The authors want to thank Ms. Cornelia Heis for her excellent technical assistance in immunohistochemistry and preparation of chicken embryos. This work was supported by the Austrian Science Fund (FWF Grant No. P19552) and the European Union (EU FP7 project Optatio No: 278570).

실험 동물 복지의 hatching.The NIH 사무실이이 지역 (HTTP 작성 지침을 제공 할 때까지 오스트리아 법, 미국 공중 보건 서비스 조류 배아의 실험 동물 복지 사무소에 따르면 라이브 척추 동물로 간주되지 않습니다 // www.grants.nih.gov/grants/olaw/references/ilar91.htm 및 NIH 출판 번호 : 06-4515). 1. 세포 배양 및 렌티 바이러스 형질 <ol><li> 문화 MM 세포주 OPM-2, RPMI-8226 및 RPMI1640 배지에서 골수로부터 인간 중간 엽 줄기 세포의 존재에서 10 % 소 태아 혈청, 100 IU / ml의 페니실린, 100 μg의 / ㎖ 스트렙토 마이신 및 2 mM의 글루타민으로 보충 37 ℃에서 5 % CO 2. </li><li> 형질 감염 5 × 30 μL 리포좀 형질 감염 시약과 형질 매체 (10 mL)을 이용하여 바이러스 포장 믹스 (9 μg의) 및 3 μg의 DNA pLenti6 / V5 DEST eGFP는 벡터 6 HEK 293FT 세포. 12 시간 후 형질 매체를 제거하고10 % 소 혈청 및 1 % 비 필수 아미노산 (NEAA)과 10 ml의 DMEM 배지를 추가한다. </li><li> 오일 후, 수영 세포 (1,000 XG, 5 분)의 원심 분리 후 HEK293FT 세포의 상층 액을 수집합니다. 다른 28 설명 된대로 실시간 PCR에 의해 바이러스 역가를 결정합니다. </li><li> 완전한 성장 배지에서 24 웰 플레이트에 eGFP는 렌티 바이러스 입자 (1 × 10 5 입자) 1 × 10 6 MM 세포를 형질. 삼일 후, 2 μg의가 / ml로 배양 배지에 첨가하여 블라스트 선택 프로세스를 시작한다. 시중에서 판매하는 eGFP는의 렌티 바이러스를 들어, 500 μg의 / ㎖ 네오 마이신을 사용합니다. </li><li> 선택 2 주 후, MM 세포를 표현 eGFP는 클러스터가 나타납니다; 원심 분리 (1,000 XG, 5 분)에 의해 세포를 수집하고 실험 영업 이익률-2 eGFP는 및 RPMI-8226 eGFP는의 서브 라인으로 그들을 확장 (제 2, 3). </li></ol> 2. 3D-다발성 골수종 회전 타원체 모델 <ol><li> 침착 콜라겐 타입 I 용액 및 10 × DMEM 오N 얼음. </li><li> 콜라겐 매트릭스로 10 × DMEM 배지 1/10 볼륨 믹스; 7.4의 pH 값에 콜라겐 산성 용액을 중화시키기에 NaOH (0.2 N)을 추가; 저장 콜라겐 / 얼음 매체 솔루션입니다. </li><li> 형질 전환 MM 세포주 (영업 이익률-2 eGFP는 또는 RPMI-8226 eGFP는을, 회전 타원체 당 25 만) 혼합 인간 중간 엽 세포 (50,000 세포 / 회전 타원체, 즉, 30 μL 드롭)에 있습니다. </li><li> 15ml의 튜브 (1000 XG, 5 분)에서 원심 분리 세포 혼합물, 세포 펠렛을 차가운 제조 콜라겐 혼합물 (1 ㎖)를 첨가하고, (1000 μL 팁으로) 잘 섞는다. </li><li> 즉시 멸균 파라핀 필름에 24 웰 플레이트 (100 ㎕의 팁)와 콜라겐 / 세포 혼합액 30 μL 피펫 세포 / 콜라겐 혼합물을 37 ℃ (도 1a 참조)에서 30 분 동안 중합 할 수있다. </li><li> 1, 10 및 100 nM의 볼테 조미 브를 포함하는 1 ㎖의 배지와 오버레이 MM의 스페 로이드 (도 1b 참조). </li><li> 37 ° C에서 배양 72 시간 후, 문서 회전 타원체로형광 실체 현미경 (도 1C 참조). </li><li> GFP의 측정에 반응 튜브 내의 넓은 플랫 턱 겸자를 이용하여 각각의 회전 타원체로 이동 (도 1d 참조). </li></ol> CAM 3. 3D 다발성 골수종 이종 이식 모델 <ol><li> 3 일 동안 특별한 37 ° C에서 조류 계란 인큐베이터와 70 %의 습도에서 계란을 품어. </li><li> 그 후, 열려있는 계란과 전송 배아는 세포 배양 접시의 뚜껑 에탄올, 광장, 10-CM 플라스틱 무게 보트와 함께 소독하고 캠 (그림 2A 참조) 개발할 수 있도록, 더 육일은 &quot;전 비켜&quot;를 품어. </li><li> 침착 콜라겐 타입 I 용액 및 얼음에 10 × DMEM 7.4의 pH 값으로 산성 콜라겐 용액을 중화 (N 0.2) NaOH를 추가 콜라겐 매트릭스로 10 × DMEM 배지의 1/10 양을 혼합; 저장 콜라겐 / 얼음 매체 솔루션입니다. </li><li> 형질 전환 MM 세포주 (영업 이익률-2 eGFP는 또는 혼합RPMI-8226 eGFP는; 인간 중간 엽 세포와 회전 타원체) 당 250,000 (50,000 세포 / 회전 타원체). </li><li> 15ml의 튜브에서 원심 셀 (1000 XG, 5 분, 각 시험 화합물 1 바이알 용) 세포 펠릿을, (목표 작업 농도) 약물을 1 ㎖를 차가운 준비된 콜라겐 혼합물을 넣고 잘 섞어 (1000 μL의 끝). </li><li> 37 ° C에서 세포 외 기질을 중합 할 수 있도록 30 분 동안 잘 페이트 6 콜라겐 방울 파라 필름에 (30 μL 각)을 놓는다. </li><li> (2cm 떨어진 배아에서) 9 일 된 닭 배아의 캠의 치료 표면에 집게의 사용과 단계 3.6에서 전송 &quot;onplants&quot;(각 닭 배아 4 onplants, 그림 2B 참조) </li><li> 형광 실체 현미경에 의해 생체 내 37 ° C에서 계란 인큐베이터에서 성장과 70 %의 습도, 문서 이종 이식 5 일 후 (그림 2C 참조). 5 시간 동안 냉장고에 4 ° C에서 저체온증으로 닭 배아를 안락사. </li><li> 안과 가위에 의해 바로 아래 CAM 조직과 이종 이식을 제거하고 넓은 평면 턱과 포셉. GFP의 측정을 사용합니다 (제 4 장, 2D 그림 참조) 또는 혈관 및 / 또는 침입 종양 세포 (섹션 5)의 면역 조직 화학 분석. </li></ol> ELISA에 의해 eGFP는 단백질의 정량 4. <ol><li> 0.5 ㎖의 RIPA 버퍼가 200 μg의 / ㎖ 프로테아제 억제제를 포함에 각 MM은 회전 타원체 또는 절제 이종 이식을 전송합니다. </li><li> 얼음에 조직 균질로 회전 타원체 / 이종 이식 균질화. </li><li> 액체 질소에 세 동결 / 해동 사이클 및 37 ° C의 물을 욕조를 수행합니다. </li><li> 20 분 (12,000g) 및 저장 상층 액을 4 ℃에서 원심 분리기 균질. </li><li> 샘플을 ELISA 키트의 분석 버퍼 (200 μL)에 1:20 희석. 제조사의 프로토콜에 따라, 비 오티 닐화 항 GFP 항체를 이용한 ELISA 키트 상업적 GFP-GFP에 의해 레벨을 측정한다. </li></ol> 5. Immunohi혈관에 침입 종양 세포의 stochemical 분석 <ol><li> 4 ° C에서 / 4 % 파라 포름 알데히드 O에서 N을 CAM 지역과 절제 이종 이식을 수정합니다. </li><li> 매립 카세트에 고정 이종 놓고 증가 등급 알코올 시리즈 (50 %, 70 %, 80 %, 95 % 에탄올, 크 실롤 파라핀 각각 단계 60 분)으로 매립 조직 스테이션에 전송할. </li><li> 벤치 탑 로터리 마이크로톰의 사용에 의해 섹션 이종 이식 (5 μm의). 56 ° C에서 유리 슬라이드의 O / N에 파라핀 섹션 굽는다. </li><li> 이중 증류수 감소 등급 알코올 시리즈 의한 Deparaffinize 섹션 (크 실롤, 95 %, 80 %, 70 %, 50 % 에탄올, 이중 증류수, 각 단계에서 10 분). </li><li> 항원 검색 용액 수조 (95 ° C, 20 분간)에 항원 검색을 수행하여 (버퍼 citrate-하여 pH 7.0, 100 μL 부피 참조). </li><li> 30 분 동안 100 ㎕의 3 % H 2 O 2 / 메탄올 내인성 퍼 옥시 데이즈 활성을 차단. </li><li> PBS를 함유하는 차단 부45 분 (부피 100 μL) 10 % 소 태아 혈청. </li><li> PBS는 RT에서 1 % 소 태아 혈청을 함유하는 희석 차 항체 (1μg / ㎖) 100 ㎕와 함께 1 시간 동안 얼룩. </li><li> PBS로 3 회 세척 후, PBS는 RT에서 1 % 소 태아 혈청을 함유하는 비오틴 이차 항체 (0.1 μg의 / mL)로 1 시간 동안 배양. </li><li> PBS로 3 회 세척 한 후 제조자의 지시에 따라 아비딘 / 비오틴 - 복합체 (ABC) 및 디아 미노 벤지딘 (DAB) 기질 용액에 의해 발색 반응을 수행한다. </li><li> 5.11. 헤 마톡 실린으로 두 번 증류수, Counterstain과에 섹션을 전송하여 반응을 중지하고 합성 설치 매체 섹션을 탑재합니다. </li></ol>

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저자는 더 경쟁 금융 이익이 없다

내화성 MM에 대한 새로운 치료제의 개발은 약물에 대한 인간 MM 세포 민감도를 평가하는 데 시간이 덜 소요되고 비용이 생체 시스템을 필요로한다. 지금까지, 단 몇 생체 시스템은 새로운 항 골수종 치료의 임상 평가에 사용할 수 있습니다. 그들 모두는 화합물 라이브러리 (29)의 대규모 스크리닝에 대한 자신의 한계를 가지고있다. 인간의 MM 셀에 대한 가장 좋은 현재의 모...

Multiple myeloma (MM) is characterized by proliferation of malignant plasma cells in the bone marrow, bone lesions and immunodeficiency 1. Although new treatment options such as proteasome inhibitors (bortezomib) and immune modulatory drugs (pomalidomide and lenalidomide) are available, MM still remains an incurable malignancy with a grim prognosis 2. The bad prognosis might be explained by the extraordinary heterogeneity of MM cell clones that contributes to variable responses to therapy, in particular under long time treatment and selection pressure of MM clones 3.
Preclinical testing of new drugs and their combinations in vitro and in vivo is a critical and time-consuming step for future drug development. Thus, useful in-vivo models of MM are required to gain a better understanding of the biology of the disease and to enable the discovery of new drugs. Actually, the best xenotransplantation models for hematological malignancies and therapeutics are immune-deficient mice, such as the severe-combined immunodeficient (SCID) mice 4-7, the non-obese diabetic/SCID (NOD/SCID) mice 8,9 or the &#946;-microglobulin-knockout NOD/SCID mice 10,11.
Although murine models of human MM in some aspects can resemble the phenotype of human disease, immune-deficient mice are inbred, therefore simulate only one individual response to a drug and costs are very high. Due to immunosuppression animals require special maintenance conditions and the engraftment of human MM in mice requires 6 weeks to 2 months 9,12, unless cells are grafted directly to the bone marrow using a technically demanding procedure with lower rates of animal survival 7,13. Therefore, new methods using stem-cell based organoid models 14, tissue engineering 15 or sophisticated 3D cell culture models 16 have been established. They will compete in the near future with classical animal experiments for preclinical drug testing, but cannot replace systemic toxicity tests in living organisms.
The chicken embryo has been demonstrated before to be a suitable organism for xenotransplantation of human cells and tissues due to lack of adaptive immune response until hatching 17-19. Moreover, each chicken embryo reflects an individual reaction to applied drugs or tumor cells due to genetic diversity within the chicken population. The chorioallantoic membrane (CAM) is a well-established system to study tumor-dependent angiogenesis 20-22. When solid tumors are grafted to the CAM, they display many characteristics of cancers in vivo, including proliferation, invasion, angiogenesis and metastasis 23-27. 
Based on the previous experience of our group with CAM xenograft models20,26,27, a human MM model was established that combines the advantage of a human 3D culture system with the model of ex ovo developing chicken embryos. This MM model system allows real time monitoring of MM growth progression, quantification of cell mass and preclinical drug testing.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>RPMI-8226 cells</td>
			<td>DSMZ</td>
			<td>ACC 9</td>
			<td>STR profiled</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OPM-2 cells</td>
			<td>DSMZ</td>
			<td>ACC 50</td>
			<td>STR profiled</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human mesenchymal stem cells&#160;</td>
			<td>PromoCell</td>
			<td>PC-C-12974</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEK293FT cells&#160;</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>R700-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RPMI1640 Medium</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>R0883</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum&#160; HyClone</td>
			<td>ThermoScientific</td>
			<td>SH30070.03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Glut- Pen- Strep solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>G6784</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM Medium</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>31966</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NEAA</td>
			<td>Sigma Life Sciences</td>
			<td>M7145</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transfection Medium/Opti-MEM&#160;</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>51985</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>eGFP lentiviral particles</td>
			<td>GeneCopoeia</td>
			<td>LPP-EGFP-LV105</td>
			<td>Ready to use viral particles</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pLenti6/V5Dest6 eGFP vector</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>PN 35-1271</td>
			<td>from authors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ViralpowerTM packaging mix&#160;</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>P/N 35-1275</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transfection reagent/ Lipofectamin 2000</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>11668-027</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blasticidin</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>R210-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Neomycin</td>
			<td>Biochrom</td>
			<td>A2912</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagen-Type1&#160; Rat Tail</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>354236</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM powder</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>Art.Nr. 10338582</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>plitidepsin</td>
			<td>Pharmamar</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>bortezomib</td>
			<td>LKT Lab., Inc.</td>
			<td>B5871</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="3">SPF-white hen eggs</td>
			<td rowspan="3">Charles River</td>
			<td rowspan="3"></td>
			<td rowspan="3">Fertilized&#160; white Leghorn&#160; chicken eggs</td>
		</tr>
		<tr>
		</tr>
		<tr>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="2">Plastic weighing boats</td>
			<td rowspan="2">neoLab</td>
			<td rowspan="2">Art.Nr. 1-1125</td>
			<td rowspan="2">for ex-ovo culture</td>
		</tr>
		<tr>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petridish square (Lids)</td>
			<td>Simport</td>
			<td>D210-16</td>
			<td>for ex-ovo culture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RIPA Buffer (10x)</td>
			<td>Cell Signaling</td>
			<td>#9806</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Protease Inhibitor Tablets</td>
			<td rowspan="2">Roche</td>
			<td rowspan="2">11 836 170 001</td>
			<td rowspan="2"></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Complete Mini EDTA-free</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GFP ELISA</td>
			<td>Cell Biolabs, Inc.</td>
			<td>AKR-121</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Histocette II</td>
			<td>Simport</td>
			<td>M493-6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PFA&#160; 37%</td>
			<td>Roth</td>
			<td>7398.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DPBS</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>BE17-512F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol absolut</td>
			<td>Normapur</td>
			<td>20,821,321</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Roti-Histol</td>
			<td>Roth</td>
			<td>Art.Nr.6640.4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraplast</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A6330</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="2">SuperFrost Microscope Slides</td>
			<td>R. Langenbrinck&#160;</td>
			<td>Art.-Nr.</td>
			<td rowspan="2"></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Labor- u. Medizintechnik</td>
			<td>03-0060</td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="2">DakoCytomation Wash Buffer 10x</td>
			<td rowspan="2">DakoCytomation</td>
			<td>Code-Nr.</td>
			<td rowspan="2"></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>S 3006</td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="2">Target Retrieval Solution (10x)&#160; pH 6,1</td>
			<td rowspan="2">DAKO</td>
			<td>Code-Nr.</td>
			<td rowspan="2"></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>S 1699</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>H2O2</td>
			<td>Merck</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>m-a-hu ASMA clone 1A4</td>
			<td>DAKO</td>
			<td>M0851</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>m-a-hu CD138 clone MI15</td>
			<td>DAKO</td>
			<td>M7228</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>m-a-hu Vimentin clone V9</td>
			<td>DAKO</td>
			<td>M0725</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>m-a-hu Desmin clone D33</td>
			<td>DAKO</td>
			<td>&#160;M0760</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>m-a-hu Ki67&#160; clone MIB-1&#160;&#160;</td>
			<td>DAKO</td>
			<td>&#160;M7240</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>biotinylated goat- anti-mouse IgG</td>
			<td>Vector Laboratories Inc.</td>
			<td>BA-9200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vectastain Elite ABC Kit</td>
			<td>Vector Laboratories Inc.</td>
			<td># PK-6100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FAST DAB Tablet Set.</td>
			<td>Sigma Biochemicals</td>
			<td># D4293</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mayer&#8217;s haemalaun solution</td>
			<td>Merck</td>
			<td>1,092,490,500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Roti Histokitt</td>
			<td>Roth</td>
			<td>Art.Nr.6638.2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bench top rotary microtome</td>
			<td>Thermo Electron, Shandon Finesse ME+</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue embedding station</td>
			<td>Leica, TP1020</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Egg-Incubator</td>
			<td>Grumbach&#160;</td>
			<td>BSS160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereo fluorescence microscope equipped with an connected with a digital camera (Olympus E410) and flexible cold light&#160;</td>
			<td>Olympus, SZX10</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultra Turrax&#160;</td>
			<td>IKA T10</td>
			<td></td>
			<td>Homogenizer</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

establishment of a human multiple myeloma xenograft model in the chicken to study tumor growth, invasion and angiogenesis

다발성 골수종 (MM), 악성 형질 세포 질환, 난치성 유지 및 신규 약물은 환자의 예후를 개선하기 위해 요구된다. 인해 골 미세 자동 / 분비 성장 인자의 부족으로 인간 MM 세포는 배양하기 어렵다. 따라서, 인간의 MM 세포에 새로운 치료제의 작용을 연구하기 위해 시험 관내 및 생체 내 배양 시스템에서 적절한 확립이 절실히 요구되고있다. 여기서 우리는 시험 관내 및 생체 내에서 복잡한 3D 환경에서 인간 다발성 골수종 세포를 성장 모델을 제시한다. MM 세포주 OPM-2 및 RPMI-8226를 형질 전환 유전자 GFP를 발현하는 형질 감염시키고 인간 중간 엽 세포와 콜라겐의 존재 하에서 배양 하였다 타입 I 입체 타원체로 매트릭스합니다. 더하여, 구 상체는 닭 배아 융모 막 (CAM)에 그래프트 된 종양 성장은 스테레오 형광 현미경에 의해 모니터 하였다. 두 모델 모두 새로운 치료 DRU의 연구를 허용복잡한 3D 환경 및 트랜스 특정 GFP-ELISA에서의 균질화 이식 후 종양 세포 질량의 정량화에 GS. 또한, 직하 숙주 조직으로 호스트 및 종양 세포의 침윤 혈관 신생 반응을 입체 현미경으로 매일 모니터링 및 인간 종양 세포 (기-67, CD138, 멘틴) 또는 호스트 벽화 세포 덮는 혈관에 대해 면역 조직 화학 염색에 의해 분석 될 수있다 (최근 desmin / ASMA). 결론적 onplant 시스템은 복잡한 3 차원 환경에서 MM 세포 성장 및 혈관 신생을 연구 할 수 있으며 MM 세포의 생존과 증식을 치료 표적 신규 화합물에 대한 스크리닝을 가능하게한다.

3D 다발성 골수종 타원체 내 분석 대상 화합물의 시험 관내 분석에서 때문에 체외에서 일차 인간 MM 세포 배양의 한계로는 골수에서 세포 성장 매트릭스 및지지 차 인간 중간 엽 세포 이용하게 인간 MM 세포 라인에 대한 새로운 3D 체외 배양 모델을 확립 (도 1a를, B). EGFP 유전자 MM 셀 라인은 회전 타원체의 3D 성장 후 시각화 및 MM 종?...

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Establishment of a Human Multiple Myeloma Xenograft Model in the Chicken to Study Tumor Growth, Invasion and Angiogenesis

인간 다발성 골수종 (MM) 세포는 간엽 세포의 생존과 증식을위한 세포 외 매트릭스 성분의지지 미세 환경을 필요로한다. 우리는 종양의 성장, 침윤 및 혈관 신생에 항암제의 효과를 연구하기 위해 접목 인간 골수종 및 중간 엽 세포와 생체 내 닭 배아 모델을 설립했다.

닭에서 인간의 다발성 골수종 이종 이식 모델의 설립은 종양의 성장, 침략과 혈관 신생을 공부하기

Multiple myeloma (MM), a malignant plasma cell disease, remains incurable and novel drugs are required to improve the prognosis of patients. Due to the ...

establishment-human-multiple-myeloma-xenograft-model-chicken-to-study

Research

JoVE Journal

Medicine

12.9K 조회수.  Innsbruck Medical University.  인간 다발성 골수종 (MM) 세포는 간엽 세포의 생존과 증식을위한 세포 외 매트릭스 성분의지지 미세 환경을 필요로한다. 우리는 종양의 성장, 침윤 및 혈관 신생에 항암제의 효과를 연구하기 위해 접목 인간 골수종 및 중간 엽 세포와 생체 내 닭 배아 모델을 설립했다. 