Análise abrangente de Transcrição Dynamics de amostras de cérebro seguinte experiência Behavioral

Resumo

This manuscript describes a protocol that applies comprehensive profiling for analysis of transcriptional programs induced in specific brain nuclei of rodents following behavioral paradigms. Herein, this approach is illustrated in the context of profiling genes induced in the nucleus accumbens (NAc) of mice following acute cocaine exposure, utilizing microfluidic qPCR arrays.

Resumo

A codificação de experiências no cérebro e na consolidação de memórias de longo prazo dependerá de transcrição do gene. Identificar a função de genes específicos em experiência de codificação é um dos principais objetivos da neurociência molecular. Além disso, a associação funcional de genes definidos com comportamentos específicos tem implicações para a compreensão da base de transtornos neuropsiquiátricos. A indução da transcrição de programas robustos foi observado no cérebro de ratinhos após várias manipulações comportamentais. Enquanto alguns elementos genéticos são utilizados recorrentemente seguinte diferentes manipulações comportamentais e em diferentes núcleos do cérebro, os programas de transcrição são em geral única para os estímulos indutores e a estrutura na qual eles são estudados ^1,2.

Nesta publicação, um protocolo é descrito para perfilamento transcricional robusta e abrangente de núcleos cerebrais de ratos em resposta à manipulação comportamental. Aprotocolo é demonstrado no contexto da análise da dinâmica de expressão de genes no núcleo accumbens seguinte experiência aguda cocaína. Subseqüente a um definido na experiência vivo, o tecido neural alvo é dissecado; seguido por purificação de RNA, a transcrição reversa e a utilização de matrizes de microfluidos para a análise detalhada de qPCR de múltiplos genes alvo. Este protocolo é voltada para análise abrangente (dirigindo-50-500 genes) de limitar a quantidade de matéria-prima, tais como amostras de cérebros pequenos, ou mesmo uma única célula.

O protocolo é o mais vantajoso para a análise de amostras múltiplas em paralelo (por exemplo, células isoladas, análise dinâmica seguinte farmacêutica, viral ou perturbações comportamentais). No entanto, o protocolo também pode servir para a caracterização e garantia de qualidade das amostras antes de estudos todo o genoma por microarrays ou RNAseq, bem como a validação dos dados obtidos a partir de estudos de todo o genoma.

Introdução

Organização dinâmica do cérebro permite flexibilidade cognitiva e comportamental. Experiências são codificadas através de modificações da estrutura e força das conexões entre os neurônios no cérebro ^3. Este "dependente da experiência plasticidade" é o resultado da indução de padrões específicos da expressão do gene que fornece as proteínas necessárias para a modificação da estrutura e força ⁴ sináptica. A identificação de redes de regulação gênicas mediar a formação de memórias de longo prazo é um princípio central da neurociência molecular, com a expectativa de que a identificação dos elementos dominantes de programas de transcrição irá fornecer uma visão sobre os princípios fundamentais que regulam a formação da memória, bem como metas para tratamento de doenças neurodegenerativas e distúrbios neuropsiquiátricos. Programas de transcrição desdobrar-se em ondas temporalmente definidos, cada um dos quais codificam genes de caráter diferente, que são importantes para destágios iferentes na implementação dos resultados do evento de sinalização ^1,2. Por isso, é importante abordar a dinâmica de transcrição em um prazo temporal, detalhado, de modo a identificar o conjunto completo de genes induzidos, e obter insights sobre sua função potencial de acordo com a dinâmica de sua indução.

A dependência de drogas é uma forma robusta de dependentes de experiência plasticidade causada pelos efeitos duradouros das drogas de abuso em circuitos neurais no cérebro ^5,6. Inicial, a exposição aguda a drogas pode levar ao desenvolvimento de dependência e da transição para a utilização crónica. A informação contextual é um elemento crucial para o desenvolvimento de dependência. Pistas ambientais associadas à droga são atribuídas importância significativa nas mentes dos usuários de drogas. A informação contextual lembrando um usuário de drogas de experiência de drogas no passado pode induzir a recaída ânsia de drogas, mesmo após longos períodos de abstinência de exposição ao fármaco ^7,8.Daí o grande desafio clínico em vício - a propensão dos adictos recaírem mesmo muito tempo depois de os sintomas de abstinência têm abrandado ^9.

Sensibilização comportamental à cocaína é um modelo simples de cocaína experiência útil no estudo dos mecanismos da dependência de drogas. Neste modelo amplamente estudado para a sensibilização de longa duração induzida pela exposição crônica às drogas de abuso, roedores estão habituados a primeira injeção de solução salina (intraperitoneal, IP) em um ambiente de romance (uma câmara de campo aberto, no qual sua atividade locomotora é monitorado) ; em seguida, eles recebem injecções diárias de cocaína nas câmaras de campo abertas, enquanto a sua actividade é monitorizada ¹⁰ (Figura 1). Este paradigma comportamental resulta tipicamente numa sensibilização robusta de comportamento locomotor (8-12 vezes superior actividade de linha de base) ^11, que é mantida durante um período de vários meses após a cessação das injecções de cocaína, demonstrando a formação de um taradotraço de memória ASIVE de experiência com drogas.

O circuito neural de recompensa, naturalmente envolvido em reforçar comportamentos essenciais para o sucesso de uma espécie (por exemplo, alimentação, sexo), é explorada por drogas de abuso para reforçar comportamentos associados ao fármaco ^12,13. Os mecanismos moleculares e celulares, através da qual a experiência de drogas de abuso é aumentada parecem ser semelhantes aos mecanismos subjacentes à formação da memória declarativa ou semânticas em outras estruturas cerebrais ^14. Portanto, a robustez do modelo sensibilização comportamental faz com que seja um sistema modelo atraente para estudar mecanismos de dependentes de experiência plasticidade.

O núcleo accumbens (NAC) é um integrador central do circuito de recompensa do cérebro, e tem sido extensivamente associados com o desenvolvimento da dependência de ^5,6. A formação de vício depende da transcrição de novas proteínas no núcleo accumbens, e robusto emprodução de programas de transcrição bem estruturados é observado no NAc seguinte experiência cocaína ^15-19. A resposta transcricional aguda a exposição à cocaína é susceptível de funcionar em vários níveis, a fim de adaptar-se ao forte estímulo de indução e para direcionar a produção de novas proteínas que são responsáveis ​​pelas mudanças estruturais e eletrofisiológicas induzidas pela exposição à droga ^6,19-22.

A fim de promover o estudo dos mecanismos moleculares dos dependentes de experiência plasticidade no cérebro, um protocolo descrito para a análise global da dinâmica de transcrição em amostras de tecido cerebral após a manipulação comportamental. O protocolo é ilustrada no contexto da experiência comportamental estudada no laboratório Citri - sensibilização comportamental à cocaína, utilizando matrizes dinâmicas de microfluidos para a análise da transcrição. O protocolo descrito, obviamente, não se limita ao estudo tele nucleus accumbens no contexto da sensibilização comportamental, mas poderia ser aplicado a um grande número de paradigmas comportamentais e regiões do cérebro. Na verdade, este protocolo pode ser aplicado aos tecidos do corpo fora do cérebro, e uma variedade de experiências ou manipulações do organismo estudado.

O protocolo é dividido em quatro etapas. No primeiro passo, o animal é submetido ao paradigma comportamental; No segundo passo, o tecido é microdissecados; na terceira etapa - mRNA é purificado, reversamente transcrito e sondadas, e na etapa final, os dados são analisados.

No contexto do estudo da dinâmica de transcrição, o tempo preciso e definição da experiência são provavelmente os parâmetros experimentais mais importantes para o controle. Por esse motivo, o nosso modelo de comportamento de escolha é a de sensibilização comportamental à cocaína, um sistema que permite elevado nível de controlo sobre os parâmetros do experimentador da experience. Paradigmas comportamentais adicionais que permitem o sincronismo preciso e abordam diferentes modelos de dependentes de experiência plasticidade ou a formação da memória estão disponíveis. Estes modelos incluem o medo condicionado ^23, enriquecimento ambiental aguda ^24,25, romance objeto de exploração ²⁶ e experiência visual após criação escuro ^27. Ainda assim, a sensibilização comportamental à cocaína é uma manipulação comportamental consistentemente robusta, criando um traço de memória altamente penetrante, que dura meses seguintes experiência cocaína ^28.

O cérebro é seccionado, seguido por microdissecção manual dos nucleus accumbens. Tem sido a nossa experiência que microdissecção Manual de fatias de cérebro rapidamente preparados proporciona o método mais fiável e rápido de extracção do tecido relevante para o paradigma comportamental, e com a experiência, as fronteiras do tecido tornam-se evidentes e facilmente reconhecidas. Alternativamente, fatias finas poderiam ser prepared, seguido por captura a laser microdissecção. Embora este método permite a delineação muito da região de interesse definidas, isto é lento (correndo assim o risco de perda de ARNm lábil), fastidioso e requer equipamento dispendioso dedicado (um microscópio equipado com uma instalação de captura por laser). O protocolo aqui definido também pode ser adaptado para análises de transcrição de uma única célula, por aspiração do citoplasma das células identificadas visualmente, utilizando pipetas de remendo ^29. É importante notar que o protocolo descrito fornece uma média populacional, ao mesmo tempo que é altamente provável que, na maioria dos casos, apenas uma sub-população de células dentro do tecido são, na verdade, envolvido na resposta à experiência. É de interesse para o perfil de transcrição de forma seletiva a partir de dentro de populações de células específicas em resposta à experiência, mas a discussão dessas abordagens está além do escopo atual.

Para a purificação de ARNm, transcrição reversa e de qPCR de consulta, o tecidoé interrompido por passagem através de agulhas finas, seguido pela utilização de kits comerciais (para mais informações, consulte a Tabela 8). A escolha é informado pela experiência com essas metodologias que garantam a extração segura de RNA de alta qualidade e resultados robustos de aplicações a jusante.

Enquanto o protocolo é descrito por de alto rendimento qPCR utilizando matrizes dinâmicas, as amostras podem ser sondado para a expressão de genes usando ponto final PCR, de baixo rendimento qPCR, microarrays de expressão gênica ou seqüenciamento de profundidade. A preferência por qPCR de alto rendimento, utilizando matrizes dinâmicas é devido ao facto de ARNm obtido a partir de núcleos cerebrais seguinte paradigmas comportamentais é frequentemente de quantidades limitantes. Matrizes dinâmicas fornecer uma plataforma que permite a análise global eficiente dos transcritos de um grande número de amostras em paralelo numa única experiência. Após a aquisição inicial do sistema de microfluidos (vulgarmente uma pu institucionalrchase), as experiências são relativamente baratos para ser executado. Na sequência desta análise, mais consultas das amostras pode ser realizada utilizando as plataformas mais caras para procurar novas transcrições (por microarrays ou RNAseq) com as matrizes dinâmicas proporcionando uma referência abrangente para a garantia da qualidade. Finalmente, para a análise de dados, são utilizados métodos convencionais. Ponteiros específicos a respeito de questões que possam surgir serão discutidos no texto do protocolo.

Este protocolo é mais apropriado para os investigadores interessados ​​em uma investigação completa do seu sistema de interesse, estudando várias condições e repetições. O protocolo também é mais adequado para os investigadores que já afinados (através de microarray ou RNAseq experimentos) em um subconjunto de 50-500 genes de interesse, que eles estão interessados ​​em consultar repetidamente.

Protocolo

NOTA: O protocolo segue as diretrizes de cuidados de animais da Universidade Hebraica de Jerusalém.

1 Preparação da solução de ACSF

1. Preparar solução ACSF como descrito na Tabela 1. Adicione 1 L de _ddH2O (> 18 mohms pureza), para trazer a osmolaridade ~ 300 mOsm / L, com adição apropriada de água ou de NaCl.

2. Equipamentos e sala preparada

O equipamento para o monitoramento do comportamento locomotor induzido pela cocaína é composto por câmaras de comportamento (50 x 45 cm) com fio com uma fonte de luz interior, ventilador e uma câmera (ou sensores de infravermelho), e está equipado com uma caixa de perspex interior (30 x 30 cm) em que os ratos estão autorizados a circular livremente enquanto sua locomoção é monitorada. O teste comportamental deve ser realizado entre 1 hora após as luzes acesas para 1 hora antes de as luzes apagadas, em um ciclo claro / escuro regular. Os animais devem ser treinados de forma consistente, ao mesmo tempo cada dia.

1. Conectar câmera ou sistema de infravermelho para um sistema adequado para monitorar e gravar o comportamento locomotor de ratos.
2. Limpar as câmaras depois de cada ensaio com desinfectante fornecida pela instalação de rato e / ou remoção de odores de reagentes, a fim de evitar a polarização de sinalização olfactivo e para assegurar a desinfecção adequada.

IMPORTANTE: Ao manusear os ratos ficar quieto, calmo e cuidadoso.

Preparação 3 Animais

1. Casa 5 C57BL6 camundongos machos (6-12 semanas de idade; ~ 25-35 g de peso) por gaiola, em uma sala com um ciclo claro / escuro de 12 horas e livre acesso a alimentos e água, de acordo com as normas e requisitos de Experimentação Animal Cuidados orientação e protocolos Comitê. Antes de iniciar o experimento, os ratos pesar e registrar os dados. A cocaína é administrada mais tarde de acordo com o peso dos ratos.
2. Transferir todas as gaiolas contendo ratos na sala comportamental 30 min antes de começar o primeiro julgamento.
3. Habituar todo ocamundongos utilizados no experimento de manipulação do experimentador, injeções e acompanhamento na configuração do comportamento. Isto é conseguido através de injecções intraperitoneais 3 consecutivas diárias de 250 ul de solução salina, como descrito abaixo.
4. Administrar uma injeção intraperitoneal de 250 mL de solução salina. Imediatamente após a injeção, coloque o mouse em uma câmara de comportamento para monitorar a atividade locomotora por 15 min. Repita esta ação durante 3 dias consecutivos, na mesma hora todos os dias.
5. No quarto dia, dividem os ratos em dois grupos. Prepara-se uma solução estoque de cocaína a 2 mg / ml em solução salina. Administrar uma única injecção de uma solução de cocaína (finais de 20 mg / kg) para o grupo experimental de acordo com o peso do rato (por exemplo, para um rato de 25 g - injectar 250 ul, ao passo que um rato de 30 g irá receber 300 ul). Administrar solução salina ao grupo de controlo. Imediatamente após a injeção, coloque o mouse por 20 minutos em uma câmara de comportamento para o monitoramento da atividade locomotora (Latossoloaliado, os primeiros 15 min são monitorados).
6. Após a injecção de cocaína, sacrificar os ratinhos em diferentes pontos de tempo (0, 1, 2, 4, 8 e 24 h após a injecção). Importante, certifique-se que os ratos de referência (0 ponto de tempo) não receberá qualquer injecção neste dia. Devido à sua importância, é imperativo incluir repetições do grupo de referência.

4. Dissecção de núcleo accumbens

1. Anestesiar os ratos com isoflurano, no momento apropriado após a injecção de cocaína / soro fisiológico. O isoflurano deve ser ventilado directamente para fora da sala. Portanto, o procedimento deve ser realizada numa hote química.
2. Monitorização da profundidade da anestesia, testando o reflexo do pé traseiro. Aperte a pata para provocar uma resposta de retirada pelo animal. Um animal que mostra um reflexo não está em um nível cirúrgico de anestesia e não em um estado de eutanásia.
3. A extracção do cérebro:
   1. Eutanásia o mouse por decapitação.
   2. Retirar a pele acima do centro do crânio e cortar o crânio com uma tesoura afiada.
   3. Inserir as tesouras no ponto onde a medula espinal entra no cérebro (forame) e fazer dois cortes laterais.
   4. A partir do mesmo ponto, fazer um corte sagital longa ao longo da sutura sagital. Ao chegar ao bulbo olfatório, clipe para a esquerda e para a direita.
   5. Com uma pinça, retire o crânio com cuidado, segurando cada metade do crânio firmemente e puxando para o lado, tomando cuidado para não pressionar sobre ou danificar o cérebro.
   6. Remover o cérebro enquanto cortando os nervos cranianos, utilizando uma colher de micro invertida espátula.
4. Inserir o cérebro em solução ACSF gelado durante 1-2 min para refrigerar e endurecer.
5. Retirar do cérebro ACSF, pavio excesso de fluido com uma toalha de papel, criar um corte coronal entre o cerebelo e o resto do cérebro e cola no cérebro, com a porção rostral voltado para cima, sobre o palco vibratome.
6. Cortar o NAc:
   1. Manter soluções aCSF a temperaturas geladas na câmara de corte do vibratome. Seção em 200 mM até o núcleo accumbens (NAC) é claramente identificado de acordo com o Paxinos e Franklin Rato Atlas Cerebral (aproximadamente 1,8 mm anterior ao bregma; prestar atenção à forma do corpo caloso, a localização ea forma da comissura anterior e os ventrículos, bem como a morfologia global da secção de cérebro). Neste ponto, criar duas secções de 400 um, a partir da qual o NAc serão dissecados.
   2. De acordo com um estereoscópio, use uma lâmina fina para dissecar a área de NAc fora das fatias. A definição da CNS é de acordo com o atlas do cérebro do rato Paxinos e Franklin, e pode convenientemente ser dissecado em seções apropriadas por quatro passes rápidos da lâmina sobre o tecido. (Figura 2).
   3. Coloque seções Nac imediatamente em 900 mL de Trizol reagente de lise em um tubo de microcentrífuga e armazenar a -80 ° C até RNA extração.

Transcrição 5 Extração de RNA e cDNA Reversa

1. Descongelar os tubos contendo o núcleo accumbens secções em reagente Trizol lise à temperatura ambiente e homogeneizar o lisado com uma seringa de 1 ml ligada a 25 G até a agulha o tecido é completamente homogeneizada (pelo menos 15-20 vezes). As primeiras voltas são difíceis, e requerem que empurra o tecido contra a parede do tubo, de modo a dividi-la em pedaços pequenos que podem entrar na ponta da agulha.
2. Para assegurar a homogeneização, pipetar o lisado para uma mini-coluna de spin QIAshredder e centrifugar a 12000 xg durante 1 min.
3. Pipete o lisado para um novo tubo de microcentrifugação e extrair o ARN de acordo com as instruções do fabricante. Armazenar o ARN a -80 ° C até à sua utilização.
4. Medir a concentração de RNA, analisar a integridade e qualidade usando uma Bioanalyzer ou equipamento equivalente. Use 100-500 ng RNA para cada rodada de preparação cDNA com rAndom primers hexaméricos.

6. Primer Projeto e Testes Primer

1. Escolhendo bons primers: Para um par de primers ideal para qPCR de transcritos de mRNA, siga estes requisitos (Figura 3):
   1. Primers projeto já não contendo de 17-28 bases. Evite repetições de nucleotídeos como eles promovem err�ea.
   2. Iniciadores de design com temperatura de fusão _(Tm) entre 56-68 ° C (60-64 ° C de forma óptima). A T _{m de} dentro do par de primers devem estar dentro de 1 ° C, de um ao outro.
   3. Esteja ciente de que o tamanho do produto deve ser idealmente entre 80 e 150bp.
   4. Certifique-se de que pelo menos um dos iniciadores inclui uma junção exão-exão, ou o fragmento amplificado contém um grande intrão (intrão-spanning), para evitar a amplificação de contaminantes de ADN genómico.
   5. Use um software confiável com base em Primer3 (para exemplos, ver Tabela 2), a fim de melhorar o projeto de primer.
2. Testando o prIMers: A fim de assegurar a especificidade e eficácia dos iniciadores, uma reacção de qPCR de controlo devem ser executadas:
   1. Use uma amostra positiva (contendo ADNc molde para todos os pares de iniciadores relevantes) e titula-se o ADNc (por exemplo, oito diluições de três vezes a partir de uma concentração inicial de ~ 10 ng), em reacções paralelas em duplicado. Incluir um controlo sem molde, o qual controla a contaminação dentro das soluções utilizadas para a reacção.
   2. Calcular a eficiência do iniciador por meio da fórmula: (10 ^{(- 1 / declive)} -1) x 100, de tal forma que a curva da inclinação óptima é - 3,333 (isto é, 10 ^{(- 1 / 3,333)} = 2) (Figura 4).
   3. Determinar a especificidade da amplificação. Amplificação específica é demonstrada por um único pico proeminente comum para todas as curvas de fusão dos produtos de amplificação, enquanto que fora da amplificação alvo, apresentado como um desvio óbvio from o único grande pico.

7 Análise qPCR

1. Pré-amplificação:
   1. Análise abrangente qPCR baseia-se na consulta paralelo de limitar as quantidades de ARN com um grande número de pares de iniciadores. Portanto, um passo de pré-amplificação é essencial. Neste passo, o ADNc é submetido a 14-18 ciclos de pré-amplificação com uma mistura de todos os iniciadores que irão ser utilizados para a consulta da amostra no futuro (até 800 pares de iniciadores).
   2. Diluir todos os primers em TE (baixo EDTA) a 50 mm para Alvo amplificação específica (STA).
   3. Piscina juntos alíquotas de 1 ul de tudo do iniciador 50 uM define a ser incluído na reacção STA, até 800 ensaios.
   4. Preparar uma pré-mistura e as amostras para STA, tal como descrito na Tabela 3. Permitir erro através da preparação de mistura de 110% do número de amostras a serem amplificadas.
   5. Aliquota de 3,75 mL de STA de pré-mistura para cada amostra. Adicionar 1,25 mLde cDNA para cada.
   6. Vortex para misturar as reações e centrifugar por 10 seg.
   7. Coloque as reacções STA em um termociclador e ciclo como indicado na tabela 4.
2. Exonuclease I (ExoI) tratamento:
   1. Dilui-se a Exo I, como indicado na Tabela 5.
   2. Adicionar 2 mL de ExoI diluído (4 U / mL) para cada reação STA 5 jul, vortex, girar para baixo (> 6.000 xg) e coloque em um termociclador a 37 ° C durante 30 minutos e depois a 80 ° C durante 15 min.
   3. Dilui-se os produtos finais a uma concentração apropriada para o ensaio. Use TE Buffer (adicionar 43 mL de tampão TE para a amostra TSA 7 mL).
   4. Guarde os produtos STA diluído a -20 ° C ou o uso imediatamente.
3. Primer e configuração de exemplo para qPCR:
   1. Preparar as amostras como se mostra na Tabela 6. Preparar a mistura de acordo com o chip escolhida para a experiência, e adicionar as amostras conforme apropriado.
   2. Agilitar as soluções de amostra da mistura por um período mínimo de 20 segundos, e centrifugar (> 6000 xg) durante pelo menos 30 seg. Reacções preparadas podem ser armazenadas durante períodos de tempo curtos, a 4 ° C até que o chip é pronto para carga.
   3. Preparar os ensaios tal como descrito na Tabela 7.
   4. Agitar a mistura de ensaio durante um mínimo de 20 seg e centrifuga-se (> 6000 xg) durante pelo menos 30 segundos para girar para baixo de todos os componentes.
      IMPORTANTE: Vortex bem e centrifugar todas as soluções de amostra e ensaio antes da pipetagem para as entradas de chips. Não fazer isso pode resultar em uma diminuição da qualidade dos dados.
      NOTA: A concentração final de cada iniciador é de 5 uM na entrada e 500 nM no final da reacção.
4. Priming e carregando a matriz dinâmica IFC (circuito de fluídica integrado) de chips. O chip IFC tem entradas para amostras e ensaios, bem como entradas especificadas (acumuladores) para a linha de controlo de fluido (óleo mineral) utilizados para pressurizar as câmaras de microfluidos (Figure 4A).
   1. Injectar fluido da linha de controlo em cada um acumulador no chip.
   2. Remover e descartar o filme protector azul a partir do fundo do chip.
   3. Coloque o chip no controlador IFC apropriado (controlador MX para o IFC 48,48 matriz dinâmica ou o controlador HX IFC para a 96,96 dinâmico matriz IFC), em seguida, executar o script Prime (113x) para o IFC 48,48 matriz dinâmica ou o Prime (136x) roteiro para a dinâmica 96,96 matriz IFC para ferrar o chip.
   4. Quando o script for concluído, retire o chip ferrado do controlador IFC.
   5. Pipeta de 5 mL de cada mistura de ensaio e 5 mL de cada amostra em Mix suas entradas.
   6. Retorne o chip para o controlador IFC.
   7. Usando o software controlador IFC, execute o Mix (113x) roteiro de Carga para o 48.48 dinâmico matriz IFC) ou Carregar Mix (136x) roteiro para a dinâmica 96,96 matriz IFC para carregar as amostras e ensaios para o chip. Quando o script de carga Mix terminar, retire a cargachips ed do controlador IFC.
   8. Coloque o chip no termociclador, crie um novo prazo chip (de acordo com as instruções do fabricante), incluindo a análise de curva de fusão. Usando o software termociclador, assegurar que as câmaras de reação são reconhecidas corretamente, e permitir que a reação de correr para a conclusão.

Análise de Dados 8.

1. A garantia da qualidade: A fim de garantir a qualidade dos dados, verificar a qualidade dos iniciadores de endereçamento curvas de diluição (como descrito acima). Monitorar a especificidade da amplificação exibindo as curvas de fusão de fragmentos amplificados, os picos de forma otimizada, que deve ser bem alinhada ^29.
2. Visualização: Para visualização de grandes quantidades de dados obtidos pelo alto rendimento qPCR, utilize o software gerado heatmaps, em que a expressão é de intensidade de cor correspondente. Além disso, apresentar a dinâmica de transcrição de genes individuais como gráficos de dispersão alinhados.
3. Publicação: Em publicaçãoos resultados de expressão gênica, é aconselhável seguir as orientações MIQE para publicação de experimentos quantitativos PCR em Tempo Real, detalhando as informações mínimas que devem ser comunicadas para um experimento de qPCR para garantir a sua exactidão, a interpretação correta, e reprodutibilidade.

Resultados

A qualidade dos resultados obtidos através da aplicação deste protocolo crucialmente depende de um número de parâmetros. Planeamento experimental adequada irá resultar na perturbação mínima aos ratinhos experimentais, de modo a que a experiência testado (neste exemplo, que a exposição a cocaína) será a experiência mais dominante na sua história recente, e, portanto, irá resultar num forte e específico da transcrição programa. Figura 1 descreve o plano experimental para a sensibiliza?...

Discussão

Caracterização de sucesso da expressão gênica do tecido cerebral após paradigmas comportamentais depende de: 1) manejo cuidadoso de ratos durante o paradigma comportamental; 2) dissecção rápida e precisa do tecido de interesse; 3) medidas RNA segura de garantir a integridade do RNA; e 4) O planejamento cuidadoso de primers e delineamento experimental, bem como precisão e atenção aos detalhes na preparação para a análise de qPCR.

O objectivo do processo descrito é a caracteriza...

Materiais

Name	Company	Catalog Number	Comments
Virusol	Oriek Medical	J29D
Isoflurane, USP 100%	MINRAD INC	NDC 60307-110-25
RNeasy plus Universal Mini Kit	QIAGEN	73404
QIAshredder	QIAGEN	79654
High Capacity cDNA Reverse Transcription kit	Invitrogen	AB-4368814
TE Buffer	Invitrogen	1355656
Behavior Chamber (MDF; 50 x 45 cm)			Self assembled
Inner Perspex box (30 x 30 cm)			Self assembled
Camera and video recorder	Campden Inst.	CMD-80051
Media Recorder software	Noldus	NDS-NMR3-00M
Iris Scissors	FST	FST-14062-09
Vibratome	Campden Inst.	7000SMZ-2
Bioanalyzer	Agilent Technologies	The Agilent 2100 Bioanalyzer
Thermal cycler	Bio-Rad	1852048
Inverted microspoon spatula	Bochem Instrument GmbH	3213
Biomark HD Reader	Fluidigm	BMHD-BMKHD
Dynamic array Chip for 96.96 gene expression	Fluidigm	BMK-M-96.96