공촛점 현미경 고정 간격 36시간 위해 몇 군데 있었다. 현재의 방법은 forebrain 신경 전구 세포의 생체내 개발에 대한 통찰력을 얻을 수있는 방법을 제공하고 zebrafish 배아의 중추 신경 시스템의 다른 부분에 적용할 수 있습니다.
1. Zebrafish 태아의 준비
2. Electroporation 준비
3. Electroporation
4. 장착 및 시간 경과 라이브 영상
5. 대표 결과
그림 2에 표시된 22 HPF에서 EF1α - GFF + UAS - E1B - EGFP의 electroporated 배의 시간이 경과 공촛점 라이브 영상의 프레임을 선택하고 있습니다.
그림 1. 장치 셋업. (A) electroporation 설비의 조립 : 그라스 SD9 광장 펄스 자극기 (I), 왼쪽 micromanipulator (2), 전극 (3), 자이스 혈구가 현미경을 해부 (IV), 사출 바늘 (V)가, 오른쪽 micromanipulator (VI)과 Narishige IM 300 microinjector (VII). (B) 전극은 (i), forebrain 뇌실 (II) 및 사출 바늘 (3)의 상대 위치. 붉은 색의 DNA 솔루션 forebrain의 뇌실로 주입되어 있습니다. (C) 니콘 C1 공촛점 현미경에 살고 이미지의 조립 : 온도 컨트롤러 (I), 객관적인 렌 (2)와 유리 바닥 문화 요리 (3) (D에서 낮은 용해 지점 아가로 오스에 포함된 electroporated 배아 디핑 물 의 DNA microinjection에 뽑아 및 절단 바늘의) 이미지.
그림 2. 22 HPF에서 EF1α - GFF + UAS - E1B - EGFP와 electroporated 배아의 18 시간 시간이 경과 공촛점 라이브 이미지의 선택된 프레임. 뇌실의 표면은 각각의 이미지 프레임의 하단 측면에 있습니다. 스케일 바는 10 μm의를 나타냅니다.
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이 비디오에서는, 우리는 개발 zebrafish의 forebrain에서 clonal 수준에서 신경 전구 세포의 시간 경과 라이브 영상에 대한 방법을 보여줍니다. 우리는 유전자와 찬란 라벨 개별 신경 전구 세포에 테스트 기존의 electroporation 프로토콜에게 4-6을 수정했습니다. 단 몇 세포가 띄엄띄엄 electroporation의 상대적인 낮은 전압으로 표시 이후 clonally 관련 자손 세포로 구성된 혈통의 나무가 설정할 수 있습?...
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이 작품은 theNIH grantNS042626에 의해 지원되었다. 우리는 커트 손 및 이미징과 함께 도움을 UCSF 니콘 이미징 센터를 주셔서 감사합니다.
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