프로토콜 및 알고리즘 도이치 가운데 (DFG 그랜트 SFB1009 A09와 EB177/13-1)에 의해 자금을 프로젝트 내에서 개발 되었다. 저자는 바바라 Schedding 및 기술 지원에 대 한 펠릭스 Schmalbein 박사 Niland 비판적 원고를 읽기 위한 감사 합니다.

1. 재고 솔루션
<ol><li>10 x TBS의 100 mL pH 7.4 솔루션을 준비 하려면 분해 트리 스와 이온을 제거 된 물 90 mL에 NaCl의 8.77 g 6.06 g, 7.4 37 %HCl 솔루션에 pH를 조정, 볼륨 100 mL을 이온을 제거 된 물,를 필터링 솔루션.</li>
	<li>1의 100 mL를 준비 하 M HEPES/NaOH, pH 7.4 솔루션 23.83 g HEPES의 이온을 제거 된 물 90 mL에 녹, 1.5 M NaOH와 7.4 pH 조정, 볼륨 100 mL을 이온된 수로를 필터링 솔루션.</li>
	<li>5 M NaCl 용액 100 mL를 준비 하려면 29.2 g NaCl의 이온을 제거 된 물 90 mL에 용 해. 이온을 제거 된 물 100 mL에 볼륨을 필터링 솔루션.</li>
	<li>100 mL의 1 M MgCl2 솔루션을 준비, 해산 20.33 g MgCl2 · 6 H2O의 이온을 제거 된 물 90 ml. 이온을 제거 된 물 100 mL에 볼륨을 필터링 솔루션.</li>
	<li>준비 물에 5% 열 비활성화 BSA, 50 mL 튜브에 BSA (분수 V, pH 7.0)의 2.5 g 무게 하 고 이온을 제거 된 물 45 mL에 용 해. 이온된 수, 50 ml 솔루션 작성 및 45 분 얼음 목욕에서 그것을 냉각 하 고-20 ° c.에 그것을 저장할 68 ° C에서 물 욕조에 솔루션을 열</li>
	<li>25%도 용액을 준비 합니다. 주의:도 유해한 경우에 삼 켜, 흡입에 의해 독성 이며 화상의 원인. 장갑, 보호복을 착용 하 고 눈/얼굴 보호.</li>
	<li>앞에서 설명한19로 토끼 원으로를 올립니다. 원으로 titer20표준 프로토콜 따라 결정 되었다.</li>
	<li>염소 알칼리 성 인산 가수분해 효소와 활용에서 안티 토끼 면역 글로불린 항 체를 준비 합니다.</li>
	<li>100 mL의 0.1 M 글리신 솔루션을 준비, 글리신 이온 물 90 ml에서의 0.75 g을 분해. 1.5 M NaOH 솔루션 10.4 pH를 조정 하 고 이온된 수 100 mL에 볼륨을 채워 필터링 솔루션.</li>
	<li>0.5 M Zn (II) 100 mL를 준비-아세테이트 솔루션, 10.98 g Zn (II)의 해산-아세테이트 · 2 H2O의 이온을 제거 된 물 90 ml. 이온을 제거 된 물 100 mL에 볼륨을 필터링 솔루션.</li>
	<li>1.5 M NaOH 솔루션의 100 mL를 준비 하려면 6.0 g NaOH의 이온을 제거 된 물 90 mL에 용 해. 이온을 제거 된 물 100 mL에 볼륨을 필터링 솔루션.</li>
</ol>2. 준비 버퍼 솔루션 작업
<ol><li>5 10 x TBS pH 7.4의 45 mL와 함께 이온된 물 희석 고 1 M MgCl2 재고 솔루션의 100 µ L를 추가 합니다. 실내 온도에 그것을 유지. TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2 솔루션 결정 접시를 세척 하 고 수용 체의 동원 정지입니다.</li>
	<li>물에 열 비활성화 BSA의 5% 및 10 x TBS의 5 mL 50 mL에 이온된 수와 pH 7.4의 10 mL를 희석. 1 M MgCl2 재고 솔루션의 100 µ L을 추가 하 고 솔루션을 잘 섞는다. 얼음에 그것을 유지 하 고-20 ° c.에 추가 실험을 위해 그것을 저장합니다 참고 1% BSA TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2 에서 그 2.5 mL는 각 적정 곡선 필요 합니다.</li>
	<li>1의 2.5 mL를 희석 M HEPES/NaOH, 이온 물 50 mL에 pH 7.4와 1.5 mL 5 M NaCl 해결책 100 µ L 1 M MgCl2 솔루션을 추가 하 고 철저 하 게 준비 하는 HBS, pH 7.4: 50 mM HEPES/NaOH의 50 mL 솔루션 혼합 150 mM NaCl.</li>
	<li>1 M MgCl2 재고 솔루션의 5 µ L를 더하고 2 µ L 0.5 M Zn (II)-5 mL 0.1 M 글리신 솔루션, pH 알칼리 성 인산 가수분해 효소 (AP) 버퍼 (0.1 m M 글리신 솔루션, pH 10.4, 1 mM MgCl2, 0.2 m Zn(II)-acetate) m를 준비 하는 10.4 아세테이트 재고 솔루션.</li>
</ol>3. 결정 플레이트 (Integrin α2A-도메인) 수용 체의 동원 정지
<ol><li>Integrin α2A-TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2 5 µ g/mL의 최종 농도 대 한 도메인의 재고 솔루션을 희석. 참고: 볼륨 코팅 솔루션의 절반 지역 결정 플레이트의 12 음 행으로 구성 된 한 적정 곡선에 대 한 650 µ L입니다.</li>
	<li>50 µ L/잘 integrin α2A 도메인 (야생-타입 또는 돌연변이)의 5 µ g/mL 코팅 솔루션의 절반 지역 결정 접시에 행의 모든 잘 채워. 중복에 적어도 모든 적정 행 수행 (쌍둥이;이 예제에서 그림1에서 결정 판의 레이아웃 참조).</li>
	<li>호 일 접시를 밀봉 하거나 뚜껑을 닫습니다. 밤새 4 ° C에서 접시를 남겨 주세요.</li>
</ol>4. 세척 코팅 웰 스는 접시 두 번 TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2 와
<ol><li>수용 성 수용 체를 제거 하려면 하지 플라스틱 표면에 물리적 흡착에 의해 움직일 되어 코팅 솔루션을 제거 하 고 각 채우기 분자 잘 TBS, pH 7.4, 2mm의 50 µ L와 MgCl2.</li>
	<li>세척 솔루션을 제거 합니다. 우물 건조가 되지 않습니다 확인 하십시오. 따라서, 잔여 액체를 제거 하려면 조직 옷감에 결정 플레이트를 누릅니다 하지 않습니다. 다단계 피 펫 또는 다중 채널 피 펫을 사용 하 여 신속 하 게 우물을 채우기 위해.</li>
	<li>한 번이 세 단계를 반복 합니다.</li>
</ol>5. 일반적인 바인딩 사이트 차단
<ol><li>TBS, pH 7.4, 각 음을 2 m m MgCl2 에 1 %BSA 솔루션의 50 µ L를 추가 합니다.</li>
	<li>호 일 우물을 다시 봉인 또는 뚜껑을 닫습니다.</li>
	<li>실 온에서 1 h에 대 한 웰 스를 품 어. 참고:이 프로토콜의 인큐베이션 단계 락 또는 떨고 플랫폼에서 수행할 수 있습니다. 그러나,이 필요 하지 않습니다 하 고 실험의 결과 변경 하지 않습니다.</li>
</ol>6. 리간드, Rhodocetin의 직렬 희석 행 준비
<ol><li>Rhodocetin의 시작 농도 직렬 희석, ligand 농도의 적절 한 범위를 및 최소 및 최대 신호 전체 적정 곡선 기록의 희석 요인이 다. 이 실험에서 243 nM rhodocetin의 시작 농도 및 2.3의 희석 비율을 사용 합니다. 직렬 희석 행의 가장 높은 ligand 농도에 rhodocetin 재고 솔루션을 희석. 2.3 희석 요소와 각 적정 곡선, 1%에서 243 nM (즉, 15,2 µ g/mL) rhodocetin 솔루션의 115 µ L를 준비 BSA/TBS, pH 7.4, 테스트 튜브 # 1에서에서 2 mM MgCl2 .</li>
	<li>TBS, pH 7.4, #2 #11-표시 10 시험관에서 2 mM MgCl2 에 1 %BSA 솔루션의 65 µ L을 입력 합니다.</li>
	<li>테스트 튜브 # 1에서에서 rhodocetin 희석의 50 µ L를 전송 테스트 튜브 #2, 혼합 두 솔루션 (전체 용량: 115 µ L, 희석 비율: 1:2. 3) 분쇄, 그리고 테스트 튜브 #3, 등 이 혼합물에서 전송 50 µ L
</li>
	<li>테스트 튜브 # 11까지 직렬이 희석을 계속 합니다. 참고: 단계 6.1 6.4에서에서 주어진 볼륨 한 적정 곡선에 대 한 충분 한 있습니다. 이러한 볼륨 복제의 수에 곱하십시오. 이 경우 8 적정 곡선 (2 개의 α2A 도메인 형태의 쌍둥이)를 수행 하 고 다음 볼륨 준비: 테스트 튜브 #1;에 높은 농도에서 rhodocetin 솔루션의 920 µ L TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2 #2 ~ #11; 테스트 튜브의 각 입력에서 1 %BSA 520 µ L 그리고 중 하나에 1 개의 관에서 전송 볼륨의 400 µ L.</li>
</ol>7. 바인딩 Ligand (Rhodocetin)를 서로 다른 농도에서 수용 체 (Integrin α2A-도메인) 움직일
<ol><li>진공 라인에 의해 결정 판 우물에서 차단 솔루션을 제거 합니다.</li>
	<li>즉시 추가 1 %rhodocetin에서 솔루션의 50 µ L BSA/TBS, 테스트 튜브 #1 열 1, 열 2, TBS, pH 7.4에에서 1 %BSA등 추가 50 µ L의 우물을 테스트 튜브 # 2의 솔루션의 우물으로 pH 7.4/MgCl2 솔루션 2 m m MgCl2 (차단 및 희석 버퍼) ligand 무료 컨트롤로 열 12 (레이아웃 결정 판, 그림 1참조)의 우물을.</li>
	<li>호 일 우물을 다시 봉인 또는 뚜껑을 닫습니다.</li>
	<li>상 온 (약 20-22 ° C)에서 1.5 h에 대 한 웰 스를 품 어.</li>
</ol>8. 세척 우물의 플레이트 두 번 HBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2 와
<ol><li>비 바운드 ligand 분자를 제거 하려면 바인딩 솔루션을 제거 하 고 각 채우기 HBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2의 50 µ L로 잘. 그런 다음 세척 솔루션을 제거 합니다.</li>
	<li>돌 우물 건조가 되지 않습니다. 따라서, 잔여 액체를 제거 하려면 조직 옷감에 결정 플레이트를 누릅니다 하지 않습니다. 다단계 피 펫 또는 다중 채널 피 펫을 사용 하 여 신속 하 게 우물을 채우기 위해.</li>
	<li>한 번이 세 단계를 반복 합니다.</li>
</ol>9. 2.5% 수용 체 바인딩 Ligand 수정 HBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2 에
<ol><li>25%도 솔루션의 1 부분과 HBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2의 9 부분을 혼합 하 여 신선한 2.5%도 솔루션을 준비 합니다.</li>
	<li>HBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2에서 2.5%도 솔루션의 50 µ L로 결정 판 모든 우물을 채우십시오. 실 온에서 10 분을 위한 결정 플레이트를 품 어.</li>
</ol>10. TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2 의 50 µ L/잘 접시 세 번의 워시 우물
<ol><li>제거 하 고 초과 비활성화, 고정 솔루션을 제거 하 고 각 채우기 TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2의 50 µ L로 잘. 세척 솔루션을 제거 합니다. 참고: 결정 판에서 글에 포함 된 고정 솔루션 그릇에 부 어 하 고 TBS, pH 7.4의 동일한 볼륨에 의해 비활성화 된 후 고정 솔루션을 삭제.</li>
	<li>돌 우물 건조가 되지 않습니다. 따라서, 잔여 액체를 제거 하려면 조직 옷감에 결정 플레이트를 누릅니다 하지 않습니다. 다단계 피 펫 또는 다중 채널 피 펫을 사용 하 여 신속 하 게 우물을 채우기 위해.</li>
	<li>이 세척 단계를 두 번 반복 합니다.</li>
</ol>11. 일 라에 의해 수용 체 바인딩 Ligand의 정량화
<ol><li>TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2에 1 %BSA 50 µ L/우물의 1 차적인 항 체 솔루션을 추가 합니다. 1 차적인 항 체 솔루션은 토끼 원으로 rhodocetin19에 대 한 발생, TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2에 1 %BSA 1:2,000 희석.</li>
	<li>실 온에서 75-90 분 동안 접시를 품 어. 세 번와 TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2의 50 µ L/잘 접시의 모든 우물을 씻어. 3 단계 세척, 조직에 결정 플레이트의 도청 중 천으로 필요 하지 않습니다.</li>
	<li>TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2에 1 %BSA 50 µ L/잘 이차 항 체 솔루션을 추가 합니다. 이 위해, 이차 항 체, 토끼 면역 글로불린을 대상으로 염소 항 체 알칼리 성 인산 가수분해 효소, TBS, pH 7.4, 2 mM MgCl2에 1 %BSA 1:2,000 함께 활용 된 희석. 실 온에서 75-90 분 동안 접시를 품 어.</li>
	<li>4-nitrophenyl 인산 disodium 염 hexahydrate (인산 가수분해 효소 기질) AP 버퍼 (0.1 m M 글리신 솔루션, pH 10.4, 포함 하는 1 m m MgCl2 와 0.2 m m Zn(II)-acetate)의 5 ml에서를 포함 하는 5 mg 태블릿을 용 해 하 여 AP 검색 솔루션을 준비.</li>
	<li>세 번의 TBS, pH 7.4, 다음 단계를 수행 하기 전에 즉시 2 m m MgCl2, 50 µ L/잘 사용 판 모든 우물을 씻어. 액체의 모든 흔적을 제거 하는 마지막 세척 단계 후 조직 옷감에 결정 플레이트를 누릅니다.</li>
	<li>50 µ L/AP 검색 솔루션의 잘 결정 접시의 우물을 추가 합니다. 가능한 동시에 효소 변환 하려면 모든 우물에 AP 검색 솔루션을 신속 하 게 추가 합니다. 따라서, 다중 채널 피 펫을 사용 합니다.</li>
	<li>Ligand 밀집 된 우물에서 솔루션 노란색 차례 때까지 실 온에서 접시를 품 어. 참고: 5 분 및 신호 강도 따라 1 시간 사이 부 화 시간이 달라질 수 있습니다.</li>
	<li>50 µ L/잘 1.5 M NaOH 솔루션을 추가 하 여 인산 가수분해 효소 기판의 변환을 중지 합니다. 두 솔루션의 혼합 연속 무료 되도록 몇 분 동안 접시 서를 둡니다. 모든 우물에 동일한 잠복기를 보증, 다중 채널 피 펫을 사용 하 여를 단계 11.8에서에서 AP 탐지 기판의 우물에 추가 된 동일한 순서로 1.5 M NaOH를 추가 합니다.</li>
	<li>405에서 광학 밀도 (OD)를 측정 각 잘 ELISA 리더의 nm.</li>
</ol>12입니다. 적정 신호 평가
<ol><li>Excel과 원시 데이터, OD405nm 값의 테이블을 엽니다. 적정 곡선의 신호 값이 행에서 읽고는, 열을 다른 열에 추가 된 ligand의 농도와 레이블 값을 조 변경할.</li>
	<li>Graphpad Prism을 5 (버전 5.0)을 엽니다. 주 메뉴에서 새 프로젝트 파일을 엽니다. 새 데이터 및 그래프에서 XY 형식을 선택 합니다. Y 축에 대 한 Enter 및 플롯 각 값에 대 한 단일 지점 옵션을 선택 합니다.</li>
	<li>두 개의 열, 추가 ligand의 농도 복사 하 고 값 (OD405nm 값)는 excel에서 파일을로 GraphPad Prism의 데이터 시트에 붙여넣을 신호 X 및 Y 값, 각각.</li>
	<li>GraphPad Prism 5 분석 하위 프로그램 열고 비 선형 회귀 XY 분석아래 옵션을 선택 합니다. 사용자 정의 방정식 을 선택 하 고 새로운 방정식을 만들기 새로운 버튼 을 누릅니다.</li>
	<li>적정 곡선 방정식 형태로 입력: Y =(Smax-Smin)*((X+R+K)-sqrt((X+R+K)^2-4*R*X)) /(2*R) + Smin + y 신호 값 S, 추가 리간드 L의 농도가 되 고 X 되 고 새롭게 문이 연된 템플릿 시트 B * X R의 농도 되 움직일 수용 체, 되 고 분리 상수 K와 B 배경 되 고 경사. 정의 적절 한 제약 조건, K > 0와 R > 0. 참고:이 방정식은 다른 형태의 방정식 9의 동일한 방정식.</li>
	<li>새로 작성 된 사용자 정의 방정식을 선택 하 여 데이터 시트의 값을 분석 합니다. 계산 된 근사치 값으로 테이블을 열고 (K, Rt,최대S, S분, 그리고 B)는 소프트웨어 스크린의 왼쪽에 있는 결과 섹션 아래에 표시 됩니다. 참고: 소프트웨어는 적정 곡선 적어도 5 데이터 포인트의 구성 하는 경우에 비-선형 회귀의 반복 피팅 여 5 매개 변수를 결정 합니다.</li>
	<li>매개 변수 K, Rt,최대S, S분및 B 적정 곡선의 모든 그룹에 대 한 통계, 평가 하 고 (돌연변이 또는 화학 수정 ligand 또는 수용 체) 그룹의 특정 기능 매개 변수를 연관.</li>
</ol>

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저자는 공개 상관이 있다.

ELISA 적정 수용 체 ligand 상호 작용의 분리를 결정 하는 다양 한 테스트 시스템입니다. 적정으로 ELISA circumvents 자유롭고 바운드 ligands를 효과적으로 분리 하 고 양적, 그들의 농도 분석을 실질적으로 더 많은 연구 필요성 및 간행물 바인딩 곡선을 기록 하는 대신 적정 ELISAs 고용 . 또한, 적정 ELISAs 수행 수용 체 그리고 ligand의 합리적으로 낮은 금액을 필요로 하는. 분리 상수의 정확한 분석에 대 한 수용 체와 ligand의 순수한 준비를 사용 해야 합니다. 수용 체 준비 내 오염 단백질 결정 플레이트의 플라스틱 표면에 흡착 사이트에 대 한 수용 체와 경쟁. 그들은 ligand 바인딩 하지 않습니다 하지만 ligand 바인딩 수용 체의 수를 감소, 수용 체 솔루션의 불순물 ELISA 적정 신호를 줄일 수 있습니다. 수용 체 준비의 순수성 이상 향상 시킬 수 없는 경우 더, 항 체 수용 체에 대 한 감독 결정 플레이트에 움직일 수 있다 그리고, 우물, 차단 후 불순물을 포함 하는 준비에서 수용 체를 사로잡을 것입니다. 그럼에도 불구 하 고, 해야 합니다 주의 캡처 항 체는 항 체의 종 방해 때문에 1 차 및 이차 항 체와 바인딩된 ligand의 탐지를 방해 하지 않는다 또는 그것이 방해 ligand 바인딩.
데이터의 포괄적인 집합을 얻으려면, 그것은 결정 플레이트 immobilizing 여 한 실험의 수용 성 ligand 다른 실험에서 수용 체로 사용 하 고 그것을 적정 하는 상호 방식 ELISA 적정을 수행 하기 위해 감사 수용 성 ligand 파트너로 적용 됩니다는 전 수용 이 보통 immobilization 파트너 중 하나에의 바인딩 활동은 잘 하지 않는 한 또는 적정 한 파트너를 검출 하기 위하여 항 체 등의 도구를 존재 하지 않는 또는 얻기 어렵다 하지 않는 작동 합니다. Rhodocetin-α2A 도메인 바인딩 시스템에서이 티-S-전이 효소 (GST) 후 근무-moiety16GST-항 체의 탐지를 촉진 하기 위하여 α2A 도메인에 융합 했다.
적정 ELISA의 또 다른 장점은 추가 ligand (Lt), 하지만 자유롭고 바인딩 ligand의 농도만 (Lf 와 Lb, 각각), 알려질 필요가. 따라서, ligand 준비 청결 해야 합니다. 만약 이것이 불가능 하거나 제한 된 범위, 적정 ELISA 아직도 채택 될 수 있다, 준비 내 리간드의 몰 비율 후에 가능한 결정 하지 독립적으로, 예를 들어, SDS 페이지, immunoblotting, 또는 샌드위치 ELISA.
ELISA 적정 문제는 수용 체와 ligand 사이 선호도 너무 낮은 경우 또는 고정 곧 바인딩 상호 작용 하는 경우 발생할 수 있습니다. 후자의 경우, 적정 ELISA의 고정 무료 프로토콜 설립 될 필요가 있다. 실질적으로, 분리 상수만 검출 될 수 있다 바인딩 파트너 약 200의 범위 내에 합리적으로 높은 선호도와 상호 작용 하는 경우 nM.
적정 추가 ligand, Lt의 총 농도의 기능으로 신호 강도를 S를 제공합니다. 자유롭고 언바운드 ligands의 농도로 Lf 와 LbLt, 정리해 고 lb Y·의 제품 Rt 방정식3, 식 4 로 변환 됩니다.
<img alt="Equation 5 " src="/files/ftp_upload/57334/57334eq5.jpg">          방정식 5
이차 방정식에서 결과
<img alt="Equation 6 " src="/files/ftp_upload/57334/57334eq6.jpg">        공식 6
그 실용적인 솔루션은,
<img alt="Equation 7 " src="/files/ftp_upload/57334/57334eq7.jpg">        공식 7
또한, 추가 된 리간드 Lt 의 특정 농도에 신호 강도 S (Lt) 나타냅니다 채도 수율을 Y, S분, 최소 신호 값의 뺄셈에 의해 수정 및 동적 범위에 정규화 된 후 주어진 신호를 최대 및 최소 값,최대 S 및 S분의 차이:
<img alt="Equation 8 " src="/files/ftp_upload/57334/57334eq8.jpg">          공식 8
방정식 7 과 식 8 의 조합 추가 리간드 Lt의 농도와 신호 강도 S (Lt)를 연결 하는 수학 함수를 생성 합니다. 기간 B· Lt Lt선형 올리는 일반적인 배경 신호를 설명 하기 위해 추가할 수 있습니다. B는 백그라운드의 비례 상수 이다. 따라서, 적정 곡선을 설명 하는 일반 기능이입니다.
<img alt="Equation 9 " src="/files/ftp_upload/57334/57334eq9.jpg">        공식 9
이 함수는 적정 곡선의 제곱근 용어 및 선형 기간 각각 수용 체와 리간드 ligand의 일반적인 상호 작용 사이 특정 상호 작용을 설명 하는 구성된 기능에 해당 합니다. 이 함수는 다른 바인딩 곡선의 쌍곡선 함수 (Lbvs. Lf)입니다.
바인딩된 ligand의 농도 y 축에 플롯 바인딩 곡선 달리 적정 곡선 보다 유연 이며 어떤 신호를 바인딩된 ligand의 농도와 상관 관계가, y 축에 그릴 수 하 수 있습니다. 이 신호 (로이의 경우는 ELISA), 효소 연결 된 항 체의 photometrically 감지 된 바인딩 될 수 있습니다. 있지만 그것은 또한 다른 spectrometric 신호, 흡 광도, 원형이 색 성9, 형광 편광21에 변화 등 수 , NMR 신호22. 또한, 등온선 적정 열 량23 에서 열역학 신호 해야한다 평가할 수 있습니다. 다른 연구는 운동에서 바인딩 선호도-결정 하 고 형성 및 측정 실시간으로 변화 하 여 사라져 필드에 의해 수용 체 ligand 복합물의 분리에 대 한 요금을 표면 플라스몬 공명24,25 에 미 thermophoresis26,27여 크리스털 중량26또는 형광 증 착을 대량. 이러한 실시간 측정 그들의 정교한 평가 소프트웨어 때문에 강력한 도구가 되고있다. 적정 ELISA SPR는 일반적으로 바인딩 파트너 단백질 화학 분석에서 검사를 선택 하는 방법. 반면 적정 ELISA 다른 평형 상태에 바인딩된 ligand의 양을 측정 하 여 열역학으로 선호도 상수를 측정, SPR 운동 접근을 활용 하 고 운동 속도 상수,오프 k 및 k에 근접 는 비 접착 결정된 분리 상수24,25제공 합니다. 두 개의 다른 접근 방식에 따라 K 값은 서로 다른 달라질 수 있습니다. Rhodocetin-α2A 도메인 바인딩 실험에서 SPR 데이터 공개오프 k와 k에 속도 상수, 그리고 결과적으로 네는 아주 유사 하다 rhodocetin α2A 복잡 한19일에 대 한 선호도 상수 K, 결정 K 값이이 연구에서 적정 ELISA 측정. 약간의 차이가 다른 일괄 처리 또는 다른 활동 변화와 단백질 견본의 저장의 기간에 의해 설명 될 수 있다. 나중이 점에서 적정 ELISA에서에서 모든 샘플 측정 됩니다 처럼 동시에 그리고 순차적으로 SPR 기계. 이제, 수학적으로 접근 하 고 적정 곡선 방정식 (방정식 9)와 함께 관리 하기 쉽게 되 고, ELISA 적정이 끝점 측정 될 수 있습니다 운동 평가 실시간 측정으로 강력한이 비용 집약적 SPR 기계가 필요 합니다.
이 방정식 ligand의 총 농도 낮은 ligand 농도에서 특히 바인딩된 ligand의 농도 감소의 계정에 걸립니다. Ligand 농도의 전체 범위에 걸쳐 데이터를 적정 곡선의 훨씬 더 나은 근사 수 있습니다. 바인딩 곡선에 비해 적정 ELISA의 1 개의 결점 지금까지 수학적으로 적정 곡선을 평가 하는 데 어려움 되었습니다. 바인딩 곡선 무료 리간드 L의 농도에서f 반 최대한 채도 분리 상수, 반면이 적정 곡선에 대 한 사실이 아니다. 두 알고리즘을 독립적으로 개발 되었다 하지 그래픽으로 적정 곡선을 선형화 하 고 분리 상수를 결정 하. 그러나, 두 알고리즘 개발한 광 적정 실험에 대 한 Stockell 외. 8 불리는 채도 생산량 Y에 대 한 최대 신호를 그래픽으로 결정 해야 합니다 고통 Heyn & Weischet9 . 으로이 값은 asymptotically, 채도 수율 및 따라서 계산된 분리 상수는 오류가 발생 하기 쉬우며 본질적으로. 수식 9 에 따라 알고리즘 적정 실험에서 원시 데이터를 사용 하 여 하 고 분리 상수 K 뿐만 아니라 다른 매개 변수는 (그림 2 및 그림 3 최적된 솔루션을 비-선형 회귀에서를 계산 하는 반면, ). 또한,이 알고리즘 그래픽 ligand 채도에서 가능 하 게 밖으로 도달 최대 신호를 추정 하지 않아도 평가 과정 된다 훨씬 빠르고 정확 하 고 그래픽 평가 보다 덜 바이어스 곰. 동시에 여러 가지 적정 곡선을 평가할 수 있습니다. 따라서, 적정 곡선의 여러 그룹을 동시에 측정 될 수 있다 그리고 그들의 매개 변수를 통계적으로 분석 하 고 비교할 수 있습니다. 또한, 모든 적정 곡선 그들 가운데 값 집합이 분리 상수 K, 고정 및 바인딩 활성화 수용 체 Rt의 농도, 최대 및 최소 신호 값 S최대 S의 차이와 동적 범위 제공 분 , 뿐만 아니라 해당이 값, 채도 수율 Y을 계산 하 고 플롯의 농도의 의존성 수를 사용 하 여 실험 배경 신호 하는 선형 계수 B 추가 리간드 Lt. 같은 채도 항복 음모, 절반 최대한 채도 신호 Lt(50%)에서 추가 ligand의 농도 분리 상수 K 플러스 고정된 활성 수용 체 Rt 의 절반 농도의 합
<img alt="Equation 10" src="/files/ftp_upload/57334/57334eq10.jpg">        방정식 10
이 Y에 대 한 파생 될 수 있다 방정식7 0.5 =. 따라서, 고정된 활성 수용 체 Rt 의 농도 수용 체의 다른 코팅 농도가 적정 ELISA를 수행 하 여 확인할 수 있습니다.

분리 상수 K는 그것의 ligand (L)에 대 한 수용 체 (R)의 선호도 설명 하는 핵심 매개 변수입니다. 대량 작업의 법칙에 따라, K는 수용 체 ligand 복잡 한 RL R 수용 체와 리간드 l: 분리 평형에 대 한 정의
<img alt="Equation 1 " src="/files/ftp_upload/57334/57334eq1.jpg">            공식 1
수용 체와 ligand의 무료/언바운드 상태를 나타내는는 인덱스 f 와. RL, 수용 체 ligand 복합물의 농도 수용 체 바인딩 ligand Lb의 농도. 수용 체 Rt 의 총 농도 무료 수용 체 Rf 와 수용 체 ligand 바인딩 Rb 의 합 = Lb, 분리 상수 또한 쓸 수:
<img alt="Equation 2 " src="/files/ftp_upload/57334/57334eq2.jpg">        공식 2
따라서, 채도 항복 Y, 바인딩된 리간드 Lb 수용 체 Rt의 총 농도의 관계의 일부분으로 정의
<img alt="Equation 3 " src="/files/ftp_upload/57334/57334eq3.jpg">        식 3
무료 리간드 Lf의 농도에 따라 다릅니다.
<img alt="Equation 4 " src="/files/ftp_upload/57334/57334eq4.jpg">        방정식 4
이 쌍곡선 관계 수용 체 ligand 상호 작용의 바인딩 곡선을 설명 하 고의 음모 무료 리간드 Lf의 농도의 기능으로 바인딩된 리간드 Lb 의 농도 보여 줍니다. 바인딩 곡선에서 분리 상수 K 반 최대한 채도 항복 무료 ligand의 농도 파생 될 수 있습니다. 또한, 다른 알고리즘을 바인딩 커브를 선형화 설립 되었습니다, Klotz1,2또는 Scatchard 또는 헤 인 즈 (Bisswanger3검토) 변환에 의해 더블-상호 음모 등. 그러나, 모든 알고리즘 asymptotically 무료 ligand 바인딩 곡선에서의 높은 농도에서 접근 된다, 채도 수율의 최대값 그래픽 사전 평가에서 추정 될 수 있다 며 따라서 문제에서 고통 오류 발생.
또한, 바인딩 곡선의 결정 바인딩 평형 동안 자유롭고 바인딩 ligand의 정량화를 해야합니다. 이 위해 무료 ligand 수용 체 바인딩 ligand에서 분리 하 여 정량 있다. 따라서, ligand와 수용 체는 단백질 수용 체는 반대로 비 단백질 ligand 등 그들의 속성에 다 해야 합니다. 두 바인딩 파트너 단백질 인 경우에, 그들은 그들의 크기, 비용, 또는 다른 분자 기능에서 구별할 수 있다. 그럼에도 불구 하 고, 소규모 바인딩 접근에 있는 ligand 농도의 정량화 어려운 작업입니다. ligand의 방사성 라벨 자주 되었습니다 바운드 ligand의 낮은 농도 검출 하는 데 필요한 특히 수용 체의 상당한 양의 없는 경우 사용할 수 또는 저렴 한. 또한, 수용 체 바인딩 ligand 무시할 수 비 방식에서 중과 격리 후 분리 수 있습니다. 따라서, 평형 젤 여과4,5, 모 세관 전기 이동 법 및 펄스 베이스6, 같은 복잡 한 방법을 수용 체 바인딩 ligand를 계량 하 고 무료 ligand에서 그것을 분리 하는 데 필요한 있습니다.
이러한 바인딩 분석 실험, 달리 적정 실험에서는 바운드 및 무료 ligand의 정량적 분리가 필요 하지 않습니다. 이 위해, 일정 농도에서 수용 체 추가 ligand의 다른 농도와 적정 이다. 수용 체에 바인딩하여 바인딩된 ligand는 무료 ligand에서 그것을 구별 하 고, 예를 들어, 광도, fluorometry, 또는 항 체 검출에 의해 측정 되는 생물 속성이 있습니다. 따라서, S, 채도에 비례 하는 신호 Y를 항복 하 고 따라서 또한 수용 체 바인딩 ligand (Lb)의 농도를 감지 추가 ligand (Lt)의 총 농도의 기능으로. 매개 변수, 신호 S 및 추가 ligand의 총 농도 바운드 및 무료 ligand의 농도 보다 직접적이 고 쉽게 방식으로 측정할. 특히, 효소 연결 된 immunosorbent 분석 결과 (ELISA)에 의해 수용 체 바인딩 ligand 감지 다 잘 결정 접시에 100 µ L 아래에 샘플 볼륨의 감소 뿐만 아니라 여러 ligand 농도의 병렬 측정 허용. ELISA 적정에서 수용 체 물리적으로 동일한 농도에서 결정 플레이트에 흡착 이며 수용 성 리간드로 적정. 수용 체는 움직일 수 플라스틱 표면에 본질적으로 소수 성 흡착에 의해. Langmuir´s 흡착 등온선7에 따라 가능성이 비선형 관계에 수용 체의 코팅 농도와 고정된 수용 체 상호의 표면 농도. 흡착된 수용 체 분자의 전체 숫자 이외에 그들의 활동 상태가 적정 분석에 대 한 또 다른 중요 한 매개 변수입니다. 만 움직일 수 수용 체 ligand 바인딩 활동 유지, 적정 분석 결과 대 한 관련 되 고 결국 직접 확인할 수 없는 적정 분석 결과의 활성 수용 체 Rt 의 총 농도에 기여.
플라스틱 표면에 고정된 수용 체에 포함 되지 않습니다이 사이트는 ligand 같은 다른 단백질을 흡착 하는 경향이 있다. 같은 플라스틱 표면 사이트 리간드의 물리적 흡착 수용 체 바인딩 ligand로 유사한 신호에서 아직 일반적인 방식으로 발생 합니다. 이 일반적인 신호는 단백질으로 코팅 하지 아직 소 혈 청 알 부 민 (BSA)와 차단 될 것입니다 결정 접시의 플라스틱 표면 사이트를 줄이기 위해. 그러나, 일부 수용 체 ligand 적정 분석에 대 한 일반적인 배경 신호를 관찰할 수 있습니다. 그런 다음, 다른 차단 에이전트 0.04% 또는 0.2% 젤라틴의 솔루션 등 트윈 20는 것이 좋습니다.
수용 체에 바인딩을, 후 무료 ligand 두 세척 단계에 의해 제거 됩니다. 바운드 ligand 수용 체, 결정 잘의 플라스틱 표면에 움직일 이며 선택적으로 화학 기정에 의해 강화 된 남아 있습니다. 후속 공유 교차 결합의 바인딩된 ligand와도 함께 고정된 수용 체에 대 한 버퍼 물질 트리 ligand 바인딩에 어떤 변화 없이 HEPES에 대 한 대체 됩니다. HEPES, 트리 스, 달리도 비활성화 하지 않습니다. 도와 공유 교차 결합 그것의 수용 체 바인딩된 ligand 해결 이후 세척 및 인큐베이션 단계 동안 그것의 분리를 방지 한다. 따라서, 수용 체 ligand 상호 작용 화학적으로 고정 하 고 영장 적정 곡선을 세척 및 외피의 후속 단계에 의해 영향을 받지 않습니다. 그러나, 글 고정은 ligand와 같은 방식으로 그들의 상호 작용의 감소 또는 폐지는 수용 체에 화학적으로 수정할 수 있습니다. 또한,는 리간드 내에서 epitopes의 단일 클론 항 체 바인딩된 ligand 척도를 사용 하는 경우에 특히 탐지 항 체 바인딩 선호도 변경할 수 있습니다. 비록 어느 쪽도 정착의 이러한 부작용의 발생이 적정 ELISA에서에서,도로 시험의 감도 적정 실험 전에 모든 수용 체 ligand 상호 작용에 대 한 테스트 되어야 한다. 고정, 후 초과 트리 스 포함 된 버퍼와 3 개의 세척 단계에서 제거 됩니다. 트리 스 nonspecifically 후속 단계에서 항 체를 검출 반응 수 있는 나머지 알데하이드 그룹은.
바인딩된 ligand의 양 광도 ELISA 신호 미를 제공 하는 효소 연결 된 항 체와 계량 이 추가 총 ligand 농도 Lt 대 플롯은 각 잘 하. 쉽게 인수에 불구 하 고 적정 곡선 쌍곡선 함수 바인딩 곡선 달리 아니다. 또한, 그것 되었습니다 분명 적정 곡선에서 분리 상수 K를 계산 하는 방법. 시선 인수 적정 곡선을 선형화 하는 알고리즘을 독립적으로 보고 되었습니다 하지 Stockell8 및9에 있는 Heyn와 Weischet 의해, 하지만 그들은 최대 신호 추정의 불확실성으로 인해 미흡 값은 채도 수익률 추가 ligand의 높은 농도에 접근 한다.
여기, ELISA 적정 및 비 선형 회귀 알고리즘 기술 적정 곡선에서 수용 체 ligand 상호 작용에 대 한 분리 상수 K를 파생 된다. 이 프로토콜은 뱀 독 파생 억제제와 integrin α2β1의 콜라겐 바인딩 A 도메인의 상호 작용에 대 한 궁 행. Integrins는 세포 접착 분자, 주변 기질 또는 기본 지하실 멤브레인10,11셀의 앵커리지 중재. 또한, integrins 모집 추가 신호 분자 및 새로운 휴대 organelles, 세포-매트릭스 상호 작용12,13, 에 adhesomes를 형성 하 여 세포와 세포 외 매트릭스 사이 중요 한 신호 전달 14. 콜라겐, α2β1 integrin의 ligand의 가장 풍부한 단백질 이며 결합 조직15의 중요 한 비 계 구성 요소. Α2β1 integrin과 콜라겐 사이 상호 작용은 integrin α2 소 단위의 A 도메인에 의해 중재 됩니다. Integrin α2A-도메인 포함 divalent 양이온, 콜라겐 바인딩 필요 하 고 그것의 구조를 안정화 합니다. 야생-타입 폼으로 있는 것과 같은 표면 노출 찌 꺼 기 Y216는 글리신에 대 한 대체 했다 α2A 도메인의 돌연변이 세균 식 시스템에서 recombinantly 생산를 수 통해 그들의 올리고-그의-태그는 NiNTA와 절연 TRIS 버퍼 염 분 (TBS, 50 m m TRIS/HCl, pH 7.4, 150 mM NaCl) 포함 2 m MgCl2m16에 대 한 후속 투와 superflow 열. 그들의 농도 bicinchoninic 산 분석 결과 (BCA)로 결정 했다 그리고 그들의 순도 기존의 SDS 페이지 테스트 Coomassie 화려한 블루 R250 스테인드.
Α2β1 integrin과 콜라겐 사이 상호 작용은 뱀 독 구성 요소, 말레이 모사 (Calloselasma rhodostoma)16,17에서 rhodocetin의 바인딩에 의해 차단 됩니다. 이 적정 ELISA에에서 수용 성 리간드로 사용, rhodocetin 원유에서 정제는 앞에서 설명한16독. HEPES 버퍼링 염 분 (HBS; 10 mM HEPES/NaOH, pH 7.4, 150 mM NaCl)에 용 해 하 고-20 ° c.에 냉동 저장 그것의 농도 BCA에 의해 결정 되었다 고 그 순도 SDS 페이지에 의해 입증 되었다. 길 항 제로 rhodocetin 뿐만 아니라 콜라겐은 integrin에 바인딩 차단 α2β1 A-도메인, 하지만 또한 그로 인하여 어떤 세포 또는 혈소판18로 콜라겐에서 신호 방지 integrin의 비활성 형태를 안정 시킨다. 그것은 그것의 수용 체 표적으로 rhodocetin의 분리 상수를 결정 하 고 따라서 그것의 분자 메커니즘 및 제약 잠재적인 예를 들어, 지원을 에이전트로 해명에 생물 의학 중요성의. 이 위해, 그것의 평가 포함 하 여 설명 하는 ELISA 적정을 1:1 상호 작용 산출할와 거의 모든 수용 체 ligand 상호 작용에 적용 됩니다.

<table><tbody><tr><td>TRIS</td><td>neoFrox</td><td>1125KG001</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H4034</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Applichem</td><td>1,316,591,214</td><td></td></tr><tr><td>MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Merck</td><td>172571</td><td></td></tr><tr><td>integrin a2A, wild-type and mutant, recombinant</td><td></td><td>isolated in author&#039;s lab</td><td></td></tr><tr><td>NiNTA superflow column&amp;nbsp;</td><td>Qiagen, Germany</td><td>30821</td><td></td></tr><tr><td>Coomassie-Brilliant Blue R250</td><td>Serva</td><td>35050</td><td></td></tr><tr><td>bicinchoninic acid assay (BCA), protein concentration determination kit</td><td>Fisher Scientific</td><td>23225</td><td></td></tr><tr><td>bovine serum albumine (BSA), fraction V</td><td>Applichem</td><td>A1391</td><td></td></tr><tr><td>25 % solution of glutaraldehyde</td><td>Merck</td><td>354400</td><td></td></tr><tr><td>anti-rabbit immunglobulin-antibodies from goat, conjugated with alkaline phosphatase</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9919</td><td></td></tr><tr><td>Glycine</td><td>Applichem</td><td>A1377</td><td></td></tr><tr><td>Zn(II)-acetate</td><td>Applichem</td><td>A4324</td><td></td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Applichem</td><td>A1551</td><td></td></tr><tr><td>Alkaline phosphatase substrate tablet (5 mg)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S0942</td><td></td></tr><tr><td>Costar half-area microtiter plate</td><td>Thermo Scientific</td><td>Corning 3690</td><td></td></tr><tr><td>micro reaction tubes</td><td>Eppendorf</td><td>30120086</td><td></td></tr><tr><td>Microplate ELISA reader</td><td>BioTek</td><td>Synergy HT</td><td></td></tr></tbody></table>

titration elisa as a method to determine the dissociation constant of receptor ligand interaction

분리 상수 바인딩 평형에 두 업체 간의 상호 작용을 설명 하 고 그들의 선호도의 측정 이다. 그것을 비교할 다른 ligands, 예를 들면, 경쟁 저 해제, 단백질 isoforms 및 돌연변이, 바인딩 파트너에 게 그들의 바인딩 강도 대 한 중요 한 매개 변수입니다. 분리 상수 플로팅 바인딩 곡선으로 바인딩된 대 무료 ligand의 농도 의해 결정 됩니다. 반면, 적정 곡선, 바인딩된 ligand의 농도에 비례 하는 신호 추가 ligand의 총 농도 대 한 플롯은 훨씬 쉽게 기록할 수 있습니다. 시선 및 효소 연결 된 immunosorbent 분석 결과 (ELISA)에 의해 신호를 감지할 수 있습니다. 이것은 뱀 독에서 파생 된 rhodocetin α2β1 integrin의 고정된 대상 도메인에 바인딩을 측정 ELISA 적정에 대 한 프로토콜에서 궁 행. 적정 ELISAs 다목적 널리 사용 됩니다. 두 단백질은, 순수 하 고 그들의 농도 알려진 고정된 수용 체와 녹는 ligand 상호 작용 단백질의 어떤 쌍 든 지를 사용할 수 있습니다. 지금까지 어려움은 적정 곡선에서 분리 상수 결정 되었습니다. 이 연구에서는 적정 곡선을 기본 수학 함수 소개 된다. 채도 수확량의 어떤 오류가 그래픽 평가 없이이 알고리즘 아닌-선형 회귀를 통해 수학 평가 의해 직접 원시 데이터 (추가 ligand의 다른 농도에서 농도 신호)의 처리를 허용 한다. 따라서, 여러 적정 곡선을 동시에 기록 하 고 분리 상수 및 바인딩-활성화 수용 체의 농도 그들의 사이에서 특성 매개 변수 집합으로 변형 수 그리고 그들은 통계적으로 평가 될 수 있다. 이 알고리즘와 결합 하면, 적정 ELISAs 분리 상수를 직접 제시의 이점을 얻을. 따라서, 그들은 미래에 보다 효율적으로 사용할 수 있습니다.

후에 ELISA 개발 되었습니다, 변환 된 알칼리 성 인산 가수분해 효소 기질, 파라-nitrophenolate의 노란 색, 바인딩된 rhodocetin ligand의 금액에서 추가 된 rhodocetin의 농도 감소와 감소 열 1 ~ 11 (그림 1). 무색 열 12에에서 rhodocetin 무료 우물 우물 낮은 배경 신호를 표시합니다.
405에서 광도 정량화 nm 제공 분석 소프트웨어 및 비 선형 회귀와 방정식 9사용 하 여 직접 먹이 수 있습니다, 각 적정 행의 원시 데이터에 근접 하는 신호 S (OD 같음 계산 데이터는 405nm)의 총 농도의 기능 추가 rhodocetin 리간드 Lt (그림 2). 4 적정 곡선 각 수용 체 양식 (야생 형 및 돌연변이)에 대 한 높은 재현성 있고 거의 서로 superpose. 이 낮은 내부 그룹 편차 달리 적정 곡선의 2 개 그룹 서로 명확 하 게 구분 됩니다. Rhodocetin ligand의 높은 농도 야생-타입 형태의 것 들을 비슷한 값의 신호를 얻기 위해 돌연변이 α2A 도메인에 바인딩 필요 합니다. 적정 곡선의 오른쪽이 시프트 돌연변이 리간드에 리간드에 대 한 선호도 감소는 보여 줍니다. 따라서, α2A 도메인으로 도입 하는 돌연변이 integrin 도메인18의 rhodocetin 바인딩 사이트의 일부 이므로 rhodocetin 바인딩을 손상 한다.
적정 곡선 5 특성 매개 변수에 의해 기술 될 수 있다: (i) 분리 상수 K, (ii)의 농도 움직일, 생물학으로 활동적인 수용 체 Rt, (iii) 최대 및 (iv) 최소 신호 (최대 S 및 S분), (v 뿐만 아니라 ) B. 배경 신호의 기울기 이러한 매개 변수 중 분리 상수 K 적정 곡선의 생물 학적 해석에 대 한 중요 하 고 가장 적절 한입니다. 공화국에 대 한 값을 제공 하는 모든 적정 곡선 따라서, 단일 하 고 또한 그룹화 된 적정 곡선 통계적으로 서로 비교할 수 있습니다. 4 적정 곡선 야생 형 및 돌연변이 α2A 도메인에 대 한 통계 분석은 그림 3에 표시 됩니다. 야생-타입 α2A 도메인을 rhodocetin의 바인딩에 대 한 선호도 상수는 5.80 ± 0.15 nM, rhodocetin는 9.68 ± 0.18 nM의 상당히 낮은 선호도와 수용 하는 돌연변이 체에 바인딩합니다 (p < 0.0001).
따라서,이 수학 평가 함께 ELISA 적정 ligand에 바인딩 수용 체 및 돌연변이 또는 화학적 수정 된 파생 상품의 신속 하 고 통계적으로 소리 평가 수 있습니다. 따라서, 적정 ELISA와 평가 알고리즘 구조-기능 관계를 분석 하는 귀중 한 도구는.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57334/57334fig1.jpg"> 그림 1: ELISA 적정에 대 한 결정 플레이트의 대표 레이아웃. 각 행 한 적정 곡선에 대 한 데이터를 제공합니다. 비교 하려면 rhodocetin (RC) ligand의 바인딩을, 야생 형 (A D 행) 또는 α2A 도메인의 돌연변이 형태 (행 E-H)는 4 개의 행 각 (quadruplet 결정)의 우물에 움직일 수 있습니다. 가로 점선이 적정 곡선의 두 그룹을 구분합니다. Rhodocetin ligand의 농도 감소 열 1 ~ 11에서에서 열 12, 세로 도트 라인의 오른쪽에 표시 된의 우물 하지 어떤 rhodocetin를 포함 하 고 배경 컨트롤을 나타내는 반면. 접시는 바운드 ligand ELISA는 알칼리 성 인산 가수분해 효소 기질 노란색 파라nitrophenolate 변환에 의해 계량 후 표시 됩니다. 데이터는 1 중 3 반복 실험에서 표시 됩니다. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57334/57334fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57334/57334fig2.jpg"> 그림 2: 대표 적정 곡선. 넣는의 원시 데이터 움직일 야생-타입 고 근접된 적정 곡선 (라인)로 서 수용 성 리간드 (기호)로 rhodocetin integrin α2A 도메인의 돌연변이 형태는 세미 로그 플롯에 표시 됩니다. 야생-타입 (오픈 기호)를 움직일 수 고 (채워진된 기호) α2A-수용 체 돌연변이 quadruplet 결정 (원형, 위쪽 및 아래쪽 삼각형, 사각형의 4 적정 행 각에 대 한)의 원시 데이터 표시 됩니다. 계산 된 적정 곡선 라인으로 표시 됩니다 (고체, 짧은 파선, 점선, 체인 점선) 야생-타입 (검은 선)와 수용 체의 돌연변이 (회색 선) 형태. 4 적정 곡선 (야생 유형 및 돌연변이 체 수용 체) 두 그룹의 각 superpose, 반면 적정 곡선 명확 하 게 두 그룹 사이 다. 돌연변이 α2A 도메인의 titrations 곡선 높은 rhodocetin 농도 rhodocetin 낮은 선호도 mutated 수용 체에 바인딩를 나타내는 이동 됩니다. 데이터는 1 중 3 반복 실험에서 표시 됩니다. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57334/57334fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57334/57334fig3.jpg"> 그림 3: 분리 상수 K의 통계 비교 적정 곡선에서 파생. 그림 2 에서 8 적정 곡선의 dissociations 상수는 플롯 하 고 α2A 도메인의 야생 형 및 돌연변이 형태에 대 한 그룹화. 개별 값, 그룹 의미, 및 표준 편차 각각에 포인트, 검은 점선, 그리고 회색 오차 막대 표시 됩니다. 각 그룹과 그룹 사이 뚜렷한 차이 내의 작은 분산 상당한 차이 보여 의미 (p < 0.0001) 야생 유형 및 돌연변이 체 수용 체에 ligand의 선호도에서. 양측 Student´s t-테스트 비교를 위해 사용 되었다. 데이터는 1 중 3 반복 실험에서 표시 됩니다. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57334/57334fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

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Titration ELISA as a Method to Determine the Dissociation Constant of Receptor Ligand Interaction

자세한 프로토콜 ELISA 적정 수행을 설명 합니다. 또한, 새로운 알고리즘 적정 ELISAs를 평가 하 고 결정 플레이트 움직일 수용 체 성 ligand의 바인딩의 분리 상수를 제공 됩니다.

적정 수용 체 Ligand 상호 작용의 분리 상수를 결정 하는 방법으로 ELISA

The dissociation constant describes the interaction between two partners in the binding equilibrium and is a measure of their affinity. It is a crucial ...

titration-elisa-as-method-to-determine-dissociation-constant-receptor

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Biochemistry

19.7K 조회수.  University of Münster. 자세한 프로토콜 ELISA 적정 수행을 설명 합니다. 또한, 새로운 알고리즘 적정 ELISAs를 평가 하 고 결정 플레이트 움직일 수용 체 성 ligand의 바인딩의 분리 상수를 제공 됩니다.

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Bio-layer Interferometry for Measuring Kinetics of Protein-protein Interactions and Allosteric Ligand Effects

We describe the use of Bio-layer Interferometry to study inhibitory interactions of subunit &#949;&#160;with the catalytic complex of Escherichia coli&#160;ATP synthase. Bacterial F-type ATP synthase is the target of a new, FDA-approved antibiotic to combat drug-resistant tuberculosis. Understanding bacteria-specific auto-inhibition of ATP synthase by the C-terminal domain of subunit &#949;&#160;could provide a new means to target the enzyme for discovery of antibacterial drugs. The C-terminal domain of &#949;&#160;undergoes a dramatic conformational change when the enzyme transitions between the active and inactive states, and catalytic-site ligands can influence which of &#949;&#39;s conformations is predominant. The assay measures kinetics of &#949;&#39;s binding/dissociation with the catalytic complex, and indirectly measures the shift of enzyme-bound &#949;&#160;to and from the apparently nondissociable inhibitory conformation. The Bio-layer Interferometry signal is not overly sensitive to solution composition, so it can also be used to monitor allosteric effects of catalytic-site ligands on &#949;&#39;s conformational changes.

The protocols here describe kinetic assays of protein-protein interactions with Bio-layer Interferometry. F-type ATP synthase, which is involved in cellular energy metabolism, can be inhibited by its &#949; subunit in bacteria. We have adapted Bio-layer Interferometry to study interactions of the catalytic complex with &#949;&#8217;s inhibitory C-terminal domain.

단백질 - 단백질 상호 작용 및 알로 스테 릭 리간드 효과의 속도론을 측정하는 바이오 층 간섭

We describe the use of Bio-layer Interferometry to study inhibitory interactions of subunit &#949;&#160;with the catalytic complex of Escherichia ...

연구

화학

Measuring G-protein-coupled Receptor Signaling via Radio-labeled GTP Binding

G-Protein-Coupled Receptors (GPCRs) are a large family of transmembrane receptors that play critical roles in normal cellular physiology and constitute a major pharmacological target for multiple indications, including analgesia, blood pressure regulation, and the treatment of psychiatric disease. Upon ligand binding, GPCRs catalyze the activation of intracellular G-proteins by stimulating the incorporation of guanosine triphosphate (GTP). Activated G-proteins then stimulate signaling pathways that elicit cellular responses. GPCR signaling can be monitored by measuring the incorporation of a radiolabeled and non-hydrolyzable form of GTP, [35S]guanosine-5&#39;-O-(3-thio)triphosphate ([35S]GTP&#947;S), into G-proteins. Unlike other methods that assess more downstream signaling processes, [35S]GTP&#947;S binding measures a proximal event in GPCR signaling and, importantly, can distinguish agonists, antagonists, and inverse agonists. The present protocol outlines a sensitive and specific method for studying GPCR signaling using crude membrane preparations of an archetypal GPCR, the &#181;-opioid receptor (MOR1). Although alternative approaches to fractionate cells and tissues exist, many are cost-prohibitive, tedious, and/or require non-standard laboratory equipment. The present method provides a simple procedure that enriches functional crude membranes. After isolating MOR1, various pharmacological properties of its agonist, [D-Ala, N-MePhe, Gly-ol]-enkephalin (DAMGO), and antagonist, naloxone, were determined.

Guanosine triphosphate (GTP) binding is one of the earliest events in G-Protein-Coupled Receptor (GPCR) activation. This protocol describes how to pharmacologically characterize specific GPCR-ligand interactions by monitoring the binding of the radio-labeled GTP analog, [35S]guanosine-5&#39;-O-(3-thio)triphosphate ([35S]GTP&#947;S), in response to a ligand of interest.

무선 표지 된 GTP 결합을 통한 G- 단백질 결합 수용체 신호 측정

G-Protein-Coupled Receptors (GPCRs) are a large family of transmembrane receptors that play critical roles in normal cellular physiology and constitute a ...

생화학

An ELISA Based Binding and Competition Method to Rapidly Determine Ligand-receptor Interactions

A comprehensive understanding of signaling pathways requires detailed knowledge regarding ligand-receptor interaction. This article describes two fast and reliable point-by-point protocols of enzyme-linked immunosorbent assays (ELISAs) for the investigation of ligand-receptor interactions: the direct ligand-receptor interaction assay (LRA) and the competition LRA. As a case study, the ELISA based analysis of the interaction between different lambda interferons (IFNLs) and the alpha subunit of their receptor (IL28RA) is presented: the direct LRA is used for the determination of dissociation constants (KD values) between receptor and IFN ligands, and the competition LRA for the determination of the inhibitory capacity of an oligopeptide, which was designed to compete with the IFNLs at their receptor binding site. Analytical steps to estimate KD and half maximal inhibitory concentration (IC50) values are described. Finally, the discussion highlights advantages and disadvantages of the presented method and how the results enable a better molecular understanding of ligand-receptor interactions.

The presented protocols describe two enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) based techniques for the rapid investigation of ligand-receptor interactions: The first assay allows the determination of dissociation constant between ligand and receptor. The second assay enables a rapid screening of blocking peptides for ligand-receptor interactions.

ELISA 기반 바인딩과 경쟁 방법은 신속 리간드 - 수용체 상호 작용을 확인하는 방법

A comprehensive understanding of signaling pathways requires detailed knowledge regarding ligand-receptor interaction. This article describes two fast and ...

Optimized Methods for the Surface Immobilization of Collagens and Collagen Binding Assays

Fibrosis occurs in various tissues as a reparative response to injury or damage. If excessive, however, fibrosis can lead to tissue scarring and organ failure, which is associated with high morbidity and mortality. Collagen is a key driver of fibrosis, with type I and type III collagen being the primary types involved in many fibrotic diseases. Unlike conventional protocols used to immobilize other proteins (e.g., elastin, albumin, fibronectin, etc.), comprehensive protocols to reproducibly immobilize different types of collagens in order to produce stable coatings are not readily available. Immobilizing collagen is surprisingly challenging because multiple experimental conditions may affect the efficiency of immobilization, including the type of collagen, the pH, the temperature, and the type of microplate used. Here, a detailed protocol to reproducibly immobilize and quantify type I and III collagens resulting in&#160;stable and reproducible gels/films is provided. Furthermore, this work demonstrates how to perform, analyze, and interpret in vitro time-resolved fluorescence binding studies to investigate the interactions between collagens and candidate collagen-binding compounds (e.g., a peptide conjugated to a metal chelate carrying, for example, europium [Eu(III)]). Such an approach can be universally applied to various biomedical applications, including&#160;the field of molecular imaging to develop targeted imaging probes, drug development, cell toxicity studies, cell proliferation studies, and immunoassays.

<meta charset="utf8"></head><body>콜라겐의 표면 고정화(Surface Immobilization) 및 콜라겐 결합 분석(Collagen Binding Assay)을 위한 최적화된 방법

This work presents an optimized protocol to reproducibly immobilize and quantify type I and III collagen onto microplates, followed by an improved in vitro binding assay protocol to study collagen-compound interactions using a time-resolved fluorescence method. The subsequent step-by-step data analysis and data interpretation are provided.

콜라겐의 표면 고정화(Surface Immobilization) 및 콜라겐 결합 분석(Collagen Binding Assay)을 위한 최적화된 방법

Fibrosis occurs in various tissues as a reparative response to injury or damage. If excessive, however, fibrosis can lead to tissue scarring and organ ...

Isothermal Titration Calorimetry for Measuring Macromolecule-Ligand Affinity

Isothermal titration calorimetry (ITC) is a useful tool for understanding the complete thermodynamic picture of a binding reaction. In biological sciences, macromolecular interactions are essential in understanding the machinery of the cell. Experimental conditions, such as buffer and temperature, can be tailored to the particular binding system being studied. However, careful planning is needed since certain ligand and macromolecule concentration ranges are necessary to obtain useful data. Concentrations of the macromolecule and ligand need to be accurately determined for reliable results. Care also needs to be taken when preparing the samples as impurities can significantly affect the experiment. When ITC experiments, along with controls, are performed properly, useful binding information, such as the stoichiometry, affinity and enthalpy, are obtained. By running additional experiments under different buffer or temperature conditions, more detailed information can be obtained about the system. A protocol for the basic setup of an ITC experiment is given.

A general protocol for the use of isothermal titration calorimetry to monitor the binding thermodynamics for biological systems with moderate binding affinities is presented.

Macromolecule - 리간드 친화력을 측정하기위한 등온 적정의 열량

Isothermal titration calorimetry (ITC) is a useful tool for understanding the complete thermodynamic picture of a binding reaction.  In biological ...

생물학

Autoradiography as a Simple and Powerful Method for Visualization and Characterization of Pharmacological Targets

In vitro autoradiography aims to visualize the anatomical distribution of a protein of interest in tissue from experimental animals as well as humans. The method is based on the specific binding of a radioligand to its biological target. Therefore, frozen tissue sections are incubated with radioligand solution, and the binding to the target is subsequently localized by the detection of radioactive decay, for example, by using photosensitive film or phosphor imaging plates. Resulting digital autoradiograms display remarkable spatial resolution, which enables quantification and localization of radioligand binding in distinct anatomical structures. Moreover, quantification allows for the pharmacological characterization of ligand affinity by means of dissociation constants (Kd), inhibition constants (Ki) as well as the density of binding sites (Bmax) in selected tissues. Thus, the method provides information about both target localization and ligand selectivity. Here, the technique is exemplified with autoradiographic characterization of the high-affinity &#947;-hydroxybutyric acid (GHB) binding sites in mammalian brain tissue, with special emphasis on methodological considerations regarding the binding assay parameters, the choice of the radioligand and the detection method.

The method of autoradiography is routinely used to study binding of radioligands to tissue sections for determination of qualitative or quantitative pharmacology.

시각화 및 약리 대상의 특성에 대 한 간단 하 고 강력한 방법으로 autoradiography

In vitro autoradiography aims to visualize the anatomical distribution of a protein of interest in tissue from experimental animals as well as humans. The ...

신경과학

Determination of Protein-ligand Interactions Using Differential Scanning Fluorimetry

A wide range of methods are currently available for determining the dissociation constant between a protein and interacting small molecules. However, most of these require access to specialist equipment, and often require a degree of expertise to effectively establish reliable experiments and analyze data. Differential scanning fluorimetry (DSF) is being increasingly used as a robust method for initial screening of proteins for interacting small molecules, either for identifying physiological partners or for hit discovery. This technique has the advantage that it requires only a PCR machine suitable for quantitative PCR, and so suitable instrumentation is available in most institutions; an excellent range of protocols are already available; and there are strong precedents in the literature for multiple uses of the method. Past work has proposed several means of calculating dissociation constants from DSF data, but these are mathematically demanding. Here, we demonstrate a method for estimating dissociation constants from a moderate amount of DSF experimental data. These data can typically be collected and analyzed within a single day. We demonstrate how different models can be used to fit data collected from simple binding events, and where cooperative binding or independent binding sites are present. Finally, we present an example of data analysis in a case where standard models do not apply. These methods are illustrated with data collected on commercially available control proteins, and two proteins from our research program. Overall, our method provides a straightforward way for researchers to rapidly gain further insight into protein-ligand interactions using DSF.

Differential scanning fluorimetry is a widely used method for screening libraries of small molecules for interactions with proteins. Here, we present a straightforward method to extend these analyses to provide an estimate of the dissociation constant between a small molecule and its protein partner.

시차 주사 Fluorimetry를 사용하여 단백질 - 리간드 상호 작용의 결정

A wide range of methods are currently available for determining the dissociation constant between a protein and interacting small molecules. However, most ...

Real Time Measurements of Membrane Protein:Receptor Interactions Using Surface Plasmon Resonance (SPR)

Protein-protein interactions are pivotal to most, if not all, physiological processes, and understanding the nature of such interactions is a central step in biological research. Surface Plasmon Resonance (SPR) is a sensitive detection technique for label-free study of bio-molecular interactions in real time. In a typical SPR experiment, one component (usually a protein, termed 'ligand') is immobilized onto a sensor chip surface, while the other (the 'analyte') is free in solution and is injected over the surface. Association and dissociation of the analyte from the ligand are measured and plotted in real time on a graph called a sensogram, from which pre-equilibrium and equilibrium data is derived. Being label-free, consuming low amounts of material, and providing pre-equilibrium kinetic data, often makes SPR the method of choice when studying dynamics of protein interactions. However, one has to keep in mind that due to the method's high sensitivity, the data obtained needs to be carefully analyzed, and supported by other biochemical methods. 
SPR is particularly suitable for studying membrane proteins since it consumes small amounts of purified material, and is compatible with lipids and detergents. This protocol describes an SPR experiment characterizing the kinetic properties of the interaction between a membrane protein (an ABC transporter) and a soluble protein (the transporter's cognate substrate binding protein).

Real Time Measurements of Membrane Protein:Receptor Interactions Using Surface Plasmon Resonance SPR

Surface Plasmon Resonance (SPR) is a label-free method for detecting bio-molecular interactions in real time. Herein, a protocol for a membrane protein:receptor interaction experiment is described, while discussing the pros and cons of the technique.

막 단백질의 실시간 측정 : 수용체 상호 작용은 표면 플라즈몬 공명 (SPR)

Protein-protein interactions are pivotal to most, if not all, physiological processes, and  understanding the nature of such interactions is a central ...

Competitive Binding Assay to Identify Compounds Disrupting Receptor-Ligand Interactions

Source: Schoofs, G., et al. <a href="https://app.jove.com/v/57271">A Flow Cytometry-based Assay to Identify Compounds That Disrupt Binding of Fluorescently-labeled CXC Chemokine Ligand 12 to CXC Chemokine Receptor 4.</a> J. Vis. Exp. (2018).
In this video, we describe a flow cytometry-based competitive binding assay to detect the interactions between the CXC Chemokine Receptor 4 (CXCR4) and its fluorescently-labeled natural ligand CXC Chemokine Ligand 12 (CXCL12), in the presence of a CXCR4-targeting small molecule. Incubating CXCR4-expressing cells with lower small molecule concentrations allows CXCR4-CXCL12 binding to some extent, which progressively declines upon a gradual increase in small molecule concentrations.

수용체-리간드 상호작용을 방해하는 화합물을 식별하기 위한 경쟁력 있는 결합 분석

Source: Schoofs, G., et al. A Flow Cytometry-based Assay to Identify Compounds That Disrupt Binding of Fluorescently-labeled CXC Chemokine Ligand 12 to ...

적정 수용 체 Ligand 상호 작용의 분리 상수를 결정 하는 방법으로 ELISA

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콜라겐의 표면 고정화(Surface Immobilization) 및 콜라겐 결합 분석(Collagen Binding Assay)을 위한 최적화된 방법

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Macromolecule - 리간드 친화력을 측정하기위한 등온 적정의 열량

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시차 주사 Fluorimetry를 사용하여 단백질 - 리간드 상호 작용의 결정

막 단백질의 실시간 측정 : 수용체 상호 작용은 표면 플라즈몬 공명 (SPR)

수용체-리간드 상호작용을 방해하는 화합물을 식별하기 위한 경쟁력 있는 결합 분석