이 작품은 독일 Forschungsgemeinschaft (SFB 656, 뮌스터, 독일, 프로젝트 C7 &amp; C6)와 IZKF 뮌스터 (코어 단위 SMAP)에 의해 지원되었다. 저자는 트룩 반 르, 앤 Kanzog, 유트 NEUGEBAUER, Wiebke Gottschlich 및 radiotracers 생산을위한 우수한 기술 지원과 다니엘 BURKERT와 스벤 Fatum에 대한 로마 Priebe에 감사합니다.

1. 기증자의 장기 복구 <ol><li> 정위 현미경, 8-10 주 된 쥐 (기증자와받는 사람의 체중이 일치해야합니다)의 기록 중량을 설정합니다. </li><li> 기증자 쥐 (루이스 브라운 노르웨이 F1, LBN F1)은 산소 / isoflurane을 흡입 (isoflurane을 4 % / 2 L / 분 산소)를 사용하여 마취. 2-2.5 %로 isoflurane을 낮추는 방법으로 마취를 유지합니다. </li><li> 수술 패드에 마취 쥐를 놓습니다. 패드에 접착 테이프를 가진 쥐의 사지를 고정하고 쥐의 눈에 안과 연고 (Bepanthen, 바이엘)을 적용합니다. </li><li> 면도 쥐의 복부를 소독하고 치골에서 간 꼬리 국경 복부 정중선 절개를 수행합니다. 주의 깊게 오른쪽으로 대장으로 이동하여 왼쪽 신장과 혈관을 노출합니다. 왼쪽 신장에 거즈의 얇은 시트를 배치하고 건조를 방지하기 위해 예열 등장 식염수로 적시십시오. </li><li> 조심스럽게 (뒤몽 각도 팁 집게로 지방 조직을 해부 몬트 SS-45 집게 이녹스 의료, 파인 과학 도구, cat.no. 11203-25) 좌측 요관을 포위. 요관과의 직접적인 접촉을 피 대신에, 충분한 주변의 지방 조직으로 동원. </li><li> 뒤몽 각도 팁 집게를 사용하여 신장 동맥에서 좌측 신장 정맥을 분리합니다. 두 선박의 모든 지방과 결합 조직을 제거하고 부신과 고환 혈관을 부식. </li><li> 각각 왼쪽 신장 동맥과 정맥에 이상과 접합 아래의 대동맥과 하대 정맥 (IVC)를 해부하고, 모든 나가는 동맥을 부식. </li><li> 장간막 동맥 근처에 최대한의 왼쪽 신장 동맥 위에 미세 클램프 (마이크로 Serrefines, 파인 과학 도구, cat.no. 18055-04)와 부신 대동맥 클램프. 수술 실크를 사용하여 infrarenal 대동맥 (5-0, Vömel, 예술 아니오. 14739) 왼쪽 신장 동맥 아래 약 5mm를 결찰. </li><li> 수술 실크 infrarenal IVC (5-0, Vömel)을 결찰하고, 부신 IVC 클램프미세 클램프 (마이크로 Serrefines, 파인 과학 도구, cat.no. 18055-03). </li><li> 좋은 가위 (- ToughCut 스트레이트 11.5 cm, 파인 과학 도구, cat.no. 14058-11 아이리스 가위)를 사용하여 가능한 한 가깝게 IVC에 신장 정맥을 잘라. </li><li> 천천히 삽입하여 2 ㎖ 얼음처럼 차가운 HTK 관류 용액 (CUSTODIOL HTK, 프란즈 쾰러 케미)와 현장에서 신장을 붓는다 canula (Microlance 3 27G ¾, BD, cat.no. 302200) infrarenal 대동맥합니다. 확인하는 신장 색상 변경 (현재 올리브 색을 칠한). </li><li> 먼저, 다음, infrarenal 대동맥 부신 대동맥을 절개하고 최대한 가까이 방광에 마지막으로 요관. </li><li> 얼음 HTK 관류 용액에 요관 및 저장과 함께 신장과 혈관 공급 장치를 제거합니다. </li><li> 혈관 클램프 및 마취 마음의 연속 절단을 제거하여 기증자의 쥐를 안락사. </li></ol> 2. 받는 사람 준비 및 이식을TION <ol><li> 정위 현미경, 쥐의 기록 중량을 설정합니다. </li><li> isoflurane을 4 %를 사용하여받는 사람 쥐 (루이스)를 마취. 2-2.5 %로 isoflurane을 낮추는 방법으로 마취를 유지합니다. </li><li> 수술 패드에 마취 쥐를 놓습니다. 패드에 접착 테이프를 가진 쥐의 사지를 고정하고 쥐의 눈에 안과 연고를 적용합니다. 직장 온도 센서와 온난화 패드를 사용하여 모니터 및 제어 체온. 수술하는 동안 반복적으로 온도, 호흡과 동물의 심장 박동을 제어합니다. </li><li> 면도 복부를 소독하고 치골에서 간 꼬리 국경 복부 정중선 절개를 수행합니다. 피부 외상을 최소화하기 위해 메스 forcutting에게 피부를 사용합니다. 오른쪽에 소장을 이동하여 왼쪽 신장과 혈관을 노출합니다. </li><li> 조심스럽게 뒤몽 각도 팁 집게와 면봉을 사용하여 신장 캡슐을 제거합니다. </li><li> 신장에 가까운 왼쪽 신장 동맥, 정맥과 요관을 막다수술 실 (4-0 Mersilene, ETHICON, 고양이. 아니. EH6732H)를 사용하여 두 ligations와 종자의 배꼽. 만 신장 종자의 배꼽을 떠나는 신장의 소비세 큰 부분. 면봉 잘라 표면을 청소하고 출혈을 확인합니다. 필요한 경우 다른 합자를 추가합니다. </li><li> 조심스럽게 면봉 꼬리 사이트에 infrarenal 대동맥과 하대의 맥을 덮고있는 결합 조직을 통해 퉁명스럽게 해부. </li><li> 뒤몽 각도 팁 집게를 사용 infrarenal 대동맥과 대정맥에서 눈에 띄는 신경을 분리합니다. </li><li> 먼저 고환 혈관의 분기 아래에, 그리고 일반적인 장골 혈관의 분기 위의 두 번째 하나를 조심스럽게 두 2-4mm 길이 구멍을 형성 infrarenal 대동맥과 대정맥 사이의 결합 조직 시트를 해부. 사이 iliolumbar 동맥과 정맥을 부식. </li><li> 두 구멍의 각을 통해, 하나의 수술 실 (ETHICON, 고양이 no.EH6665E. Mersilene 0)를 그립니다. 이 스레드 infrarenal 당겨 사용부드럽게 지느러미 사이트에 분기 혈관에 대한 액세스를 얻을 수있는 동물의 우측 대동맥과 대정맥. 두 구멍 사이의 이러한 혈관 중 하나를 부식하고 이후 수술 스레드를 제거합니다. </li><li> 다음으로, 대동맥과 상 오프닝에서 시작하여 상부 개구부 (마이크로 Serrefines에서 대정맥으로 끝나는 개의 미세 클램프 (마이크로 Serrefines, 파인 과학 도구, cat.no. 18055-04)의 방향으로 응용 프로그램에 의해 대동맥과 IVC를 막다 , 파인 과학 도구, cat.no. 18055-03). </li><li> 그 후 조심스럽게 피어스 바늘 대동맥의 고립 된 부분의 위쪽 끝 (Microlance 3 27G ¾, BD, cat.no. 302200)는 고급 스프링 가위 (Vannas 봄 가위의 아래쪽 블레이드를 삽입 - 3mm 블레이드, 미세 과학 천자 구멍을 통해 도구 cat.no 15000-00)과 짧은 세로 절개를 수행합니다. 남아있는 혈액을 제거하는 얼음처럼 차가운 HTK 관류 용액으로 격리 된 대동맥을 세척합니다. </li><li> 마찬가지로,주의 깊게 관통바늘로 대정맥의 절연 부분의 하단 끝은 천자 구멍을 통해 좋은 봄 가위의 아래쪽 블레이드를 삽입하고 곧 대동맥 절개 아래에 끝나는 세로 절개를 수행합니다. 다시 남아있는 혈액을 제거하는 용기를 세척하십시오. </li><li> 스토리지 솔루션에서 신장 이식을 제거합니다. 왼쪽 신장의 이전 위치를 아래에 배치하고 방향이 올바른지 확인합니다. </li><li> 이식 신장 동맥의 방향을 확인하고 꼬임이 없는지 확인합니다. 다음 이식에 거즈의 얇은 시트를 배치하고 냉각하는 얼음처럼 차가운 HTK 관류 솔루션을 적시고 건조를 방지 할 수 있습니다. </li><li> 위의 첫 번째, 다음의 하단에 - 이식 신장 동맥 수술 실 (.. Ethilon 9-0, ETHICON, 고양이없이 2809G)와에 열립니다하는 대동맥 조각의 부신 부분의 구멍을 흥분시키는 대동맥 절개. 수술 스레드를 사용하여 연속 봉합 시계 방향으로 절개를 닫습니다(Ethilon 9-0), 뒤몽 각도 팁 포셉과 곡선 Castroviejo 바늘 홀더 (파인 과학 도구, 고양이. No. 12061-01). 그 후, 시계 반대 방향으로 두 번째 연속 봉합을 통해 결합 조직에 첫 번째 봉합사를 다룹니다. 지금 이식의 대동맥 부분 만 아래 부분 폐쇄 남아 있습니다. 정기적으로 얼음처럼 차가운 HTK 관류 솔루션 이식을 냉각. </li><li> 봉합의 압박감과 무결성을 검증뿐만 아니라 이식에 남아있는 혈액을 제거 이식 대동맥 조각의 오픈 엔드에 삽입 무딘 바늘을 통해 얼음처럼 차가운 HTK 관류 용액 1 ㎖로 이식을 붓는다. 그 후, 수술 실크 대동맥 조각 (5-0, Vömel)의 열린 끝을 결찰. </li><li> 이식 신장 정맥의 방향을 확인하고 꼬임이 없는지 확인합니다. </li><li> 대정맥의 절개의 하단에 다음, 상단의 첫 번째 - 외과 실 (Ethilon 9-0)와 이식 혈관의 개통을 흥분시키는. 절개를 닫습니다수술 실 (Ethilon 9-0), 뒤몽 각도 팁 포셉과 곡선 Castroviejo 바늘 홀더를 사용하여 연속 봉합으로 시계 방향으로 돌립니다. 정기적으로 얼음처럼 차가운 HTK 관류 솔루션 이식을 냉각. </li><li> 맨 대정맥 클램프로 시작, 미세 클램프를 제거 반대. 마지막 대동맥 클램프를 제거한 후 조심스럽게 면봉 결국 가벼운 출혈을 중지합니다. 몇 초 후에 이식은 장미 빛 착색 설정하고, uretric 수축이 나타납니다. </li><li> 받는 사람`의 방광에 이식의 요관 삽입 신중 Vannas 봄 가위로 자른다 (학생 Vannas 봄 가위 직선, 파인 과학 도구, cat.no. 91500-09를 사용하여 방광의 상단에있는 근육의 작은 패치를 제거한다 ). 그런 다음 뒤몽 각도 팁 집게를 사용하여 이식 요관에서 주변 조직을 (주로 지방)를 제거합니다. 따라서 신중하게 요관의 끝을 잡고 조심스럽게 주변의 지방, 결합 조직을 분리하고 내장 혈관 아프로반대 방향으로 잡아 당겨 m. 수술 실 (Prolene으로 6-0, ETHICON, 고양이. No. 8697H)의 끝에 uretric 끝을 흥분시키는과 연결된 바늘로 방광의 이전 준비 상단을 관통. 방광을 통해 요관을 당겨 두 번째 천공을 통해 기지를 종료합니다. </li><li> 수술 실 (Ethilon 9-0)와 방광의 상단에 조직을 분리 요관에서 이전을 흥분시키는. 첨부 외과 스레드와 요관의 끝을 잘라 조심스럽게 아래에서 밀어 방광에 다시 요관을 당깁니다. 그 후, 수술 실 (Ethilon 9-0)와 두 번째 방광 천자를 닫습니다. </li><li> 수술 봉합 실 (Mersilene 0)를 사용하여 두 개의 연속하지만 별도의 봉합하여 복벽과 피부를 닫습니다. Pividon 요오드를 사용하여 상처를 소독하고 상처의 통증을 제어하기 위해 수술 후 3 일 동안 부 프레 노르 핀 (㎏ / BW / 입찰 당 0.1 밀리그램) SC를 관리 할 수​​ 있습니다. </li></ol> 3. 영상 동종 이식 거부<ol><li> isoflurane을 2-2.5 %를 사용하여 공복 쥐를 마취. </li><li> 30 MBq FDG (0.1에서 30 MBq FDG ML 0.9 % 염화나트륨)는 24 G 카테터를 (브라운, Introcan, 4252500-01)를 사용하여 측면 꼬리 정맥을 catheterizing을 통해 IV를 관리하고 있습니다. 그 후, 0.9 ML 0.9 % 염화나트륨 용액으로 카테터를 제거. </li><li> 시간당 0.9 % 염화나트륨 용액 1 ㎖의 정맥 주사로 스캔 수화물 동물의 시작할 때까지 마취없이 고정 장치에서 쥐를 남겨주세요. </li><li> 스캔이 시작되기 전에 즉시 isoflurane을 2 %를 사용하여 다시 마취 쥐. </li><li> 높은 해상도 마취 쥐를 놓고 멀티 와이어 챔버 기반의 동물 PET 카메라 quadHIDAC (옥스포드 양전자 시스템 주식 회사, 옥스포드, UK). PET 스캐너의 공간 분해능은 1.0 mm이며, 전체 FOV (직경 165 mm의 축 방향 길이 280 ㎜)에 상수이다. 펄스 맥박 산소와 직장 온도 센서 및 제어 마취를 사용하여 스캔하는 동안 모니터 및 제어 체온. </li><li> 60m에 대해 동적 획득을 시작FDG의 신장 배설로 인해 신장의 추적 축적을 줄이기 위해 FDG 주입 후 180 분을 시작합니다. </li><li> 신장 실질의 식별을 위해 18 F-클리어런스 5의 계산을위한 스캐너에 쥐의 위치를 이동하지 않고 18 F-불소 IV 5 MBq을 적용하고 60 분 후 즉시 18 F-불소 주입 다른 PET 스캔을 수행합니다. 두 검사에서 이미지를 재구성. 2 분 신장 피질의 주위에 18 F-불소 주입 (관류 상) 한 후 재구성 된 이미지를 수동으로 관심 볼륨 (VOI)을 추적하고 FDG의 이미지에 VOI를 전송합니다. 조심스럽게 VOI에서 신장 골반이 제외 된 금액입니다. 두 검사에서 이미지를 재구성하고 수동 신장 피질 주변 관심 볼륨 (VOI)을 추적. 목록 모드 데이터는 0.4 × 0.4 × 0.4 mm 3 복셀 크기의 이미지로 재구성 하였다. 조심스럽게 VOI에서 신장 골반이 제외 된 금액입니다. </li><li> 비 O 님의 FDG 섭취를 계산F 총 수와 볼륨 및 주입 용량 (% ID)의 비율을 계산합니다. 우리는 이미지 분석을위한 MATLAB (R2011b 버전, 매스 웍스, 틱, MA, USA)와 단층 영상 (TIM) 버전 2.8을 사용했다. </li></ol>

<ol>
	<li>Wu, O., Levy, A. R., Briggs, A., Lewis, G., Jardine, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+rejection+and+chronic+nephropathy:+a+systematic+review+of+the+literature.">Acute rejection and chronic nephropathy: a systematic review of the literature.</a> Transplantation. 87, 1330-1339 (2009).</li><li>Miller, B. F., Gonzales, E., Wilchins, L. J., Nathan, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Kidney+transplantation+in+the+rat.">Kidney transplantation in the rat.</a> Nature. 194, 309-310 (1962).</li><li>Reuter, S., Schn&#246;ckel, U., Schr&#246;ter, R., Schober, O., Pavenst&#228;dt, H., Sch&#228;fers, M., Gabri&#235;ls, G., Schlatter, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Non-invasive+imaging+of+acute+renal+allograft+rejection+in+rats+using+small+animal+F-FDG-PET.">Non-invasive imaging of acute renal allograft rejection in rats using small animal F-FDG-PET.</a> PLoS. One. 4, e5296 (2009).</li><li>Reuter, S., Schn&#246;ckel, U., Edemir, B., Schr&#246;ter, R., Kentrup, D., Pavenst&#228;dt, H., Schober, O., Schlatter, E., Gabri&#235;ls, G., Sch&#228;fers, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Potential+of+noninvasive+serial+assessment+of+acute+renal+allograft+rejection+by+18F-FDG+PET+to+monitor+treatment+efficiency.">Potential of noninvasive serial assessment of acute renal allograft rejection by 18F-FDG PET to monitor treatment efficiency.</a> J. Nucl. Med. 51, 1644-1652 (2010).</li><li>Schn&#246;ckel, U., Reuter, S., Stegger, L., Schlatter, E., Sch&#228;fers, K. P., Hermann, S., Schober, O., Gabri&#235;ls, G., Sch&#228;fers, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+18F-fluoride+small+animal+PET+to+noninvasively+assess+renal+function+in+rats.">Dynamic 18F-fluoride small animal PET to noninvasively assess renal function in rats.</a> Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 35, 2267-2274 (2008).</li><li>Grabner, A., Schn&#246;ckel, U., Kentrup, D., Sch&#228;fers, M., Reuter, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Strategies+for+Non-Invasive+Molecular+Imaging+of+Acute+Allograft+Rejection+by+Gamma+Scintigraphy+and+Positron+Emission+Tomography.">Strategies for Non-Invasive Molecular Imaging of Acute Allograft Rejection by Gamma Scintigraphy and Positron Emission Tomography.</a> Curr. Radiopharm. 4, 10-23 (2011).</li><li>Racusen, L. C., Solez, K., Colvin, R. B., Bonsib, S. M., Castro, M. C., Cavallo, T., Croker, B. P., Demetris, A. J., Drachenberg, C. B., Fogo, A. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Banff+97+working+classification+of+renal+allograft+pathology.">The Banff 97 working classification of renal allograft pathology.</a> Kidney Int. 55, 713-723 (1999).</li><li>Edemir, B., Reuter, S., Borgulya, R., Schr&#246;ter, R., Neugebauer, U., Gabri&#235;ls, G., Schlatter, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+rejection+modulates+gene+expression+in+the+collecting+duct.">Acute rejection modulates gene expression in the collecting duct.</a> J. Am. Soc. Nephrol. 19, 538-546 (2008).</li><li>Velic, A., Gabri&#235;ls, G., Hirsch, J. R., Schr&#246;ter, R., Edemir, B., Paasche, S., Schlatter, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+rejection+after+rat+renal+transplantation+leads+to+downregulation+of+Na++and+water+channels+in+the+collecting+duct.">Acute rejection after rat renal transplantation leads to downregulation of Na+ and water channels in the collecting duct.</a> Am. J. Transplant. 5, 1276-1285 (2005).</li><li>Reuter, S., Velic, A., Edemir, B., Schr&#246;ter, R., Pavenst&#228;dt, H., Gabri&#235;ls, G., Bleich, M., Schlatter, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protective+role+of+NHE-3+inhibition+in+rat+renal+transplantation+undergoing+acute+rejection.">Protective role of NHE-3 inhibition in rat renal transplantation undergoing acute rejection.</a> Pflugers Arch. 456, 1075-1084 (2008).</li></ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

FDG-PET 영상은 급성 거부 반응의 진단을위한 새로운 옵션입니다. 때문에 비 침습적 특정 성격, FDG-PET 코어 생검에 의한 고전적인 진단에 비해 장점이다. 생검, FDG-PET 분석은 전체 이식의 제한된 샘플 크기는 대조적으로. 또한, 하나의 항 응고 치료에 환자에 적용 할 수 있습니다, 하나는 반복 처리 효율 4를 모니터링하는 예를 들어 PET 조치를 수행 할 수 있습니다. 또한, 우리는 이미 AR,...

<table border="1">
 <tbody>
 <tr>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td>Equipment</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Mathieu Needle Holder - 14 cm</td>
 <td>Fine Science Tools</td>
 <td>12010-14</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Castroviejo Micro Needle Holder - 9 cm</td>
 <td>Fine Science Tools</td>
 <td>12061-01</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Surgical Scissors - Sharp_Blunt</td>
 <td>Fine Science Tools</td>
 <td>14001-12</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Iris Scissors - ToughCut Straight 11.5 cm</td>
 <td>Fine Science Tools</td>
 <td>14058-11</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Student Vannas Spring Scissors </td>
 <td>Fine Science Tools</td>
 <td>91500-09</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Vannas Spring Scissors - 3 mm Blades</td>
 <td>Fine Science Tools</td>
 <td>15000-00</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Student Tissue Forceps - 1x2 Teeth 12 cm</td>
 <td>Fine Science Tools</td>
 <td>91121-12</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Dumont SS-45 Forceps - Inox Medical</td>
 <td>Fine Science Tools</td>
 <td>11203-25</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro-Serrefine Clip Applicator with Lock</td>
 <td>Fine Science Tools</td>
 <td>18056-14</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro-Serrefine 6 mm x 1 mm</td>
 <td>Fine Science Tools</td>
 <td>18055-03</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Micro-Serrefine 4 mm x 0.75 mm</td>
 <td>Fine Science Tools</td>
 <td>18055-04</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td>Reagent</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Isoflurane (e.g. Forene 100% v/v)</td>
 <td>Abott</td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>cutane antiseptic (e.g. Octeniderm) </td>
 <td>Sch&uuml;lke</td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Povidone Iodine (e.g. Betaisodona)</td>
 <td>Mundipharma</td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>ophthalmic ointment (e.g. Bepanthen)</td>
 <td>Bayer</td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Buprenorphin (e.g. Temgesic)</td>
 <td>RB Pharmaceuticals</td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>HTK perfusion solution (e.g. CUSTODIOL HTK)</td>
 <td>Dr. Franz K&ouml;hler Chemie</td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>surgical thread Mersilene 0</td>
 <td>Ethicon</td>
 <td>EH6665E</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>surgical thread Mersilene 4-0</td>
 <td>Ethicon</td>
 <td>EH6732H</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>surgical thread Prolene 6-0</td>
 <td>Ethicon</td>
 <td>8697H</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>surgical thread Ethilon 9-0</td>
 <td>Ethicon</td>
 <td>2809G</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>surgical silk 5-0</td>
 <td>V&ouml;mel</td>
 <td>14739</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Canula (e.g. Microlance 3, 27G &frac34;)</td>
 <td>BD</td>
 <td>302200</td>
 <td></td>
 </tr>
 </tbody>
</table>

non-invasive imaging of acute allograft rejection after rat renal transplantation using 18f-fdg pet

말기 신장 질환 환자의 수, 신장 이식 수혜자의 수는 지속적으로 증가한다. 급성 세포 동종 이식 거부 (AR)의 에피소드 장기 이식 생존을위한 부정적인 예후 인자이며, 적시에 진단 이식 기능 1 중요합니다. 현재, AR은 확실히 침략 방법으로, 이식 부상 또는 손실이 상당한 위험을 드러낸다, 코어 생검에 의해 진단 할 수 있습니다. 또한, 생검은 AR이 초점 또는 누덕 누덕 기운 경우 위음성 결과를 초래할 수 있습니다 항응고제 약물과이 기술의 제한된 샘플링 사이트를 복용하는 환자에서 가능하지 않습니다. 결과적으로, 이것은 종종 다양한 이식 모델의 사용을 포함하여 동물에서 수행해야하는 새로운 AR 탐지 방법에 대한 지속적인 검색에 상승했다. 60 년대 쥐의 신장 이식 대해 조사를 위해 잘 확립 된 실험 방법이기 때문에AR 2 ATION 및 분석. 또한 작은 동물 양전자 방출 단층 촬영 (PET)은 동종 uninephrectomized 쥐의 신장 이식 모델에서 AR을 평가하고 비 침습, 특정의 새로운 옵션으로 이식 FDG-PET 영상을 제안하는 18 F-fluorodeoxyglucose (FDG)를 사용하여에 우리는 여기에 존재 인간의 상황을 3도 AR과 조기 진단. 또한,이 방법은 이식 거부 4 모니터링을 개선하기 위해 후속 적용 할 수 있습니다.

조직학 거절의 심각도는 염증의 정도에 의해 반영되는 반면 AR 백혈구 동안, 즉, 주로 T 림프구가 이식으로 모집하고 있습니다. 여기에 묘사주기 - 산성 - 쉬프 (PAS) 염색에 (그림 1), 신장 이식은 AR, 즉 사구 체 신염, tubulitis, endothelialitis 및 이식 침투 (그림 1, ATX POD4) (POD = 수술 일) 상당한 조직 학적 흔적을 보여줍니다 거부의 징후 기본 컨트롤 신장...

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Non-invasive Imaging of Acute Allograft Rejection after Rat Renal Transplantation Using 18F-FDG PET

우리는 여기에서 비 침습적 18F-fluorodeoxyglucose와 양전자 방출 단층 촬영을 이용하여 급성 이식 거부 반응을 평가하기 위해 쥐의 신장 이식 모델을 제시한다.

쥐 신장 이식 후 급성 동종 이식 거부의 비 침습 이미징 사용<sup&gt; 18</sup&gt; F-FDG PET

The number of patients with end-stage renal  disease, and the number of kidney allograft recipients continuously increases.  Episodes of acute cellular ...

non-invasive-imaging-acute-allograft-rejection-after-rat-renal

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Non-invasive Imaging of Acute Allograft Rejection after Rat Renal Transplantation Using 18F-FDG PET

Human Biology

Osmoregulation and Excretion

SCIENTISTS IN ACTION

16.9K 조회수.  University of Münster. 우리는 여기에서 비 침습적 18F-fluorodeoxyglucose와 양전자 방출 단층 촬영을 이용하여 급성 이식 거부 반응을 평가하기 위해 쥐의 신장 이식 모델을 제시한다.

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Non-invasive Optical Measurement of Cerebral Metabolism and Hemodynamics in Infants

Perinatal brain injury remains a significant cause of infant mortality and morbidity, but there is not yet an effective bedside tool that can accurately screen for brain injury, monitor injury evolution, or assess response to therapy. The energy used by neurons is derived largely from tissue oxidative metabolism, and neural hyperactivity and cell death are reflected by corresponding changes in cerebral oxygen metabolism (CMRO2). Thus, measures of CMRO2 are reflective of neuronal viability and provide critical diagnostic information, making CMRO2 an ideal target for bedside measurement of brain health.
Brain-imaging techniques such as positron emission tomography (PET) and single-photon emission computed tomography (SPECT) yield measures of cerebral glucose and oxygen metabolism, but these techniques require the administration of radionucleotides, so they are used in only the most acute cases.
Continuous-wave near-infrared spectroscopy (CWNIRS) provides non-invasive and non-ionizing radiation measures of hemoglobin oxygen saturation (SO2) as a surrogate for cerebral oxygen consumption. However, SO2 is less than ideal as a surrogate for cerebral oxygen metabolism as it is influenced by both oxygen delivery and consumption. Furthermore, measurements of SO2 are not sensitive enough to detect brain injury hours after the insult 1,2, because oxygen consumption and delivery reach equilibrium after acute transients 3. We investigated the possibility of using more sophisticated NIRS optical methods to quantify cerebral oxygen metabolism at the bedside in healthy and brain-injured newborns. More specifically, we combined the frequency-domain NIRS (FDNIRS) measure of SO2 with the diffuse correlation spectroscopy (DCS) measure of blood flow index (CBFi) to yield an index of CMRO2 (CMRO2i) 4,5.
With the combined FDNIRS/DCS system we are able to quantify cerebral metabolism and hemodynamics. This represents an improvement over CWNIRS for detecting brain health, brain development, and response to therapy in neonates. Moreover, this method adheres to all neonatal intensive care unit (NICU) policies on infection control and institutional policies on laser safety. Future work will seek to integrate the two instruments to reduce acquisition time at the bedside and to implement real-time feedback on data quality to reduce the rate of data rejection.

We combined frequency-domain near-infrared spectroscopy measures of cerebral hemoglobin oxygenation with diffuse correlation spectroscopy measures of cerebral blood flow index to estimate an index of oxygen metabolism. We tested the utility of this measure as a bedside screening tool to evaluate the health and development of the newborn brain.

유아의 뇌 신진 대사와 혈류 역학의 비 침습적 광학 측정

Perinatal brain injury remains a significant cause of infant mortality  and morbidity, but there is not yet an effective bedside tool that can  accurately ...

연구

의학

Non-invasive Assessment of Microvascular and Endothelial Function

The authors have utilized capillaroscopy and forearm blood flow techniques to investigate the role of microvascular dysfunction in pathogenesis of cardiovascular disease. Capillaroscopy is a non-invasive, relatively inexpensive methodology for directly visualizing the microcirculation. Percent capillary recruitment is assessed by dividing the increase in capillary density induced by postocclusive reactive hyperemia (postocclusive reactive hyperemia capillary density minus baseline capillary density), by the maximal capillary density (observed during passive venous occlusion). Percent perfused capillaries represents the proportion of all capillaries present that are perfused (functionally active), and is calculated by dividing postocclusive reactive hyperemia capillary density by the maximal capillary density. Both percent capillary recruitment and percent perfused capillaries reflect the number of functional capillaries. The forearm blood flow (FBF) technique provides accepted non-invasive measures of endothelial function: The ratio FBFmax/FBFbase is computed as an estimate of vasodilation, by dividing the mean of the four FBFmax values by the mean of the four FBFbase values. Forearm vascular resistance at maximal vasodilation (FVRmax) is calculated as the mean arterial pressure (MAP) divided by FBFmax. Both the capillaroscopy and forearm techniques are readily acceptable to patients and can be learned quickly.
The microvascular and endothelial function measures obtained using the methodologies described in this paper may have future utility in clinical patient cardiovascular risk-reduction strategies. As we have published reports demonstrating that microvascular and endothelial dysfunction are found in initial stages of hypertension including prehypertension, microvascular and endothelial function measures may eventually aid in early identification, risk-stratification and prevention of end-stage vascular pathology, with its potentially fatal consequences.

Capillaroscopy is a non-invasive, relatively inexpensive methodology for directly visualizing the microcirculation. The forearm blood flow technique provides accepted non-invasive measures of endothelial function.

Microvascular 및 내피 기능의 비 침습적 평가

The authors have utilized capillaroscopy and forearm blood flow techniques to investigate the role of microvascular dysfunction in pathogenesis of ...

Transplantation into the Anterior Chamber of the Eye for Longitudinal, Non-invasive In vivo Imaging with Single-cell Resolution in Real-time

Intravital imaging has emerged as an indispensable tool in biological research. In the process, many imaging techniques have been developed to study different biological processes in animals non-invasively. However, a major technical limitation in existing intravital imaging modalities is the inability to combine non-invasive, longitudinal imaging with single-cell resolution capabilities. We show here how transplantation into the anterior chamber of the eye circumvents such significant limitation offering a versatile experimental platform that enables non-invasive, longitudinal imaging with cellular resolution in vivo. We demonstrate the transplantation procedure in the mouse and provide representative results using a model with clinical relevance, namely pancreatic islet transplantation. In addition to enabling direct visualization in a variety of tissues transplanted into the anterior chamber of the eye, this approach provides a platform to screen drugs by performing long-term follow up and monitoring in target tissues. Because of its versatility, tissue/cell transplantation into the anterior chamber of the eye not only benefits transplantation therapies, it extends to other in vivo applications to study physiological and pathophysiological processes such as signal transduction and cancer or autoimmune disease development.

Transplantation into the Anterior Chamber of the Eye for Longitudinal, Non-invasive In vivo Imaging with Single-cell Resolution in Real-time

A new approach combining intraocular transplantation and confocal microscopy enables longitudinal, non-invasive real-time imaging with single-cell resolution within grafted tissues in vivo. We demonstrate how to transplant pancreatic islets into the anterior chamber of the mouse eye.

길이, 비 침습적을위한 안구의 앞쪽 상공 회의소에 이식<em&gt; 생체에</em실시간으로 단일 셀 해상도&gt; 영상

Intravital imaging has emerged as an indispensable tool in biological research.  In the process, many imaging techniques have been developed to study ...

Heterotopic Auxiliary Rat Liver Transplantation With Flow-regulated Portal Vein Arterialization in Acute Hepatic Failure

In acute hepatic failure auxiliary liver transplantation is an interesting alternative approach. The aim is to provide a temporary support until the failing native liver has regenerated.1-3 The APOLT-method, the orthotopic implantation of auxiliary segments- averts most of the technical problems. However this method necessitates extensive resections of both the native liver and the graft.4 In 1998, Erhard developed the heterotopic auxiliary liver transplantation (HALT) utilizing portal vein arterialization (PVA) (Figure 1). This technique showed promising initial clinical results.5-6 We developed a HALT-technique with flow-regulated PVA in the rat to examine the influence of flow-regulated PVA on graft morphology and function (Figure 2).
A liver graft reduced to 30 % of its original size, was heterotopically implanted in the right renal region of the recipient after explantation of the right kidney.&#160; The infra-hepatic caval vein of the graft was anastomosed with the infrahepatic caval vein of the recipient. The arterialization of the donor&#8217;s portal vein was carried out via the recipient&#8217;s right renal artery with the stent technique. The blood-flow regulation of the arterialized portal vein was achieved with the use of a stent with an internal diameter of 0.3 mm. The celiac trunk of the graft was end-to-side anastomosed with the recipient&#8217;s aorta and the bile duct was implanted into the duodenum. A subtotal resection of the native liver was performed to induce acute hepatic failure. 7
In this manner 112 transplantations were performed. The perioperative survival rate was 90% and the 6-week survival rate was 80%. Six weeks after operation, the native liver regenerated, showing an increase in weight from 2.3&#177;0.8 g to 9.8&#177;1 g. At this time, the graft&#8217;s weight decreased from 3.3&#177;0.8 g to 2.3&#177;0.8 g.
We were able to obtain promising long-term results in terms of graft morphology and function. HALT with flow-regulated PVA reliably bridges acute hepatic failure until the native liver regenerates.

Auxiliary liver transplantation provides a temporary support in acute hepatic failure, until regeneration of the failing liver. The heterotopic auxiliary liver transplantation (HALT) with portal vein arterialization (PVA) renders sufficient liver function. We developed an analogous technique in the rat, to examine the influence of the portal vein arterialization on the morphology and function of the graft.

이소성 보조 쥐 간 이식 급성 간 장애에 포털 정맥 Arterialization를 유량 조절

In acute hepatic failure auxiliary liver transplantation is an interesting alternative approach. The aim is to provide a temporary support until the ...

Non-invasive Imaging and Analysis of Cerebral Ischemia in Living Rats Using Positron Emission Tomography with 18F-FDG

Stroke is the third leading cause of death among Americans 65 years of age or older1. The quality of life for patients who suffer from a stroke fails to return to normal in a large majority of patients2, which is mainly due to current lack of clinical treatment for acute stroke. This necessitates understanding the physiological effects of cerebral ischemia on brain tissue over time and is a major area of active research. Towards this end, experimental progress has been made using rats as a preclinical model for stroke, particularly, using non-invasive methods such as 18F-fluorodeoxyglucose (FDG) coupled with Positron Emission Tomography (PET) imaging3,10,17. Here we present a strategy for inducing cerebral ischemia in rats by middle cerebral artery occlusion (MCAO) that mimics focal cerebral ischemia in humans, and imaging its effects over 24 hr using FDG-PET coupled with X-ray computed tomography (CT) with an Albira PET-CT instrument. A VOI template atlas was subsequently fused to the cerebral rat data to enable a unbiased analysis of the brain and its sub-regions4. In addition, a method for 3D visualization of the FDG-PET-CT time course is presented. In summary, we present a detailed protocol for initiating, quantifying, and visualizing an induced ischemic stroke event in a living Sprague-Dawley rat in three dimensions using FDG-PET.

Non-invasive Imaging and Analysis of Cerebral Ischemia in Living Rats Using Positron Emission Tomography with 18F-FDG

Brain damage resulting from cerebral ischemia may be non-invasively imaged and studied in rats using pre-clinical positron emission tomography coupled with the injectable radioactive probe, 18F-fluorodeoxyglucose. Further, the use of modern software tools that include volume of interest (VOI) brain templates dramatically increase the quantitative information gleaned from these studies.

과 양전자 방출 단층 촬영을 이용하여 비 침습적 영상 및 뇌허혈의 분석 생활 쥐<sup&gt; (18)</sup&gt; F-FDG

Stroke is the third leading cause of death among Americans 65 years of age or older1. The quality of life for patients who suffer from a stroke fails to ...

Murine Model for Non-invasive Imaging to Detect and Monitor Ovarian Cancer Recurrence

Epithelial ovarian cancer is the most lethal gynecologic malignancy in the United States. Although patients initially respond to the current standard of care consisting of surgical debulking and combination chemotherapy consisting of platinum and taxane compounds, almost 90% of patients recur within a few years. In these patients the development of chemoresistant disease limits the efficacy of currently available chemotherapy agents and therefore contributes to the high mortality. To discover novel therapy options that can target recurrent disease, appropriate animal models that closely mimic the clinical profile of patients with recurrent ovarian cancer are required. The challenge in monitoring intra-peritoneal (i.p.) disease limits the use of i.p. models and thus most xenografts are established subcutaneously. We have developed a sensitive optical imaging platform that allows the detection and anatomical location of i.p. tumor mass. The platform includes the use of optical reporters that extend from the visible light range to near infrared, which in combination with 2-dimensional X-ray co-registration can provide anatomical location of molecular signals. Detection is significantly improved by the use of a rotation system that drives the animal to multiple angular positions for 360 degree imaging, allowing the identification of tumors that are not visible in single orientation. This platform provides a unique model to non-invasively monitor tumor growth and evaluate the efficacy of new therapies for the prevention or treatment of recurrent ovarian cancer.

We describe a non-invasive animal imaging platform that allows the detection, quantification, and monitoring of ovarian cancer growth and recurrence. This intra-peritoneal xenograft model mimics the clinical profile of patients with ovarian cancer.

비 침습적 영상에 대한 생쥐 모델 검색 및 모니터 난소 암 재발

Epithelial ovarian cancer is the most lethal gynecologic malignancy in the United States. Although patients initially respond to the current standard of ...

Mouse Kidney Transplantation: Models of Allograft Rejection

Rejection of the transplanted kidney in humans is still a major cause of morbidity and mortality. The mouse model of renal transplantation closely replicates both the technical and pathological processes that occur in human renal transplantation. Although mouse models of allogeneic rejection in organs other than the kidney exist, and are more technically feasible, there is evidence that different organs elicit disparate rejection modes and dynamics, for instance the time course of rejection in cardiac and renal allograft differs significantly in certain strain combinations. This model is an attractive tool for many reasons despite its technical challenges. As inbred mouse strain haplotypes are well characterized it is possible to choose donor and recipient combinations to model acute allograft rejection by transplanting across MHC class I and II loci. Conversely by transplanting between strains with similar haplotypes a chronic process can be elicited were the allograft kidney develops interstitial fibrosis and tubular atrophy. We have modified the surgical technique to reduce operating time and improve ease of surgery, however a learning curve still needs to be overcome in order to faithfully replicate the model. This study will provide key points in the surgical procedure and aid the process of establishing this technique.

Here, we present a protocol to study the immunology of rejection. The surgical model presented reports a short operating time and a concise technique. Depending on the donor-recipient strain combination, the transplanted kidney may develop acute cellular rejection or chronic allograft damage, defined by interstitial fibrosis and tubular atrophy.

마우스 신장 이식 : 동종 이식 거부의 모델

Rejection of the transplanted kidney in humans is still a major cause of morbidity and mortality. The mouse model of renal transplantation closely ...

Non-invasive Assessment of the Efficacy of New Therapeutics for Intestinal Pathologies Using Serial Endoscopic Imaging of Live Mice

Animal models of inflammatory bowel disease (IBD) and colorectal cancer (CRC) have provided significant insight into the cell intrinsic and extrinsic mechanisms that contribute to the onset and progression of intestinal diseases. The identification of new molecules that promote these pathologies has led to a flurry of activity focused on the development of potential new therapies to inhibit their function. As a result, various pre-clinical mouse models with an intact immune system and stromal microenvironment are now heavily used. Here we describe three experimental protocols to test the efficacy of new therapeutics in pre-clinical models of (1) acute mucosal damage, (2) chronic colitis and/or colitis-associated colon cancer, and (3) sporadic colorectal cancer. We also outline procedures for serial endoscopic examination that can be used to document the therapeutic response of an individual tumor and to monitor the health of individual mice. These protocols provide complementary experimental platforms to test the effectiveness of therapeutic compounds shown to be well tolerated by mice.

We describe methods for longitudinal monitoring of the efficacy of therapeutics for the treatment of colonic pathologies in mice using a rigid endoscope. This protocol can be readily used for the characterization of the therapeutic response of an individual tumor in live mice and also for monitoring potential disease relapse.

라이브 마우스의 직렬 내시경 이미징을 사용하여 소장 병변에 대한 새로운 치료제의 효능의 비 침습적 평가

Animal models of inflammatory bowel disease (IBD) and colorectal cancer (CRC) have provided significant insight into the cell intrinsic and extrinsic ...

Determining Glucose Metabolism Kinetics Using 18F-FDG Micro-PET/CT

This paper describes the use of 18F-FDG and micro-PET/CT imaging to determine in vivo glucose metabolism kinetics in mice (and is transferable to rats). Impaired uptake and metabolism of glucose in multiple organ systems due to insulin resistance is a hallmark of type 2 diabetes. The ability of this technique to extract an image-derived input function from the vena cava using an iterative deconvolution method eliminates the requirement of the collection of arterial blood samples. Fitting of tissue and vena cava time activity curves to a two-tissue, three compartment model permits the estimation of kinetic micro-parameters related to the 18F-FDG uptake from the plasma to the intracellular space, the rate of transport from intracellular space to plasma and the rate of 18F-FDG phosphorylation. This methodology allows for multiple measures of glucose uptake and metabolism kinetics in the context of longitudinal studies and also provides insights into the efficacy of therapeutic interventions.

Determining Glucose Metabolism Kinetics Using 18F-FDG Micro-PET/CT

This study describes a protocol that uses 18F-FDG and positron emission tomography/computed tomography (PET/CT) imaging, together with kinetic modelling, to quantify the in vivo, real-time uptake of 18F-FDG into tissues.

사용 포도당 대사 속도론 결정<sup&gt; (18)</sup&gt; F-FDG 마이크로 PET / CT

This paper describes the use of 18F-FDG and micro-PET/CT imaging to determine in vivo glucose metabolism kinetics in mice (and is transferable to rats). ...

Transplantation of Adipose Tissue-Derived Stem Cell Sheet to Reduce Leakage After Partial Colectomy in A Rat Model

Anastomotic leakage is a disastrous complication after colorectal surgery. Although current methods for leakage prevention have different levels of clinical efficacy, they are until now imperfect solutions. Stem cell therapy using ASC sheets could provide a solution to this problem. ASCs are considered as promising candidates for promoting tissue healing because of their trophic and immunomodulatory properties. Here, we provide methods to produce high-density ASC sheets, that are transplanted onto a colorectal anastomosis in a rat model to reduce the leakage. ASCs formed cell sheets in thermo-responsive culture dishes that could be easily detached. On the day of the transplantation, a partial colectomy with a 5-suture colorectal anastomosis was performed. Animals were immediately transplanted with 1 ASC sheet per rat. ASC sheets adhered spontaneously to the anastomosis without any glue, suture, or any biomaterial. Animal groups were sacrificed 3 and 7 days postoperatively. Compared to transplanted animals, the incidence of anastomotic abscesses and leakage was higher in control animals. In our model, the transplantation of ASC sheets after colorectal anastomosis was successful and associated with a lower leakage rate.

The preparation and transplantation of adipose tissue derived stem cell (ASC) sheets onto insufficiently sutured colorectal anastomoses in a rat model is presented. This novel application shows that ASC sheets can reduce colorectal anastomosis leakage.

쥐 모델에 부분 Colectomy 후 누설을 줄이기 위해 지방 조직 유래 줄기 세포의 이식

Anastomotic leakage is a disastrous complication after colorectal surgery. Although current methods for leakage prevention have different levels of ...

쥐 신장 이식 후 급성 동종 이식 거부의 비 침습 이미징 사용

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