Name: key elements of photo attraction bioassay for insect studies or monitoring programs
Uploaded: 2018-07-26T12:30:00.000+00:00
Duration: 5 min 17 s
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1. 생물의 구성 요소
<ol><li>
지상파 경기장 건설
	<ol>
<li>사용 금속 소재를 깜박이 2.54 cm 길이의 스트립. 각 스트립 15.24 cm (그림 1)의 직경을 갖는 반 원형으로 벤드.</li>
		<li>각 반 원형의 끝을 연결 하 고 4 조각에서 인터체인지 셰이프를 형성 한다. 그들을 함께 개최 30 원 각의 끝에 잠금 너트와 #10 기계 나사를 연결 합니다.</li>
		<li>각 반원 경기장의 바닥에서 0.79 c m의 중간점에 구멍을 드릴 합니다. 각 반원 가운데 교 련된 구멍 5mm LED 홀더 부착</li>
		<li>반사를 줄이는 목적으로 금속 번쩍이는 커버 경기장14 걸쳐 무광택 블랙 스프레이 페인트 스프레이. 액체 텍스처를 사용 하 여 (예., Fluon) 스프레이 페인트를 통해 경기장 밖으로 등반에서 곤충을 방지 하기 위해.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
공중 경기장 건설 참고: 공중 경기장은 비슷한 크기와 치수 지상파 무대; 그러나 polyacrylic 소재 사용 되었다, (그림 2). 투명 한 플라스틱 통과 모든 빛을 허용 한다. 투명 한 플라스틱 실험 방해 반사를 방지할 수 있습니다. 투명 한 플라스틱은 또한 촬영 하는 실험을 수 있습니다.<ol>
<li>컬렉션 컨테이너 주요 경기장에 나사를 허용 하려면 각 반원의 먼 포인트 스레드. 인터체인지 셰이프 곤충 중간에 다시 보냅니다. 외부 모서리 격려 곤충 모임; 그러나, 공중 곤충 컬렉션 컵 모든 내부 모서리 및 외부 모서리 있다.</li>
		<li>공중 경기장의 컬렉션 컨테이너에 대 한 나사 상단 polymethylpentene 컨테이너 (125 mL, 64 m m 외부 직경, 74 m m 높이)를 사용 하 고 바닥 (15 m m 직경) 드릴.</li>
		<li>각 컨테이너의 바닥에 뚫린된 파이프 (직경 15 mm, 길이 60 m m) 부착.</li>
		<li>각 컨테이너의 뚜껑에 5mm LED 홀더를 연결 합니다. 각 컬렉션 케이지 뚜껑 컬렉션 연습장의 큰 구멍에 스레드.</li>
		<li>컬렉션 장의 반대 측에 작은 구멍에 경기장에서 스레드 파이프 좌석. 전체 스레드 파이프 끝 경기장 내부 벽에 맞추어지도록 컬렉션 케이지를 꽉 맞는 확인 하십시오. 참고: 스레드 파이프 테 플 론 되었다. 테 플 론 빛나는 컬렉션 케이지 보유 하는 LED의 색상. 스레드 파이프 유일한 요소는 각 컬렉션 케이지의 기지에서 회색 플라스틱 물질 때문에 경기장에서 곤충에 관하여 빛 이었다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
전자 제품 준비 참고: 거기는 Led의 다양 한 색상 (파장)은 LED를 구성 하는 데 사용 하는 화학 물질에 의존 되며 따라서 색상의 광범위 한 다양 한 가능 (표 1).<ol>
<li>모든 실험에 대 한 긍정적이 고 부정적인 리드와 표준 5mm Led를 사용 합니다. Led 파장 ± 5 nm의 그들의 범위에서 좁은 수 또는 그들의 파장 범위 ± 50 nm에 커질 수 있습니다.</li>
		<li>디스플레이 볼 수 있는 최대 원뿔 각도로 각도 정의 합니다. 이 그렇지 않으면 구멍 Led 통해 알려져 있다. 배선 하네스, PCB에 구멍 슬롯을 통해 필요한 구멍 Led를 통해 또는 부정적이 고 긍정적인 터미널에 전선을 납땜. 표면 마운트 Led 적절 한 PCB 디자인을 요구 하 고 그들을 통합 하는 땜 납.</li>
		<li>LED 전원 섭취 (LED 휘도)를 제어 하는 전자에 가변 저항을 통합 (그림 3). 빛 분석기를 사용 하 여 강도 (W/m2) 및 각 실험에 대 한 Led의 파장 (nm)를 확인 합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 경기장 준비
<ol><li>
전에 각 복제 사이, 신중 하 게 분해 하 고 청소 냄새 또는 원치 않는 attractants 제거를 따뜻한 물에 무 취, 모서리가 soap를 사용 하는 경기장. 연마 저수준 스폰지를 사용 하 여 경기장을 긁힘 방지.
	<ol>
<li>철저 하 게 경기장을 건조 하 고 시험을 위한 준비에 건조 공기를 완료 옆으로 설정. 이 개발에서 물 명소 되지 것입니다. 스크래치와 물 명소 경기장에 그 포인트에 굴절을 일으킬 수 있습니다. 왜곡 결과에 오류를 만듭니다.</li>
		<li>경기장을 처리 해야 합니다, 언제 든 지 경기장의 표면에 인간의 냄새를 소개 하지 않으려면 니트 릴 장갑을 착용 한다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>다음과 같은 환경 조건 기록: 습도, 온도, 기 압, 날짜, 시작/종료 시간, 외부 광원 및 LED 분야에서 위치. 이러한 값을 기록 하 고 모니터링 동향 그들의 실험에서 실험. 이렇게 하면 적절 한 유니폼 실험적인 복제, 전후에 복제 환경 기록.</li>
	<li>
실험의 종류 참고:이 설치는 단일 하 고 경쟁력 있는 빛 테스트 수 있습니다.<ol>
<li>테스트용 단일 빛, 한 빛 방출 단일 클로버잎에 클로버 잎의 나머지는 아무것도 그들에서 방출 하는 동안 사용 합니다.</li>
		<li>경쟁력 있는 실험에 대 한 서로와 경쟁에서 다른 특성을 가진 모든 4 개의 cloverleafs에서 빛 방출. 참고: 다른 실험 곤충의 중요성을 평가할 수 있습니다 (먹이, 굶 어, teneral, 성관계, 혈액, 등.) 및 생활사 단계. 기록 하 고 동작을 계량 행동 기록/분석 소프트웨어를 사용할 수 있습니다. 야행성 실험에 대 한 어두운 경기장 달리 기록 하는 IR에 화이트 놀 것 이다 곤충을 보려는 적외선 카메라를 사용할 수 있습니다.</li>
		<li>빛 간섭 반대 광원 사이의 모든 환경 설정의 잠재적인 효과 제어를 모든 복제 후 LED 위치를 회전 합니다.</li>
		<li>구멍에 들어가지 않는 곤충에 대 한 컬렉션의 수를 계산 하려면 적외선 Led, 적외선 카메라, 그리고 소프트웨어14를 사용 합니다. 비디오 녹화는 각 LED를 방문 하는 딱정벌레의 수 표시 됩니다. 컬렉션에는 곤충 LED LED 과거 가장자리를 따라 반대 방향으로 경기장의 센터에서 이동 하지 않으면 계산 되지 않습니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
무대 설치
	<ol>
<li>4 개의 동일한 메이슨 항아리와 받침대를 설정 하 고 그 위에 검은 린 넨 천으로 장소. 리넨 옷을 빛 경기장의 바닥 떨어져 반영 하는 것을 막기 위해 검은색 이다.</li>
		<li>이 받침대 위에 경기장의 받침판을 놓습니다. 이 베이스 플레이트 위에 경기장의 각 조각을 조립.</li>
		<li>출시 시점 주위 중앙 인터체인지 경기장에에서 배치 합니다. 중앙을 지키는 그들에 게 아무 초기 환경 실험의 센터에서 등장 하는 곤충을 수 있습니다.</li>
		<li>4 개의 컬렉션 컨테이너의 LED 홀더에 발광 다이오드 (Led)를 설치 합니다.</li>
		<li>빛을 제어 하는 전기 장비를 설정 합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 생물 검정 시작
<ol><li>
baseplate에 평행한 경기장 위에 경기장의 명확한 뚜껑을 놓습니다. 곤충은 baseplate 통해 출시 되 면 경기장 뚜껑 경기장에 이미 있어야 합니다. 이 곤충을 포함 하 고 시각적 평가 또는 비디오 녹화 (지상파 곤충) 수 있습니다.
	<ol>
<li>종 (공중 곤충)에 의해 필요한 경우 일시적으로 그들의 (출현) 연습장에서 추출 및 경기장 소개를 허용 곤충을 무력화. 곤충을 노크 수 있습니다 수행할 수 일시적으로 이산화탄소 또는 차가운 온도 (<-20 ° C midges 모기-4.0 ° c).</li>
		<li>흡 인기를 사용 하 여 원하는 섹스와 곤충의 카운트 다운 knocked 곤충에서 추출 합니다. 그런 다음, 베이스 플레이트를 통해 경기장으로 곤충을 소개. 파이프 또는 다른 포부 도구를 사용 하 여 곤충 추출. 너무 많은 처리 또는 긴 노출 생존을 줄일 것입니다.</li>
		<li>생물 검정 녹음/확인 곤충 빛에만 반응 하지 탈출 응답을 전시에 환호 하기 전에 평가 시작 합니다. 방지를 위해 탈출 응답, 제공 전자 장치에 전원을 공급 하기 전에 곤충 1 h의 새 환경 순응 시간. 곤충의 그들의 탈출 응답 새로운 환경에 배치 하는 동안 특정 파장의 빛을 향해 방향을 정합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. 종료 하 고 생물 검정 측정
참고: 각 실험 복제 기간 곤충 동작에 따라 달라 집니다 및 응답 타이밍, 일반적으로 더 긴 노출을 사용, 더 많은 응답 더 유익 하는 경향이 있다.
<ol><li>기록 환경 조건입니다.</li>
	<li>사용 하는 경우 적외선 카메라 등 녹음을 중지 합니다.</li>
	<li>컬렉션 챔버를 사용 하 여 경우: 각 복제 후 정량화에 대 한 곤충을 죽 일 냉동 고에 인터체인지 경기장을 배치. 경기장 동결 환경 플라스틱 균열을 일으킬 수 있습니다 때문에 너무 오래 냉동 실에 남아 있을 하지.</li>
	<li>곤충 동작 컬렉션 장에 곤충 응답자 계산 또는 비디오를 분석 하 여 계량. 곤충 인터체인지 경기장에 남아 있는 선택의 여지가 만든 것으로 계산 했다. 예를 들어 Culicoides 는 아무 선택7에 비해 자외선에 가장 매력을 발견 했다.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Briscoe, A. D., Chittka, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+evolution+of+color+vision+in+insects.">The evolution of color vision in insects.</a> Annu. Rev. Entomol. 46, 471-510 (2001).</li><li>Srinivasan, M. V., Chahl, J. S., Nagle, M. G., Zhang, S. W., Srinivasan, M. V., Venkatesh, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Embodying+natural+vision+into+machines.">Embodying natural vision into machines.</a> From living eyes to seeing machines. , 249-265 (1997).</li><li>Srinivasan, M., Moore, R. J. D., Thurrowgood, S., Soccol, D., Bland, D., Barth, F. G., Humphrey, J. A. C., Srinivasan, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=From+Biology+to+engineering:+insect+vision+and+applications+to+robotics.">From Biology to engineering: insect vision and applications to robotics.</a> Frontiers in sensing. , 19-39 (2012).</li><li>Allan, S. A., Day, J. F., Edman, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visual+ecology+of+biting+flies.">Visual ecology of biting flies.</a> Annu.Rev. Entomol. 32, 297-316 (1987).</li><li>Brown, A. W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Studies+of+the+responses+of+the+female+Aedes+mosquito+Part+V.+The+role+of+visual+factors.">Studies of the responses of the female Aedes mosquito Part V. The role of visual factors.</a> Bull. Entomol. Res. 44, 567-574 (1953).</li><li>Brown, A. W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Studies+on+the+responses+of+the+female+Aedes+mosquito+Part+VI.+The+attractiveness+of+coloured+cloths+and+Canadian+species.">Studies on the responses of the female Aedes mosquito Part VI. The attractiveness of coloured cloths and Canadian species.</a> Bull. Entomol. Res. 45, 67-78 (1954).</li><li>Snyder, D., Cernicchiaro, N., Cohnstaedt, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sugar-feeding+status+alters+biting+midge+photoattraction.">Sugar-feeding status alters biting midge photoattraction.</a> Med. Vet. Entomol. 30, 31-38 (2016).</li><li>Menzel, R., Shmida, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+ecology+of+flower+colours+and+the+natural+colour+vision+of+insect+pollinators:+The+Israeli+flora+as+a+study+case.">The ecology of flower colours and the natural colour vision of insect pollinators: The Israeli flora as a study case.</a> Biological Reviews. 68, 81-120 (1993).</li><li>Walker, W. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Responses+of+selected+thysanoptera+to+colored+surfaces.">Responses of selected thysanoptera to colored surfaces.</a> Environ. Entomol. 3, 295-304 (1974).</li><li>Lelito, J. P., Fraser, I., Mastro, V. C., Tumlinson, J. H., Baker, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Novel+visual-cue-based+stickytraps+for+monitoring+of+emerald+ash+borers,+Agrilus+planipennis+(Col.,+Buprestidae).">Novel visual-cue-based stickytraps for monitoring of emerald ash borers, Agrilus planipennis (Col., Buprestidae).</a> J. Appl. Entomol. 132, 668-674 (2008).</li><li>Diclaro, J. W., Cohnstaedt, L. W., Pereira, R. M., Allan, S. A., Koehler, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behavioral+and+Physiological+Response+of+Musca+domestica+to+Colored+Visual+Targets.">Behavioral and Physiological Response of Musca domestica to Colored Visual Targets.</a> J. Med. Entomol. 49 (1), 94D100 (2012).</li><li>Steverding, D., Troscianko, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+the+role+of+blue+shadows+in+the+visual+behaviour+of+tsetse+flies.">On the role of blue shadows in the visual behaviour of tsetse flies.</a> Proc. R. Soc. Lond. B. 271, 16-17 (2004).</li><li>Cohnstaedt, L. W., Gillen, J. I., Munstermann, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Light-emitting+diode+technology+improves+insect+trapping.">Light-emitting diode technology improves insect trapping.</a> J. Am. Mosq. Control Assoc. 24, 331-334 (2008).</li><li>Duehl, A. J., Cohnstaedt, L. W., Arbogast, R. T., Teal, P. E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluating+light+attraction+to+increase+trap+efficiency+for+Tribolium+castaneum+(Coleoptera:+Tenebrionidae).">Evaluating light attraction to increase trap efficiency for Tribolium castaneum (Coleoptera: Tenebrionidae).</a> J. Economic Entomol. 104, 1430-1435 (2011).</li><li>Schmid, R. B., Snyder, D., Cohnstaedt, L. W., McCornack, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hessian+Fly+(Diptera:+Cecidomyiidae)+Attraction+to+Different+Wavelengths+and+Intensities+of+Light-EmittingDiodes+in+the+Laboratory.">Hessian Fly (Diptera: Cecidomyiidae) Attraction to Different Wavelengths and Intensities of Light-EmittingDiodes in the Laboratory.</a> Environ. Entomol. 46 (4), 895-900 (2017).</li><li>Cohnstaedt, L. W., Snyder, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Design+features+of+a+proposed+insecticidal+sugar+trap+for+biting+midges.">Design features of a proposed insecticidal sugar trap for biting midges.</a> Vet. Ital. 52 (3-4), 265-269 (2016).</li></ol>

사진 매력 생물 검정은 최적의 매력적인 색상을 결정 하 고 이러한 색상의 현장 실험에 대 한 옵션을 최소화 하는 중요 한 도구입니다. 그러나, 여러 가지 요인 특정 곤충 등 생물 검정을 최적화할 때 고려 되어야 한다: 단일 빛 vs. 경쟁 조명 실험, 밝기, 최적의 스펙트럼 범위, 주변 광 간섭, 곤충, 및 가능한 응답을 제한할 수 있습니다 자연 행동의 주.
대부분의 곤충은 ?...

거의 모든 곤충학 감시 후각이 또는 시각적 attractants 고 종종 둘 다에 따라 달라 집니다. 휘발성 후 각 attractants 큰 매력적인 지역에서 발생 하는 환경에 걸쳐 분산 될 수 있습니다. 그러나, 시각적 attractants 해결 이미지1,2,3무척 추 동물 화합물 눈 때문에 더 제한 된 범위를 할 수 있습니다. 따라서, 시각적 attractants의 매력과 트랩 대상 곤충의 자연적인 행동의 활용 하도록 설계 된을 극대화 하기 위해 곤충을 낙관 되어야 한다.
시각적 매력 태양 또는; 개체의 표면에 의해 반영 되거나 흡수 되는 빛의 다른 소스에서 파장에 따라 유기 체 색이 흡수/파장의 굴절을 볼. 곤충 비전, 녹색, 파란색과 자외선 (UV) 파장1을 포함 하도록 발견 되었습니다. 곤충 그들의 비전을 사용 하 여 동료, 음식, 대피 소4를 찾는 데 도움이. 곤충은 시각적으로 개체의 크기, 색상, 모양, 움직임 및 대조5,6을 정의할 수 있습니다. Nocturnally 활성 곤충은 일주 곤충 색상 및 이미지, 하루 동안 큰 광자 가용성 때문에 대비 외에 해결할 수 있는 반면 다른 대비와 강도4, 빛을 일반적으로 매력입니다. 모니터링 트랩 매력을 최적화 하 고7캡처를 그들의 이점에 곤충의 시각적 신호를 사용 합니다.
사진-매력을 평가 하는 가장 일반적인 방법은 곤충 운동의 꽃8 등 다양 한 컬러 도형 또는 개체 (예: 스티커 카드9,10)으로 관찰 했다. 시각적인 생물 검정 식민지 곤충을 사용 하 여 파장 및 강도, 현장 실험의 수를 감소 시키는 최적의 범위를 식별할 수 있습니다. "양면 라이트 터널" 등 시각적 생물 검정 파리11테스트를 위해 설계 되었습니다. 두 개의 양면된 빛 터널에 대 한 문제는 그들이 수집 되지 않는 곤충에 대 한 계정을 하지 않습니다. 대부분의 곤충 내부 모서리 및 경기장에 있는 가장자리를 따라 붙어 얻을 것 이다. 또한 두 색상은 한 번에 테스트할 수 있습니다. Steverding 및 Troscianko 메서드를 포함 하는 다른 분석 실험 (2004)12, 밝은 색상의 광범위 한 밴드 (± 50 nm)에 체체파리 비행 매력을 좁혀. 발광 다이오드 (Led) 내보낸된 빛1,,1314의 파장을 최적화 하 여 곤충의 매력을 향상 시키기 위해 함정에 통합 되었습니다. 이 트랩의 시각적 매력을 최적화 하거나 모니터링 장치는 곤충을 유인 하기 위해 곤충의 타고 난 동작을 사용 하 여 곤충 수집 효율을 향상 됩니다. 이 방법에서는, 검정 결과 기존 트래핑 기술을 최적화 하는 데 사용 됩니다. "지구 절지동물 함정" 빨간 밀가루 딱정벌레 감시 (미국 특허 # US8276314B2)에 대 한 업계 표준 돔 형 트랩을 개선) 및 "방법 및 구성에 대 한 향상 된 빛 함정" 발광 다이오드 공중으로의 통합 곤충 함정 (미국 특허 # US2009/0025275A1). 2 개의 특허 크게 곤충 트랩을 개선 하기 위해 생물 검정 결과 사용 하 여 최적화 된 LED 기술을 사용 합니다.
이 연구는 사진 매력 생물 분야와 경쟁 또는 단일 매력적인 색상으로 파장 범위 곤충 응답을 평가 하는 조사 수 있는 메서드를 설명 합니다. 장비 및 실험 수정 야행성, 일주, 지구, 및 공중 곤충에 대 한 표시 됩니다.

<table><tbody><tr><td>metal flashing material</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>#10 stainless steel machine screw</td><td></td><td>Stock</td><td></td></tr><tr><td>#10 stainless steel locking nut</td><td></td><td>Stock</td><td></td></tr><tr><td>5 mm LED holder</td><td>Radio Shack Corp</td><td>276-080</td><td></td></tr><tr><td>matte black spray paint</td><td></td><td>Stock</td><td></td></tr><tr><td>Fluon</td><td></td><td>Stock</td><td></td></tr><tr><td>molded polyacrylic</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>screw top Nalgene</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>Nunc polymethylpentene</td><td>125 mL, 64 mm outer diameter, 74 mm height</td></tr><tr><td>Threaded Teflon pipes</td><td></td><td>Stock</td><td>15 mm diameter, 60 mm length</td></tr><tr><td>StellarNet light spectrometer</td><td>Stellar Net, Inc</td><td>BLACK Comet C-SR-25</td><td></td></tr><tr><td>LED infrared light source</td><td>Tracksys LTD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>infrared video camera</td><td>Panasonic Corp</td><td>WV-BP330 Panasonic CCTV camera</td><td></td></tr><tr><td>MEDIACRUISE software</td><td>Canopus Corp</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

key elements of photo attraction bioassay for insect studies or monitoring programs

최적화 된 비주얼 attractants 인구 제어 또는 모니터링 트랩에 곤충을 유인 하는 수단으로 대상 곤충의 타고 난 동작 (긍정적인 사진-택시)를 사용 하 여 곤충 트래핑 효율성을 증가할 것 이다. 라이트 발광 다이오드 (Led)는 특정 파장 (색상), 농도, 및 대역폭을 모두 대상 곤충을 사용자 지정할 수 있습니다 사용자 정의 조명 옵션을 만들었습니다. 사진-매력 행동 생물 검정 특정 생활사 단계 또는 행동 (짝짓기, 수 유, 또는 대피 소를 찾는) 곤충 종에 대 한 매력적인 색상을 최적화 하기 위해 Led를 사용할 수 있습니다. 연구원은 다음 분야에서 생물 검정 결과 확인 하 고 시각적 attractants의 제한 된 매력적인 거리를 이해 해야 합니다.
인터체인지 검정 경기장 또한 탈출 같은 자연 곤충 동작의 범위를 평가 하 고 먹이 응답 하는 동안 사진 매력을 평가 하는 유연한 방법입니다. 경기장은 일주, 그리고 야행성 곤충 뿐 아니라 지상파 또는 공중 곤충 실험에 대 한 사용할 수 있습니다. 아레나와 데이터 수집 기법 찍고, 빛, 접촉을 계산 또는 그들은 빛으로 매력 육체적으로 곤충을 수집. (회장) 단색 또는 여러 (경쟁) 색상 없음 선택 하 고는 경기장 곤충에 대 한 분석 결과 계정을 수 있습니다. 인터체인지 디자인 하면 곤충 그들은 볼 수 있는 무대의 중심으로 돌아가려면 강한 thigmotaxis와 모든 옵션 경쟁력 있는 led 테스트. 여기에 제시 된 인터체인지 아레나 모기, 침대 버그, Hessian 비행, 집 파리, 물리 midges, 빨간 밀가루 딱정벌레, 및 psocids와 함께 사용 되었습니다. 생물 검정은 정확한 개발 하는 데 사용 됩니다 및 가이드 개발 및 최적화 벌레 트랩의 효과가 곤충 트랩 해충 인구 변동 질병 벡터 위험 평가, 침략 적인 종의 소개에 대 한 모니터링 및/또는 사용 하는 데 사용 인구 억제입니다.

지상파 무대 해충 모니터링 트랩 빨간 밀가루 딱정벌레14 에 대 한 개선 하는 데 사용 되었습니다 하 고 독일인에 대 한 공중 경기장 파리15 및 물리 midges7. 인터체인지 경기장 유사 했다, 비록 각 곤충 종에 대 한 조건 달랐다 고 크롤링 하거나 비행 수 있는 야행성 또는 일주 곤충의 평가 수용. 더 중요 한 것은 이러한 실...

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Key Elements of Photo Attraction Bioassay for Insect Studies or Monitoring Programs

곤충 연구 또는 모니터링 프로그램에 대 한 사진 매력 생물의 핵심 요소

사진 매력 검정 경기장; 곤충 매력을 극대화 하기 위해 최적의 빛 색상을 결정 하는 데 사용 됩니다. 그러나 생물 검정 및 메서드는 특정 곤충 행동 및 서식 지. 사용자 지정 가능한 장비 및 수정 야행성 일주 및 지상 또는 공중 곤충에 대 한 설명 합니다.

Optimized visual attractants will increase insect trapping efficiency by using the target insect&#39;s innate behaviors (positive photo-taxis) as a means ...

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Research

JoVE Journal

Behavior

7.6K 조회수.  Agricultural Research Service, United States Department of Agriculture. 사진 매력 검정 경기장; 곤충 매력을 극대화 하기 위해 최적의 빛 색상을 결정 하는 데 사용 됩니다. 그러나 생물 검정 및 메서드는 특정 곤충 행동 및 서식 지. 사용자 지정 가능한 장비 및 수정 야행성 일주 및 지상 또는 공중 곤충에 대 한 설명 합니다.

비디오: Key Elements of Photo Attraction Bioassay for Insect Studies or Monitoring Programs

A Wind Tunnel for Odor Mediated Insect Behavioural Assays

Olfaction is the most important sensory mechanism by which many insects interact with their environment and a wind tunnel is an excellent tool to study insect chemical ecology. Insects can locate point sources in a three-dimensional environment through the sensory interaction and sophisticated behavior. The quantification of this behavior is a key element in the development of new tools for pest control and decision support. A wind tunnel with a suitable flight section with laminar air flow, visual cues for in-flight feedback and a variety of options for the application of odors can be used to measure complex behaviour which subsequently may allow the identification of attractive or repellent odors, insect flight characteristics, visual-odor interactions and interactions between attractants and odors lingering as background odors in the environment. A wind tunnel holds the advantage of studying the odor mediated behavioural repertoire of an insect in a laboratory setting. Behavioural measures in a controlled setting provide the link between the insect physiology and field application. A wind tunnel must be a flexible tool and should easily support the changes to setup and hardware to fit different research questions. The major disadvantage to the wind tunnel setup described here, is the clean odor background which necessitates special attention when developing a synthetic volatile blend for field application.

Here, we describe the construction and use of a wind tunnel for odor mediated behavioural assays with insects. The wind tunnel design facilitates the release of odor sources by several methods, with and without visual stimuli. Wind tunnel experiments are important methods to identify behaviorally active volatile chemicals.

냄새에 대 한 바람 터널 중재 곤충 행동 분석 실험

Olfaction is the most important sensory mechanism by which many insects interact with their environment and a wind tunnel is an excellent tool to study ...

연구

행동분석학

Low-Cost Automated Flight Intercept Trap for the Temporal Sub-Sampling of Flying Insects Attracted to Artificial Light at Night

Sampling methods are selected depending on the targeted species or the spatial and temporal requirements of the study. However, most methods for passive sampling of flying insects have a poor temporal resolution because it is time-consuming, costly and/or logistically difficult to perform. Effective sampling of flying insects attracted to artificial light at night (ALAN) requires sampling at user-defined time points (nighttime only) across well-replicated sites resulting in major time and labor-intensive survey effort or expensive automated technologies. Described here is a low-cost automated intercept trap that requires no specialist equipment or skills to construct and operate, making it a viable option for studies that require temporal sub-sampling across multiple sites. The trap can be used to address a wide range of other ecological questions that require a greater temporal and spatial scale than is feasible with previous trap technology.

To study the impacts of artificial light at night (ALAN) on nocturnal flying insects, sampling needs to be confined to nighttime. The protocol describes a low-cost automated flight intercept trap that allows researchers to sample at user-defined periods with increased replication.

밤에 인공 조명에 끌리는 비행 곤충의 시간적 하위 샘플링을위한 저비용 자동 비행 요격 함정

Sampling methods are selected depending on the targeted species or the spatial and temporal requirements of the study. However, most methods for passive ...

환경과학

Vertical T-maze Choice Assay for Arthropod Response to Odorants

Given the economic importance of insects and arachnids as pests of agricultural crops, urban environments or as vectors of plant and human diseases, various technologies are being developed as control tools. A subset of these tools focuses on modifying the behavior of arthropods by attraction or repulsion. Therefore, arthropods are often the focus of behavioral investigations. Various tools have been developed to measure arthropod behavior, including wind tunnels, flight mills, servospheres, and various types of olfactometers. The purpose of these tools is to measure insect or arachnid response to visual or more often olfactory cues. The vertical T-maze oflactometer described here measures choices performed by insects in response to attractants or repellents. It is a high throughput assay device that takes advantage of the positive phototaxis (attraction to light) and negative geotaxis (tendency to walk or fly upward) exhibited by many arthropods. The olfactometer consists of a 30 cm glass tube that is divided in half with a Teflon strip forming a T-maze. Each half serves as an arm of the olfactometer enabling the test subjects to make a choice between two potential odor fields in assays involving attractants. In assays involving repellents, lack of normal response to known attractants can also be measured as a third variable.

A vertical, T-maze olfactometer is described for assaying the behavioral response of arthropods. The olfactometer allows the experimenter to measure choices performed by test subjects when subjected to two potential odor fields. Both attraction to and repulsion from odorants can be measured with this device.

Odorants에 Arthropod 응답을 수직 T-미로 초이스 분석

Given the economic importance of insects and arachnids as pests of agricultural crops, urban environments or as vectors of plant and human diseases, ...

신경과학

Bioassays for Monitoring Insecticide Resistance

Pest resistance to pesticides is an increasing problem because pesticides are an integral part of high-yielding production agriculture. When few products are labeled for an individual pest within a particular crop system, chemical control options are limited. Therefore, the same product(s) are used repeatedly and continual selection pressure is placed on the target pest. There are both financial and environmental costs associated with the development of resistant populations. The cost of pesticide resistance has been estimated at approximately $ 1.5 billion annually in the United States. This paper will describe protocols, currently used to monitor arthropod (specifically insects) populations for the development of resistance. The adult vial test is used to measure the toxicity to contact insecticides and a modification of this test is used for plant-systemic insecticides. In these bioassays, insects are exposed to technical grade insecticide and responses (mortality) recorded at a specific post-exposure interval. The mortality data are subjected to Log Dose probit analysis to generate estimates of a lethal concentration that provides mortality to 50% (LC50) of the target populations and a series of confidence limits (CL's) as estimates of data variability. When these data are collected for a range of insecticide-susceptible populations, the LC50 can be used as baseline data for future monitoring purposes. After populations have been exposed to products, the results can be compared to a previously determined LC50 using the same methodology.

This manuscript demonstrates and discusses techniques used to survey pesticide susceptibility and detect resistance to contact and systemic pesticides in arthropod pests.

모니터링 살충제 저항 Bioassays

Pest resistance to pesticides is an increasing problem because pesticides are an integral part of high-yielding production agriculture. When few products ...

생물학

Electroantennographic Bioassay as a Screening Tool for Host Plant Volatiles

Plant volatiles play an important role in plant-insect interactions. Herbivorous insects use plant volatiles, known as kairomones, to locate their host plant.1,2 When a host plant is an important agronomic commodity feeding damage by insect pests can inflict serious economic losses to growers. Accordingly, kairomones can be used as attractants to lure or confuse these insects and, thus, offer an environmentally friendly alternative to pesticides for insect control.3 Unfortunately, plants can emit a vast number volatiles with varying compositions and ratios of emissions dependent upon the phenology of the commodity or the time of day. This makes identification of biologically active components or blends of volatile components an arduous process. To help identify the bioactive components of host plant volatile emissions we employ the laboratory-based screening bioassay electroantennography (EAG). EAG is an effective tool to evaluate and record electrophysiologically the olfactory responses of an insect via their antennal receptors. The EAG screening process can help reduce the number of volatiles tested to identify promising bioactive components. However, EAG bioassays only provide information about activation of receptors. It does not provide information about the type of insect behavior the compound elicits; which could be as an attractant, repellent or other type of behavioral response. Volatiles eliciting a significant response by EAG, relative to an appropriate positive control, are typically taken on to further testing of behavioral responses of the insect pest. The experimental design presented will detail the methodology employed to screen almond-based host plant volatiles4,5 by measurement of the electrophysiological antennal responses of an adult insect pest navel orangeworm (Amyelois transitella) to single components and simple blends of components via EAG bioassay. The method utilizes two excised antennae placed across a "fork" electrode holder. The protocol demonstrated here presents a rapid, high-throughput standardized method for screening volatiles. Each volatile is at a set, constant amount as to standardize the stimulus level and thus allow antennal responses to be indicative of the relative chemoreceptivity. The negative control helps eliminate the electrophysiological response to both residual solvent and mechanical force of the puff. The positive control (in this instance acetophenone) is a single compound that has elicited a consistent response from male and female navel orangeworm (NOW) moth. An additional semiochemical standard that provides consistent response and is used for bioassay studies with the male NOW moth is (Z,Z)-11,13-hexdecadienal, an aldehyde component from the female-produced sex pheromone.6-8

A method to rapidly screen host plant volatiles by measurement of the electrophysiological response of adult navel orangeworm (Amyelois transitella) antennae to single components and blends via electroantennographic analysis is demonstrated.

호스트 식물 휘발성 물질에 대한 선별 도구로 Electroantennographic Bioassay

Plant volatiles play an important role in plant-insect interactions. Herbivorous insects use plant volatiles, known as kairomones, to locate their host ...

Protocols for Testing the Toxicity of Novel Insecticidal Chemistries to Mosquitoes

New classes of insecticides with novel modes of action are needed to control insecticide resistant populations of mosquitoes that transmit diseases such as Zika, dengue and malaria. Assays for rapid, high-throughput analyses of unformulated novel chemistries against mosquito larvae and adults are presented. We describe protocols for single point-dose and dose response assays to evaluate the toxicity of small molecule chemistries to the Aedes aegypti vector of Zika, dengue and yellow fever,&#160;the malaria vector, Anopheles gambiae and the northern house mosquito, Culex quinquefasciatus, on contact and via ingestion. As an example, we evaluated the toxicity of amitriptyline, a small molecule antagonist of G protein-coupled receptors, via larval, adult topical and adult blood-feeding assay. The protocols provide a starting point to investigate insecticide potential. Results are discussed in the context of additional experiments to explore product applications and mechanisms for delivery.

Protocols are described for assessing the toxicity of chemistries to immature and adult mosquitoes for development as new classes of larvicides, adulticides and endectocides. The protocols enable high-throughput testing of multiple chemistries at single-point dose and subsequent evaluation via dose response assay to determine toxicity on contact or via ingestion.

모기에 소설 Insecticidal 화학 물질의 독성을 테스트 하기 위한 프로토콜

New classes of insecticides with novel modes of action are needed to control insecticide resistant populations of mosquitoes that transmit diseases such ...

Light Spot-Based Assay for Analysis of Drosophila Larval Phototaxis

The larvae of Drosophila melanogaster show obvious light-avoiding behavior during the foraging stage. Drosophila larval phototaxis can be used as a model to study animal avoidance behavior. This protocol introduces a light-spot assay to investigate larval phototactic behavior. The experimental set-up includes two main parts: a visual stimulation system that generates the light spot, and an infrared light-based imaging system that records the process of larval light avoidance. This assay allows tracking of the behavior of larva before entering, during encountering, and after leaving the light spot. Details of larval movement including deceleration, pause, head casting, and turning can be captured and analyzed using this method.

Light Spot-Based Assay for Analysis of Drosophila Larval Phototaxis

This protocol introduces a light-spot assay to investigate Drosophila larval phototactic behavior. In this assay, a light spot is generated as light stimulation, and the process of larval light avoidance is recorded by an infrared light-based imaging system.

초파리 애벌레 광택시 분석을 위한 빛 스팟 기반 분석

The larvae of Drosophila melanogaster show obvious light-avoiding behavior during the foraging stage. Drosophila larval phototaxis can be used as a model ...

Topical Application Bioassay to Quantify Insecticide Toxicity for Mosquitoes and Fruit Flies

The continued use of insecticides for public health and agriculture has led to widespread insecticide resistance and hampering of control methods. Insecticide resistance surveillance of mosquito populations is typically done through Centers for Disease Control and Prevention (CDC) bottle bioassays or World Health Organization (WHO) tube tests. However, these methods can result in a high degree of variability in mortality data due to variable insecticide contact with&#160;the insect, the relatively small numbers of organisms tested, extensive variation in mass between populations, and constantly changing environmental conditions, leading to variable outcomes. This paper presents the topical application bioassay, adapted as a high-throughput phenotypic bioassay for both mosquitoes and fruit flies, to test large numbers of insects along&#160;a range of insecticide concentrations.
This assay 1) ensures consistent treatment and insecticide contact with every organism, 2) produces highly specific dose-response curves that account for differences in average mass between strains and sexes (which is particularly important for field-collected organisms), and 3) allows for the calculation of statistically rigorous median lethal doses (LD50), which are necessary for resistance ratio comparisons-an alternative surveillance approach from diagnostic dose mortality, which is also used for larvicide resistance surveillance. This assay will be a complementary tool for accurately phenotyping mosquito populations and, as illustrated using fruit flies, is easily adaptable for use with other insects. We argue that this assay will help fill the gap between genotypic and phenotypic insecticide resistance in multiple insect species.

We describe the methodology and importance of the topical application bioassay to measure insecticide susceptibility in mosquitoes and fruit flies. The presented assay is high-throughput, utilizes insect mass-thus allowing for calculating a mass-relativized lethal dose instead of concentration-and likely has lower variability than other similar methods.

모기 및 초파리에 대한 살충제 독성을 정량화하기위한 국소 응용 생물 검정

The continued use of insecticides for public health and agriculture has led to widespread insecticide resistance and hampering of control methods. ...

Feeding Assay를 통한 Helicoverpa armigera 에 대한 식물화학적 효과 평가

Developing a Feeding Assay System for Evaluating the Insecticidal Effect of Phytochemicals on Helicoverpa armigera

Helicoverpa armigera, a lepidopteran insect, is a polyphagous pest with a worldwide distribution. This herbivorous insect is a threat to plants and agricultural productivity. In response, plants produce several phytochemicals that negatively impact the insect's growth and survival. This protocol demonstrates an obligate feeding assay method to evaluate the effect of a phytochemical (quercetin) on insect growth, development, and survival. Under controlled conditions, the neonates were maintained until the second instar on a pre-defined artificial diet. These second-instar larvae were allowed to feed on a control and quercetin-containing artificial diet for 10 days. The insects' body weight, developmental stage, frass weight, and mortality were recorded on alternate days. The change in body weight, the difference in feeding pattern, and developmental phenotypes were evaluated throughout the assay time. The described obligatory feeding assay simulates a natural mode of ingestion and can be scaled up to a large number of insects. It permits one to analyze phytochemicals' effect on the growth dynamics, developmental transition, and overall fitness of H. armigera. Furthermore, this setup can also be utilized to evaluate alterations in nutritional parameters and digestive physiology processes. This article provides a detailed methodology for feeding assay systems, which may have applications in toxicological studies, insecticidal molecule screening, and understanding chemical effects in plant-insect interactions.

저자 스포트라이트: 곤충 해충 관리를 위한 사료 분석법의 개발 및 과제 

This protocol describes the obligate feeding assay to evaluate the potentially toxic effect of a phytochemical on the lepidopteran insect larvae. This is a highly scalable insect bioassay, easy to optimize the sublethal and lethal dose, deterrent activity, and physiological effect. This could be used for screening eco-friendly insecticides.

Helicoverpa armigera에 대한 Phytochemicals의 살충 효과를 평가하기 위한 공급 분석 시스템 개발

Helicoverpa armigera, a lepidopteran insect, is a polyphagous pest with a worldwide distribution. This herbivorous insect is a threat to plants and ...

곤충 연구 또는 모니터링 프로그램에 대 한 사진 매력 생물의 핵심 요소

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