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Resumo

Nós descrevemos um procedimento passo a passo para a criação de sobrecarga de pressão e hipertrofia ventricular esquerda em ratos Wistar pela constrição da aorta ascendente com clipe metálico pequeno. Este modelo é amplamente utilizado para o estudo de alterações de remodelação durante a hipertrofia cardíaca e para identificar e avaliar estratégias para a regressão de tais mudanças.

Resumo

Crescente constrição aórtica é o modelo cirúrgico mais comum e bem sucedida para a criação de sobrecarga de pressão induzida hipertrofia cardíaca e insuficiência cardíaca. Aqui, descrevemos um procedimento cirúrgico detalhado para a criação de sobrecarga de pressão e hipertrofia cardíaca em ratos por constrição da aorta ascendente com clipe metálico pequeno. Após a anestesia, a traquéia está entubado, inserindo uma cânula através de uma incisão no meio do caminho entre dois anéis cartilaginosos da traquéia. Em seguida, uma incisão na pele é feita ao nível do segundo espaço intercostal na parede torácica esquerda e as camadas musculares estão habilitados para localizar a porção ascendente da aorta. A aorta ascendente é restrito a 50-60% do seu diâmetro original através da aplicação de um pequeno clip de titânio porte. Após a constrição da aorta, os segundo e terceiro costelas são aproximadas com prolene. A cânula da traqueia é removido uma vez que a respiração espontânea foi restabelecida. O animal é deixado recuperar oN a almofada de aquecimento por redução gradual da anestesia. A intensidade da sobrecarga de pressão criada pela constrição da aorta ascendente é determinado com base no gradiente de pressão usando transtorácica bidimensional com Doppler-ecocardiografia. Em geral, este protocolo é útil para estudar os eventos de remodelação e propriedades contráteis do coração durante o início gradual e progressão da hipertrofia cardíaca compensada para coração fase fracasso.

Introdução

Modelos animais pequenos são as ferramentas mais preferidos para o estudo de alterações crónicas no desenvolvimento da hipertrofia cardíaca e sua progressão para insuficiência cardíaca. Modelos de insuficiência cardíaca por métodos cirúrgicos foram originalmente desenvolvidos em ratos como esses animais são mais adequados para procedimentos cirúrgicos de peito aberto, ecocardiograma e avaliação dos parâmetros hemodinâmicos. Eles também fornecem amostras post mortem adequadas para o tecido, celular e estudos de nível molecular 1. Constrição da aorta ascendente é um dos modelos cirúrgicos mais comuns e bem sucedidos para a criação de insuficiência cardíaca sobrecarga de pressão 2, 3. Este modelo é bem adequado para estudar os eventos de remodelação celular celulares e sub e propriedades contráteis do coração durante a transição de hipertrofia para insuficiência cardíaca 4.

Uma das principais vantagens deste modelo é o aparecimento gradual de sobrecarga de pressão sobre o coração 5, </ Sup> 6. Este modelo é clinicamente relevante por causa de sua progressão lenta, mas constante de hipertrofia cardíaca compensada para a fase descompensada e, finalmente, para a fase de insuficiência cardíaca. A duração para a progressão da hipertrofia cardíaca para a insuficiência cardíaca e as alterações fisiológicas associadas são influenciados, principalmente, pelo grau de estenose produzido 7. Constrição da aorta ascendente pode ser realizada de duas maneiras, usando suturas ou pela aplicação de clipes metálicos 8, 9. A principal vantagem da utilização de um grampo metálico para a constrição da aorta é que os procedimentos cirúrgicos são menos complicados. Neste método, é preciso localizar a aorta ascendente supra valvular e insira o clipe ao redor da aorta para obter o nível desejado de constrição. Um afastador peito não é necessário este procedimento. A EAo por sutura requer manipulações mais cirúrgicos para colocar a agulha calibre ao lado da aorta ascendente e sutura em torno dele paraproduzir o nível desejado de constrição da aorta. A última técnica é mais demorada em comparação com a utilização de grampos metálicos para a constrição da aorta. O método descrito neste vídeo demonstra o procedimento cirúrgico para a constrição da aorta ascendente em ratos que permite a criação de pressão modelo de hipertrofia ventricular esquerda sobrecarregado.

Protocolo

Experimentos em animais foram realizados após a obtenção da aprovação do Comitê de Ética animal Institucional. Ratos Wistar foram alojados sob um escuro de 12 horas para ciclo de luz, temperatura ambiente constante (24 ± 2 ° C) com comida e água ad libitum (conforme as orientações CPCSEA).

1) Cuidados pré-operatório e anestesia

  1. Mantenha rato (cerca de 200 g de peso corporal) sob antibiótico guarda-chuva de 24 horas antes da cirurgia, através da administração de amoxicilina por via oral (dose: 500 mg / L de água).
  2. Esterilizar todos os instrumentos cirúrgicos (como tesouras, pinças, clipe aplicador, agulhas de sutura, e porta-agulha) em autoclave a 121 ° C por 15 min.
  3. Use uma almofada de aquecimento para manter a temperatura do corpo do animal em cerca de 37 ° C para evitar uma rápida queda da frequência cardíaca.
  4. Tome cuidado para evitar a desidratação do animal antes e durante a cirurgia.
  5. Anestesiar o rato numa câmara de indução com 3% de isoflurano misturado com0,5-1,0 L / min 100% de oxigênio; manter a anestesia com 1,5% de isoflurano.
  6. Verifique o reflexo pedal para confirmar anestesia bem sucedida.

2) Preparação do sítio cirúrgico

  1. Manter o rato no topo de uma almofada de aquecimento de temperatura controlada, na posição supina.
  2. Posicione uma faixa de borracha sobre os dentes da frente do rato para manter o animal na posição, mantendo a anestesia com um cone de nariz.
  3. Retire a pele do decote e deixou região peito do rato (de preferência usando um barbeador elétrico).
  4. Desinfectar local cirúrgico com uma solução de povidona-iodo e, em seguida, com álcool etílico a 70%.
  5. Use um campo estéril para expor somente o sítio cirúrgico durante o procedimento cirúrgico.
    Nota: Como uma opção adicional para o cuidado com os animais, 0,25% bupivicaine ID (2,5 mg / kg) podem ser incorporados antes da incisão em cada local da incisão para anestesia local / analgesia.

3) Intubação Traqueal em Rat

  1. Fazer uma pequena incisão na pele paralela à traqueia usando uma lâmina de bisturi estéril e separar cuidadosamente o tecido subjacente de modo a expor a traqueia.
  2. Aplicar um empate de 4-0 fio de seda por baixo da traquéia e levantar delicadamente o laço para cima.
  3. Fazer uma maneira incisão meio entre dois anéis de cartilagem e inserir a cânula traqueal na traqueia do rato.
  4. Ligue a cânula traqueal a um ventilador de roedores para manter uma taxa respiratória de 50 ciclos / min, volume corrente de 1,70 ml e hora inspiração de 0,60 seg (para rato com 200 g de peso corporal).

4) A constrição da aorta ascendente

  1. Depois de detectar a posição das nervuras com os dedos, fazer uma incisão da pele de cerca de 2 cm em relação à parede torácica esquerda entre as segunda e terceira costelas.
  2. Separa-se a camada de musculatura intercostal por camada e fazer uma incisão de cerca de 1,5 cm de comprimento entre as segunda e terceira costelas. (Cuidado deve ser tomadan para evitar qualquer prejuízo para os pulmões ao fazer incisão entre as costelas)
  3. Recolha as costelas e localizar a parte ascendente da aorta.
  4. Coloque um pequeno grampo de titânio de tamanho em torno da aorta ascendente, com a ajuda de um aplicador, em que a constrição da aorta para 50-60% do diâmetro original.
  5. Após a constrição da aorta, aproximar as segundas e terceiras nervuras com 3,0 prolene num padrão de sutura interrompida. Ao mesmo tempo, interromper o ventilador para cerca de 2-4 segundos, a fim de re-inflar os pulmões.
  6. Appose as camadas musculares com prolene 3.0 e pele com 4,0 suturas de seda em um padrão de sutura interrompida. Suturas absorvíveis sintéticos não pode ser usado em vez de seda para sutura da pele.
  7. Remova a cânula traqueal do rato respiração espontânea é uma vez restabelecida.
  8. Feche a abertura traqueal com 3,0 prolene e da camada da pele com fio de seda 4.0.
  9. Permitir que o animal se recuperar em tele aquecimento pad por redução gradual da anestesia e ventilador respiração assistida.
  10. Nos animais do grupo controle pareados por idade, realizar traqueostomia e toracotomia sem constrição da aorta ascendente.

5) Cuidados pós-operatórios

  1. Desinfetar área cirúrgica com solução de iodo-povidona.
  2. Como analgesia pós-operatória, injectar tramadol intraperitonealmente (10 mg / kg de peso corporal / dia) durante 1 semana.
  3. Injetar estéril salina normal intra-peritoneal, se os sinais de desidratação aparecer após a cirurgia (cerca de 1 ml).
  4. Administrar por via oral de amoxicilina, misturado com a água de beber, durante sete dias (dosagem: 500 mg / L de água).
  5. Remova qualquer fio de seda restantes da pele pós 10 dias de cirurgia sob anestesia inalatória.

6) A confirmação da constrição de sucesso da aorta ascendente

  1. Realize uma trans-torácica bidimensional com Doppler-ecocardiografia para determinar a intensidade da sobrecarga de pressão produzida pela constrição da aorta ascendente.
  2. Anestesiar os ratos uma semana após a cirurgia, como descrito anteriormente (passo 1.5)
  3. Coloque o transdutor de ultra-som na posição esternal supra para gravar o gradiente de pressão através da parte estreitada da aorta ascendente.
    Nota: Os ratos com um gradiente de pressão de cerca de 60 mm de Hg no local de constrição aórtica irá desenvolver hipertrofia cardíaca grave por cerca de 8-10 semanas após a cirurgia.

Resultados

Nas nossas experiências que são capazes de atingir taxas de sobrevivência de mais de 80%. A eficácia da constrição aórtica foi confirmada pela realização de ecocardiograma Doppler. Os ratos (n = 6) com um gradiente de pressão de cerca de 60 mm de Hg no local da constrição da aorta foram observados durante 8 semanas e sacrificaram-se para análise do desenvolvimento de hipertrofia cardíaca (Figura 1). Após 8 semanas de avaliação ecocardiográfica pós-operatória revelou um aumento signif...

Discussão

Existem vários modelos cirúrgicos para a indução de sobrecarga de pressão, bem como a hipertrofia cardíaca e insuficiência cardíaca. Em pequenos animais, Lorell e seus colegas desenvolveram o modelo que descrevemos aqui e eles relataram a ocorrência de hipertrofia cardíaca compensada oito semanas de bandas pós aórtica 5. Alterações cardíacas gradualmente progredir para um estado descompensada e resultar em insuficiência cardíaca. A principal vantagem deste modelo é o aparecimento gradual de ...

Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Os autores reconhecem Departamento de Biotecnologia, Governo da Índia para o apoio financeiro a este projeto. Ajith Kumar GS foi apoiado com bolsa de pesquisa sênior do Conselho de Pesquisa Científica e Industrial, Governo da Índia e Binil Raj com bolsa de pesquisa sênior do Conselho Indiano de Pesquisa Médica, Governo da Índia.

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
Wistar ratsMaintained at ARF, RGCB
Inhalation anaesthesia systems VetEquipAB19276
Rodent ventilatorCWE IncSAR- 830/AP 
Rat tracheal cannulaCWE Inc13-21032
Ultrasound systemPhilipsHD7
Ultrasound transducerPhilipsS 12
Titanium clip (small)Horizon1204
Clip applicatorWeck137081
Electric shaverVinverthVBT0817
BP blade (size:11)SurgeonREF10111Preparation of surgical site
TramadolOrchid health careOCH043
Amoxycillin HydrochlorideRanbaxy
IsofluranePiramal health careA23M10A
SyringesBD2015-09
4-0 braided silkDiamond
3-0 proleneJohnson&JohnsonNW018
Surgical tapeRomsonsSH 6301
Povidone iodineWin Medicare
Temp. controlled heating padFlamingoHC1003

Referências

  1. Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present. Circ Heart Fail. 2, 138-144 (2009).
  2. Weinberg, E. O., et al. Angiotensin-converting enzyme inhibition prolongs survival and modifies the transition to heart failure in rats with pressure overload hypertrophy due to ascending aortic stenosis. Circulation. 90, 1410-1422 (1994).
  3. Schunkert, H., et al. Increased rat cardiac angiotensin converting enzyme activity and mRNA expression in pressure overload left ventricular hypertrophy. Effects on coronary resistance, contractility, and relaxation. J Clin Invest. 86, 1913-1920 (1990).
  4. Hasenfuss, G. Animal models of human cardiovascular disease, heart failure and hypertrophy. Cardiovasc Res. 39, 60-76 (1998).
  5. Litwin, S. E., et al. Serial echocardiographic-Doppler assessment of left ventricular geometry and function in rats with pressure-overload hypertrophy. Chronic angiotensin-converting enzyme inhibition attenuates the transition to heart failure. Circulation. 91, 2642-2654 (1995).
  6. Miyamoto, M. I., et al. Adenoviral gene transfer of SERCA2a improves left-ventricular function in aortic-banded rats in transition to heart failure. Proc Natl Acad Sci U S A. 97, 793-798 (2000).
  7. Kagaya, Y., Hajjar, R. J., Gwathmey, J. K., Barry, W. H., Lorell, B. H. Long-term angiotensin-converting enzyme inhibition with fosinopril improves depressed responsiveness to Ca2+ in myocytes from aortic-banded rats. Circulation. 94, 2915-2922 (1996).
  8. Del Monte, F., Butler, K., Boecker, W., Gwathmey, J. K., Hajjar, R. J. Novel technique of aortic banding followed by gene transfer during hypertrophy and heart failure. Physiol Genomics. 9, 49-56 (2002).
  9. Turcani, M., Rupp, H. Heart failure development in rats with ascending aortic constriction and angiotensin-converting enzyme inhibition. Br J Pharmacol. 130, 1671-1677 (2000).
  10. Kerem, A., et al. Lung endothelial dysfunction in congestive heart failure: role of impaired Ca2+ signaling and cytoskeletal reorganization. Circ Res. 106, 1103-1116 (2010).
  11. Almeida, A. C., van Oort, R. J., Wehrens, X. H. Transverse aortic constriction in mice. J Vis Exp. (38), (2010).

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