우리는 그의 도움이 프로젝트 초기에 공헌 다니엘 카르 감사합니다. 우리는 또한 삽화와 이미지 그녀의 도움 루크레시아 노 보아 주셔서 감사합니다. 이 작품은 NIH / NIAID 프로그램에 부여 5P01AI073693-03에 의해 지원되었다.

1. 사극 제작 <ol><li> 캘리포니아 미세 와이어에서 절연 12.5 μm의 (0.0005 &quot;) 직경의 코어 백금 - 이리듐 와이어를 사용하여 시작합니다. 전선의 길이가 목표 구조에 대한 적절한 길이로 절단해야합니다. 예를 들어, 적어도 30 ㎝ 길이로 선을 자르 지느러미 subiculum의 또는 해마를 대상으로합니다. </li><li> 길이 15cm 될 두 개의 병렬 전선이 있도록 중앙에 와이어를 접습니다. 길이 7.5 cm의 네 개의 평행 한 선을 형성하는 수평 팔을 통해이 와이어의 중간 점을 주름 잡아 드리운다. 다음 네 개의 와이어 번들을 생성, 주름 잡아 드리 워진 전선의 아래쪽에있는 고무 코팅 클립을 첨부합니다. </li><li> 고무 철사 긴장되어 있는지 확인하는 모터 사극 스피너에 클립,하지만 회전 과정에서 중단되므로 너무 팽팽하거나 베어링없는 무게를 놓습니다. </li><li> &quot;수동&quot;모드로 사극 스피너를 전환하고 시계 방향으로 와이어를 회전하는 &quot;오른쪽&quot;으로 조이스틱을 누릅니다. 회사극을 형성하는 네 개의 와이어 꽉 번들을 만들고, 약 2 Hz로 회전합니다. </li><li> 조이스틱 &quot;최대&quot;를 눌러 정지 후 80 시계 방향으로 회전을 적용합니다. 이 일시 정지 모터 회 전자됩니다. 다음으로, 사극에 긴장을 해제하기 위해 20 반 시계 방향 ( &quot;왼쪽&quot;) 회전을 적용합니다. 와이어의 길이 당 회전의 마지막 숫자는 미크론 당 8 회전해야합니다. </li><li> VG 채권 코트를 용융하여 함께 전선을 융합하기 위해, 400도 최대가 낮은 설정 1에 가열 총을 사용합니다. 히트 건과 와이어에서 1 ~ 2 cm의 보유 및 여러 다른 각도에서 약 5 초 동안 와이어의 직선 길이를 아래로 총을 실행합니다. 지속적으로 열 총을 청소하고이 HML 절연 녹아 와이어 번들 내에서 함께 융합하는 원인이되므로 단일 위치를 유지하지 있는지 확인하십시오. </li><li> 사극 (수평 팔) 근처의 상단에 상처를 만든 다음 하단에있는 클립에서 사극을 해제. 사극의 한 쪽 끝에서 네 개의 개별 전선이 있도록 단일 루프를 잘라,이 와이어는 전기적 이후 단계에서 골드 핀 또는 회로 기판에 연결됩니다. </li><li> 드라이브가 완료 될 때까지 저장을위한 먼지가없는 지주 상자에 완성 된 사극을 놓습니다. </li></ol> 2. 사용자 정의 마이크로 드라이브 어셈블리 <ol><li> 먼저 마이크로 드라이브 (들)을 보유 할 기반을 구축합니다. 그것은 보안 및 두개골의 정중선을 따라 배치되어있는 경우 이식 마이크로 드라이브의 기본은 일반적으로 가장 안정적이다. 이 프로토콜은 네 개의 폴리 아미드 튜브 캐리어를 개최하는 단일 마이크로 드라이브와 기반을 구축하는 단계를 설명합니다. 필요에 따라 마이크로 드라이브와 튜브를 쉽게 추가 할 수 있습니다. </li><li> 그것은 머리에 이식 한 후 마우스 드라이브 자유롭게 이동 할 수 모양으로 약 20mm 사각형 플렉시 유리 아크릴의 조각 (두께 5mm)과 모래 아크릴로 시작합니다. </li><li> 다음으로, 드라이브 유닛을 조립합니다. 3 사용자 정의 사용드라이브 나사를 수행한다 0.3 X 6.3 mm 황동 가이드. 수직 함께 첫째, 솔더 두 황동 가이드. 수평 조각은 아크릴베이스에 붙어있을 것입니다 반면 수직 황동 가이드는, 드라이브 나사와 전극을 개최한다. </li><li> 함께 납땜 황동 조각 한 후, 가이드의 상단을 통해 델 플라스틱 블록으로 납작 머리 황동 나사를 전달하여 드라이브 자체 조립을 시작합니다. 사각형 블록은 스레드 구멍이 가이드에서 아주 약간 튀어 나온 블록의 한면의 결과로, 약간 오프 센터 (0.2 mm)에 의해되도록 설계되어 있습니다. 이 전극을 들고 폴리 아미드 튜브 앉을 측면입니다. </li><li> 너트가 거의 가이드의 하단을 터치 할 때까지 가이드 내부 델린 블록 및 모든 방법을 통해 나사, 육각 황동 너트에 실을 꿰다. 완전히 너트를 조이지 말고 너트와 나사를 조인​​하기 위해 끝에 솔더의 소량 용해하지만 조심하지에 납땜 anyt되고가이드 힝. 이제 나사를 따라 수직, 나사를 돌리면 델 블록 업 (시계 방향)으로 이동해야하고 아래 (시계 반대 방향). 납땜 너트 과거 돌출하는 스레드를 잘라. </li><li> 드라이브가 조립되면, 아크릴베이스로 돌아가서 전극 드라이브에있을 것이다 3mm 폭 슬롯을 잘라. 슬롯을 통해 수평 황동 가이드를 통과하고베이스에 조각을 확보하기 위해 cryanoacrylate 접착제를 사용합니다. </li><li> 그 자리에 확보하기 위해 바이스에 아크릴베이스를 놓습니다. 베이스의 상단에 전자 인터페이스 보드 (EIB)을 배치하고 두 개의 나사 구멍의 위치를​​ 표시합니다. EIBs은 전극 와이어와 프리 앰프의 headstage 사이의 신호 연결을 제공하는 마이크로 칩이다. 1.5 mm 팁 드릴 비트를 사용하여 조심스럽게베이스의 상단에 위치에 EIB를 개최한다 나사 자국에 구멍을 뚫습니다. 구멍에 EIB 및 스레드 개의 황동 나사를 놓습니다. </li><li> POLYAM 네 7mm 길이의 조각을 잘라 마이크로 해부 가위를 사용하여IDE 튜브. 접힌 실험실 테이프 조각에 서로 옆에 네 개의 튜브 라인입니다. 튜브 자체 내에서 접착제를 얻을 수없는 그들을 함께 결합하지만,주의를 취할 중심으로 시아 노 아크릴 레이트 적용됩니다. 결합 된 튜브가 완전히 건조하도록 허용합니다. </li><li> EIB 칩이 수직 및 드라이브가 위로 향하게 튀어 나온 델 블록과 수평으로 위치하도록 90도 이렇게 드라이브 기반을 돌립니다. 주의 덩어리는 접착제에있는 네 개의 결합 튜브를 배치, 해부 현미경을 통해 델의 얼굴에 시아 노 아크릴 레이트의 소량 찾고있다. 접착제가 드라이브를 이동하기 전에 완전히 설정할 수 있습니다. </li><li> 폴리 아미드 튜브가 단단하게 고정하고 전체 어셈블리 가이드를 만지거나 어떤 저항을 충족하지 않고 부드럽게 이동하는 것을 테스트합니다. </li><li> 다음 접지 나사를 준비하고 EIB에 접지선을 연결합니다. 황동 나사 (3 / 32 &quot;)를 복용하고 단지 1-2 스레드가 유지 될 때까지 스레드를 연마하여 접지 나사를 확인합니다.이 있어야합니다 ~이 나사 등의 1mm는 두개골 내에서 앉을 뇌 조직을 침투하기위한 것이 아닙니다. </li><li> 구리 와이어의 30 mm 길이 (여기서 동물 땅을 배치 두개골의 정확한 길이에 따라 달라집니다)을 잘라. 구리 와이어는 100이어야한다 - 500 μM (0.004-0.02 &quot;) 직경이 38 AWG 통해 24 AWG 와이어에 거의 동일 구리 와이어의 양쪽에 땜납 플럭스를 적용 한 쪽 끝에서, 솔더 접지 나사가 있습니다.. 와이어. 다른 쪽 끝에서, 솔더 EIB 골드 핀입니다.이 접지선은 따로 설정할 수 있으며 이식 수술시 이후 EIB에 연결되어 있습니다. </li><li> 다음 단계는 폴리 아미드 튜브를 통해 전극을 안내하고 EIB 칩 채널 구멍에 연결하는 것입니다. 완전히 튜브가 위쪽 위치에되도록 시계 방향으로 드라이브 나사를 돌립니다. </li><li> 단일 전극의 경우, Stableohm 50 μM 와이어의 50 mm 길이를 잘라 한 폴리 아미드 튜브를 통해 안내, 그것 (subiculum의를 대상으로 또는 튜브 끝을지나 최소 2.0 mm를 확장 할 수 있도록해마). 튜브에 와이어를 부착하고 와이어의 움직임을 방지 튜브의 상단에있는 시아 노 아크릴 레이트의 작은 방울을 적용합니다. 다음으로, 골드 핀을 사용하여 EIB 채널 구멍에 와이어의 느슨한 끝을 연결합니다. 좋은 가위 초과 와이어를 잘라. 다른 미세 전극을 반복합니다. </li><li> tetrodes를 연결, 하나의 사극을 저장 상자에서 완료 가라. 하나의 폴리 아미드 튜브를 통해 사극의 융합 끝을 안내하고 튜브 끝 (subiculum의 또는 해마)을지나 최소 2.0 mm를 확장 할 수 있습니다. 튜브에 사극을 부착하고 이동을 방지 튜브의 상단에있는 시아 노 아크릴 레이트의 작은 방울을 적용합니다. 사극의 다른 쪽 끝에서 네 개의 느슨한 전선을 타고 골드 핀을 사용하여 EIB 채널 구멍에 각각 와이어를 연결합니다. 초과 와이어를 잘라. 다른 tetrodes을 반복합니다. </li></ol> 3. VersaDrive 조립 <ol><li> 이베이스 인클로저 구성 및 모자 piec를, 네 사극의 VersaDrive 구축 시작에스. </li><li> 10mm 한 폴리 아미드 튜브를 잘라 사극 캐리어의 작은 구멍을 통해 안내합니다. 튜브가 아주 약간 캐리어 (0.5 mm)을지나 확장 할 수 있습니다. 에폭시 튜브 자체에 갈 수 있도록 않도록주의하면서 자리에 접착제 폴리 아미드 튜브에 5 분 에폭시를 사용합니다. 다른 세 튜브 및 사업자에 대해이 단계를 반복합니다. </li><li> 에폭시 완전히 설정 한 후, VersaDrive 자료에있는 네 개의 구멍 중 하나를 통해 각각의 폴리 아미드 튜브를 안내합니다. 네 개의 튜브가 구멍을 통해 일단, 외부 구멍을 통해 곤충 핀을 누르면,이 라인에서 사극 캐리어를 누른 상태에서 이동하는 캐리어 레일 역할을합니다. 세 가지 다른 사업자에 대해이 단계를 반복합니다. </li><li> 캡 기지를 커버 사극 항공사는 뚜껑에 상주하도록 캡을 가지고 네 개의 곤충 핀으로 줄. 모자에 적절한 구멍을 통해와 사극 캐리어에 실 1mm × 5 mm 기계 나사. 이 캐리어를 아래로 이동 드라이브 나사 될 것입니다. 대표다른 세 개의 나사를 위해 이것을 먹는다. </li><li> 사극 사업자가 자신의 최고 위치에 있으며 폴리 아미드 튜브 캡 구멍을 통해 표시 될 때까지 시계 방향으로 나사를 모두 켭니다. 미세 마이크로 해부 가위를 사용하여, (1 ㎜) 바로 아래 네 개의 폴리 아미드 튜브 같은 길이가되도록 기반을 튜브를 잘라. </li><li> 해부 현미경을 사용하여 조심스럽게 폴리 아미드 튜브를 통해 하나의 사극에 실을 꿰다. 그것은 어떤 꼬임이나 굴곡이 매우 어려운 완전히 통해 사극을 스레드로 할 것 같은 튜브를 통해 완벽하게 똑바로 전진으로 사극 선을 유지하는 것이 중요합니다. 다른 세 tetrodes을 반복합니다. </li><li> 모든 tetrodes가 튜브에 한 번 신중하게 각각의 튜브 내에서 tetrodes을 확보, 각 튜브의 상단에 시아 노 아크릴 레이트의 작은 방울을 적용합니다. 사업자 간 또는 캡을 통해 튀어 나와있는 느슨한 사극 와이어에 대한 시아 노 아크릴 레이트 (cyanoacrylate)를 얻을 수없는주의를 가져 가라. </li><li> 그들은 단지 관을지나 확장되도록 tetrodes를 잘라2.0 mm (subiculum의 또는 해마). 다음 VersaDrive 지그에 드라이브베이스 (네 곤충 핀 삽입으로) 배치합니다. 지그의 나머지 절반은 채널 연결을 만들기위한 모든 콘센트 구멍이 VersaDrive 뚜껑을 개최한다. </li><li> 완전히 tetrodes가 가장 낮은 위치에 있도록 시계 반대 방향으로 드라이브 나사를 돌립니다. </li><li> 금 콘센트에 사극 와이어를 연결하기 전에 먼저 캡 접지 와이어를 연결합니다. VersaDrive 캡 구멍의 두 행의 중앙 위치에서 접지 연결을위한 두 개의 핀 구멍이 있습니다. 최소 30mm (여기서 땅을 배치 두개골에 따라 다름)의 구리 전선을 절단하고 이러한 가운데 구멍 중 하나를 통해 안내합니다. 구리 와이어는 100이어야한다 - 500 μM (0.004-0.02 &quot;) 직경이 38 AWG 통해 24 AWG 와이어에 거의 동일 장소에있는 구리 와이어를 잡아 초과 와이어를 트림 구멍을 통해 골드 소켓을 누릅니다.. 구리 와이어의 다른 끝에, 플럭스 및 solde을 적용접지 나사에 R이 선 끝 (2.11를 참조하십시오.). 두 번째 접지 와이어에 대해이 단계를 반복합니다. </li><li> 다음으로, 모든 느슨한 사극 와이어 (총 여섯이 있어야한다) 캡 각각의 콘센트 구멍을 통해 안내합니다. 그것은 하나의 사극으로 시작하고 바로 위에 끝날 적절한 네 개의 구멍에 각각 와이어를 스레드하는 것이 좋습니다. 그들은 허약 너무 단단히 사로 잡혔다하면 쉽게 압착 수있는 개별 사극 와이어는 가벼운 압력으로 취급되어야한다. 곤충 핀 구멍을 일렬로 캡을 설치하고 기본 피팅을 누릅니다. </li><li> 사극 선이 캡을 통해 튀어 나온 자리에 사극 와이어를 캡처하고 전기 연결을 만들기 위해 금 콘센트에 맞게 키를 누릅니다. 금 콘센트가 푸시 다운되면 전선의 약 50 % (캡 이상) 잘립니다 될 것입니다. 캡의 상단에서 튀어 유지 초과 와이어를 잘라. 드문 경우에 (5 % 미만), 아래로 금 소켓을 추진하는 것은 선을 분쇄한다와 연결 채널의 결과로, 콘센트 아래를 휴식. 이 분리는 임피던스 테스트 및 전기 단계 (4.7 참조​​)까지 실현되지 않을 수 있습니다. </li><li> 세 가지 다른 tetrodes에 대한 압입 과정을 반복합니다. 상단으로 다시 이동하기 위해 시계 방향으로 드라이브 나사를 돌려 드라이브 움직임이 부드러운 있는지 확인합니다. </li></ol> 4. 전극 팁의 금 도금 <ol><li> 에 관계없이 어떤 사용되는 미세 전극의 종류, 전극 팁 팁 임피던스를 줄이기 위해 금으로 도금해야한다. 이 안정적으로 기록하고 하나의 단위 활동 전위를 구별 할 수있는 능력을 극대화 할 것입니다. Neuralynx nanoZ 장치를 사용하여 전극 임피던스를 테스트합니다. nanoZ 임피던스를 측정하고 자동으로 전기를 허용하는 컴퓨터 기반의 장치입니다. </li><li> 먼저 가장 낮은 위치 (시계 반대 방향)으로 다운 마이크로 드라이브 나사를 켜십시오. 그런 다음 안전의 저하 있도록 클램프 마이크로 드라이브를 마운트금 도금 용액에 전극의 끝. </li><li> SIFCO 금 용액 및 증류수로 다른 타워 하나 델린 탑을 입력합니다. 금 용액에 전극의 끝 부분을 낮 춥니 다. </li><li> 다음 nanoZ USB Windows 기반 컴퓨터에 케이블을 연결하십시오 nanoZ 프로그램을 엽니 다. 이 프로그램은 임피던스 측정 값을 제공하고 마이크로 드라이브의 연결된 각 채널에 금 도금을 수행합니다. </li><li> 드롭 다운 장치로 이동 한 후이 창의 하단에 &quot;연결이 설정&quot;이 표시됩니다 nanoZ을 선택합니다. 다음 드롭 다운 메뉴에서 테스트에 대한 적절한 어댑터를 선택합니다. &quot;테스트 임피던스&quot;를 클릭 1,004 Hz에서 (40 회, 0 밀리 초 일시 정지)에 테스트 주파수를 설정합니다. 그들의 MΩ 판독 가능한 모든 채널을 보여줍니다 &quot;검사 보고서&quot;창을 엽니 다되는, &quot;테스트 프로브&quot;를 클릭하십시오. 디스크 아이콘을 클릭하거나 &quot;파일&quot;을 선택하여 이러한 임피던스 값을 저장 한 후 &quot;보고서 저장&quot;을 선택합니다. </li><li> 다음으로, &quot;DC 전기&quot;를 클릭하고 할당다음 값 : 모드 = 경기 임피던스, 전류 = -1.0 μA, 목표 = 350 KΩ 1,004 Hz에서 5 실행, 5 초 간격, 2 초 일시 정지 도금. </li><li> &quot;Autoplate&quot;을 클릭합니다. 이 프로그램은 먼저 해당 채널에 지정된 전류를 적용 한 후 각 채널의 임피던스를 읽을 것이다, 임피던스를 다시 테스트 대상 임피던스 (또는 낮은 값)에 도달 할 때까지 필요에 따라 현재 적용됩니다. 목표는 전극 임피던스를 줄일 수 있지만, 그것은 채널 100 KΩ의 값 이하로 전기 않을 수 있습니다. 이러한 경우에는, 그것은 사극에 인접한 전선이 함께 단락되었을 가능성도 있습니다. 이 경우, 초과하는 금 입자를 제거하는 채널의 임피던스를 다시 테스트하고 전기 도금을 반복하는 현재의 극성 (+ 1.0 μA) 역. 325 KΩ - 네 12.5 μM 와이어 번들 대개 마지막 임피던스 값은 150에서 다양합니다. </li><li> 350 KΩ 이하로 도금되지 않은 단일 채널이있는 경우, 전기 도금을하는 과정을 반복합니다.이 프로그램은 이미 목표에 도달 한 채널을 통해 건너 뛰고하지 않은 것입니다 만 플레이트 채널합니다. </li><li> 일단 모든 채널이 허용 임피던스 도금 된, nanoZ 프로그램을 닫고 장치를 분리합니다. 도금 용액의 전극을 올리고 과잉 금 입자를 씻어하기 위해 증류수 델 타워에 팁을 낮 춥니 다. </li><li> 전극이 그들의 최고 위치로 발생하는 때까지 시계 방향으로 드라이브 나사를 돌립니다. 이제 마이크로 드라이브와 전극 이식을위한 준비가되어 있습니다. </li></ol>

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S., Halgren, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+human+K-complex+represents+an+isolated+cortical+down-state.">The human K-complex represents an isolated cortical down-state.</a> Science. 324 (5930), 1084-1087 (2009).</li></ol>

저자는 그들이 더 경쟁 재정적 이익이 없다는 것을 선언합니다.

우리는 세포 단위와 마우스 필드 잠재력 활동의 기록을 위해 빛과 소형 마이크​​로 드라이브를 구성하는 기술의 집합을 설명했습니다. 아크릴 유리 (메틸 메타 크릴 레이트)에서 유행 기지와 사용자 정의 마이크로 드라이브를 구축하여, 핵심 시스템은 쉽게 여러 드라이브 및 신경 영역의 다양한 배열의 타겟팅 적용 할 수 있습니다. 우리는 성공적으로 여러 뇌의 대상에서 녹음 및 마우스에서 ?...

생체 내에서 세포 신경 신호를 기록하기위한 미세 기술의 사용은 신경 과학 1, 2 긴 소중한 전통을 가지고있다. 자유롭게 행동 동물에있는 많은 뇌 영역에서 전기적 활동을 기록하는 기능은, 그러나, 3보다 정교하고 사용자 친화적되고 수집, 분석 및 신경 신호의 차별에 대한 소프트웨어 패키지로 점차 일반화되고 더 최근의 기술 4. 소프트웨어 측면에서 기술 진보는 또한 쥐와 같은 작은 포유 동물에 녹음 충분히 조정 된 이식 장치의 무게와 부피의 감소, 동반되었다. 경량 (주로 플라스틱) 구성 요소를 사용하여, 연구진은 전극 또는 뇌 영역의 다양한 5-7를 대상으로 tetrodes의 독립적 인 위치를 허용 마이크로 드라이브를 구성 할 수 있습니다. 등으로도 깊은 두뇌 구조편도 6 선조체 5, 일상적으로 적절 긴 드라이브 나사의 선택으로 타겟팅 할 수 있습니다. 이 기록 기술은 9 연구진은 고 충실도 신경 신호를 얻을 수 있도록하고 단일 뉴런의 전기적 활동과 등록에 세포 내 8을 기록했다. 이식 10 후 최대 2 개월에 대한 마이크로 드라이브의 이러한 유형을 사용하여, 우리는 성공적으로 생쥐 단일 단위를 기록했다. 또한, 장치 (약 1.5 ~ 2.0 g)의 가벼운 특성은 많은 행동 작업의 비 이식 마우스에 필적 행동 성과 귀착되었다. 특히, 이식 생쥐 소설 물체 인식 작업 (10)와 객체 장소 작업 (게시되지 않은 데이터)의 정상 성능을 나타내는 것을 증명하고있다. 여러 tetrodes에 결합 마이크로 드라이브의 사용은 연구자 네트워크 수준에서 신경 활동을 모니터링하고 분석 할 수 있습니다또한 두뇌에서 여러 단일 장치에서 녹화하는 동안. 이 tetrodes와 녹음 장치 식별을 위해 몇 가지 주요 장점을 가지고 있으며, 높은 정확도의 수집 및 여러 단일 유닛 (11)의 차별을 할 수 있습니다. 우리는 제조 및 골드 플레이트 사극 번들하고 이후 driveable 전극 사업자에로드하는 방법에 대해 설명합니다. 우리가 설명하는 드라이브 캐리어의 한 종류 시중이고 다른 하나는 자원의 상당한 투자하지 않고 여러 사업자와 사극 준비를 수용 할 수있는 간단하지만 쉽게 확장 드라이브 디자인입니다.

<table border="1">
		<tbody>
		 <tr>
			<td>Name of Reagent/Material</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>0.0005" (12.5 &mu;M) diameter Platinum-Iridium wire </td>
			<td>California Fine Wire</td>
			<td>CFW#100-167</td>
			<td>HML VG insulated <a href="http://www.calfinewire.com" target="_blank">www.calfinewire.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>0.002" (50 &mu;M) diameter Stableohm 675 wire</td>
			<td>California Fine Wire</td>
			<td>CFW# 100-188</td>
			<td>HML insulated Ni-Cr</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>polyamide tubing</td>
			<td>Polymicro Technologies</td>
			<td>1068150020</td>
			<td>99 micron I.D., 166 micron O.D. <a href="http://www.polymicro.com" target="_blank">www.polymicro.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>brass guides</td>
			<td>World Plastics Inc</td>
			<td></td>
			<td>3.3 x 6.6 mm</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Delrin blocks</td>
			<td>World Plastics Inc</td>
			<td></td>
			<td>3.13 x 2.5 mm</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Fillister head brass screws</td>
			<td>J.I. Morris Co.</td>
			<td>00-90 x 1/2</td>
			<td>drive screw <a href="http://www.jimorrisco.com" target="_blank">www.jimorrisco.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>hex brass nuts</td>
			<td>J.I. Morris Co.</td>
			<td>00-90</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Fillister head brass screws</td>
			<td>J.I. Morris Co.</td>
			<td>000-120 x 3/32</td>
			<td>EIB mount and ground screw</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>plexiglass acrylic</td>
			<td>Canal Street Plastics</td>
			<td></td>
			<td>5 mm thick, clear, <a href="http://www.cpcnyc.com" target="_blank"> www.cpcnyc.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>cyanoacrylate</td>
			<td>Krazy Glue</td>
			<td></td>
			<td>2 g tube</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>electronic interface board</td>
			<td>Neuralynx</td>
			<td>EIB-18</td>
			<td><a href="http://www.neuralynx.com" target="_blank">www.neuralynx.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>non-cyanide gold solution</td>
			<td>SIFCO</td>
			<td>SIFCO 5355</td>
			<td><a href="http://www.sifcoasc.com" target="_blank">www.sifcoasc.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>VersaDrive 4</td>
			<td>Neuralynx</td>
			<td></td>
			<td>four tetrode model</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>tetrode assembly station</td>
			<td>Neuralynx</td>
			<td></td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>motorized tetrode spinner</td>
			<td>Neuralynx</td>
			<td>tetrode spinner 2.0</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>VersaDrive jig</td>
			<td>Neuralynx </td>
			<td></td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>soldering iron</td>
			<td>Radio Shack </td>
			<td>64-2802B</td>
			<td><a href="http://www.radioshack.com" target="_blank">www.radioshack.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>nanoZ</td>
			<td>Neuralynx</td>
			<td></td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>small bit drill/driver</td>
			<td>Ram Products </td>
			<td>Rampower 35</td>
			<td>with footpedal controller, <a href="http://www.ramprodinc.com" target="_blank">www.ramprodinc.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>drill bits</td>
			<td>Small Parts, Inc.</td>
			<td></td>
			<td>3/32" bits, <a href="http://www.smallpartsinc.com" target="_blank">www.smallpartsinc.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>dissecting microscope</td>
			<td>Olympus </td>
			<td>SZ-60</td>
			<td><a href="http://www.olympusamerica.com" target="_blank">www.olympusamerica.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>heat gun</td>
			<td>Alphawire</td>
			<td>Fit gun 3</td>
			<td>use setting "1" only, <a href="http://www.alphawire.com" target="_blank">www.alphawire.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>26 AWG copper wire</td>
			<td>Arcor Electronics</td>
			<td>F26</td>
			<td>for ground wires, <a href="http://www.arcorelectronics.com" target="_blank"> www.arcorelectronics.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>soldering flux</td>
			<td>Eagle</td>
			<td>2 oz, #205</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>0.02" diameter solder</td>
			<td>Kester</td>
			<td>24-6337-0010</td>
			<td><a href="http://www.kester.com" target="_blank"> www.kester.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>benchtop vise</td>
			<td>Vacu-Vise</td>
			<td>Model 300</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>fiber optic light</td>
			<td>Nikon </td>
			<td>MKII</td>
			<td>dual light arms, <a href="http://www.nikon.com" target="_blank"> www.nikon.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>5-min epoxy</td>
			<td>Allied Electronics</td>
			<td></td>
			<td>25 ml, <a href="http://www.alliedelec.com" target="_blank"> www.alliedelec.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>fine tweezers</td>
			<td>Roboz Surgical Instrument Co.</td>
			<td>RS-4907, RS-5010</td>
			<td>INOX material, <a href="http://www.roboz.com" target="_blank"> www.roboz.com</a></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>micro dissecting scissors</td>
			<td>Roboz Surgical Instrument Co.</td>
			<td>RS-5880</td>
			<td></td>
		 </tr>
		</tbody>
 </table>
 Table 1. Materials and reagents used for constructing tetrodes and microdrives.

construction of microdrive arrays for chronic neural recordings in awake behaving mice

동물 실험 관련 업무에 종사하는대로 자유롭게 행동 동물의 두뇌에서 최첨단의 전기 생리학 녹음, 연구자가 동시에 각각의 세포에서 신경 및 행동 잠재력의 인구에서 현지 필드 잠재력 (LFPs) 검사 할 수 있습니다. 만성 이식 마이크로 드라이브는 몇 주간의 기간 동안 지속하는 두뇌 녹음을 허용합니다. 소형 드라이브 및 경량의 구성 요소는 마우스와 같은 작은 포유 동물에서 발생하는 이러한 장기 녹음을 허용합니다. 각 전선은 12.5 ㎛의 직경을 가지고있는 네 개의 전극을 단단히 꼰 번들로 구성 tetrodes를 사용하여, 그것은 이러한 대뇌 피질, 해마, 그리고 subiculum의 등의 표면 뇌 영역에서 생리 활성 뉴런을 분리 할 수​​ 있습니다뿐만 아니라, 이러한 선조체와 편도로 깊은 지역으로. 동물이 varie를 가진 도전으로 또한,이 기술은 안정성, 고 충실도 신경 녹음을 확실히행동 작업의 타이. 이 원고는 마우스 뇌에서 기록하는 최적화 된 여러 가지 기술에 대해 설명합니다. 첫 번째 KΩ의 범위 MΩ에서 자신의 임피던스를 줄이기 위해 자신의 팁을, 우리는 tetrodes를 조작 driveable 튜브에로드하는 방법을 보여줍니다, 골드 플레이트. 둘째로, 우리는 휴대하고 저렴한 재료의 사용과 수직 tetrodes 이동에 대한 사용자 지정 마이크로 드라이브 어셈블리를 구성하는 방법을 보여줍니다. 셋째, 우리는 독립적으로 이동 tetrodes을 수행하도록 설계 시판의 마이크로 드라이브 (Neuralynx VersaDrive)을 조립하는 단계를 보여줍니다. 마지막으로, 우리는 생쥐의 등​​쪽 subiculum의에서 얻은 현지 필드 잠재력과 하나의 단위 신호의 대표적인 결과를 제시한다. 이 기술은 쉽게 전극 배열과 마우스 뇌의 녹화 계획의 다른 유형을 수용하기 위해 변경 될 수 있습니다.

<p class="jove_content"&gt; 마이크로 드라이브를 이식하고이 Neuralynx 살쾡이-8, 신경 신호를 기록하기위한 필요로 의도 두뇌 대상, 증폭 된 데이터 수집 시스템에 전극을 낮추는 후. 현지 필드 잠재력을 대표하는 신경 녹음 (LFPs)와 마우스 지느러미의 subiculum의에서 하나의 단위 활동 전위는 (종종라고 &quot;스파이크&quot;)에 표시됩니다<strong&gt; 그림 2</strong&gt;. LFP 신호는 0.1 ~ 500 Hz의 사이에 필터링 3 kHz와 밴드 패스 샘플링 ?...

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Construction of Microdrive Arrays for Chronic Neural Recordings in Awake Behaving Mice

마우스의 뇌 신호의 생체 전기 생리학 기록에 대한 마이크로 드라이브의 설계와 어셈블리가 설명되어 있습니다. 튼튼한 driveable 캐리어 미세 번들을 부착하여,이 기술은 장기적이고 안정적​​인 신경 녹음을 허용합니다. 경량 디자인은 동물 다음과 같은 드라이브 주입에 의한 제한 행위 성능을 할 수 있습니다.

깨어있는 행동을 한 쥐의 만성 신경 녹음을위한 마이크로 드라이브 배열의 건설

State-of-the-art electrophysiological recordings from the brains of freely behaving animals allow researchers to simultaneously examine local field ...

construction-microdrive-arrays-for-chronic-neural-recordings-awake

Research

JoVE Journal

Behavior

20.0K 조회수.  North Shore LIJ Health System. 마우스의 뇌 신호의 생체 전기 생리학 기록에 대한 마이크로 드라이브의 설계와 어셈블리가 설명되어 있습니다. 튼튼한 driveable 캐리어 미세 번들을 부착하여,이 기술은 장기적이고 안정적​​인 신경 녹음을 허용합니다. 경량 디자인은 동물 다음과 같은 드라이브 주입에 의한 제한 행위 성능을 할 수 있습니다.

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Long-term Potentiation of Perforant Pathway-dentate Gyrus Synapse in Freely Behaving Mice

Studies of long-term potentiation of synaptic efficacy, an activity-dependent synaptic phenomenon having properties that make it attractive as a potential cellular mechanism underlying learning and information storage, have long been used to elucidate the physiology of various neuronal circuits in the hippocampus, amygdala, and other limbic and cortical structures. With this in mind, transgenic mouse models of neurological diseases represent useful platforms to conduct long-term&#160;potentiation (LTP) studies to develop a greater understanding of the role of genes in normal and abnormal synaptic communication in neuronal networks involved in learning, emotion and information processing. This article describes methodologies for reliably inducing LTP in the freely behaving mouse. These methodologies can be used in studies of transgenic and knockout freely&#160;behaving mouse models of neurodegenerative diseases.

Transgenic and knockout mouse models of neurological diseases are useful for studying the role of genes in normal and abnormal neurophysiology. This article describes methodologies which can be used to study long-term potentiation, a cellular mechanism which may underlie learning and memory, in transgenic and knockout freely&#160;behaving mouse models of neuropathology.

자유롭게 마우스를 동작에 문제가있는 Perforant 통로 - 치아 이랑 (dentate gyrus) 시냅스의 장기 강화 작용

Studies of long-term potentiation of synaptic efficacy, an activity-dependent synaptic phenomenon having properties that make it attractive as a potential ...

연구

행동분석학

Automated, Quantitative Cognitive/Behavioral Screening of Mice: For Genetics, Pharmacology, Animal Cognition and Undergraduate Instruction

We describe a high-throughput, high-volume, fully automated, live-in 24/7 behavioral testing system for assessing the effects of genetic and pharmacological manipulations on basic mechanisms of cognition and learning in mice. A standard polypropylene mouse housing tub is connected through an acrylic tube to a standard commercial mouse test box. The test box has 3 hoppers, 2 of which are connected to pellet feeders. All are internally illuminable with an LED and monitored for head entries by infrared (IR) beams. Mice live in the environment, which eliminates handling during screening. They obtain their food during two or more daily feeding periods by performing in operant (instrumental) and Pavlovian (classical) protocols, for which we have written protocol-control software and quasi-real-time data analysis and graphing software. The data analysis and graphing routines are written in a MATLAB-based language created to simplify greatly the analysis of large time-stamped behavioral and physiological event records and to preserve a full data trail from raw data through all intermediate analyses to the published graphs and statistics within a single data structure. The data-analysis code harvests the data several times a day and subjects it to statistical and graphical analyses, which are automatically stored in the &#34;cloud&#34; and on in-lab computers. Thus, the progress of individual mice is visualized and quantified daily. The data-analysis code talks to the protocol-control code, permitting the automated advance from protocol to protocol of individual subjects. The behavioral protocols implemented are matching, autoshaping, timed hopper-switching, risk assessment in timed hopper-switching, impulsivity measurement, and the circadian anticipation of food availability. Open-source protocol-control and data-analysis code makes the addition of new protocols simple. Eight test environments fit in a 48 in x 24 in x 78 in&#160;cabinet; two such cabinets (16 environments) may be controlled by one computer.

Fully automated system for measuring physiologically meaningful properties of the mechanisms mediating spatial localization, temporal localization, duration, rate&#160;and probability estimation, risk assessment, impulsivity, and the accuracy and precision of memory, in order to assess the effects of genetic and pharmacological manipulations on foundational mechanisms of cognition in mice.

마우스의 자동화, 정량인지 / 행동 검사 : 유전학, 약리학, 동물인지 및 학부 교육을위한

We describe a high-throughput, high-volume, fully automated, live-in 24/7 behavioral testing system for assessing the effects of genetic and ...

Cortical Source Analysis of High-Density EEG Recordings in Children

EEG is traditionally described as a neuroimaging technique with high temporal and low spatial resolution. Recent advances in biophysical modelling and signal processing make it possible to exploit information from other imaging modalities like structural MRI that provide high spatial resolution to overcome this constraint1. This is especially useful for investigations that require high resolution in the temporal as well as spatial domain. In addition, due to the easy application and low cost of EEG recordings, EEG is often the method of choice when working with populations, such as young children, that do not tolerate functional MRI scans well. However, in order to investigate which neural substrates are involved, anatomical information from structural MRI is still needed. Most EEG analysis packages work with standard head models that are based on adult anatomy. The accuracy of these models when used for children is limited2, because the composition and spatial configuration of head tissues changes dramatically over development3.&#160;
In the present paper, we provide an overview of our recent work in utilizing head models based on individual structural MRI scans or age specific head models to reconstruct the cortical generators of high density EEG. This article describes how&#160;EEG recordings are acquired, processed, and analyzed with pediatric populations at the London Baby Lab, including laboratory setup, task design, EEG preprocessing, MRI processing, and EEG channel level and source analysis.&#160;

In recent years, there has been increasing interest in estimating the cortical sources of scalp measured electrical activity for cognitive neuroscience experiments. This article describes how high density EEG is acquired and how recordings are processed for cortical source estimation in children from the age of 2 years at the London Baby Lab.

아이들의 고밀도 EEG 레코딩의 대뇌 피질의 자료 분석

EEG is traditionally described as a neuroimaging technique with high temporal and low spatial resolution. Recent advances in biophysical modelling and ...

A Novel Experimental and Analytical Approach to the Multimodal Neural Decoding of Intent During Social Interaction in Freely-behaving Human Infants

Understanding typical and atypical development remains one of the fundamental questions in developmental human neuroscience. Traditionally, experimental paradigms and analysis tools have been limited to constrained laboratory tasks and contexts due to technical limitations imposed by the available set of measuring and analysis techniques and the age of the subjects. These limitations severely limit the study of developmental neural dynamics and associated neural networks engaged in cognition, perception and action in infants performing &#8220;in action and in context&#8221;. This protocol presents a novel approach to study infants and young children as they freely organize their own behavior, and its consequences in a complex, partly unpredictable and highly dynamic environment. The proposed methodology integrates synchronized high-density active scalp electroencephalography (EEG), inertial measurement units (IMUs), video recording and behavioral analysis to capture brain activity and movement non-invasively in freely-behaving infants. This setup allows for the study of neural network dynamics in the developing brain, in action and context, as these networks are recruited during goal-oriented, exploration and social interaction tasks.

This protocol presents a novel methodology for the neural decoding of intent from freely-behaving infants during unscripted social interaction with an actor. Neural activity is acquired using non-invasive high-density active scalp electroencephalography (EEG). Kinematic data is collected with inertial measurement units and supplemented with synchronized video recording.

인간의 유아를 자유롭게 행동의 사회적 상호 작용하는 동안 의도 모드의 신경 디코딩에 소설 실험 및 분석 접근

Understanding typical and atypical development remains one of the fundamental questions in developmental human neuroscience. Traditionally, experimental ...

A Pressure Injection System for Investigating the Neuropharmacology of Information Processing in Awake Behaving Macaque Monkey Cortex

The top-down modulation of feed-forward cortical information processing is functionally important for many cognitive processes, including the modulation of sensory information processing by attention. However, little is known about which neurotransmitter systems are involved in such modulations. A practical way to address this question is to combine single-cell recording with local and temporary neuropharmacological manipulation in a suitable animal model. Here we demonstrate a technique combining acute single-cell recordings with the injection of neuropharmacological agents in the direct vicinity of the recording electrode. The video shows the preparation of the pressure injection/recording system, including preparation of the substance to be injected. We show a rhesus monkey performing a visual attention task and the procedure of single-unit recording with block-wise pharmacological manipulations.

Here, we show the pressure injection of neuropharmacological substances during single-cell recording in an awake, behaving macaque monkey. This procedure allows pharmacological manipulation in the direct vicinity of a cortical recording site.

깨어되는 행동 원숭이 원숭이 코어 텍스에서 정보 처리의 신경 약리학 조사에 대한 압력 분사 시스템

The top-down modulation of feed-forward cortical information processing is functionally important for many cognitive processes, including the modulation ...

Using Laser Doppler Imaging and Monitoring to Analyze Spinal Cord Microcirculation in Rat

Laser Doppler flowmetry (LDF) is a noninvasive method for blood flow (BF) measurement, which makes it preferable for measuring microcirculatory alterations of the spinal cord. In this article, our goal was to use both Laser Doppler imaging and monitoring to analyze the change of BF after spinal cord injury. Both the laser Doppler image scanner and the probe/monitor were being employed to obtain each readout. The data of LDPI provided a local distribution of BF, which gave an overview of perfusion around the injury site and made it accessible for comparative analysis of BF among different locations. By intensely measuring the probing area over a period of time, a combined probe was used to simultaneously measure the BF and oxygen saturation of the spinal cord, showing overall spinal cord perfusion and oxygen supply. LDF itself has a few limitations, such as relative flux, sensitivity to movement, and biological zero signal. However, the technology has been applied in clinical and experimental study due to its simple setup and rapid measurement of BF.

Here we present a combination of laser Doppler perfusion imaging (LDPI) and laser Doppler perfusion monitoring (LDPM) to measure spinal cord local blood flows and oxygen saturation (SO2), as well as a standardized procedure for introducing spinal cord trauma on rat.

레이저 도플러 이미징 및 모니터링을 사용 하 여 쥐에서 척수 미세 분석 하

Laser Doppler flowmetry (LDF) is a noninvasive method for blood flow (BF) measurement, which makes it preferable for measuring microcirculatory ...

A Wireless, Bidirectional Interface for In Vivo Recording and Stimulation of Neural Activity in Freely Behaving Rats

In vivo electrophysiology is a powerful technique to investigate the relationship between brain activity and behavior at a millisecond and micrometer scale. However, current methods mostly rely on tethered cable recordings or only use unidirectional systems, allowing either recording or stimulation of neural activity, but not at the same time or same target. Here, a new wireless, bidirectional device for simultaneous multichannel recording and stimulation of neural activity in freely behaving rats is described. The system operates through a single portable head stage that both transmits recorded activity and can be targeted in real-time for brain stimulation using a telemetry-based multichannel software. The head stage is equipped with a preamplifier and a rechargeable battery, allowing stable long-term recordings or stimulation for up to 1 h. Importantly, the head stage is compact, weighs 12 g (including battery) and thus has minimal impact on the animal&#180;s behavioral repertoire, making the method applicable to a broad set of behavioral tasks. Moreover, the method has the major advantage that the effect of brain stimulation on neural activity and behavior can be measured simultaneously, providing a tool to assess the causal relationships between specific brain activation patterns and behavior. This feature makes the method particularly valuable for the field of deep brain stimulation, allowing precise assessment, monitoring, and adjustment of stimulation parameters during long-term behavioral experiments. The applicability of the system has been validated using the inferior colliculus as a model structure.

A Wireless, Bidirectional Interface for In Vivo Recording and Stimulation of Neural Activity in Freely Behaving Rats

A wireless, bidirectional system for multi-channel neural recordings and stimulation in freely behaving rats is introduced. The system is light and compact, thus having minimal impact on the animal&#180;s behavioral repertoire. Moreover, this bidirectional system provides a sophisticated tool to assess causal relationships between brain activation patterns and behavior.

무선, Vivo에서 녹음 하 고 자유롭게 행동 하는 쥐에서 신경 활동의 자극에 대 한 양방향 인터페이스

In vivo electrophysiology is a powerful technique to investigate the relationship between brain activity and behavior at a millisecond and micrometer ...

A Behavioral Assay for Investigating the Role of Spatial Memory During Instinctive Defense in Mice

Evolution has selected a repertoire of defensive behaviors that are essential for survival across all animal species. These behaviors are often stereotyped actions elicited in response to innately aversive sensory stimuli, but their success requires enough flexibility for adapting to different spatial environments, which can change rapidly. Here, we describe a behavioral assay to evaluate the influence of learned spatial knowledge on defensive behaviors in mice. We have adapted the widely used Barnes maze spatial memory assay to investigate how mice navigate to a shelter during escape responses to innately aversive sensory stimuli in a novel environment, and how they adapt to acute changes in the environment. This new assay is an ethological paradigm that does not require training and exploits the natural exploration patterns and navigation strategies in mice. We propose that the set of protocols described here are a powerful means of studying goal-directed behaviors and stimulus-triggered navigation, which should be of interest to both the fields of instinctive behaviors and spatial memory.

This protocol describes a behavioral assay, based on the Barnes maze test, to study how instinctive defensive actions are modified by the knowledge of spatial environment.

생쥐의 본능적 인 방어 하는 동안 공간 메모리의 역할을 조사에 대 한 행동 분석 결과

Evolution has selected a repertoire of defensive behaviors that are essential for survival across all animal species. These behaviors are often ...

The Unpredictable Chronic Mild Stress Protocol for Inducing Anhedonia in Mice

Depression is a highly prevalent and debilitating condition, only partially addressed by current pharmacotherapies. The lack of response to treatment by many patients prompts the need to develop new therapeutic alternatives and to better understand the etiology of the disorder. Pre-clinical models with translational merits are rudimentary for this task. Here we present a protocol for the unpredictable chronic mild stress (UCMS) method in mice. In this protocol, adolescent mice are chronically exposed to interchanging unpredictable mild stressors. Resembling the pathogenesis of depression in humans, stress exposure during the sensitive period of mice adolescence instigates a depressive-like phenotype evident in adulthood. UCMS can be used for screenings of antidepressants on the variety of depressive-like behaviors and neuromolecular indices. Among the more prominent tests to assess depressive-like behavior in rodents is the sucrose preference test (SPT), which reflects anhedonia (core symptom of depression). The SPT will also be presented in this protocol. The ability of UCMS to induce anhedonia, instigate long-term behavioral deficits and enable reversal of these deficits via chronic (but not acute) treatment with antidepressants strengthens the protocol&#39;s validity compared to other animal protocols for inducing depressive-like behaviors.

Here we present the unpredictable chronic mild stress protocol in mice. This protocol induces a long-term depressive-like phenotype and enables to assess the efficacy of putative antidepressants in reversing the behavioral and neuromolecular depressive-like deficits.

마우스에 Anhedonia 유도 대 한 예측할 수 없는 만성 가벼운 스트레스 프로토콜

Depression is a highly prevalent and debilitating condition, only partially addressed by current pharmacotherapies. The lack of response to treatment by ...

Novel Object Recognition and Object Location Behavioral Testing in Mice on a Budget

Ethologically relevant behavioral testing is a critical component of any study that uses mouse models to study the cognitive effects of various physiological or pathological changes. The object location task (OLT) and the novel object recognition task (NORT) are two effective behavioral tasks commonly used to reveal the function and relative health of specific brain regions involved in memory. While both of these tests exploit the inherent preference of mice for the novelty to reveal memory for previously encountered objects, the OLT primarily evaluates spatial learning, which relies heavily on hippocampal activity. The NORT, in contrast, evaluates non-spatial learning of object identity, which relies on multiple brain regions. Both tasks require an open-field-testing arena, objects with equivalent intrinsic value to mice, appropriate environmental cues, and video recording equipment and the software. Commercially available systems, while convenient, can be costly. This manuscript details a simple, cost-effective method for building the arenas and setting up the equipment necessary to perform the OLT and NORT. Furthermore, the manuscript describes an efficient testing protocol that incorporates both OLT and NORT and provides typical methods for data acquisition and analysis, as well as representative results. Successful completion of these tests can provide valuable insight into the memory function of various mouse model systems and appraise the underlying neural regions that support these functions.

Here we provide a protocol which includes comprehensive instructions for the economical establishment of murine object location and novel object recognition behavioral testing, including the design, cost, and construction of required equipment as well as execution of behavioral testing, data collection, and analysis.