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Resumo

Demonstramos como alterações na concentração do cálcio intracelular livre e eficácia sináptica podem ser monitorizados simultaneamente num gânglio de preparação Aplysia. Nós imagem de cálcio intracelular utilizando um corante fluorescente, o laranja de cálcio, e induzir e controlar a transmissão sináptica, com cortantes (intracelular) eléctrodos.

Resumo

Tem sido sugerido que alterações no cálcio intracelular mediar a indução de um certo número de importantes formas de plasticidade sináptica (facilitação, por exemplo homossináptica significa) 1. Estas hipóteses podem ser testadas simultaneamente monitorizar alterações de cálcio intracelular e alterações na eficácia sináptica. Nós demonstrar como este pode ser realizado através da combinação de imagens com as técnicas de gravação de cálcio intracelulares. Nossos experimentos são realizados em um gânglio vestibular do molusco Aplysia californica. Esta preparação tem um número de características vantajosas, experimentalmente: Ganglia pode ser facilmente removido do Aplysia e experimentos usar neurónios adultos que fazem conexões sinápticas normais e têm uma distribuição normal do canal de iões. Devido à baixa taxa metabólica do animal, e as temperaturas relativamente baixas (14-16 ° C) que são naturais para Aplysia, as preparações são estáveis ​​durante longos períodos de tempo. > ent "Para detectar alterações de cálcio intracelular livre, vamos utilizar a versão celular impermeante de cálcio Orange 2, que é facilmente" carregado "em um neurônio através de iontoforese. Quando este corante fluorescente de comprimento de onda longo liga ao cálcio, aumenta a intensidade de fluorescência. cálcio Orange tem rápidas propriedades cinéticas 3 e, ao contrário de corantes raciométrica (por exemplo, Fura 2), não requer nenhuma roda de filtros para imagens. É bastante foto estável e menos fototóxica do que outros corantes (por exemplo, fluo-3) 2,4. Assim como todos os não-raciométrica corantes, cálcio Laranja indica alterações relativas na concentração de cálcio. Mas, uma vez que não é possível em conta as variações na concentração de corante, devido às operações de carga e de difusão, que não pode ser calibrado para proporcionar as concentrações de cálcio absolutos.

Uma posição vertical, fixo platina do microscópio composto, foi utilizado para os neurónios de imagem com uma câmara CCD capaz de gravação de cerca de 30 quadros por segundo. Em Aplysia esta resolução temporalé mais do que adequada para detectar mesmo um único pico de alteração induzida na concentração de cálcio intracelular. Eletrodos pontiagudos são simultaneamente usado para induzir e gravar a transmissão sináptica em neurônios identificados pré e pós-sináptica. Na conclusão de cada teste, um script personalizado combina eletrofisiologia e dados de imagem. A fim de assegurar a sincronização adequada usamos um pulso de luz a partir de um diodo emissor de luz montado na porta da câmara do microscópio. Manipulação dos níveis de cálcio pré-sinápticos (por exemplo, através da injeção intracelular EGTA) nos permite testar hipóteses específicas, sobre o papel do cálcio intracelular na mediação de várias formas de plasticidade.

Protocolo

1. Preparação

  1. Anestesiar os animais por injecção de 75-100 ml de solução isotónica de cloreto de magnésio. O Aplysia usamos para imagiologia são geralmente 150-200 gramas e são obtidos a partir Marinus Scientific.
  2. Pin o animal anestesiado para um prato coberto de cera. Agulhas de seringa funcionam bem para esta finalidade; técnicas estéreis não são necessárias. Utilizando uma pinça e tesouras brutas padrão fazer uma incisão no pé do animal e expor a massa bucal. Localizar o gânglio vestibular. Com uma tesoura de mola e pinça fina, cuidadosamente livre gânglio cortando todos os nervos vestibulares.
  3. Remover o gânglio e colocá-lo

Discussão

Nós demonstramos técnicas que podem ser usadas para controlar simultaneamente a concentração de cálcio intracelular e avaliar a eficácia da transmissão sináptica. Estas técnicas são úteis para determinar o modo como diversas formas de plasticidade de curto prazo são mediados.

A formação de imagens é realizada com um microscópio de fluorescência e câmara CCD. Estes requisitos equipamentos são relativamente modestos quando comparados com a maioria funcionais de imagem set-up...

Divulgações

Não temos nada a revelar.

Agradecimentos

A PHS Grant (MH51393) apoiaram este trabalho. Alguns dos Aplysia usamos são fornecidas pelo Nacional de Recursos para Aplysia, da Universidade de Miami, Grant RR10294 do Centro Nacional de Pesquisa de Recursos, NIH.

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
Nome do reagente Companhia Número de Catálogo Comentário
Cálcio Laranja Invitrogen C-3013
EGTA Sigma E-4378
Cálcio kit padrão de calibração Invitrogen C-3008MP útil para testar a sensibilidade e a gama dinâmica do sinal
Hexa-hidrato de cloreto de magnésio Sigma M0250 utilizado em solução 0,33 M de anestesiar animais

Reagentes Tabela 1. Usado.

Nome Equipamento Companhia Comentário
FN-1 microscópio vertical fluorescência Nikon Instruments com Narishige ITS-FN1 etapa
NMN-21 manipuladores Narishige montado no palco com ímãs
CoolSNAP HQ 2 câmera CCD Fotometria
NIS elementos AR
(Versão 3.22)
Nikon Instruments software de imagem usado para adquirir dados de fluorescência
10X/0.3w Plano Fluor objetivo Nikon Instruments esta lente de imersão em água tem uma longa distância de trabalho de 3,5 mm
X-Cite 120 lâmpadas de metal haleto PC EXFO utilizado para imagiologia de fluorescência
LS-DWL
lâmpada halógena
Sumica
ET-CY3 conjunto de filtros Tecnologia Chroma ;
Poder 1401 conversor A / D Cambridge Electronic Design amostragem foi feita em 3 kHz
Ponto II
(Versão 7.07)
Cambridge Electronic Design software usado para adquirir dados de eletrofisiologia
SEC-10 LX amplificador NPI eletrônica usado com um andar de entrada 10X
Amplificador modelo 410 Brownlee precisão utilizado para amplificar e filtrar o sinal
WS-4 menos k Tecnologia isolamento de vibração para imagens
plataforma de resfriamento feitos placa de metal através do qual é bombeada água gelada, a uma taxa variável

Tabela 2. Equipamento utilizado.

Referências

  1. Zucker, R. S., Regehr, W. G. Short-term synaptic plasticity. Annu. Rev. Physiol. 64, 355-405 (2002).
  2. Eberhard, M., Erne, P. Calcium binding to fluorescent calcium indicators: Calcium green, calcium orange and calcium crim

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