Normais e malignas Transplante de Células Muscle em imunológico comprometido Adulto Zebrafish

Resumo

Here, we present a protocol for cell transplantation of zebrafish skeletal muscle and embryonal rhabdomyosarcoma (ERMS) into adult immune compromised rag2^E450fs homozygous mutant zebrafish. This protocol allows for the efficient analysis of regeneration and malignant transformation of muscle cells.

Resumo

Zebrafish tornaram-se uma ferramenta poderosa para a avaliação do desenvolvimento, regeneração e câncer. Mais recentemente, protocolos de transplante de aloenxerto de células têm sido desenvolvidas que permitem o enxerto de células normais e malignas em irradiadas, singeneicos, e peixe-zebra adulto imune comprometido. Estes modelos, quando juntamente com protocolos de transplante de células otimizados permitir a rápida avaliação da função das células-tronco, a regeneração após lesão, e câncer. Aqui, apresentamos um método de transplante de células de adulto zebrafish músculo esquelético e rabdomiossarcoma embrionário (ERMS), um sarcoma pediátrica que compartilha características com o músculo embrionária, em imunológico comprometido adulto RAG2 ^E450fs peixe-zebra mutante homozigoto. É importante notar que estes animais carecem de células T e reduziram a função das células B, facilitar o enxerto de uma vasta gama de tecidos de animais dadores não relacionados. Os nossos protocolos optimizados mostram que marcado por fluorescência de células de músculo preparções de peixes-zebra transgénicos α-actina-RFP enxertar robustamente quando implantado na musculatura dorsal de RAG2 peixes mutantes homozigotos. Nós também demonstramos enxerto de ERMS fluorescentes-transgênica onde fluorescência está confinada às células com base no estado de diferenciação. Especificamente, foram criados em ERMS AB-estirpe myf5-GFP; mylpfa-mCherry animais transgénicos duplos e tumores injectados no peritoneu de peixe adulto imunológico comprometido. A utilidade destes protocolos se estende para o enxerto de uma grande variedade de células normais e malignas doadoras podem ser implantados na musculatura dorsal do peixe-zebra ou peritoneu de adulto.

Introdução

Peixe-zebra são um modelo excelente para estudos de regeneração, porque eles podem regenerar aletas amputados, bem como um cérebro danificado, retina, espinal medula, coração, músculo esquelético e de outros tecidos ^1. Células-tronco e estudos regenerativos no peixe-zebra adulto em grande parte voltada para a caracterização da regeneração em resposta à lesão, enquanto a identificação de células-tronco e progenitoras de vários tecidos por transplante de células só recentemente foi explorado ^2. Zebrafish também se tornaram cada vez mais utilizado para o estudo do câncer através da geração de modelos de cancro transgênicos que imitam doenças humanas ^3-10.

No cenário de câncer, as abordagens de transplante de células tornaram-se amplamente adotada e permitir a avaliação dinâmica de processos importantes de câncer, incluindo a auto-renovação ^11, a heterogeneidade funcional ^12,13, neovascularização ^14, proliferação,respostas de terapia ¹⁵ e invasão ^16,17. No entanto, células enxertadas são muitas vezes rejeitadas a partir de peixes destinatário deverá acolher defesas imunitárias que atacam e matam o enxerto ^18. Vários métodos têm sido utilizados para superar a rejeição das células enxertadas. Por exemplo, os animais receptores do sistema imune pode ser transitoriamente ablação por uma dose baixa de irradiação gama antes do transplante ^18,19. No entanto, o sistema imune receptor irá recuperar por 20 dias pós-irradiação e matar células de dador ^18. Alternativamente, o tratamento com dexametasona tem sido utilizada para suprimir a função de células T e B, fornecendo supressiva condicionado se encontra imune e facilitar o enxerto de uma vasta gama de tumores humanos para até 30 dias ^14. Estas experiências requer dosagem de droga constante e são limitados para o estudo de tumores sólidos. Ensaios de enxerto a longo prazo usaram linhas sing�icos geneticamente idênticos ^20-22, em que o doador e recipient células são imunes correspondido. No entanto, estes modelos requerem linhagens transgênicas de interesse a ser atravessado para o fundo singeneico por mais de quatro gerações para produzir linhas totalmente sing�icos. Para obviar a problemas de rejeição imunitária no receptor de peixe, o nosso grupo desenvolveu recentemente uma comprometida RAG2 ^E450fs mutante linha homozigótica (ZFIN designação alelo RAG2 ^fb101), que reduziram a função das células T e B e que permitam o enxerto de uma vasta gama de tecidos ²³ imunológico. Similar imunocomprometidos modelos de rato foram utilizados extensivamente para o transplante de células de rato e ^{de 24} tecidos humanos.

Aqui, apresentamos métodos para o transplante de músculo esquelético e rabdomiossarcoma embrionário (ERMS), um sarcoma pediátrica que compartilha características com o músculo esquelético, no RAG2 recentemente descrito homozigoto peixe-zebra mutante. A disponibilidade de um peixe-zebra adulto comprometido imuneexpande nossa capacidade de realizar estudos de transplante de células em grande escala para visualizar diretamente e avaliar com células-tronco auto-renovação dentro dos tecidos normais e malignas. Com este método, marcado por fluorescência a partir de preparações de células de músculo adulto α-actina-RFP ²⁵ peixes-zebra transgénicos robustamente enxertar em RAG2 peixe-zebra mutante homozigótica após a injecção na musculatura dorsal. Além disso, demonstramos o enxerto e expansão da -GFP myf5 primário; mylpfa- ERMS transgênicos mCherry após a injeção intraperitoneal em RAG2 ^E450fs peixe-zebra mutante homozigoto. A utilidade destes protocolos ultrapassa os exemplos mostrados e pode ser facilmente aplicado a tecidos regenerados adicionais de peixe-zebra e cancros.

Protocolo

Todos os procedimentos com animais foram aprovados pelo Hospital Geral de Massachusetts Subcomissão de Investigação Animal Care, sob o protocolo nº 2011N000127.

Seção 1. Skeletal Muscle Transplante Celular em RAG2 Adulto ^E450fs Homozygous Mutant Zebrafish

1. Preparação de Zebrafish Adulto Doadores músculo esquelético Cells

1. Obter peixe-zebra transgénicos adultos que tenham marcado por fluorescência muscular. Nesta experiência, 30 α -actina-RFP doador de peixe ^25, foram utilizadas para transplantar 1 x 10 ⁶ culas por peixe destinatário.
2. Sacrifício do peixe-zebra dador em 1,6 mg / ml tricaina metanossulfonato (MS222) durante 10 minutos ou até que não haja movimento opérculo é evidente.
3. Coloque o peixe doador em uma toalha de papel absorvente e especial sobre o consumo do músculo dorsal usando uma lâmina de barbear limpo. O corte deve ser feita perto do anus em um ângulo de 45 ° para maximizar a recolha de tecido (como observado na Figura 1A ). Coloque tecido dissecado em um ambiente limpo 10 centímetros placa de Petri.
4. Adicionar 500 ul de tampão de suspensão (0,9x pré-arrefecida de tampão fosfato salino (PBS) suplementado com 5% de Soro Fetal Bovino (FBS)) para o tecido dissecado. Até 10 dador de peixe-zebra pode ser colocado em conjunto neste volume.
5. Picar o tecido com uma lâmina de barbear> 20 vezes até que as células estão em uma suspensão uniforme. Toda a musculatura dorsal é homogeneizado incluindo pele, ossos e barbatanas. Adicionar 2 ml de tampão de suspensão. Usando uma pipeta de 5 ml, tritura-se a suspensão de células ≥20 vezes para dissociar as células.
6. Filtra-se a suspensão de células através de um coador de malha de 40 um para um tubo cónico de 50 ml colocados em gelo.
7. Lava-se a placa de Petri com um adicional de 2,5 mL de tampão de suspensão para recolher tecido remanescente e filtra-se através do mesmo filtro e tubo cónico, para um volume final de 5 ml (10 dador de peixe pode ser usado por isolado).
   NOTA: pele, os ossos e as aletas serão excluídos seguinte filtração.
8. Se for o caso, combine suspensões semelhantes para o mesmo tubo cônico.
9. Contar o número total de células viáveis ​​usando o corante azul de tripano e um hemocitómetro.
10. Reservar 500 ul por citometria de fluxo, se desejado (opcional, passo 2).
11. Centrifuga-se a suspensão de células 1000 xg, durante 10 min, a 4 ° C.
12. Rejeitar sobrenadante e ressuspender as células em 3,33 x 10 ⁵ células / mL (0,9 vezes PBS + 5% de FBS). No total, 3 ul será injectada por peixe receptor para um total de 1 x 10 ⁶ células por recipiente (passo 3).
    NOTA: Menos de 3 ul de suspensão de células deve ser transplantadas para o peixe destinatário. Se o número de células é limitante, tão baixa quanto 5 x 10 ⁴ culas por receptor pode levar a enxerto com sucesso (Tabela 1).

2. Citometria de Fluxo de Análise de Doadores Skeletal Muscle celular Preparação (Opcional)

1. Isolar o músculo de um tipo selvagem, peixes não-transgénicos como delineado in passo 1.1. Este exemplo serve como controlo negativo e é útil para definir portões Citometria de Fluxo.
2. Adicionar um corante de viabilidade adequada. Por exemplo, adicionam-se 5 ml de solução de estoque de DAPI (500 ng / uL) em 500 uL de preparação de músculo. Vortex ligeiramente antes da análise. Adquirir 5 x ^outubro 3-1 x 10 ⁴ eventos. Analisar amostras de controlo de tipo selvagem primeiro a colocar portões seguido por análise de células musculares isoladas a partir de peixes transgénicos.
   NOTA: A citometria de fluxo de análise é geralmente realizada dentro de 1 hora após a dissecação do tecido muscular, tempo durante o qual as células dissecadas reter mais do que 60% ​​de viabilidade (Figura 2). As células devem ser mantidas em gelo em todos os momentos. Viabilidade celular total pode ser reavaliado antes do transplante utilizando corante azul tripan e um hemocitômetro.

3. intramuscular Transplante de Células musculares esqueléticas em RAG2 Adulto Homozygous Mutant Zebrafish

1. Limpe a 10 μ; L 26S G micro-seringa através da elaboração e expulsando solução a 10% de lixívia (5 vezes), seguido de etanol a 70% (5 vezes), e, em seguida, seguido de tampão de suspensão (0.9x PBS + 5% de FBS, 10 vezes).
2. Anestesiar peixes 2-4 meses de idade homozigoto RAG2 mutante ou peixe tipo de destinatário selvagem (como controles) pela adição de gotas individuais de metano tricaina (MS222, 4 mg / ml solução estoque) em uma placa de Petri contendo o peixe em água do sistema até que os movimentos lentos opérculo e peixe são ainda.
   NOTA: Dose de anestesia tricaina dependerá da idade e tamanho do peixe-zebra destinatário.
3. Coloque zebrafish destinatário anestesiados em uma toalha de papel úmido ou esponja, com o lado esquerdo virado para cima.
4. Insira a agulha da seringa na musculatura látero-dorsal (consulte a Figura 1A). Certifique-se de que as injecções são efectuadas com um ângulo de 45 °. Injectar 3 ul da suspensão de células (preparado no passo 1.12) por peixe para um total de 1 x 10 ⁶ células por recipiente.
5. Transferir cuidadosamente zebrafish injetado em um tanque limpo usando uma colher de plástico para se recuperar.
6. Avaliar zebrafish destinatário para as taxas de enxertia em 10, 20, 30 dias pós-transplante por imagem peixes anestesiados em campo brilhante e microscopia de epifluorescência.

Seção 2. Embryonal (ERMS) Transplantation em Adulto Homozygous RAG2 Mutant Zebrafish

4. DNA microinjeção de embriões Zebrafish

1. Linearizar o plasmídeo RAG2-kRASG12D ⁷ por digestão de 10 ug de ADN com XhoI, a 37 ° C durante 6 h ou O / N.
2. Purificar DNA por fenol padrão: clorofórmio e precipitado com etanol. Ressuspender em 20 ul de água desionizada (alternativamente, as colunas comerciais de purificação de fragmentos de ADN pode ser usado).
3. Executar o ADN digerido e digerido num gel de agarose a 1% e determinar a concentração de ADN bleitura espectrômetro y. Alternativamente, as amostras de executar a 1: 1, 1: 5, 1:10 e diluições sobre um gel de agarose a 1% e quantificar comparado a uma escada de ADN.
4. Prepara-se uma mistura de injecção a uma concentração final de 15 ng / uL de ADN digerido com RAG2-kRASG12D em KCI 0,1 M e Tris-EDTA 0,5x. A quantidade final de ADN injectado em 2 nl de volume de injecção será de 30 pg.
   NOTA: Até três construções de DNA diferentes podem ser co-injetado em um máximo de 60 pg de DNA por embrião de forma eficiente. Estes transgenes se integram no genoma e co-expressas no tumor em desenvolvimento ^26.
5. Injectar linearizado RAG2-kRASG12D em embriões de estádio de uma célula, essencialmente como descrito ²⁷ em peixes-zebra de uma estirpe de interesse (Figura 1B). As injecções devem ser realizados na célula e não na gema para maior eficiência. Neste experimento, a dupla transgênico AB-tensão; myf5-GFP, mylpfa-mCherry foi usado. Levante zebrafish usando o padrão de criação protocols ^28.
   NOTA: sobrevivência Injection é muitas vezes dependente da cepa zebrafish utilizado. Em média, 30% dos embriões injectados irão desenvolver ERMS. 300-600 embriões devem ser injectada por experiência, a fim de assegurar que os tumores primários suficientes GFP-positiva e mCherry-positivos são gerados para o transplante e análise.

5. Triagem para ERMS primárias em Zebrafish Larvas

1. Observe zebrafish injetado de 10 a 30 dias após a injeção para o surgimento de ERMS primárias visíveis externamente.
2. Aos 30 dias após a injecção, anestesiar zebrafish destinatário adicionando gotas individuais de metano tricaina (MS222 solução stock 4 mg / ml) em uma placa de Petri contendo sistema de água de peixe até movimentos opérculo lento e peixes ainda estão.
   NOTA: Dose de anestesia tricaina irá depender da idade e tamanho do peixe-zebra destinatário. Zebrafish portadores de tumores primários requerem doses mais baixas de tricaina.
3. Selecione ERMS-bearing primáriopeixes que são myf5-GFP -positivo e mylpfa-mCherry -positivo, utilizando um microscópio de epifluorescência.

6. ERMS Tumor Preparação

1. Sacrifício peixe-zebra ERMS-rolamento primário seleccionado em 1,6 mg / ml tricaina metanossulfonato (MS222) durante 10 minutos ou até que não haja movimento opérculo é evidente.
2. Processar cada peixe-zebra portadores de tumor separadamente. Coloque o peixe num prato de Petri limpo e dissecar em torno do tumor utilizando uma lâmina de barbear e uma pinça fina (como mostrado na Figura 1B). Transfira o tecido tumoral dissecados para um prato limpo Petri.
3. Adicionar 100 ul de 0,9x pré-gelada de tampão de fosfato salino (PBS) suplementado com 5% de Soro Fetal Bovino (FBS). Mince tecido com uma lâmina de barbear limpo> 20 vezes até que as células estão em uma suspensão uniforme.
4. Adicionar 900 ul do mesmo tampão (PBS 0,9x + 5% de FBS), pipetar para cima e para baixo várias vezes para dissociar células, utilizando um 1000 ul filtrados ponta da pipeta. Filtrar através de um 40 &# 956; m mesh peneira para o correspondente tubo de 50 ml. Guarde no gelo.
5. Lava-se a placa de Petri com um adicional de 2-4 ml de tampão, e passam através do mesmo filtro de malha e para dentro do tubo cónico correspondente.
6. Centrifugar a 1.000 xg, durante 10 min, a 4 ° C.
7. Descartar o sobrenadante e ressuspender em 100 ul de tampão.
8. Contar o número total de células viáveis ​​usando o corante azul de tripano e um hemocitómetro.
9. Dilui-se as células à concentração desejada no mesmo tampão (PBS 0,9x + 5% de FBS). As células devem ser diluídas a 5 x 10 ³ células / ul de transplante de 5 ul por recipiente em peixes-zebra de um total de 2,5 x 10 ⁴ culas por recipiente.
10. A análise de citometria de fluxo também pode ser realizada com uma pequena quantidade da suspensão do passo 6.5 para quantizar as proporções relativas de células fluorescentes na amostra.
    NOTA: Separe 100 ml de suspensão de células (após filtragem na etapa 3.5) e diluir com 400 ulde 0,9x PBS + 5% de FBS tampão de suspensão para análise de citometria de fluxo. Para garantir a correcta delimitação, realizar análises adicionais usando tecido tumoral transgênica única ou músculo isolado do tipo selvagem adulto, myf5-GFP e mylpfa-mCherry peixe. Execute Citometria de Fluxo essencialmente como descrito no passo 2 da secção 1.

7. Transplante de ERMS em Adulto RAG2 Homozygous Mutant Zebrafish

1. Limpar a 10 ul 26S G micro-seringa através da elaboração e expulsando 10% de solução de lixívia (5 vezes), seguido de etanol a 70% (5 vezes), e, em seguida, seguido de tampão de suspensão (0.9x PBS + 5% de FBS, 10 vezes ).
2. Anestesiar destinatário homozigoto peixes mutantes RAG2 adicionando gotas individuais de metano tricaina (MS222 / solução stock 4 mg ml) em uma placa de Petri contendo o peixe em água do sistema até que os movimentos são lentos e opérculo peixes ainda estão.
3. Coloque zebrafish destinatário anestesiados em uma toalha de papel molhado ou spoESL, com o lado ventral para cima.
4. Injectar 5 ul da suspensão de células para dentro da cavidade peritoneal (2,5 x 10 ⁴ culas por recipiente).
   NOTA: A agulha de injecção deve ser limpo entre as injecções de diferentes tumores, tal como descrito na etapa 4.1. 5 a 10 ul pode ser eficientemente transplantado intraperitonealmente, dependendo do tamanho do peixe destinatário. Tumor de enxerto pode ser realizada por injecção de 1 x ^04-05 outubro x 10 ⁵ células não separados por peixe destinatário (Tabela 1).
5. Com cuidado, coloque zebrafish destinatário em um tanque limpo com uma colher de plástico.
6. Avaliar zebrafish destinatário para as taxas de enxertia em 10, 20, 30 dias pós-transplante por imagem peixes anestesiados em campo brilhante e microscopia de epifluorescência.
7. Utilize peixes enxertada para aplicações a jusante, nomeadamente a triagem de fluorescência de células activadas (FACS) para avaliar o estado de diferenciação (Figura 3H), Analy histológica convencionalsis (Figura 3F), respostas de terapia de imagem ^15, e / ou transplante de série se aproxima incluindo análise de diluição limitante ^11.

Resultados

Um procedimento para a preparação e transplante de células do músculo esquelético de doadores transgênicos α-actina-RFP em imunológico comprometido homozigoto peixe-zebra mutante RAG2 Foi demonstrado (Protocolo ponto 1, a Figura 1A e Figura 2). O tecido muscular esquelético foi preparado a partir de doadores transgénicos-α-actina RFP e a suspensão de célula única resultante continha 84,3% de células viáveis, tal como avaliado por exclusão com DAPI seguinte análise de citometria de fluxo (Figura 2B). Células RFP-positivos composta de 35,3% desta suspensão de células individuais (Figura 2C). Transplante de células em músculo esquelético dorsal do peixe RAG2 homozigótico mutante receptor conduziu a enxerto consistente e forte, tal como avaliado por diferenciação de células individuais em fibras multinucleadas (1 x 10 ⁶ células injectadas por peixe, Tabela 1, Figura 2D-I). Selvagem tipobeneficiário peixes o enxerto falhou fibras musculares durante a experiência de 30 dias (n = 13). Aos 10 dias após o transplante, 9 em cada 14 RAG2 do peixe-zebra mutante homozigótica continha fibras musculares RFP-positiva próximo do local de injecção (64,3%, Figura 2E, F). Importante, músculo-RFP positivo enxertada persistiu 30 dias pós-transplante (Figura 2G-I), com um subconjunto de animais a ser seguido durante 115 dias após a enxertia e exibindo enxertia músculo robusto e persistente (dados não mostrados). Estes resultados são semelhantes às descritas anteriormente pelo nosso grupo de ²³ utilizando o mesmo protocolo (Tabela 1).

Nós também apresentamos um método para a geração, a preparação e a transplantação de células tumorais ERMS na cavidade peritoneal de peixe destinatário RAG2 homozigótico mutante (Protocolo ponto 2, Figura 1B e Figura 3). ERMS foram gerados em DOUBLe transgénico myf5-GFP; mylpfa-mCherry peixe que foram mostrados para permitir a visualização de heterogeneidade intra-tumoral e análise funcional de subpopulações de células de tumor após transplante de ^11. No entanto, a melhor caracterização molecular de cada subpopulação é difícil porque os peixes são pequenos quando eles desenvolvem ERMS entre 10 a 30 dias de vida e o número de células tumorais são limitantes para aplicações a jusante. Uma solução consiste em expandir o número de células de tumor por enxertando ERMS em peixes-zebra receptor adulto. Até à data, experiências semelhantes foram concluídos utilizando-CG1 estirpe peixe singeneicos e necessária em excesso de 4 gerações de retrocruzamento para desenvolver linhas singeneicas que eram transgénicos para myf5-GFP; mylpfa-mCherry. Para contornar esses problemas, nós demonstraram a utilidade da imunológico comprometido RAG2 homozigoto zebrafish receptor mutante enxertar ERMS primárias a partir de um peixe-zebra AB-tensão. Todos os ERMS primárias em vós implantada em rag2 animais mutantes homozigóticos, facilitando a expansão do tumor (Tabela 1). Resultados semelhantes foram relatados recentemente, onde 24 dos 27 RAG2 peixe-zebra mutante homozigoto ERMS enxertadas, enquanto 0 de 7 selvagens irmãos tipo engrafted doença ^23. Um exemplo representativo de uma ERMS enxertada é mostrado aos 30 dias pós-transplante na Figura 3E. Enxertada ERMS partilham características histológicas de rabdomiossarcoma embrionário, semelhante à encontrada no tumor primário (Figura 3B e 3F). A análise FACS confirmou que continha ERMS funcionalmente distinta células de tumor e células diferenciadas que expressam myf5-GFP e / ou mylpfa-mCherry propagação. As taxas de sobrevivência após o procedimento de injecção intraperitoneal foram em excesso de 95%. Zebrafish Destinatário geralmente sucumbem de carga tumoral após os 30 dias pós-transplante ponto de tempo.

Figura 1. Protocolo esquemática para (A) normal e (B) a transplantação de células do músculo esquelético maligna para RAG2 mutante homozigótica peixe-zebra. etapas opcionais são marcados com (*).

Figura 2. enxerto do músculo esquelético em RAG2 homozigoto peixe-zebra mutante. (A)-α-actina RFP transgênico zebrafish doador. (B) A viabilidade celular de suspensão de células do músculo isolado, tal como avaliado por exclusão de corante de DAPI e citometria de fluxo. (C) Percentagem de células RFP-positivos encontrados dentro da suspensão de células do músculo do doador α-actina-RFP (vermelho), em comparação com um controlo do tipo selvagem(Cinza). (DE) Mesclado campo brilhante e imagens fluorescentes de animais selvagens do tipo (D) ou RAG2 peixe mutante homozigoto (E) aos 30 dias pós-transplante. taxas (F) ao longo do tempo o enxerto. Red indica número de animais enxertados enquanto cinza mostra peixes não enxertada. Número de animais analisados ​​em cada ponto de tempo são indicados. (GI) imagens de ampliação alto da região em caixa em painel E mostradas na 10 (L), 20 (H) e 30 (I) dias pós-transplante, que mostra a retenção de fibras musculares diferenciadas ao longo do tempo (pontas de seta). Barras de escala igual a 2 mm. Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 3. Transplantes de myf5-GFP; mylpfa-mCherry ERMS em mutante homozigótica RAG2 . peixe-zebra (AD) RAG2-kRASG12D ERMS primárias induzidas decorrentes AB-deformação myf5-GFP; zebrafish mylpfa-mCherry aos 30 dias de vida. (EH) RAG2 homozigoto peixe-zebra mutante enxertada com ERMS e analisados ​​aos 30 dias pós-transplante. (A, E) de campo claro e imagens fluorescentes de ERMS primárias e transplantados mesclada. Área tumoral é delineado e ponta de seta indica local de injecção em E. (B, F) e hematoxilina-eosina parafina de primário (B) e ERMS enxertadas (F) mostrando as áreas de maior celularidade associada com o câncer. (C,G) A viabilidade celular, tal como avaliado por exclusão de corante de DAPI e citometria de fluxo. (D, H) sub-populações de células tumorais fluorescentes, como avaliado por citometria de fluxo. Barras de escala igual a 2 mm (A, E) e 50 mm (B, F). Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Tabela 1. Resultados de enxerto e transplante de células do músculo ERMS. (*) Indica dados previamente relatados utilizando as mesmas técnicas ^23. Os dados são reproduzidos com autorização da Nature Methods. Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta tabela.

Discussão

Enxerto eficiente e robusta de adulto dorsal do músculo esquelético foi atingido com um método de preparação de células muito simples, seguidas por injecção de células na musculatura dorsal do peixe RAG2 mutante homozigótica. Em geral, os procedimentos de injecção por via intramuscular foram muito robusta, com alguma morte associada imediatamente após o procedimento de implante, que varia entre 10% a 35%, dependendo da experiência. Otimização adicionais provavelmente vai centrar-se na utilização de pequenas agulhas de calibre para injeção e desenvolvimento de aparelhos de injeção estacionário usando um microscópio e micromanipulator, o que facilitará a facilidade de implantação de células. Nossa abordagem também usou células musculares, não triados de animais dadores e continha apenas cerca de 30% de células progenitoras muscular. A utilização de linhas transgénicas repórter que rotulam células estaminais e FACS isolamento provavelmente irá fornecer suspensões de células enriquecidas que levam ao aumento enxerto em peixes destinatário. Músculo Esquelético cells também pode ser enriquecido e cultivadas antes do transplante, como anteriormente descrito ^29. Notavelmente, os resultados indicam que os passos de estabelecimento de nicho e diferenciação de tecido muscular dador ocorre antes dos 10 dias pós-transplante, a construção deste modelo experimental como uma plataforma robusta e rápida para avaliar o enxerto ea regeneração musculares. Além disso, estas experiências duramente contrastam com os concluída em ratos, onde pré-lesão do músculo com cardiotoxina ou cloreto de bário é necessário dois dias antes enxerto ^30,31. É provável que a lesão produzida agulha durante o procedimento de transplante de enxerto potencia, estimulando a produção de um ambiente de regeneração no animal receptor ^32,33. Nós também prevêem que o nosso método irá ser facilmente adaptado para o transplante de tecido de músculo esquelético a partir de peixe-zebra mais novo, permitindo uma análise de mutações genéticas que afectam o desenvolvimento precoce do músculo esqueléticomas levar a letalidade nos estágios larvais.

Nós também fornecemos um protocolo detalhado para enxerto de ERMS peixe-zebra por injecção intraperitoneal em RAG2 peixes mutantes não-condicionado, homozigotos. Esta abordagem era útil para a expansão de tumores primários transgénicos duplos sem a necessidade de gerar tumores dentro de uma linha transgénica singeneicos. O nosso trabalho recente demonstrou que as abordagens de transplante de células fornecer novos modelos experimentais para avaliar a sensibilidade ERMS fármaco in vivo, em que um único tumor pode ser expandida em milhares de animais e avaliada pelos seus efeitos sobre o crescimento, a auto-renovação, e neovascularização ^15. Por outro lado, temos enxertados com sucesso uma ampla variedade de tumores em peixes mutante homozigótica RAG2 incluindo células T de leucemia linfoblástica aguda, melanoma, e ERMS ^23. Olhando para o futuro, nós encaramos essas linhas será útil para avaliar as propriedades funcionais importantes de câncer emvivo incluindo a avaliação heterogeneidade intra-tumoral, invasão, metástase, angiogénese, e resistência à terapia. Além disso, a geração de RAG2 homozigótico mutante peixe na opticamente clara Casper estirpe zebrafish ³⁴ irá provavelmente facilitar imagiologia directa de muitas destas características de cancro.

No total, nós fornecemos protocolos detalhados para o sucesso do enxerto, de músculo esquelético fluorescently marcado normal e maligno em RAG2 para adulto homozigoto mutante zebrafish imune comprometido.

Materiais

Name	Company	Catalog Number	Comments
Tris-EDTA buffer solution 1x	Sigma-Aldrich	93283-100ML	Microinjection. Injection mix.
Potassium Chloride	Fisher Science Education	S77375-1	Microinjection. Injection mix.
XhoI Restriction Enzyme	New England Biolabs	R0146S	Microinjection. Plasmid linearization.
QIAquick PCR Purification Kit	Qiagen	28104 (50) or 28106 (250)	Microinjection. For purification of linearized plasmid up to 10 kb.
Phenol/Chloroform/Isoamyl Alcohol	Fisher Scientific	BP1753I-100	Microinjection. For purification of linearized plasmid.
UltraPure Agarose, 500 g	Invitrogen	16500-500	Microinjection. Linearized plasmid quantification.
Nanodrop 2000 Spectrophotometer	Thermo Scientific	http://www.nanodrop.com/Productnd2000overview.aspx	Microinjection. Linearized plasmid quantification.
DAPI (4',6-diamidino-2-phenylindole, dihydrochloride)	Life Technologies	D1306	flow cytometry/FACS
5 ml polystyrene round bottom tube	BD Falcon	352058	flow cytometry collection tube
BD FACSAria II	BD Biosciences	Special Order Research Products (SORP) program	FACS
5 ml polypropylene round bottom tube	BD Falcon	352063	FACS collection tube
BD LSR II	BD Biosciences	Special Order Research Products (SORP) program	flow cytometry
Phosphate Buffered Saline, pH 7.4 (1x)	Life Technologies	10010-023	transplantation
Fetal Bovine Serum	Omega Scientific	FB-01	transplantation
Tricaine methanesulphonate (MS-222)	Western Chemical Inc.	http://www.wchemical.com/tricaine-s-ms-222.html	Transplantation. Anesthetic. Caution: Irritant. Irritating to eyes, respiratory system, and skin.
VWR Absorbent Bench Underpads	VWR	56616-018	Transplantation. Regular paper towels or sponge can be used as an alternative.
Singe Edge Industrial Razor Blades	VWR	55411-050	transplantation
Petri Dish, Polystryrene Disposable Sterile	VWR	25384-302	transplantation
Cell Strainer, 40 µm Nylon	Falcon-Corning Incorporated	352340	transplantation
50 ml Centrifuge Tube	Corning Incorporated	430828	transplantation
Trypan Blue Stain (0.4%)	Life Technologies	15250-061	transplantation
Hemacytometer Set	Hausser Scientific	1483	transplantation
Hamilton syringe, fixed needle, volume 10 µl, needle size 26s ga (bevel tip)	Hamilton	80366	transplantation
Austin's A-1 Bleach, Commercial	James Austin Company		Transplantation. Any commercial solution can be used.
Ethanol 190 Proof	Decon Labs, Inc.	DSP-MD.43	Microinjection (linearized plasmid purification) and transplantation. Any commercial  solution can be used.
High Speed Microcentrifuge, 300D Digital Microcentrifuge	Denville Scientific Inc.	C0265-24	transplantation
Sorvall Legend XFR Centrifuge	Thermo Scientific	75004539	Transplantation. Catalog number for 120 V, 60 Hz (US).
5 ml serological pipets	BD Falcon	357529	transplantation
Corning Stripettor Plus Pipetting Controller	Corning Incorporated	4090	Transplantation. Any automatic pipetting controller can be used.
Powder free examination gloves			All steps. Any commercial brand can be used.
Filter pipet tips and micropipettes			All steps. Any commercial brand can be used.
Dumont forceps #5	Fine Science Tools	11205-20	transplantation
Fluorescent Stereomicroscope	Olympus	MVX10	Scoring. Any appropriate fluorescent stereomicroscope can be used.
Olympus DP72 microscope digital camera	Olympus	DP72	Scoring. Multiple adequate cameras for the selected imaging system can be used.