This work was supported by the KU Leuven PF &#8216;IMIR&#8217;, the FWO Research community on biology and ecology of bacterial and fungal biofilms (FWO: WO.026.11N) and by the FWO project G.0804.11. SK gratefully acknowledges KU Leuven for the PDMK 11/089 fellowship and FWO for the postdoctoral fellowship. We are grateful to Nico Vangoethem for his assistance with preparation of the figures. We would like to acknowledge Celia Lobo Romero for technical assistance during in vivo experimental procedures.

참고 : 모든 동물 실험은 KU 루벤 (프로젝트 번호 090/2013)의 윤리위원회에 의해 승인되었다. KU 루벤 동물 관리 지침에 따라 동물을 유지한다. 1. C. 알비 칸스 성장 <ol><li> 24 시간 동물 실험의 개시 이전에, 효모 추출물 10 g을 과립, 세균 펩톤 20g, 및 과립 화 한천 15g을 첨가하여 YPD 플레이트를 준비한다. 밀리 Q 물과 오토 클레이브 900 ml의 부피를 확인합니다. </li><li> 살균 40 % 포도당의 50 ML을 추가합니다. 철저하게 혼합하고 페트리 접시에 붓는다. 냉각 및 응고 한천 플레이트를 남겨주세요. 참고 :이 연구에서는 두 균주, 즉 야생형 C.를 사용 알비 칸스 (Candida albicans) SC5314 - gLuc 음 (WT라고 함) 균주와 C. 야생형 C.이다 알비 칸스 SKCA23 변형, SKCA23-라는 이름의 변형 (과 방진 Clp10 :: Act1p-gLUC59 플라스미드 (22) 형질 전환 알비 칸스 SC5314CTgLuc) gLuc (이 프로모터는 곰팡이의 균사뿐만 아니라 스테이지, 효모에서 활성) ACT1 (액틴) 프로모터의 제어하에 PGA59 내인성 유전자에 융합시켰다. 이 균주 교수 패트릭 반 DIJCK, KU 루벤, 루벤, 벨기에의 실험실에서 요청할 수 있습니다. 플라스미드 Clp10 :: Act1p-gLUC59 플라스미드 (22)는 친절 교수 C. 디부 Enfert, 파스퇴르 연구소, 파리, 프랑스에 의해 기증했다. </li><li> -80 ° C에서 글리세롤 주식 및 저장소에 모두 긴장을 유지한다. </li><li> YPD 판에 어떤 실험을 연속 균주에 앞서. 하룻밤 37 ° C에서 접시를 품어. </li></ol> 2. 카테터 조각 준비 <ol><li> 실험하기 전에 필요한 얼마나 많은 카테터를 결정합니다. 이는 마우스 당 6 개 ​​카테터 (왼쪽 3 카테터 및 동물 (도 2a의 우측 카테터 3)까지 이식 할 수있다. </li><li> 스물 네 시간은 동물 수술에 앞서, 팩 열생물 안전 캐비닛에서 트리플 루멘 카테터를 포함하는 나이. 멸균 메스 카테터에 부착 된 부분을 멸균 핀셋 불필요한 부분을 제거하고 잘라. 플라스틱 패키지에서 통치자를 놓고 눈금자 규모 (그림 1)에 따라 정확히 1cm의 폴리 우레탄 카테터 조각을 잘라. 참고 : 카테터 조각이 유형의 인광 및 BLI (18, 19)에 대한 때문에 적합하지 않은 것을 언급하는 것이 중요하다. </li><li> 2 ml의 마이크로 원심 튜브에 15 컷 카테터 조각 (단계. 2.2)의 최대 놓습니다. 항상 밀착성 기간 후에 디바이스 칸디다 부착 세포의 양을 열거하는 데 사용되는 여분의 3 개를 준비한다. </li><li> 약 1.8 ml를 100 % 소 태아 혈청 (FBS)으로의 카테터를 보완. </li><li> 적극적으로 와동 100 % FBS의 추가로 100 ~ 200 μl를 추가합니다. 완전히 혈청 모든 카테터 조각을 커버합니다. </li><li> 하룻밤 37 ° C에서 품어. </li&gt; </ol> 3. 동물과 면역 체계의 억제 <ol><li> 표준 음식과 임의 량의 물을 무료로 이용할 개별적으로 환기 필터 상단 케이지에서 여성 BALB / C 마우스 (생후 약 8 주) 유지. </li><li> 동물의 식수에 덱사메타손 (0.4 ㎎ / L)를 추가하여 동물의 수술 전 면역 체계 24 시간의 억제를 시작합니다. 호스트의 모든 세균 오염을 방지하기 위해, 항생제 마시는 물을 보충 예, 암피실린 나트륨 분말 (0.5 g / ℓ). </li><li> (최대 6 일) 전체 실험 기간 동안 동물의 면역을 유지합니다. </li></ol> 4. 생체 내 C. albicans에 접착 FBS 코팅 폴리 우레탄 기판 <ol><li> 신선한 1.5 ML의 microcentrifuge 관에 각각의 혈청 코팅 카테터 조각을 전송합니다. </li><li> 일부 C.는 긁어 알비 칸스 세포 YPD 플레이트 (단계 1) 상에 성장 및 1 ml의 PBS에서 그들을 대기. </li><li> 희석은 수별도의 microcentrifuge 관에서 : 디다 세포 (100 1). 희석 된 샘플의 10 μl를 타고 셀 카운팅 챔버에 적용합니다. 적어도 16 작은 사각형을 계산합니다. </li><li> 5 × 104 세포 / ml의 최종 농도로 RPMI 1640 배지에 칸디다 세포 (별도로 각 균주)를 준비한다. </li><li> 각각의 혈청 코팅 카테터 조각에 세포 현탁액 1 ML을 추가합니다. </li><li> 적극적으로 와동과 카테터가 매체에 잠긴 위에 떠되지 않도록. </li><li> 90 분 동안 37 ° C (접착의 기간)에 카테터를 품어. </li><li> 멸균 핀셋으로 카테터를 제거하고 1 ㎖의 PBS로 두 번 씻어. 이 단계에서는 세탁 액이 매우 부드럽게 카테터를 세척하는 동안에는 수직 위치에 카테터를 유지하여 루멘을 통과해야합니다. 중요한 것은, 첨부 된 세포의 제거로 이어질 수있는 강한 흐름을 사용하지 마십시오. </li><li> TU 당 깨끗한 microcentrifuge 관 (한 조각 각 세척 카테터로 이동)합니다. </li><li> 얼음에 놓고 수술까지 거기 유지. </li></ol> 5. 마취 <ol><li> medetomidine 100 ㎕ (1 ㎎ / ㎖) 및 멸균 생리 식염수 825 ㎕를 가진 75 μL 케타민 (100 ㎎ / ㎖)을 혼합하여 마취를 준비한다. 45-60 ㎎ / kg의 케타민과 0.6-0.8 ㎎ / kg의 투여 량 medetomidine 결과, 10 g의 체중 당 마취제 칵테일의 복강 (IP) 60-80 μL를 관리. </li><li> 마취 환입, 0.5 ㎎ / kg의 투여 량의 결과로서 IP 관리 해독제, 4.95 ml의 식염수에 10 g의 체중 당 100 μl를 50 μL의 atipamezole (5 ㎎ / ㎖)로 희석. </li><li> 마취 주사 후, 별도의 케이지에 동물을 배치하고 완전히 잠이 될 때까지 기다립니다. </li><li> 가벼운 피부 핀치 및 피부에 손상을 일으키지 않는 발가락 핀치에 의해 동물의 적절한 마취를 확인합니다. 모든 관찰 운동은 동물이 충분히 수술을 마취되지 않았 음을 나타냅니다. 이 경우를 기 기다려더 이상 동물까지 분 PLE는 피부 나 발가락 핀치에 따라 운동의 흔적을 표시하지 않습니다. </li></ol> 6. 동물 수술 <ol><li> 전송이 가열 패드에 배치 깨끗한 조직의 케이지에서 동물을 마취, 37 ° C로 미리 예열 (그림 2A, (1)). 주 : 싼 대안은 전기적으로 가열 담요를 사용하는 것입니다. 그것은 동물의 수술에 앞서 마이크로파에서 예열 등온 패드를 사용하는 것도 가능하다. </li><li> 눈에 안과 연고를 적용합니다. </li><li> 전기 면도기와 동물의 허리 면도. 모든 동물의 털을 제거하고 깨끗한 조직에 동물을 전송합니다. (1 % 요오드 이소프로판올 또는 70 % 알코올에 0.5 % 클로르헥시딘으로, 예를 들어) 피부를 소독하고 약 1 분 동안 건조 소독 지역을 떠나 (그림 2A (2)). </li><li> (피부를 약 0.5 (동물의 오른쪽 왼쪽에, 하나)의 작은 절개를 &amp;# 8211; 1cm) (도 2A, (3)). </li><li> 두 피하 터널을 만들 수있는 가위와 피하 조직을 해부하다. 각 터널은 약 1.5 cm 길이 1cm 폭해야한다. </li><li> 각각의 터널에서, 이전에 칸디다 균에 감염된 세 카테터 조각을 삽입합니다. 카테터는 수평 배열에서 서로 옆에 놓여 있는지 확인하고 그들이 총 여섯 카테터 조각의 주입 수 있도록 서로를 커버하지 않는 것이 (그림 2A을 (4)). </li><li> 봉합과 절개를 닫습니다. 다른 방법으로, 상처를 닫습니다 Dermabond를 사용합니다. </li><li> 70 % 알코올에 요오드 또는 이소프로판올 (1 %)로 아주 부드럽게 0.5 % 클로르헥시딘으로 상처를 소독. </li><li> 직접 상처 부위에 국소 마취제 (xylocaine 젤, 2 %)을 적용합니다. </li><li> 마취의 반전 (프로토콜 5, 2 단계)를 관리합니다 : 복강 100 μL 당 10 g의 체중을. </li><li> 깨끗한 케이지로 전송 동물은 이전에 가열 플레이트에 배치합니다. 동물을 유지별도의 따뜻한 동물이 완전히 깨어 때까지. 한편, 다음 동물의 운영 및 임플란트를 계속합니다. 일단 모든 운영하는 동물은 완전히 깨어. 한 케이지에 전송합니다. 정기적으로 동물을 모니터링합니다. </li></ol> 7. 생물 발광 이미징 : 코 엘렌 테라 진 (CTZ)의 제조 G. 들어 기판 프린셉 루시퍼 <ol><li> 산성 에탄올 5 ㎎ / ㎖ CTZ을 용해 또는 제조업체의 지침에 따라에 의해 신선한 엘렌 테라 (CTZ) 주식 솔루션을 준비합니다. </li><li> 멸균 PBS에서 원액 1:10 희석하여 1.2 mM의 작업 솔루션을 준비합니다. 참고 : 카테터 주변 지역에 100 μL CTZ 작업 솔루션 피하 주사. CTZ의 피하 주사에 대한 인슐린 주사기를 사용합니다. </li><li> 항상 어둠 속에서 CTZ을 유지 (예를 들면, 알루미늄 호일로 CTZ를 포함하는 마이크로 원심 튜브를 포함). 실험 기간 동안 -80 ° C에서 스톡 용액을 저장한다. </li></ol&gt; 8. 생물 발광 영상 <ol><li> BLI 카메라를 초기화합니다. </li><li> 유도 상자를 사용하여 동물을 마취. 2~3%에서 산소 N 2 O / O (2), 이소 플루 란, 공기의 혼합 가스를 사용한다. </li><li> 유도 후, 유도 상자 및 1.5-2 %에서 촬상 챔버 마취를 유지한다. </li><li> 촬상 세션을 시작하기 전에, 10cm의 FOV에 대응하는 위치에서 촬상 판을 놓는다. 확인 상자에 잠자는 동물을 배치하여 마취 콘센트와 동물의 오른쪽에 위치하는. </li><li> 동물이 바로 카메라를 아래의 FOV에, 원하는 영상 위치가 될 때까지 약간의 사진을 가져 가라. </li><li> 두 인슐린 주사기 CTZ 작업 솔루션의 각 포함 100 μl를 준비합니다. </li><li> 벤치에 한 마리를 놓고 가스 마취를 제공하는 코 콘에 의해 잠을 유지. </li><li> 카테터는 피하 주변 장소에 주사기의 바늘을 가져오고 주입CTZ 동시에 카테터의 상단에. </li><li> 주사 직후, 카메라 상자 따뜻한 접시에 놓고, 동물 생물 발광 화상 취득을 시작한다. </li><li> (20)로부터 최대 신호 강도에 도달 할 때까지 60 초 (신호 강도에 따라)에 이르기까지 획득 시간으로 연속 스캔을 획득. 다음 프레임의 취득 중에이 ROI 통해 광자 플럭스 각 카테터 트리오 ROI 위에 위치시키고 측정함으로써 이전에 취득한 프레임 BLI 신호 강도를 측정한다. </li><li> 다음 동물 (들)에 대한 7 단계에서 반복합니다. </li><li> 촬영 후, 자신의 케이지에 동물을 반환합니다. 바이오 필름 형성의 길이, 비 침습적 후속위한 실험 과정을 반복 BLI. </li><li> 생활 이미지 소프트웨어를 사용 BLI 데이터를 분석. 각 카테터 트리오를 통해 고정 된 크기의 직사각형 ROI를 놓고 각각의 투자 수익 (ROI)을 통해 광자 플럭스 (생기)를 측정한다. 모든 동물에 대해이 작업을 반복합니다. </li><li> 보고서초당 광자 플럭스 각 카테터 트리오의 BLI 신호 강도. 평균과 각 그룹에 대한 초당 광자 플럭스 SD 플롯하여 대수 눈금에 BLI 데이터를 나타낸다. 로그 (10) 변환 된 데이터에 대한 통계 분석을 수행합니다. </li></ol> 9. 카테터 절편 <ol><li> 각 카테터 장치에 대한 PBS, 한 1 ㎖를 포함하는 마이크로 원심 튜브를 준비하고 얼음에 보관하십시오. </li><li> 경부 탈구에 의해 동물들을 안락사 (도 2b를 참조하면, (1)). </li><li> 70 % 알코올에 요오드 또는 이소프로판올 (1 %)과 0.5 % 클로르헥시딘과 뒷면의 피부를 소독. </li><li> 카테터 위의 절개 (약 3cm)를 확인합니다. </li><li> 피하 조직을 잘라 멸균 핀셋을 사용하여 피하 조직 아래에서 하나를 사용하여 카테터의 파편을 제거합니다 (그림 2B를, (2)). </li><li> 수직으로 부드럽게 카테터를 처리하고 멸균 PBS 1 ml로 두 번 씻는다. 각 카테터를 배치마이크로 원심 분리 튜브에 피스 (단계 1에서 제조). </li></ol> 콜로니 형성 단위 수 (CFUs) 및 결과의 통계 분석에 의한 (10)의 정량 바이오 필름 관련 세포 <ol><li> 카테터는 이전 초음파 처리 수조 초음파 처리기에서 40,000 Hz에서 10 분 동안 PBS 1 ㎖에 넣고, 얼음에 배치. </li><li> 초음파 처리 한 후, 적극적으로 얼음에 다시 30 초와 장소를 소용돌이. </li><li> PBS의 900 μl를 포함하는 두 개의 추가 마이크로 원심 튜브를 준비합니다. </li><li> 원래 샘플 (카테터를 포함하는 하나)에서 100 희석과 얼음의 모든 마이크로 원심 튜브를 유지 : 1:10 1을 확인합니다. </li><li> 플레이트 원래 샘플 100 ㎕ 1:10, 1 : 중복에 YPD 한천 플레이트에 100 희석. </li><li> 37 ℃에서 2 일 동안 번호판을 품어 CFUs을 계산합니다. </li><li> YPD 한천 플레이트에 성장 된 콜로니 (식민지의 셀 수있는 양, 최대 300 식민지 / 판)을 카운트하고 적절한 거치도록 희석되지 않았어요 곱해기 인자 (1X-원, 10 배 또는 100 배 희석). 또한, 카테터를 포함하는 1 ml의 튜브 콜로니 최종 금액에 대응하여 각 카테터 10 배 편을 곱한다. 10 세포 / 표준 편차 (SD)와 카테터 조각을 기록 식민지의 최종 금액을 가져와. SD ± 평균과 같은 데이터를 표현한다. </li><li> 상술 한 계산 및 통계 분석을 수행하기 위해, 스프레드 시트 및 / 또는 통계 프로그램으로 카테터 각 특정 그룹에 대한 모든 값을 놓는다. 비교하기 위해 특정 그룹을 나타냅니다, 즉 WT 대 돌연변이 또는 이일 대. 육일 biofilm 형성 및 LOG10 변환 된 데이터에 Tukey의 사후 테스트와 짝 t 검정과 분산 분석을 수행합니다. <ol><li> p 값으로 유의 수준을 표현한다. 로 표현 p 값 &lt;0.05, 다음 경우 본 연구에서 의미를 나타냅니다 * P &lt;0.05, ** p &lt;0.005, *** p &lt;0.0005. </li></ol></li></ol>

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R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visualizing+fungal+infections+in+living+mice+using+bioluminescent+pathogenic+Candida+albicans+strains+transformed+with+the+firefly+luciferase+gene.">Visualizing fungal infections in living mice using bioluminescent pathogenic Candida albicans strains transformed with the firefly luciferase gene.</a> Microb Pathog. 40 (2), 82-90 (2006).</li><li>Enjalbert, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+multifunctional+synthetic+Gaussia+princeps+luciferase+reporter+for+live+imaging+of+Candida+albicans+infections.">A multifunctional synthetic Gaussia princeps luciferase reporter for live imaging of Candida albicans infections.</a> Infect Immun. 77 (11), 4847-4858 (2009).</li><li>Mosci, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+bioluminescence+mouse+model+for+monitoring+oropharyngeal+candidiasis+in+mice.">A novel bioluminescence mouse model for monitoring oropharyngeal candidiasis in mice.</a> Virulence. 4 (3), 250-254 (2013).</li><li>Van Wijngaerden, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Foreign+body+infection:+a+new+rat+model+for+prophylaxis+and+treatment.">Foreign body infection: a new rat model for prophylaxis and treatment.</a> J. Antimicrob. Chemoth. 44 (5), 669-674 (1999).</li><li>Nobile, C. J., Mitchell, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regulation+of+cell-surface+genes+and+biofilm+formation+by+the+C.+albicans+transcription+factor+Bcr1p.">Regulation of cell-surface genes and biofilm formation by the C. albicans transcription factor Bcr1p.</a> Curr. Biol. 15 (12), 1150-1155 (2005).</li></ol>

저자는 그들이 더 경쟁 금융 이익이 없다는 것을 선언합니다.

숙주 면역 시스템은 시험 관내 모델을 설명 할 수 없다 생물막 형성에 필수 요소이기 때문에 미생물의 생물막 전용 연구 동물 모델, 특히 설치류 모델의 사용이 매우 중요하다. 본 연구에서는 비교적 간단한 설명을 피하 C. 쉽게 연구 실험실에서 채택 될 수 있으며, 강력한 기술적 인 능력을 필요로하지 않습니다 알비 칸스 생물막 마우스 모델. 이 모델은 원래 쥐의 표...

칸디다 알비 칸이나 피부 및 위장관 질 식물의 일부로서, 예를 들어, 정상인의 다른 부위에서 발견 될 수 공생 유기체이다. 그러나, 입원, 특히 면역 저하 환자, 그 감염 한 다양한 발생할 수있다. 이러한 개인으로, 면역 체계 약화은 칸디다 세포가 혈류로 배포하고 생명을 위협하는 감염을 일으키는 깊은 조직을 침범 할 수 있습니다. 게다가, 중심 정맥 카테터 ㆍ 뇨와 같은 비 생물학적 기재의 존재는, 인공 심장 판막과 관절 칸디다 첨부 2 틈새를 제공 할 수있다. 이러한 기판 밀착성이 주로 다당류로 이루어진 세포 외 폴리머 물질에 매립 효모 및 균사 세포 층을 나타내고 상기 생물막 개발을위한 필수 조건이다. C. 알비 칸스 (Candida albicans) 카테터 -associated 감염높은 사망률과 연관되어 있습니다. 생물막의 일반적인 특성은 공지 된 3,4- 아졸 항진균제, 그들의 감수성 감소이다. 이러한 echinocandins 및 암포 테리 신 B의 리포좀 제형으로 항진균제 만 새로운 클래스는, 카테터 관련 감염 5-7에 대한 활성 것으로 판명. 때문에 항진균제에 생물막 탄력성의 치료 방법은 매우 자주 카테터 제거 및 단독 솔루션으로 그 이후의 교체로 이어지는 제한됩니다. C. 우리의 현재 이해의 대부분 알비 칸스 생물막 개발은 전술 한 장치, 즉, 실리콘, 폴리 우레탄 (2)의 제조에 사용되는 비 생물 성 폴리스티렌과 같은 기판, 또는 플라스틱에 대한 시험 관내 연구에서 유래. 이러한 모델은 상당히 진보와 가능한 한 근접 생체 내 상황을 모방하려고. 그러나, 이러한 시스템들은 연속 혈류 및 t를 포함하지 않는다그는 호스트의 면역 시스템. 이것은 중심 정맥 카테터 (CVC) 모델 8-10, 구강 칸디다증 (11)의 의치 구내염 모델과 카테터 관련 칸디다 12 생쥐 모델로 생체 내 모델 시스템의 개발 결과. 또한, C. 알비 칸스의 바이오 필름 ​​개발은 질 (13)과 구강 (14)의 것과 점막 표면에 생체 내에서 연구되었다. 우리 연구실은 피하 C.의 설립에 기여 스프 라그 돌리 래트 (15)의 뒷면에 감염된 카테터 조각 임플란트에 기초 칸스 생물막 모델. 이 모델은 성공적으로 디클로페낙과 caspofungin (17)의 조합 치료의 효과를 연구하기 위해, 약 5,16를 플루코나졸에 바이오 필름 ​​감수성을 테스트하고 echinocandin 우리 실험실에서 사용되었다. 더 최근에는 BALB / c 마우스 (18, 19)에 사용하기 위해 본 시스템 장치. 에생체 내에서 다른 모델과의 비교는,이 피하 모델의 주요 이점은 카테터 주입 편 루멘 내부 개발 동물 당 여러 생물막을 연구 할 수있는 가능성이다. 실험 동물의 수를 줄이기 위해, 우리는 C.의 개발을 연구하는이 모델을 적응 알비 칸 생물 발광 영상 (BLI) 18, 19을 이용하여 비 침습적으로 생물막. 이 방법은 동물의 희생을 피 (우리의 경우 카테터의 주입 영역) 관심 영역에서 특정 BLI 신호를 측정함으로써 바이오 필름을 정량화하는데 사용될 수있는 강력한 방법 인 것으로 판명되었다. C. 포함 인해 특정 LUX 오페론 (20)의 도입 유전자 및 생물 발광 반응에 필요한 양 기판을 표현할 수 박테리아 비교에서, 대부분의 진핵 생물 알비 칸, 결합 루시퍼 라제 유전자의 이종 발현에 의존이러한 D-루시페린 또는 코 엘렌 테라 진 (21)과 같은 특정 기판의 외부 투여. 아마도 진균 세포벽 및 C.의 존재 알비 칸스 형태 형성, 루시퍼 라제 효소 기질의 세포 내 전달이 주된 과제 21이었다. 이 문제를 해결하기 위해, Enjalbert 등. 22 균주를 설계 여기서 합성 C. 자연적으로 분비 Gaussia의 프린셉 루시 페라 제 유전자 (gLuc)의 알비 칸스 코돈 최적화 된 버전은 C.에 융합되었다 알비 칸스 PGA59 유전자는 GPI-는 세포벽 단백질을 고정. 때문에 칸막이 벽에서 루시퍼 라제의 존재, 기재의 세포 여부에 관한 문제를 회피 할 수있다. 이 특별한 시스템은 C.에 의한 표재성 감염을 연구하는 데 사용되었다 알비 칸스 (22). 최근에, 또한 BLI 구인두 칸디다증 및 possibl의 진행을 수행하기 위해 사용되었다전자 처리 (23). 이러한 연구 결과는 자유 살아있는 세포뿐만 아니라 장치 관련 감염에 의한 감염을 연구하는 유망 기술로 BLI의 사용을 지원합니다. 이 연구에서 우리는 C.을 설명 BLI를 사용하여 폴리 우레탄 카테터 BALB / c 마우스의 조각과 정량에 알비 칸스의 바이오 필름 ​​개발. 우리는 살아있는 동물의 생쥐에 주입 및 후속 생물막 개발 뒤에 부착 기간 동안 폴리 우레탄 카테터의 시험 관내 콜로니의 상세한 프로토콜을 제공한다. 그렇다 C. 의해 방출 BLI 신호를 측정으로부터 알비 칸스 세포, 우리는 또한 생물막 곰팡이로드 정량 표준 기술과의 비교를 위해 단위를 형성 식민지를 결정합니다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="877">
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:329px;">Name of Reagent</td>
			<td style="width:199px;">Company</td>
			<td style="width:113px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:236px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:329px;">Yeast extract granulated</td>
			<td style="width:199px;">Merck</td>
			<td style="width:113px;">MERC1.03753.0500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Bacteriological peptone</td>
			<td style="width:199px;">Oxoid</td>
			<td style="width:113px;">LP037B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Agar granulated</td>
			<td style="width:199px;">Difco</td>
			<td style="width:113px;">214530</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">D-(+)-glucose</td>
			<td style="width:199px;">Fluka</td>
			<td style="width:113px;">49159-5KG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">Phosphate buffered saline&#160;</td>
			<td style="width:199px;">Prepared in the laboratory</td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td>for 1L of 10x PBS: 80 g NaCl, 2 g KCl, 14.4 g Na2HPO4, 2.4 g KH2PO4</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:329px;">RPMI1640 with L-glutamine and without sodium carbonate&#160;</td>
			<td style="width:199px;">Sigma</td>
			<td style="width:113px;">R6504-1L</td>
			<td>Prepare according the protocol for Candida albicans drug susceptibility testing&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">3-(N-Morpholino)propanesulfonic acid (MOPS)</td>
			<td style="width:199px;">Sigma</td>
			<td style="width:113px;">M1254</td>
			<td>MOPS is used to adjust the pH of RPMI medium (pH 7.0)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">fetal bovine serum (FBS)</td>
			<td style="width:199px;">Sigma</td>
			<td style="width:113px;">F7524</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:329px;">Polyurethane tripe-lumen intravenous catheter piece (2.4 mm diameter, Certofix Trio S730)&#160;</td>
			<td style="width:199px;">BBraun</td>
			<td style="width:113px;">CV-15703</td>
			<td>Polyurethane part cut into 1 cm pieces</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Dexamethasone</td>
			<td style="width:199px;">Fagron SAS, France</td>
			<td style="width:113px;">611139</td>
			<td>Immunosuppressant (stock solution 10 mg/ml)</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:329px;">Ampicillin&#160;</td>
			<td style="width:199px;">Duchefa Biochemie, The Netherlands</td>
			<td style="width:113px;">A0104</td>
			<td>Antibacterial prophylaxis</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Ketamine 1000</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td style="width:113px;">804 119</td>
			<td>Anesthetic</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Domitor</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td style="width:113px;">134737-1</td>
			<td>Anesthetic</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Antisedan</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td style="width:113px;">134783-2</td>
			<td>Reversal of anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Xylocaine gel (2%) - this is Linisol</td>
			<td style="width:199px;">AstraZeneca</td>
			<td style="width:113px;">352 1206</td>
			<td>Local anesthetic for the skin</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Terramycin/ polymyxin-b ophthalmic ointment</td>
			<td style="width:199px;"></td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td>To prevent drying and infection of eyes</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;"></td>
			<td style="width:199px;"></td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Coelenterazine&#160;</td>
			<td style="width:199px;">Prolume (Nanolight)</td>
			<td style="width:113px;">NF-CTZ-FB</td>
			<td>Light sensitive agent (must be kept in the dark)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Iodine isopropanol (1%)</td>
			<td style="width:199px;">3M&#8482; DuraPrep&#8482;&#160;</td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td>Disinfectant for the skin</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">0.5 % chlorhexidine in 70 % alcohol.&#160;&#160;</td>
			<td style="width:199px;">Cedium</td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td>Disinfectant for the skin</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;"></td>
			<td style="width:199px;"></td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Equipment</td>
			<td style="width:199px;"></td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Cell counting chamber</td>
			<td style="width:199px;"></td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Insulin syringes (0.3 ml)</td>
			<td style="width:199px;">Terumo Myjector 29G</td>
			<td style="width:113px;">324826</td>
			<td>For injection of coelenterazine</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Electric razor</td>
			<td style="width:199px;"></td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td>For small animals</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Sterile surgical tools</td>
			<td style="width:199px;"></td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td>Scissors, 2 pairs of tweezers, scalpel</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Heating pad</td>
			<td style="width:199px;">Leica</td>
			<td style="width:113px;">14042321474</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">Skin suture</td>
			<td style="width:199px;">Johnson&#38;Johnson</td>
			<td style="width:113px;">K890H</td>
			<td>Surgical thread, needle</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Water bath sonicator</td>
			<td>Branson 2210</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:329px;">BLI camera (IVIS Spectrum)&#160;</td>
			<td style="width:199px;">Perkin Elmer, Alameda</td>
			<td style="width:113px;">IVISSPE</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Living Image software&#160;</td>
			<td style="width:199px;">Perkin Elmer, Alameda</td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td>(version 4.2)&#160;</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

candida albicans biofilm development on medically-relevant foreign bodies in a mouse subcutaneous model followed by bioluminescence imaging

생물 및 / 또는 비 생물 적 표면에 칸디다 알비 칸스 (Candida albicans)에 생물막 개발은 입원 환자에 대한 특정 위협을 나타냅니다. 지금까지, C. 알비 칸스 생물막은 시험관 내에서 주로 연구되어 있지만 생체 내 조건에서 이러한 역동적 인 과정의 더 나은 이해를위한 중요한 필요성이있다. 우리는 C.을 연구 생체 내 쥐 피하 모델을 개발 알비 칸스의 biofilm 형성. 우리의 모델에서, (9 개) 칸디다 -infected 여러 장치 동물의 후방 부에 주입된다. 그것은 우리가 하나의 동물에서 여러 독립적 인 생물막 (biofilm)을 연구 할 수 있도록 이것은 중심 정맥 카테터 모델 시스템을 통해 우리에게 중요한 이점을 제공합니다. 최근에, 우리는 C.을 연구하는이 모델을 적용 BALB / c 마우스에서 알비 칸스의 바이오 필름 ​​개발. 이 모델에서 성숙 C. 알비 칸스의 바이오 필름은 48 시간 내에 개발하고 전형적인 세 가지 차원 생물막 구조를 보여줍니다. 곰팡이 바이오 필름의 정량화전통적으로 분석 사후이며 호스트 희생이 필요합니다. 이 연구는 운동을 수행하기 위해 많은 동물의 사용을 필요로하기 때문에, 우리는 길이 방향으로 성숙 생체 후속 C. 비 침습적 생물 발광 영상 (BLI)을인가 알비 칸스 (Candida albicans)는 우리의 피하 모델 개발 생물막. C.를 알비 칸스 세포는 세포벽에 부착 Gaussia 프린셉 루시페라아제 유전자 (gLuc)을 발현하도록 유전자 조작 하였다. 생물 발광 신호를 측정 할 수있는 광으로 첨가 기질 코 엘렌 테라 진 변환 루시퍼 라제에 의해 생성된다. BLI 신호는 외식 카테터에서 얻은 세포 수를 닮았다. 생체 biofilm 형성에 정량화를위한 ​​비 침습적 영상은 더 잘 이해로, 이에 기여뿐만 아니라 호스트 병원체 상호 작용을 기반으로 연구를위한 생체 조건에서 검사 및 항진균 약물의 유효성 검사를위한 즉각적인 응용 프로그램을 제공합니다카테터 관련 감염의 병인으로 보내고.

이 연구에서는 마우스의 생체 C. albicans에 생물막 개발하는 동안 카테터 임플란트 및 이식편의 수술 과정을 보여줍니다. 또한, 우리는 고전 CFUs 열거에 의해뿐만 아니라 B​​LI에 의해뿐만 아니라 성숙한 생물막 (biofilm)의 정량을 표시합니다. 도 1a에 도시 된 바와 같이, 비 인광 우레탄 카테터 조각 1cm 장치로 절단하고이어서 혈청으로 코팅 하였다. 이 칸...

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Candida albicans Biofilm Development on Medically-relevant Foreign Bodies in a Mouse Subcutaneous Model Followed by Bioluminescence Imaging

We present an experimental procedure of Candida albicans biofilm development in a mouse subcutaneous model. Fungal biofilms were quantified by determining the number of colony forming units and by a non-invasive bioluminescence imaging, where the amount of light that is produced corresponds with the number of viable cells.

생물 발광 영상에 이어 마우스 피하 모델의 의학 관련 외국 기관에 칸디다 알비 칸스 (Candida albicans)에 바이오 필름 ​​개발

Candida albicans biofilm development on biotic and/or abiotic surfaces represents a specific threat for hospitalized patients. So far, C. albicans ...

candida-albicans-biofilm-development-on-medically-relevant-foreign

Research

JoVE Journal

Medicine

Candida albicans Biofilm Development on Medically-relevant Foreign Bodies in a Mouse Subcutaneous Model Followed by Bioluminescence Imaging

12.9K 조회수.  Institute of Botany and Microbiology, VIB, KU Leuven. We present an experimental procedure of Candida albicans biofilm development in a mouse subcutaneous model. Fungal biofilms were quantified by determining the number of colony forming units and by a non-invasive bioluminescence imaging, where the amount of light that is produced corresponds with the number of viable cells.

비디오: Candida albicans Biofilm Development on Medically-relevant Foreign Bodies in a Mouse Subcutaneous Model Followed by Bioluminescence Imaging

Monitoring Tumor Metastases and Osteolytic Lesions with Bioluminescence and Micro CT Imaging

Following intracardiac delivery of MDA-MB-231-luc-D3H2LN cells to Nu/Nu mice, systemic metastases developed in the injected animals. Bioluminescence imaging using IVIS Spectrum was employed to monitor the distribution and development of the tumor cells following the delivery procedure including DLIT reconstruction to measure the tumor signal and its location.
Development of metastatic lesions to the bone tissues triggers osteolytic activity and lesions to tibia and femur were evaluated longitudinally using micro CT. Imaging was performed using a Quantum FX micro CT system with fast imaging and low X-ray dose. The low radiation dose allows multiple imaging sessions to be performed with a cumulative X-ray dosage far below LD50. A mouse imaging shuttle device was used to sequentially image the mice with both IVIS Spectrum and Quantum FX achieving accurate animal positioning in both the bioluminescence and CT images. The optical and CT data sets were co-registered in 3-dimentions using the Living Image 4.1 software. This multi-mode approach allows close monitoring of tumor growth and development simultaneously with osteolytic activity.

An experimental mouse model of bone metastasis was established following intracardiac delivery of luciferase expressing mammary tumor cells. Tumor development and resulted osteolytic lesion were monitored longitudinally with bioluminescence and micro CT imaging.

Bioluminescence 및 마이크로 중부 표준시 이미징과 함께 종양의 Metastases 및 Osteolytic 조직 손상을 모니터링

Following intracardiac delivery of MDA-MB-231-luc-D3H2LN cells to Nu/Nu mice, systemic metastases developed in the injected animals. Bioluminescence ...

연구

의학

Multi-photon Imaging of Tumor Cell Invasion in an Orthotopic Mouse Model of Oral Squamous Cell Carcinoma

Loco-regional invasion of head and neck cancer is linked to metastatic risk and presents a difficult challenge in designing and implementing patient management strategies. Orthotopic mouse models of oral cancer have been developed to facilitate the study of factors that impact invasion and serve as model system for evaluating anti-tumor therapeutics. In these systems, visualization of disseminated tumor cells within oral cavity tissues has typically been conducted by either conventional histology or with in vivo bioluminescent methods. A primary drawback of these techniques is the inherent inability to accurately visualize and quantify early tumor cell invasion arising from the primary site in three dimensions. Here we describe a protocol that combines an established model for squamous cell carcinoma of the tongue (SCOT) with two-photon imaging to allow multi-vectorial visualization of lingual tumor spread. The OSC-19 head and neck tumor cell line was stably engineered to express the F-actin binding peptide LifeAct fused to the mCherry fluorescent protein (LifeAct-mCherry). Fox1nu/nu mice injected with these cells reliably form tumors that allow the tongue to be visualized by ex-vivo application of two-photon microscopy. This technique allows for the orthotopic visualization of the tumor mass and locally invading cells in excised tongues without disruption of the regional tumor microenvironment. In addition, this system allows for the quantification of tumor cell invasion by calculating distances that invaded cells move from the primary tumor site. Overall this procedure provides an enhanced model system for analyzing factors that contribute to SCOT invasion and therapeutic treatments tailored to prevent local invasion and distant metastatic spread. This method also has the potential to be ultimately combined with other imaging modalities in an in vivo setting.

A comprehensive overview of the techniques involved in generating a mouse model of oral cancer and quantitative monitoring of tumor invasion within the tongue through multi-photon microscopy of labeled cells is presented. This system can serve as a useful platform for the molecular assessment and drug efficacy of anti-invasive compounds.

구강 편평 세포 암종의 Orthotopic 마우스 모델에서 종양 세포 침략의 다중 광자 이미징

Loco-regional invasion of head and neck cancer is linked to metastatic risk and presents a difficult challenge in designing and implementing patient ...

In vivo Bioluminescence Imaging of Tumor Hypoxia Dynamics of Breast Cancer Brain Metastasis in a Mouse Model

It is well recognized that tumor hypoxia plays an important role in promoting malignant progression and affecting therapeutic response negatively. There is little knowledge about in situ, in vivo, tumor hypoxia during intracranial development of malignant brain tumors because of lack of efficient means to monitor it in these deep-seated orthotopic tumors. Bioluminescence imaging (BLI), based on the detection of light emitted by living cells expressing a luciferase gene, has been rapidly adopted for cancer research, in particular, to evaluate tumor growth or tumor size changes in response to treatment in preclinical animal studies. Moreover, by expressing a reporter gene under the control of a promoter sequence, the specific gene expression can be monitored non-invasively by BLI. Under hypoxic stress, signaling responses are mediated mainly via the hypoxia inducible factor-1&alpha; (HIF-1&alpha;) to drive transcription of various genes. Therefore, we have used a HIF-1&alpha; reporter construct, 5HRE-ODD-luc, stably transfected into human breast cancer MDA-MB231 cells (MDA-MB231/5HRE-ODD-luc). In vitro HIF-1&alpha; bioluminescence assay is performed by incubating the transfected cells in a hypoxic chamber (0.1% O2) for 24 hr before BLI, while the cells in normoxia (21% O2) serve as a control. Significantly higher photon flux observed for the cells under hypoxia suggests an increased HIF-1&alpha; binding to its promoter (HRE elements), as compared to those in normoxia. Cells are injected directly into the mouse brain to establish a breast cancer brain metastasis model. In vivo bioluminescence imaging of tumor hypoxia dynamics is initiated 2 wks after implantation and repeated once a week. BLI reveals increasing light signals from the brain as the tumor progresses, indicating increased intracranial tumor hypoxia. Histological and immunohistochemical studies are used to confirm the in vivo imaging results. Here, we will introduce approaches of in vitro HIF-1&alpha; bioluminescence assay, surgical establishment of a breast cancer brain metastasis in a nude mouse and application of in vivo bioluminescence imaging to monitor intracranial tumor hypoxia.

In vivo Bioluminescence Imaging of Tumor Hypoxia Dynamics of Breast Cancer Brain Metastasis in a Mouse Model

Bioluminescence imaging of hypoxia inducible factor-1&alpha; activity is applied to monitor intracranial tumor hypoxia development in a breast cancer brain metastasis mouse model.

유방암 뇌 전이의 종양 Hypoxia 역학 생체내의 Bioluminescence 이미징에서는 마우스 모델에서

It is well recognized that tumor hypoxia plays an important role in promoting malignant progression and affecting therapeutic response negatively. There ...

Ultrasound Imaging-guided Intracardiac Injection to Develop a Mouse Model of Breast Cancer Brain Metastases Followed by Longitudinal MRI

Breast cancer brain metastasis, occurring in 30% of breast cancer patients at stage IV, is associated with high mortality. The median survival is only 6 months. It is critical to have suitable animal models to mimic the hemodynamic spread of the metastatic cells in the clinical scenario. Here, we are introducing the use of small animal ultrasound imaging to guide an accurate injection of brain tropical breast cancer cells into the left ventricle of athymic nude mice. Longitudinal MRI is used to assessing intracranial initiation and growth of brain metastases. Ultrasound-guided intracardiac injection ensures not only an accurate injection and hereby a higher successful rate but also significantly decreased mortality rate, as compared to our previous manual procedure. In vivo high resolution MRI allows the visualization of hyperintense multifocal lesions, as small as 310 &#181;m in diameter on T2-weighted images at 3 weeks post injection. Follow-up MRI reveals intracranial tumor growth and increased number of metastases that distribute throughout the whole brain.

A breast cancer brain metastasis mouse model is established with ultrasound imaging-guided intracardiac injection of MDA-MB231/Br-GFP cells. Development of multifocal intracranial metastases has been monitored longitudinally using high-resolution 9.4 T MRI.

종 MRI에 이어 유방암 뇌 전이 마우스 모델을 개발하기 위해 초음파 영상 유도 심장 내 주입

Breast cancer brain metastasis, occurring in 30% of breast cancer patients at stage IV, is associated with high mortality. The median survival is only 6 ...

Acute Brain Trauma in Mice Followed By Longitudinal Two-photon Imaging

Although acute brain trauma often results from head damage in different accidents and affects a substantial fraction of the population, there is no effective treatment for it yet. Limitations of currently used animal models impede understanding of the pathology mechanism. Multiphoton microscopy allows studying cells and tissues within intact animal brains longitudinally under physiological and pathological conditions. Here, we describe two models of acute brain injury studied by means of two-photon imaging of brain cell behavior under posttraumatic conditions. A selected brain region is injured with a sharp needle to produce a trauma of a controlled width and depth in the brain parenchyma. Our method uses stereotaxic prick with a syringe needle, which can be combined with simultaneous drug application. We propose that this method can be used as an advanced tool to study cellular mechanisms of pathophysiological consequences of acute trauma in mammalian brain in vivo. In this video, we combine acute brain injury with two preparations: cranial window and skull thinning. We also discuss advantages and limitations of both preparations for multisession imaging of brain regeneration after trauma.

Acute brain trauma is a severe injury that has no adequate treatment to date. Multiphoton microscopy allows studying longitudinally the process of acute brain trauma development and probing therapeutical strategies in rodents. Two models of acute brain trauma studied with in vivo two-photon imaging of brain are demonstrated in this protocol.

세로 두 광자 이미징 다음 마우스의 급성 뇌 외상

Although acute brain trauma often results from head damage in different accidents and affects a substantial fraction of the population, there is no ...

Evaluation of Tumor-infiltrating Leukocyte Subsets in a Subcutaneous Tumor Model

Specialized immune cells that infiltrate the tumor microenvironment regulate the growth and survival of neoplasia.&#160; Malignant cells must elude or subvert anti-tumor immune responses in order to survive and flourish. Tumors take advantage of a number of different mechanisms of immune &#8220;escape,&#8221; including the recruitment of tolerogenic DC, immunosuppressive regulatory T cells (Tregs), and myeloid-derived suppressor cells (MDSC) that inhibit cytotoxic anti-tumor responses. Conversely, anti-tumor effector immune cells can slow the growth and expansion of malignancies: immunostimulatory dendritic cells, natural killer cells which harbor innate anti-tumor immunity, and cytotoxic T cells all can participate in tumor suppression. The balance between pro- and anti-tumor leukocytes ultimately determines the behavior and fate of transformed cells; a multitude of human clinical studies have borne this out. Thus, detailed analysis of leukocyte subsets within the tumor microenvironment has become increasingly important. Here, we describe a method for analyzing infiltrating leukocyte subsets present in the tumor microenvironment in a mouse tumor model. Mouse B16 melanoma tumor cells were inoculated subcutaneously in C57BL/6 mice. At a specified time, tumors and surrounding skin were resected en bloc and processed into single cell suspensions, which were then stained for multi-color flow cytometry. Using a variety of leukocyte subset markers, we were able to compare the relative percentages of infiltrating leukocyte subsets between control and chemerin-expressing tumors. Investigators may use such a tool to study the immune presence in the tumor microenvironment and when combined with traditional caliper size measurements of tumor growth, will potentially allow them to elucidate the impact of changes in immune composition on tumor growth. Such a technique can be applied to any tumor model in which the tumor and its microenvironment can be resected and processed.

This protocol describes a method for the detailed evaluation of leukocyte subsets within the tumor microenvironment in a mouse tumor model. Chemerin-expressing B16 melanoma cells were implanted subcutaneously into syngeneic mice. Cells from the tumor microenvironment were then stained and analyzed by flow cytometry, allowing for detailed leukocyte subset analyses.

피하 종양 모델에서 종양 침투 백혈구 하위 집합의 평가

Specialized immune cells that infiltrate the tumor microenvironment regulate the growth and survival of neoplasia.&#160; Malignant cells must elude or ...

Bioluminescence Imaging of an Immunocompetent Animal Model for Glioblastoma

In contrast to commonly reported human glioma xenograft animal models, GL261 murine glioma xenografts recapitulate nearly all relevant clinical and histopathologic features of the human disease. When GL261 cells are implanted intracranially in syngeneic C57BL/6 mice, the model has the added advantage of maintaining an intact immune microenvironment. Stable expression of luciferase in GL261 cells allows non-invasive cost effective bioluminescence monitoring of intracranial tumor growth. We have recently demonstrated that luciferase expression in GL261 cells does not affect the tumor growth properties, tumor cell immunomodulatory cytokine expression, infiltration of immune cells into the tumor, or overall survival of animals bearing the intracranial tumor. Therefore, it appears that the GL261 luciferase glioma model can be useful in the study of novel chemotherapeutic and immunotherapeutic modalities. Here we report the technique for generating stable luciferase expression in GL261 cells and how to study the in vitro and in vivo growth of the tumor cells by bioluminescence imaging.

GL261 glioma cells provide a useful immunocompetent animal model of glioblastoma. The goals of this protocol are to demonstrate proper techniques for monitoring intracranial tumor growth using in vivo bioluminescence imaging, and to verify the utility of luciferase-modified GL261 cells for studying tumor immunology and immunotherapeutic approaches for treating glioblastoma.

교 모세포종에 대한 면역 적격 동물 모델의 생물 발광 영상

In contrast to commonly reported human glioma xenograft animal models, GL261 murine glioma xenografts recapitulate nearly all relevant clinical and ...

A Neonatal Mouse Spinal Cord Compression Injury Model

Spinal cord injury (SCI) typically causes devastating neurological deficits, particularly through damage to fibers descending from the brain to the spinal cord. A major current area of research is focused on the mechanisms of adaptive plasticity that underlie spontaneous or induced functional recovery following SCI. Spontaneous functional recovery is reported to be greater early in life, raising interesting questions about how adaptive plasticity changes as the spinal cord develops. To facilitate investigation of this dynamic, we have developed a SCI model in the neonatal mouse. The model has relevance for pediatric SCI, which is too little studied. Because neural plasticity in the adult involves some of the same mechanisms as neural plasticity in early life1, this model may potentially have some relevance also for adult SCI. Here we describe the entire procedure for generating a reproducible spinal cord compression (SCC) injury in the neonatal mouse as early as postnatal (P) day 1. SCC is achieved by performing a laminectomy at a given spinal level (here described at thoracic levels 9-11) and then using a modified Yasargil aneurysm mini-clip to rapidly compress and decompress the spinal cord. As previously described, the injured neonatal mice can be tested for behavioral deficits or sacrificed for ex vivo physiological analysis of synaptic connectivity using electrophysiological and high-throughput optical recording techniques1. Earlier and ongoing studies using behavioral and physiological assessment have demonstrated a dramatic, acute impairment of hindlimb motility followed by a complete functional recovery within 2 weeks, and the first evidence of changes in functional circuitry at the level of identified descending synaptic connections1.

This article describes a method for generating a reproducible spinal cord compression injury (SCI) in the neonatal mouse. The model provides an advantageous platform for studying mechanisms of adaptive plasticity that underlie spontaneous functional recovery.

신생아 마우스 척수 압축 부상 모델

Spinal cord injury (SCI) typically causes devastating neurological deficits, particularly through damage to fibers descending from the brain to the spinal ...

Quantitative Visualization of Leukocyte Infiltrate in a Murine Model of Fulminant Myocarditis by Light Sheet Microscopy

Light-sheet fluorescence microscopy (LSFM), in combination with chemical clearing protocols, has become the gold standard for analyzing fluorescently labelled structures in large biological specimens, and is down to cellular resolution. Meanwhile, the constant refinement of underlying protocols and the enhanced availability of specialized commercial systems enable us to investigate the microstructure of whole mouse organs and even allow for the characterization of cellular behavior in various live-cell imaging approaches. Here, we describe a protocol for the spatial whole-mount visualization and quantification of the CD45+ leukocyte population in inflamed mouse hearts. The method employs a transgenic mouse strain (CD11c.DTR)that has recently been shown to serve as a robust, inducible model for the study of the development of fulminant fatal myocarditis, characterized by lethal cardiac arrhythmias. This protocol includes myocarditis induction, intravital antibody-mediated cell staining, organ preparation, and LSFM with subsequent computer-assisted image post-processing. Although presented as a highly-adapted method for our particular scientific question, the protocol represents the blueprint of an easily adjustable system that can also target completely different fluorescent structures in other organs and even in other species.

Here, we describe a light-sheet microscopy approach to visualize the cardiac CD45+ leukocyte infiltrate in a murine model of aseptic fulminant myocarditis, which is induced by the intratracheal diphtheria toxin treatment of CD11c.DTR mice.

Light Sheet Microscopy에 의한 심근 성 심근염의 Murine 모델에서의 백혈구 침윤의 정량적 시각화

Light-sheet fluorescence microscopy (LSFM), in combination with chemical clearing protocols, has become the gold standard for analyzing fluorescently ...

Isometric Contractility Measurement of the Mouse Mesenteric Artery Using Wire Myography

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and drugs. It is widely used in many studies on the physiological functions of vascular smooth muscle, the pathogenesis of vascular diseases such as hypertension, and the development of smooth muscle relaxant drugs. The mouse is a widely used model animal with a large pool of disease models and genetically modified strains. We introduced this method to measure the isometric contraction of mouse mesenteric artery in detail. A 1.4-mm segment of mouse mesenteric resistance artery was isolated and mounted on a myograph chamber by passing two steel wires through its lumen. After equilibration and normalization steps, the vessel segment was potentiated by a high-K+ solution twice prior to the contraction assay. As an example of the application of this method in drug development, we measured the relaxant effect of a novel natural substance, neoliensinine, isolated from a Chinese herb, embryos of the lotus seed (Nelumbo nucifera Gaertn.) on mouse mesenteric arteries. The vessel segments mounted on the myograph chamber were stimulated with a high-K+ solution. When the force tension reached a stable sustained phase, cumulative doses of neoliensinine were added to the chamber. We found that neoliensinine had a dose-dependent relaxant effect on smooth muscle contraction, thus suggesting that it bears potential activity against hypertension. In addition, as the vessel segment can survive at least 4 hours after mounting and maintain contractility induced by the high-K+ solution for many times, we suggest that the wire myograph system may be used for the time-consuming process of drug screening.

The wire myograph technique is used to investigate vascular smooth muscle functions and screen new drugs. We report a detailed protocol for measuring the isometric contractility of the mouse mesenteric artery and for screening new relaxants of vascular smooth muscle.

Myography 와이어를 사용 하 여 마우스 Mesenteric 동맥의 isometric 수축 측정

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and ...

Methods Article

생물 발광 영상에 이어 마우스 피하 모델의 의학 관련 외국 기관에 칸디다 알비 칸스 (Candida albicans)에 바이오 필름 개발

Methods Article

생물 발광 영상에 이어 마우스 피하 모델의 의학 관련 외국 기관에 칸디다 알비 칸스 (Candida albicans)에 바이오 필름 ​​개발

생물 발광 영상에 이어 마우스 피하 모델의 의학 관련 외국 기관에 칸디다 알비 칸스 (Candida albicans)에 바이오 필름 개발