이 작품은 Regione 베네토 (Ricerca Sanitaria Finalizzata n.292/2008 및 Ricerca Sanitaria Finalizzata 2009)의 보조금을 통해 부분적으로 지원되었다. 저자는 인간의 안구 글로브의 사용에 관한 2,010분의 2,009 요약 데이터에 대한 박사 C. Griffoni 감사드립니다.

1. 각막의 현장 절단에서 안구 글로브에서 <ol><li> 약 15 분 사용 전 판상 공기 흐름 캐비닛 전환합니다. 70% 이소 프로필 알콜을 사용하여 층류 후드를 청소합니다. 이러한 수술 모자와 마스크 같은 개인 보호복 쓰세요. 손과 팔뚝을 스크럽하고 멸균 수건을 사용하여 건조. 무균 기술을 사용하여 무균 장갑과 가운이나 소매를 착용하십시오. </li><li> 무균 멸균 악기 트레이를 배치하여 무균 필드를 설정합니다. 악기는 멸균 있는지 확인합니다. 멸균 악기 팩을 열고 모든 오염을 피하는 멸균 분야에 뒤집기. </li><li> 그들은 사용의 편의를위한 멸균 필드의 가장자리에 인접해 있습니다 있도록 안구 글로브를 포함하는 병 (안구 단지)과 함께 모든 불임이 자료와 악기 (표 2)를 놓습니다. </li><li> 표 3에 표시된대로 이전에 준비를 보존 / 저장 매체와 병 라벨과 배치I-PVP와 함께 판상 공기 흐름 후드 (요오드 - polyvinylpyrrolidone), 나트륨 thiosulphate 및 멸균 생리 식염수의 표면 m PBS (인산염 완충 식염수). </li><li> 그들이 4 ° C.에 냉장고에 보관하기 때문에 안구 조직 및 솔루션 정상적인 실내 온도에 도달하도록 허용 반복 온난화 / 냉각 사이클을 피한다. 솔루션의 뚜껑과 안쪽과 눈 항아리는 해당 단지 옆에있는 위쪽으로 향하게 보관. </li><li> 멸균 집게를 사용하여 눈의 병에서 gauzes와 스폰지를 제거합니다. 안구 오는 11 일 오염을 제거하다 2 분 동안 멸균 I-PVP 0.5 %로 세계 젖어. 멸균 필드 밖 살균 트레이의 뚜껑에있는 두 개의 집게를 놓습니다. 멸균 포셉 또 한 쌍의를 사용하여 1 분 나트륨 thiosulphate 0.1 %에서 지구를 전송합니다. 같은 포셉 사용하여 멸균 생리 식염수 (PBS)를 포함하는 병으로 세계를 전송하고 그것을 운영까지 둡니다. t에서 다른 눈의 세계에 대해 동일한 절차를 반복합니다그는 같은 거였어요. </li><li> 판상 공기 흐름 후드 아래 작업, 파낸 각막에서 무균 각막두고 거즈 (반창고)와 약 5 밀리미터 공막엔를 사용하여 지구를 싸다. 눈 전구는 단순히 적절한 압력을 유지 손에 쥐어 수 있습니다. 조직 전체를 수술하는 동안 촉촉한 보관해야합니다. </li><li> 집게는 결막의 모든 최종 유적을 제거하는 가위와 함께 사용됩니다. 다른 악기와는 별도로 위의 작업에 사용되는 악기를 유지. limbus 지역 3~4mm의 scleral 절개를 수행하기 위해 메스 블레이드를 사용하여 다음 기본 uveal 조직을 구멍하기 피하고, 360 °로 절개를 연장하거나 각막의 정상적인 곡률 변형의 원인이됩니다. 유리체 신체의 분비를 피하 네 작은 간격을두고 네 큰 incisions 잘라. 이들 네 격차는 다른 조직에 대한 제거를 보장하지 절단됩니다. </li><li> 작은 scleral plaques의 존재가 절단을 방해 수도 있으므로 광고에 있는지 확인미세 가위와 scleral 절단을 lete. 이 작업은 맥락막, 망막 및 유리체 신체를 손상없이 수행되어야한다. </li><li> 그것이 완료될 수 있도록 절개를 검사합니다. 절개는 각막과 통신의 지점 ciliary 기관에 올바르게 corneo-scleral 림의 준수를 수행 되었다면. </li><li> 멸균 분야의 중심 근처에 싼 안구 지구를 아래로 설정합니다. 아래와 멀리 corneo-scleral 버튼에서 모양체 - 맥락막를 당길 절단에 사용된 scleral 가장자리 정지와 손을 잡고 집게를 사용하여 각막 제거를 완료합니다. </li><li> 부드럽게 corneo-scleral 버튼에서 남아있는 adhesions을 분리. 마찬가지 교차 각막 장력의 원인이 아니고 그것이 앞쪽에 챔버에 아래로 다시 내려시킬 수있는 방법으로 corneo-scleral 림들을 매력적이지도 않아. </li><li> 각막의 내피 세포 밀도는 tryp를 사용하여 hypotonic 솔루션과 세포 사망률이 선택되어 사용하여 검사합니다1 시경 분, 전지 블루 염색법 그 후 광학 현미경으로 계산 및 세포 / mm 2로 측정합니다. 후부는 페트리 접시의 바닥을 직시해야하면서 앞쪽에 챔버 뚜껑을 직시해야합니다. 내피 세포 밀도는 100X 배율 아래 목적에 격자를 사용하여 수동으로 집계 수 있습니다. 이탈리아의 이식에 대한 최소 허용 셀 개수는 2,200 내피 세포 / mm 2입니다. </li><li> 같은 표 3에 나타난 RT (실내 온도)에서 보존 이전에 준비 각막 저장 매체로 각막 발톱을 사용 corneo-scleral 림을 전송합니다. </li><li> 천연 결정 렌즈의 후부 챔버를 검사합니다. 공막엔가 준비되면 세계에서 모든 uvea의 잔류물과 유리체 유머를 제거합니다. 조심스럽게 포장을 푸는 및 무균 기술을 사용하고, 그 각각의 눈 항아리에 남은 후부 세그먼트를 반환합니다. 새로운 악기를 사용하여 다른 세계에 대한 절차를 반복합니다. 각막 재치 고쳐H 각막 발톱 31시 저장 매체 (오르간 문화)에서 보존 ° C. 그림 1A에 나타난 excised 각막은 다음 keratoplasty 또는 연구에 사용될 수 있습니다. </li><li> 적절한 폐기물 용기에 불필요한 재료와 바이오 유해 폐기물을 배출. 작품 70% 이소 프로필 알코올 스프레이를 사용하여 완료되면 작업 공간을 청소하십시오. </li><li> 28일 후 각막 모든 평가 매개 변수를 유지하는 경우 [같은 형태로서, 셀 개수, 투명성, 두께 및 미생물학 시험 - 세균성 및 Bactec 9,240 악기 (Becton 디킨슨, 밀라노, 이탈리아)를 사용하여 곰팡이]을, 그것은 다음에 운반하실 수 있습니다 표 4에 표시된 전송 매체를 사용하는 병원. 각막이 제거되고 판상 공기 흐름 캐비닛 아래의 매체를 수송 저장 장치에서 배치해야합니다. </li><li> 마찬가지로, 저장하는 동안 각막은 이식에 필요한 자사의 일반적인 크기보다 두꺼워지고, 안구 은행은 두께를 줄이기 위해 드 붓기 에이전트를 사용합니다. 우리전송 매체에서의 정상적인 크기로 각막을 얻을 6% dextran T500을 사용합니다. 4~8% dextran T500은 사용될 수 있지만, 6 %는 우리를 위해 최선을 역임했다. 이것은 쉽게 외과 마자 그들이 그것을받는대로 각막을 이식 할 수 있습니다. </li></ol> 2. 각막을 절개 후 안구 글로브에서 망막의 내장 적출 <ol><li> 절단 후, 각막은 그 형태와 내피 세포 밀도를 기반으로 이식하거나 연구에 선정되어 31 살에 저장하거나 보존 매체에 배치됩니다 ° C.가 안구 세계의 나머지는 다음, 수술 목적 등 공막엔 절연과 같은 추가 사용하기 위해 가공 연구를위한 망막 등 있습니다 </li><li> 망막 절단하기 전에 눈의 세계가 온전하고 제거됩니다 공막엔 부분에서만 각막 있는지 확인하십시오. 젤라틴 유리체 기관 정체 secreting있다면 그것은 망막 조직을 제거하기 어렵게된다. </li><li> 기증자는 아래의 65 세 경우 공막엔입니다serological 테스트 후에 수술 목적을 위해 멸균 PBS 하에서 보존하고있다. 이 경우 공막엔은 절단되지 않은 경우에만 유리 몸이 제거되고 전체 공막엔이 보존됩니다. </li><li> 망막 절단 들어, 멸균 집게와 가위를 이용하여 시신경쪽으로 이동 공막엔 각막 측면에서 작은 상처 또는 절개로 시작합니다. 집게를 사용하여 공막엔 부분을 잡고 똑바로 유리체 신체에 손상을 피하고 부분으로 일부를 절단 시신경쪽으로 가위로 잘라. </li><li> 서로 붙어 때 Choroidal plaques가 공막엔부터 구분해야합니다. 맥락막 조직을 폭로 전체 공막엔 잘라. 공막엔 완전히 절단되면 시신경 가까이에 그것을 절단하여 유리체 본문의 나머지와 함께 공막엔를 구분합니다. 그림 2A와 같이 맥락막으로 덮여 유리 몸 전체 볼이 표시됩니다. </li><li> 이 멸균 집게를 사용하면 한 사람과 그것을 감지하여 부드럽게 맥락막 층을 제거포셉의 페어와 다른 그것을 제거합니다. 또는 맥락막 레이어는 가위를 사용하여 제거할 수 있지만 망막에 손상을 일으킬 수 있으므로이 방법은 이상적으로 피해야한다. 부분적으로 맥락막 레이어를 제거하고 제거를 용이하게하기 위하여 그것을 했네요. </li><li> 맥락막 층이 제거되면 망막의 투명한 레이어를 명확하게 같은 그림 2B에 표시를 보여줄 것입니다. 맥락막 층도 제거할 수있는 인테리어 Bruch의 멤브레인을 가지고 있지만 그것은 육안으로 식별하기 어렵습니다. </li><li> 마찬가지로, 그림 2C와 같이 망막 층을 제거하기 위해 두 집게를 사용합니다. 그것은 시신경 근처에 excised 경우 망막의 높은 금액을 분리 쉽습니다. 그림 2D와 같이 안구의 모든 레이어를 이제 볼 수 있었다. </li><li> 망막 조직이 제거되면, 그것은 다른 목적으로 사용될 수 있고 보전에 사용되므로 후속 단계와 조건이 따라 달라질 수 있습니다. 예를 들어,망막 조직은 RNA 안정화 시약 (예 RNAlater) 또는 용해 완충액 (RNA 또는 DNA를 추출 용), dispase / 트립신 (세포의 분리를위한), 고정 솔루션을 (사전에 대해 파라핀이나 10월의 조직을 포함하는 포함하는 튜브에 삽입하실 수 있습니다 immunohistochemistry). </li><li> 모든 작업 영역을 지우고 70% 이소 프로필 알코올 스프레이를 사용하여 영역을 청소하십시오. </li></ol> 3. 대표 결과 그림 1A에서 본대로 corneo-scleral의 RIM은 scleral 림과 내피 형태, 일반적으로 관통 keratoplasty에 사용되는 각막 이런 종류의 필요한 금액과 제대로 excised 각막이다. excised 각막의 앞부분은 기질이 불투명도의 존재와 함께 손상된 경우 각막은 내피 keratoplasty / 사후 층상 keratoplasty (기질의 일부​​와 내피)에 사용될 수 있습니다. 내피 층이 손상 또는 내피 세포 밀도가 &lt;2,200 세포 / mm 2면 (그 경우, 반면에alian 표준), 각막은 앞부분은 층상의 keratoplasty (앞부분은 기질의 일부​​로 상피)에 사용될 수 있습니다. 내피 세포 개수가 필요한 미만인 경우 각막이 완전히 손상된 경우 그림 1B, 3B 및 3C 또는 폐기와 같이, 그것은 연구에 사용될 수, 반면 각막은 앞쪽에 층상 keratoplasty 또는 연구에 사용될 수 있습니다. 손상 조직을 mishandling의 원인이 될 수 stromal 또는 descemet 내피 흉터로 이어지는 전에 백내장 수술은 환자의 생명 등 동안 신체 상해의 개발은 따라서위한 광학 현미경으로 슬릿 램프하고있는 모든 조직을 확인하는 것이 필요집니다 미세 흉터 / 주름 / detachments. 각막은 일반적으로 이러한 장기 배양 (약 31 ° C) 일반적으로 유럽 국가 또는 저체온증 상태에 사용 (약 4 ℃) 일반적으로 미국에서 사용됩니다.과 같은 두 가지 조건 하에서 보존 그것이 댐을 다시 생성하는 데 도움으로 우리는 장기 배양을 사용하여노인 상피 세포는 높은 해부 시간이 다시 생기를 불어 넣다 내피 세포 검사로 수술을 계획에 대한 충분한 창문을주는 사주의 저장 기간 등 각막 미생물 (세균 및 곰팡이) 및 serological 테스트를위한 충분한 시간을 제공합니다 물론 7 일간 전송 매체에 보존 할 수 있습니다. 공막엔는 모든 choroidal plaques의 부드러운 제거를 보장 부분에서 일부를 잘라 수 있습니다. 그림 4와 같이 시신경, 맥락막 또는 망막이 급격하게 절단되었을 때 유리체 액체가 나물을하실 수 있습니다. RNA 분석에 excised 경우 망막은 빨리 조직이 excised 때 RNAlater으로 보존되어야합니다. 보통 ° 신선한 Eppendorf 튜브 (안전 잠금 튜브, 2 ML)에서 C까지 사용되거나 배송 건조와 맥락막과 망막 층의 1X1 cm가 excised되고 4에서 24 시간 동안 RNAlater에 보관 후 ° C는 -80하에 보존됩니다 얼음. 망막 조직은 떨어져 홍채에서 시신경 근처에 두 집게를 사용하여 excised해야망막를 검색하는 동안 또는 기타 색소 구조와 오염을 방지하고 RNA로 즉시 보존 용기로 전송해야 ciliary 마진가 불안정 다네. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig1.jpg" alt="그림 1" /> 그림 1은 좋은 품질의 각막 사이의 비교 :.) 제대로 excised 각막. 이러한 각막은 대개 4 주 장기 배양 아래에 보존되어 있습니다. 미생물 (Bactec 9,240 악기를 사용)과 형태학의 (세포 사망률 결정을 위해 trypan 파랑과 세포를 더럽히는 것과 100X 확대와 광학 현미경으로 세포를 관찰) 시험은 병원 (그림 3A)으로 운반하기 전에 수행됩니다; b)는 구부러진의 각막 어느 결국 높은 descemet의 주름과 슬릿 램프 현미경을 사용하여 검사 높은 내피 세포의 손상에 의한 이식 거부 반응이 생깁니다. 이러한 각막은 대개 입술에 사용됩니다어스 또는 폐기됩니다. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig2.jpg" alt="그림 2" /> 그림 2. 망막 조직의 정확한 절단을 보장하기 위해 사용되는 방법.) 95 곡선 mm 또는 뭉툭한 끝 멸균 가위와 0.70 mm 치아 멸균 포셉에 의해 지배 100mm의 11X2와 24mm 칼날을 사용하여 눈의 세계에서 공막엔 분석 해 봅시다. 공막엔는 집게가 가위를 사용하여 시신경을 향해 곧장 그것을 절단과 함께 한쪽 개최하여 절단해야합니다. 맥락막 계층은 이제 쉽게 볼 것이다; b)는 0.70 밀리미터 치아 멸균 포셉에 의해 통치되고이 100mm의 11X2를 사용하여 맥락막은 기본 투명한 망막 레이어를 드러내하는 차별을 찢어에 의해 제거되며 C) 투명 망막 계층은 매우 조심스럽게 근처 excised됩니다 같은 집게를 사용하여 유리체 유체의 배설없이 시신경. 포셉 모두 망막의 각 측면을 보유해야하며 조직은 부드럽게 인제를 제거한다G는 시신경 근처 망막 조직의 좋은 금액을 얻기 위해, 각막쪽으로 이동. 조직은 다양한 크기로 절단 및 분석 실험에 사용될 수 있으며, D) 각막 제거 따라 눈의 다른 레이어는이 그림에서 볼 수 있습니다. 맥락막의 시신은 눈의 다른 부분을 손상시키지 않고 망막에 의해 첫번째 다음에 제거됩니다. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig3.jpg" alt="그림 3" /> 그림 3. 광학 현미경 100X 배율 아래에서 볼 세포 밀도 및 형태의 다른 유형의 비교.) 좋은 내피 세포 밀도 (&gt; 2,200 세포 / mm 2) 조직 형태 (이하 다형성, 낮은 변성없고 영양 장애와 0 % 이식에 적합한 각막의 사망률), b)는 가난한 내피 세포 밀도 (약 1200년부터 1400년까지 세포 / mm 2) 조직 형태 (매우 높은 다형성과 degen약 30-40% 전반적인 사망률과 함께 세포의 eration)는 trypan 블루 염색법 후에 관찰되며, 눈의 세계에서 각막를 검색하는 동안 C) 내피 세포의 일부는 내피 시트의 분리로 인해 손상됩니다. 이것은 trypan 파랑에 의해 지역 스테인드에서 세포 사망을 관찰하여 확인되며 D) descemet의 주름은 벤딩 교차 각막 장력을 만들고, 절단 시에 강렬한 등의 악기를 사용하여 인해 각막의 mishandling로 형성된다. 그림은 각막의 주변 및 광학 영역 사이에있는 두꺼운 개발 의원성 폴드를 보여줍니다. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig4.jpg" alt="그림 4" /> 맥락막 및 망막 조직에 그림 4. 손해 결국 각막을 절개 동안 유리체 유체의 배설로 안내합니다. 망막은 어렵게 양질의 휴지 부 소비세에 만드는 유리 몸에 연루 받게오염을 thout. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765table1.jpg" alt="표 1" /> 표 1. Fondazione Banca에서 2009 년과 2010 동안 인간의 안구 글로브를 사용하여 수행한 활동의 범위 요약 Occhi을 (베네치아, 이탈리아) Degli. 조직의 약 60 %는 따라서 과학 및 의학 연구에 (40 %) 안구 글로브의 높은 숫자를 떠나, 이식에 사용되었다. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig1sup.jpg" alt="보충 그림 1" /> 보충 그림 1. 인간의 눈을 5 해부학. 인간 안구의 다른 부분은 조직의 정확한 위치를 수행하는 데,이 그림에 표시됩니다.

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저자는 이익 갈등이 없습니다.

, 정확한 절단 및 각막 및 망막 조직의 적절한 보존 모두 같은 내피 손상 또는 descemet의 폴드의 높은 숫자 등 사소한 결함이 그래프트 온도 변경 반면 각막의 장애 또는 mishandling 것은 망막 조직의 무결성을 손상 수로 이어질 수있는 등의 중요합니다. 본 논문의 목적은 각막 및 망막 조직이 이식 또는 연구 목적으로 사용을 침해할 수있는 손해 또는 변경을 유도하지 않고, 최적의 격리 수있는 방법을...

각막 및 망막의 절단을위한 재료. <table border="1"><tbody><tr><td> 제품 설명 </td><td> 치수 </td><td> 회사 소개 / 연구원 </td></tr><tr><td> 경비가 삼엄 메스 일회용 </td><td> 블레이드 사이즈 15 </td><td> 스완 - 모튼 </td></tr><tr><td> 멸균 붕대 </td><td> 5cm는 X 5cm, 8 층, 5 개 </td><td> Artsana </td></tr><tr><td> 멸균 일회용 의료 타올 </td><td> 35 X 50cm </td><td> U.Jet </td></tr><tr><td> 멸균 가위 </td><td> 블레이드 24mm / 전체 길이. 무딘, 95mm 곡선 </td><td> e.janach </td></tr><tr><td> 멸균 포셉 </td><td> 스테인레스 스틸 -100 mm 11 X 2는 0.70 mm 치아에 의해 지배 </td><td> e.janach </td></tr><tr><td> 각막 발톱 - 일회용 의료 기기 </td><td></td><td> NIIOS (Hippocratech) </td></tr&gt; <tr><td></td><td> 준비 </td><td></td></tr><tr><td> PBS </td><td> [10X] 900 ML D / W (증류수) 100 ML PBS </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td></tr><tr><td> NA-thiosulphate </td><td> PBS [1X] 1 리터 1 GM 나 - thiosulphate </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td></tr><tr><td> I-PVP </td><td> 1리터 D / W 5 GM I-PVP </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td></tr></tbody></table> 표 2. 테이블은 각막 및 망막의 절단과 그들로부터받은 회사를 위해 사용되는 재료에 대해 설명합니다. 저장 매체에 대한 자료 (2000 ML). <table border="1"><tbody><tr><td> 구성 요소 </td><td> 공급 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 집중 </td><td> 양 </td></tr><tr><td> MEM(1X) 액체 </td><td> Invitrogen </td><td> 32360-034 </td><td></td><td> 1900 ML </td></tr><tr><td> 나트륨 pyruvate </td><td> Invitrogen </td><td> 11360-039 </td><td> 1mM (10ml / L) </td><td> 20 ML </td></tr><tr><td> L-글루타민 </td><td> Invitrogen </td><td> 25030-032 </td><td> 2mM (10ml / L) </td><td> 20 ML </td></tr><tr><td> antimycotic / 항생제 </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td><td> A5955-20ML </td><td> 10ml / L </td><td> 20 ML </td></tr><tr><td> 갓 태어난 송아지 혈청 </td><td> Invitrogen </td><td> 26010-74 </td><td> 2퍼센트 (20 ML / L) </td><td> 40 ML </td></tr></tbody></table> 표 3. 저장 매체에 대한 자료. 저장 매체의 작성 항아리에 위에 주어진대로 특정 농도를 사용하는 모든 재료를 넣고 잘 섞는다. 그들을 필터링연동 펌프의 도움으로 0.2 미크론 필터의 기공 크기 (Millipore, 밀라노, 이탈리아)을 사용합니다. RT에서 병에 매체를 보존. 전송 매체에 대한 자료 (2000 ML). <table border="1"><tbody><tr><td> 구성 요소 </td><td> 공급 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 집중 </td><td> 양 </td></tr><tr><td> MEM (1X) 액체 </td><td> Invitrogen </td><td> 32360-034 </td><td></td><td> 1800 ML </td></tr><tr><td> 나트륨 pyruvate </td><td> Invitrogen </td><td> 11360-039 </td><td> 1mM (10 ML / L) </td><td> 20ml </td></tr><tr><td> L-글루타민 </td><td> Invitrogen </td><td> 25030-032 </td><td> 2mM (10 ML / L) </td><td> 20ml </td></tr><tr><td> 갓 태어난 송아지 혈청 </td><td> Invitrogen </td><td> 26010-74 </td><td> 2퍼센트 (20 ML / L) </tD&gt; <td> 40 ML </td></tr><tr><td> Dextran t500 </td><td> Pharmacosmos </td><td> 551005004007 </td><td> 6% (60 GM / 리터) </td><td> 120g / L </td></tr></tbody></table> 표 4. 전송 매체를위한 자재. 전송 매체의 준비 MEM의 ~ 1.5 리터에 Dextran 6 % 추가하고 밤새 그것을 두십시오. 미디어 성분의 나머지 부분을 추가하고 진공 펌프를 사용하여 0.2 미크론 필터 (Millipore, 밀라노, 이탈리아)를 사용하여 필터링합니다. RT에서 병에 매체를 보존.

a simplified technique for in situ excision of cornea and evisceration of retinal tissue from human ocular globe

핵의 제거는 세계의 나머지 부분은 그대로두고 시체 같은 기증자로부터 눈의 세계를 검색하는 과정입니다. 절단은 안구 세계에서 그것이 별도의 가공하여 안구 조직, 특히 각막의 검색을 말합니다. 내장 적출은 망막으로 여기 언급된 내장을 제거하는 과정입니다. 안구 지구본이 각막, 공막엔, 유리 몸, 렌즈, 홍채, 망막, 맥락막, 근육 등 (Suppl. 그림 1)으로 구성되어 있습니다. 환자가 각막 손상을 앓고되면 각막은 제거되어야하고 건강한 한 keratoplastic 수술로 이식해야합니다. 유전 질환이나 망막의 기능 결함은 상상력을 위태롭게 수 있습니다. 인간 안구 글로브 같은 눈 뱅킹, 인간 각막이나 공막엔 이식과 안구 조직에 관한 연구 등 다양한 수술 절차에 사용될 수 있습니다. 그러나, 인간의 각막 및 망막 절단에서 사용할 약간의 정보는 아마도 리터에 의한있다인간의 조직에 imited 접근성. 유사한 절차를 설명하는 연구의 대부분은 동물 모델에서 수행됩니다. 연구 과학자들은 인간의 눈 개발, 항상성 및 기능에 대한 지식을 확장하기 위해 적절하게 해부하고 잘 보존되어 안구 조직의 가용성에 의존하고 있습니다. 우리는 그들 중 약 40 % (표 1) 연구 목적으로 사용되는 들락 거 렸고 안구 글로브의 높은 금액을받을 수 있으므로, 소비세에 기술을 정의하고 이러한 조직에서 실험의 엄청난 금액을 수행하고 정기적으로 그것을 보존하실 수 있습니다. 각막은 망막에 빛의 전송을 가능하게하고이 ​​목적을 위해 항상 투명성 좋은 정도를 유지한다 avascular 조직이다. 각막 내에 줄기 세포의 저수지입니다 limbus 지역은 상피 세포의 재건을 도움이 각막 투명성과 선명도를 유지하는 결막의 전면에 자라난을 제한합니다. 크기와 일<html> 그 중 하나의 변화가 산만, 불분명 비전으로 이어질 수로 각막의 ickness는 분명한 비전에 대한 중요합니다. 각막은 5 층의 구성, 내피) 상피, B) 보먼의 계층, C) 기질, D) Descemet의 멤브레인 및 전자). 모든 레이어는 분명한 비전에게 4,5,6을 보장하기 위해 제대로 작동해야합니다. 맥락막은 Bruch의 막에 의해 내부에 묶여 공막엔와 망막 사이의 중간 튜닉,하고 눈을 혈액의 흐름을 책임지고 있습니다. 맥락막은 또한 망막 5,6의 바깥 레이어로 온도 및 공급 영양 조절하는 데 도움이됩니다. photoreceptive 부분과 아닌 부분 수용 : 망막은 안구 세계 (Suppl. 그림 1)의 뒤쪽을 커버하고 두 부분으로 구성되어 신경 조직의 계층입니다. 망막은 각막과 렌즈로부터 빛을 수신하는 데 도움이 결국 시신경 5,6의 도움을 받아 뇌로 전달 화학 에너지로 변환합니다. 이러한 조직이 목표로 연구 목적을 위해 불가 결한대로 ove_content은 &quot;&gt; 본 논문의 목적은 인간의 안구 글로브에서 각막 및 망막 조직의 해부를 위해 프로토콜을 제공하는 것은. 인접 조직과 교차 오염 방지와 RNA의 무결성을 보존하는 것은 기본적인 중요하다 에서는 (i) 안구 조직의 transcriptome, (2)를 특성화 재생 의료 프로젝트를 위해 줄기 세포를 분리, 그리고 (iii) 영향 / 일반 과​​목에서 조직 간의 histological 차이를 평가. 본 논문에서 우리는 기술을 설명하는 현재 제거하는 데 사용할 각막, 안구 세계에서 맥락막과 망막 조직은. 자 인간 안구 지구본과 각막 및 망막 조직의 절단의 절개를 위해 상세한 프로토콜을 제공합니다. 첨부된 동영상은 연구자들이 검색을 위해 적절한 기술을 배우는 데 도움이됩니다 정기적으로 찾기 어려운 귀한 인간의 조직.

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A Simplified Technique for In situ Excision of Cornea and Evisceration of Retinal Tissue from Human Ocular Globe

신문은 인간의 시체 같은 기증자의 안구 세계에서 망막 조직을 내장을 들어낸하는 간단한 소비세 각막에 대한 기술과 설명합니다. 기술은 안구 세계의 다른 조직을 손상시키지 않고 이식, 수술이나 연구 목적을 위해 사용되는 소비세 양질의 조직에 도움이됩니다 여기서 설명했다.

위한 간편한 기법<em&gt; 현장에서</em인간 안구 글로브에서 각막 및 망막 조직의 내장 적출의&gt; 절단

Enucleation is the process of retrieving the ocular globe from a cadaveric donor leaving the rest of the globe undisturbed. Excision refers to the ...

a-simplified-technique-for-situ-excision-cornea-evisceration-retinal

Research

JoVE Journal

Medicine

A Simplified Technique for In situ Excision of Cornea and Evisceration of Retinal Tissue from Human Ocular Globe

20.7K 조회수.  Fondazione Banca Degli Occhi del Veneto O.N.L.U.S.. 신문은 인간의 시체 같은 기증자의 안구 세계에서 망막 조직을 내장을 들어낸하는 간단한 소비세 각막에 대한 기술과 설명합니다. 기술은 안구 세계의 다른 조직을 손상시키지 않고 이식, 수술이나 연구 목적을 위해 사용되는 소비세 양질의 조직에 도움이됩니다 여기서 설명했다.

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Technique to Collect Fungiform (Taste) Papillae from Human Tongue

The sense of taste is critical for human life. It informs the body about the quality of food that will be potentially ingested and stimulates metabolic processes that prepare the alimentary canal for digestion. Steady progress is being made towards understanding the early biochemical and molecular events underlying taste transduction (for a review, Breslin and Spector, 20081). However, progress to date has largely resulted from animal models. Yet, since marked differences in receptor specificity and receptor density vary among species, human taste transduction will only be understood by using human taste tissue. Here we describe a biopsy technique to collect human fungiform papillae, visible as rounded pink anterior structures, about 0.5 mm in diameter that contain taste buds. These biopsied papillae are used for several purposes including the isolation of viable taste bud cells, in situ hybridization, immunohistochemistry and, through techniques of molecular biology, the identification of taste-specific novel proteins.

Technique to Collect Fungiform Taste Papillae from Human Tongue

Knowledge of molecular mechanisms underlying gustatory transduction has recently enjoyed significant advances, largely due to using animal models. However, the wide diversity in taste sensitivity and specificity among mammals warrants studies in human tissue. We describe a biopsy technique to collect living taste cells from the papillae on human tongue.

인간 혀에서 Fungiform (맛) 용의자를 수집하는 기술

The sense of taste is critical for human life. It informs the body about the quality of food that will be potentially ingested and stimulates metabolic ...

연구

의학

A Simplified Technique for Producing an Ischemic Wound Model

One major obstacle in current diabetic wound research is a lack of an ischemic wound model that can be safely used in diabetic animals. Drugs that work well in non-ischemic wounds may not work in human diabetic wounds because vasculopathy is one major factor that hinders healing of these wounds. We published an article in 2007 describing a rabbit ear ischemic wound model created by a minimally invasive surgical technique. Since then, we have further simplified the procedure for easier operation. On one ear, three small skin incisions were made on the vascular pedicles, 1-2 cm from the ear base. The central artery was ligated and cut along with the nerve. The whole cranial bundle was cut and ligated, leaving only the caudal branch intact. A circumferential subcutaneous tunnel was made through the incisions, to cut subcutaneous tissues, muscles, nerves, and small vessels. The other ear was used as a non-ischemic control. Four wounds were made on the ventral side of each ear. This technique produces 4 ischemic wounds and 4 non-ischemic wounds in one animal for paired comparisons. After surgery, the ischemic ear was cool and cyanotic, and showed reduced movement and a lack of pulse in the ear artery. Skin temperature of the ischemic ear was 1-10 &deg;C lower than that on the normal ear and this difference was maintained for more than one month. Ear tissue high-energy phosphate contents were lower in the ischemic ear than the control ear. Wound healing times were longer in the ischemic ear than in the non-ischemic ear when the same treatment was used. The technique has now been used on more than 80 rabbits in which 23 were diabetic (diabetes time ranging from 2 weeks to 2 years). No single rabbit has developed any surgical complications such as bleeding, infection, or rupture in the skin incisions. The model has many advantages, such as little skin disruption, longer ischemic time, and higher success rate, when compared to many other models. It can be safely used in animals with reduced resistance, and can also be modified to meet different testing requirements.

We have developed a minimally invasive technique to create a rabbit ischemic ear wound model by dividing the central artery and nerve and the cranial neurovascular bundle. A subcutaneous tunnel then cuts all subcutaneous tissues. This procedure causes minimal skin disruption and can be safely used in diabetic animals.

허혈성 상처 모델 생산을위한 단순화된 테크닉

One major obstacle in current diabetic wound research is a lack of an ischemic wound model that can be safely used in diabetic animals. Drugs that work ...

Multi-electrode Array Recordings of Human Epileptic Postoperative Cortical Tissue

Epilepsy, affecting about 1% of the population, comprises a group of neurological disorders characterized by the periodic occurrence of seizures, which disrupt normal brain function. Despite treatment with currently available antiepileptic drugs targeting neuronal functions, one third of patients with epilepsy are pharmacoresistant. In this condition, surgical resection of the brain area generating seizures remains the only alternative treatment. Studying human epileptic tissues has contributed to understand new epileptogenic mechanisms during the last 10 years. Indeed, these tissues generate spontaneous interictal epileptic discharges as well as pharmacologically-induced ictal events which can be recorded with classical electrophysiology techniques. Remarkably, multi-electrode arrays (MEAs), which are microfabricated devices embedding an array of spatially arranged microelectrodes, provide the unique opportunity to simultaneously stimulate and record field potentials, as well as action potentials of multiple neurons from different areas of the tissue. Thus MEAs recordings offer an excellent approach to study the spatio-temporal patterns of spontaneous interictal and evoked seizure-like events and the mechanisms underlying seizure onset and propagation. Here we describe how to prepare human cortical slices from surgically resected tissue and to record with MEAs interictal and ictal-like events ex vivo.

We here describe how to perform multi-electrode array recordings of human epileptic cortical tissue. Epileptic tissue resection, slice preparation and multi-electrode array recordings of interictal and ictal events are demonstrated in detail.

인간의 간질 수술 후 두피 조직의 다중 전극 어레이 레코딩

Epilepsy, affecting about 1% of the population, comprises a group of neurological disorders characterized by the periodic occurrence of seizures, which ...

Isolation and Excision of Murine Aorta; A Versatile Technique in the Study of Cardiovascular Disease

Cardiovascular disease is a broad term describing disease of the heart and/or blood vessels. The main blood vessel supplying the body with oxygenated blood is the aorta. The aorta may become affected in diseases such as atherosclerosis and aneurysm. Researchers investigating these diseases would benefit from direct observation of the aorta to characterize disease progression as well as to evaluate efficacy of potential therapeutics. The goal of this protocol is to describe proper isolation and excision of the aorta to aid investigators researching cardiovascular disease. Isolation and excision of the aorta allows investigators to look at gross morphometric changes as wells as allowing them to preserve and stain the tissue to look at histologic changes if desired. The aorta may be used for molecular studies to evaluate protein and gene expression to discover targets of interest and mechanisms of action. This technique is superior to imaging modalities as they have inherent limitations in technology and cost. Additionally, primary isolated cells from a freshly isolated and excised aorta can allowing researchers to perform further in situ and in vitro assays. The isolation and excision of the aorta has the limitation of having to sacrifice the animal however, in this case the benefits outweigh the harm as it is the most versatile technique in the study of aortic disease.

Pathology of the aorta can lead to severe morbidity and mortality, therefore research of disease progression and potential therapies is warranted. Here, we present a protocol to isolate and excise the murine aorta to aid researchers in their investigation of cardiovascular disease.

분리 및 설치류 대동맥 절제; 심혈관 질환의 연구에 다목적 기술

Cardiovascular disease is a broad term describing disease of the heart and/or blood vessels. The main blood vessel supplying the body with oxygenated ...

Establishment of Human Epithelial Enteroids and Colonoids from Whole Tissue and Biopsy

The epithelium of the gastrointestinal tract is constantly renewed as it turns over. This process is triggered by the proliferation of intestinal stem cells (ISCs) and progeny that progressively migrate and differentiate toward the tip of the villi. These processes, essential for gastrointestinal homeostasis, have been extensively studied using multiple approaches. Ex vivo technologies, especially primary cell cultures have proven to be promising for understanding intestinal epithelial functions. A long-term primary culture system for mouse intestinal crypts has been established to generate 3-dimensional epithelial organoids. These epithelial structures contain crypt- and villus-like domains reminiscent of normal gut epithelium. Commonly, termed &#8220;enteroids&#8221; when derived from small intestine and &#8220;colonoids&#8221; when derived from colon, they are different from organoids that also contain mesenchyme tissue. Additionally, these enteroids/colonoids continuously produce all cell types found normally within the intestinal epithelium. This in vitro organ-like culture system is rapidly becoming the new gold standard for investigation of intestinal stem cell biology and epithelial cell physiology. This technology has been recently transferred to the study of human gut. The establishment of human derived epithelial enteroids and colonoids from small intestine and colon has been possible through the utilization of specific culture media that allow their growth and maintenance over time. Here, we describe a method to establish a small intestinal and colon crypt-derived system from human whole tissue or biopsies. We emphasize the culture modalities that are essential for the successful growth and maintenance of human enteroids and colonoids.

We describe a method to establish human enteroids from small intestinal crypts and colonoids from colon crypts collected from both surgical tissue and biopsies. In this methodological article, we present the culture modalities that are essential for the successful growth and maintenance of human enteroids and colonoids.

전체 조직과 조직 검사에서 인간 상피 Enteroids과 Colonoids 설립

The epithelium of the gastrointestinal tract is constantly renewed as it turns over. This process is triggered by the proliferation of intestinal stem ...

Corneal Epithelial Abrasion with Ocular Burr As a Model for Cornea Wound Healing

The murine cornea provides an excellent model to study wound healing. The cornea is the outermost layer of the eye, and thus is the first defense to injury. In fact, the most common type of eye injury found in clinic is a corneal abrasion. Here, we utilize an ocular burr to induce an abrasion resulting in removal of the corneal epithelium in vivo on anesthetized mice. This method allows for targeted and reproducible epithelial disruption, leaving other areas intact. In addition, we describe the visualization of the abraded epithelium with fluorescein staining and provide concrete advice on how to visualize the abraded cornea. Then, we follow the timeline of wound healing 0, 18, and 72 h after abrasion, until the wound is re-epithelialized. The epithelial abrasion model of corneal injury is ideal for studies on epithelial cell proliferation, migration and re-epithelialization of the corneal layers. However, this method is not optimal to study stromal activation during wound healing, because the ocular burr does not penetrate to the stromal cell layers. This method is also suitable for clinical applications, for example, pre-clinical test of drug effectiveness.

This protocol describes a method to inflict an abrasion to the ocular surface of the mouse, and to follow the wound healing process thereafter. The protocol takes advantage of an ocular burr to partially remove the surface epithelium of the eye in anaesthetized mice.

각 막에 대 한 모델로 눈 버와 각 막 상피 마모 상처 치유

The murine cornea provides an excellent model to study wound healing. The cornea is the outermost layer of the eye, and thus is the first defense to ...

Effect of Artificial Tear Formulations on the Metabolic Activity of Human Corneal Epithelial Cells after Exposure to Desiccation

Artificial lipid-containing tear formulations are developed to reduce tear evaporation by the restoration of a deficient tear lipid layer. Artificial tear formulations that prevent cell desiccation will result in ocular surface protection and the maintenance of cell metabolic activity. During dehydration, cells undergo the process of loss of metabolic activity and subsequently cell death. This work describes a method for assessing the efficacy of artificial tear formulations. The metabolic dye (i.e., alamarBlue) changes from a low fluorescent molecule resazurin to a fluorescent molecule resorufin in viable cells. The biological performance of an artificial tear formulation is measured as the ability of the formulation to (a) maintain cell viability and (b) provide cell protection from desiccation. Growth media and saline are used as controls for the cell viability/desiccation tests. Cells are incubated with test solutions for 30 min and then desiccated for 0 or 5 min at 37 &#176;C and 45% relative humidity. Cell metabolic activity after initial exposure and after cell desiccation is then determined. The results show the comparative effects of eye drop formulations on cell metabolic activity and desiccation protection. This method can be used to test dry eye formulations that are designed to treat individuals with evaporative dry eye.

The purpose of this protocol is to evaluate if different artificial tear formulations can protect human corneal epithelial cells from desiccation using an in vitro model. After exposure to artificial tear formulations and desiccation, human corneal epithelial cells are assessed for metabolic activity.

건조에 노출 된 후 인간 각막 상피 세포의 대사 활동에 인공 눈물 제형의 효과

Artificial lipid-containing tear formulations are developed to reduce tear evaporation by the restoration of a deficient tear lipid layer. Artificial tear ...

Characterization of a Novel Human Organotypic Retinal Culture Technique

Previous human organotypic retinal culture (HORC) models have utilized detached retinas; however, without the structural support conferred by retinal pigment epithelium-choroid (RPE-choroid) and sclera, the integrity of the fragile retina can easily be compromised. The aim of this study was to develop a novel HORC model that contains the retina, RPE-choroid and sclera to maintain retinal integrity when culturing retinal explants.
After cutting circumferentially along the limbus to remove iris and lens, four deep incisions were made to flatten the eyecup. In contrast to previous HORC protocols, a trephine was used to cut through not only the retina but also the RPE-choroid and sclera. The resultant triple-layered explants were cultured for 72 h. Hematoxylin and Eosin staining (H&#38;E) was used to assess anatomical structures and retinal explants were further characterized by immunohistochemistry (IHC) for apoptosis, M&#252;ller cell integrity and retinal inflammation. To confirm the possibility of disease induction, explants were exposed to high glucose (HG) and pro-inflammatory cytokines (Cyt), to mimic diabetic retinopathy (DR). The Luminex magnetic bead assay was used to measure DR-related cytokines released into the culture medium.
H&#38;E staining revealed distinct retinal lamellae and compact nuclei in retinal explants with the underlying RPE-choroid and sclera, while retinas without the underlying structures exhibited reduced thickness and severe nuclei loss. IHC results indicated absence of apoptosis and retinal inflammation as well as preserved M&#252;ller cell integrity. The Luminex&#160;assays showed significantly increased secretion of DR-associated pro-inflammatory cytokines in retinal explants exposed to HG + Cyt relative to baseline levels at 24 h.
We successfully developed and characterized a novel HORC protocol in which retinal integrity was preserved without apoptosis or retinal inflammation. Moreover, the induced secretion of DR-associated pro-inflammatory biomarkers when exposing retinal explants to HG + Cyt suggests that this model could be used for clinically translatable retinal disease studies.

This study aims to develop a novel human organotypic retinal culture (HORC) model that prevents compromising retinal integrity during explant handling. This is achieved by culturing the retina with the overlying vitreous and the underlying retinal pigment&#160;epithelium-choroid (RPE-choroid) and sclera.

소설 인간 오르가노피 망막 문화 기술의 특성화

Previous human organotypic retinal culture (HORC) models have utilized detached retinas; however, without the structural support conferred by retinal ...

Retinal Organoid Induction System for Derivation of 3D Retinal Tissues from Human Pluripotent Stem Cells

Retinal degenerative diseases are the main causes of irreversible blindness without effective treatment. Pluripotent stem cells that have the potential to differentiate into all types of retinal cells, even mini-retinal tissues, hold huge promises for patients with these diseases and many opportunities in disease modeling and drug screening. However, the induction process from hPSCs to retinal cells is complicated and time-consuming. Here, we describe an optimized retinal induction protocol to generate retinal tissues with high reproducibility and efficiency, suitable for various human pluripotent stem cells. This protocol is performed without the addition of retinoic acid, which benefits the enrichment of cone photoreceptors. The advantage of this protocol is the quantification of EB size and plating density to significantly enhance the efficiency and repeatability of retinal induction. With this method, all major retinal cells sequentially appear and recapitulate the main steps of retinal development. It will facilitate downstream applications, such as disease modeling and cell therapy.

Here we describe an optimized retinal organoid induction system, which is suitable for various human pluripotent stem cell lines to generate retinal tissues with high reproducibility and efficiency.

인간 다능성 줄기 세포에서 3D 망막 조직의 파생을 위한 망막 오르간로이드 유도 시스템

Retinal degenerative diseases are the main causes of irreversible blindness without effective treatment. Pluripotent stem cells that have the potential to ...

Human Subcutaneous Adipose Tissue Sampling Using a Mini-Liposuction Technique

Studies on adipose tissue are useful in understanding metabolic and other conditions. Human subcutaneous adipose tissue is accessible. With appropriate training and strict adherence to aseptic technique, subcutaneous adipose samples can be safely and efficiently obtained in a non-clinical setting by researchers. Following the administration of local anesthetic lateral to the umbilicus, a 14 G needle attached to a 5 or 10 mL syringe is inserted through the skin into the subcutaneous tissue. Under suction, the syringe is moved in a reciprocating, slicing motion to isolate fragments of adipose tissue. Withdrawing the plunger is enough to ensure that adipose tissue fragments are aspirated through the needle into the syringe. A single biopsy can collect about 200 mg of tissue. This biopsy technique is very safe for both participants and research staff. Following the biopsy, participants can resume most everyday activities, although they should avoid swimming and overly strenuous activities for 48 h to avoid excessive bleeding. Participants can safely undergo 2 biopsies within a single day, meaning that the technique can be applied in before-after acute intervention studies.

The manuscript and associated video demonstrate a percutaneous biopsy technique to obtain samples of subcutaneous adipose tissue from areas surrounding the umbilicus. This method is a low-risk and efficient way to investigate a range of parameters (e.g., gene or protein expression, enzyme activity, lipid content) within adipose tissue.

미니 지방 흡입 기술을 사용한 인간 피하 지방 조직 샘플링

Studies on adipose tissue are useful in understanding metabolic and other conditions. Human subcutaneous adipose tissue is accessible. With appropriate ...