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Resumo

Um método criogênico de pulverização para processar patas de urina usando um moinho congelador de nitrogênio líquido foi desenvolvido para melhorar o rendimento e a qualidade do RNA ou proteína extraído dos tecidos e permitir a análise de perfis moleculares associados a inflamatórios Respostas.

Resumo

O perfil de alterações moleculares nos tecidos locais é crucial para entender o mecanismo de ação dos candidatos terapêuticos in vivo. No campo da pesquisa da artrite, muitos estudos são focalizados nas junções inflamadas que são compostas de uma mistura complexa do osso, da cartilagem, do músculo, das pilhas estromais e das pilhas imunes. Aqui, estabelecemos um método mecânico confiável e robusto para interromper as patas inflamadas do rato em amostras pulverizadas homogêneas em um ambiente criogenicamente controlado. As lisatas proteicas e rna foram processadas para permitir desfechos proteômicos e transcricionais e caracterização molecular de vias de doenças relevantes no tecido local.

Introdução

A artrite reumatóide (AR) é uma doença inflamatória sistêmica crônica com sinofite simétrica persistente nas articulações e envolvimento articular extra de órgãos como a pele, coração, pulmões e olhos1. Embora as manifestações sistêmicas da resposta imune sejam evidentes em pacientes humanos, uma das características da patologia da RA é a infiltração de células imunes no tecido sinovial e a proliferação de células fibroblastas sinoviais2.

Semelhante ao AR humano, o modelo de artrite induzida por colágeno do rato (CIA) provoca forte inflamação do tecido com respostas imunes ativas em tecidos sinoviais e compartimentos sistêmicos. A susceptibilidade de diferentes cepas de camundongos para links modelo da CIA para Major Histocompatibilidade Complexo (MHC) haplótipo e antígeno específico célula T e interações celulares B3,4. Além disso, muitas vias patogênicas na AR humana, incluindo a produção de autoanticorpos, deposição de complexo imune, ativação de células mieloides, manifestações poliarticulares e formação de pannus com infiltração imune sinovial, também são evidentes neste modelo 5,6. Os investigadores empregaram este modelo bem estabelecido do CIA para investigar efeitos de tratamentos anti-inflamatórios da citocina7. Muitos produtos biológicos aprovados para doenças auto-imunes ou inflamatórias, como anti-TNFα e anti-IL-6, são encontrados para ser eficaz no modelo da CIA8,9.

O perfil das interações do sistema imunológico no tecido sinovial é crucial para elucidar os mecanismos moleculares associados à patogênese da AR. No ambiente clínico humano, uma prática comum é realizar biópsias sinoviais de agulha a orientação de imagens de ultrassom. Nas configurações pré-clínicas, a arquitetura menor das articulações de urina torna os procedimentos de biópsia muito mais difíceis, se não impossíveis. Recentemente, demonstramos a utilização do modelo murine CIA para avaliar combinações de drogas para impactar pontos finais díspares e resolver a doença em uma abordagem combinatória10. Um método criogênico de pulverização à base de uma fábrica de freezer foi empregado para processar patas de urina inflamadas em pós finos homogêneos e estabeleceu processos a jusante para extrair RNA e proteínas. Este método protege o RNA e a proteína dos processos degralísticos enzimáticos e químicos e permite-nos aplicar múltiplos métodos analíticos a uma única fonte homogênea da amostra.

Protocolo

Todos os experimentos com animais foram realizados de acordo com as políticas do Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) da Janssen R&D.

1. Método de Pulverização baseado em fábrica de freezer criogênico

  1. Na terminação do estudo do CIA, os ratos do sacrifício com isoflurane de 1.5% seguidos pela deslocação cervical.
  2. No dia do processamento de tecidos, pré-chill todos os instrumentos (espátulas, frascos de moagem, etc) em gelo seco por um mínimo de 10 min. Use luvas térmicas para evitar danos ao congelamento.
  3. Corte patas traseiras com uma tesoura na linha de pele como descrito na Figura 1A.
  4. Transfira cada pata em um tubo de microcentrífuga de 1,5 mL, congele-se imediatamente em nitrogênio líquido e guarde patas congeladas a -80 °C. Não mantenha amostras congeladas por mais de uma semana.
  5. Encha o moinho do congelador com nitrogênio líquido, como mostrado na Figura 1B e deixe equilibrar por pelo menos 10 min.
  6. Mantenha a amostra não processada em gelo seco e evite ciclos de congelamento-degelo.
  7. Transfira uma pata traseira para o frasco de moagem de policarbonato grande pré-refrigerado com um plugue de aço inferior, insira o impactor de aço pré-refrigerado e feche o frasco de moagem de policarbonato com a ficha de aço superior pré-refrigerada (Figura 1C).
  8. Transfira grandes frascos de moagem de policarbonato com as amostras para o moinho congelador pré-preenchido com líquido e feche a tampa com o fecho de borracha encontrado na frente do instrumento.
  9. Deixe as amostras esfriar em nitrogênio líquido por 1 minuto.
  10. Defina a fábrica de freezer saem do programa de 1 minuto com 10 ciclos por segundo e pressione o botão de partida. Aguarde o moinho do congelador para completar o seu ciclo.
    Nota: A máquina faz um som de bateria como o impactor de aço se move para frente e para trás. Use tampões de ouvido para evitar a perda auditiva.
  11. Abra a tampa do moinho congelador, tirar o frasco de moagem de policarbonato grande e colocá-lo em um extrator, como descrito na Figura 1D. Retire a ficha de aço superior, colocando pressão para baixo sobre a alça preta até que a ficha de aço desliza para fora do tubo de policarbonato.
  12. Transfira o grande frasco de moagem de policarbonato aberto para o gelo seco. Retire o impactor de aço com fórceps pré-refrigerados.
  13. Transfira o pó congelado para o tubo cônico pré-refrigerado de 50 mL.
  14. Peso 30-50 mg de pó congelado em um tubo de microcentrífuga congelado de 1,5 mL para extração de RNA e 100-200 mg de pó congelado para extração de proteína.
    Nota: O pó congelado deve olhar como a areia fina branca ou cor-de-rosa clara como descrito na figura 1E.
  15. Armazenar amostras pulverizadas em -80 °C e proceder a RNA e isolamentos de proteínas dentro de 24 h.

2. Extração de RNA

  1. Adicione 10 μL de β-mercaptoetanol (β-ME) por 1 mL de buffer RLT.
  2. Calcule o volume de RLT Buffer correspondente a uma proporção de 23,3 mL/mg de tecido e adicione o volume apropriado de RLT Buffer com β-ME ao tubo com pó congelado. Esta relação foi empiricamente determinada a ser ideal para as patas do rato.
  3. Vortex a amostra em 3.000 RPM para 10 s.
  4. Misture bem por pipetting cima e para baixo 10 vezes vigorosamente com um pipettor 1 mL.
  5. Vortex a amostra novamente em 3.000 RPM para 20 s.
  6. Centrífuga do tubo a 13.000 x g por 2 min.
  7. Transfira 700 μL das supernatantes para um tubo fresco e adicione 700 μL de 70% de etanol.
    Nota: Se o μL está no tubo, é aceitável prosseguir, ainda adicionando volume equivalente de 70% de etanol.
  8. Carregue 700 μL da amostra em uma coluna de purificação de RNA.
  9. Centrífuga do tubo a ≥10.000 x g para 30 s.
  10. Descarte o fluxo e carregue a parte restante da amostra para a coluna RNeasy.
  11. Centrífuga do tubo a ≥10.000 x g para 30 s.
  12. Descarte o fluxo através e lave a coluna adicionando 700 μL de buffer RW1 com centrífuga de ≥10.000 x g para 30 s. Se executar a digestão de DNASE opção, 350 μL de RW1 é adicionado antes do tratamento de DNASE.  E um adicional de 350 μL de RW1 é adicionado após o tratamento de DNASE.
  13. Opcional) Realize uma etapa de digestão de DNase siga as instruções do fabricante.
  14. Lave o tubo duas vezes adicionando 500 μL de buffer RPE seguido de centrífugação em ≥10,000 x g para 30 s. Descarte fluxo através de cada vez.
  15. Seque a coluna por centrífuga a ≥10.000 x g por 2 min.
  16. RNA elute adicionando 50 μL de água com centrífuga em ≥10.000 x g para 2 min. Coletar fluxo através e transferência para um novo tubo de 1,5 mL.
  17. Determine a quantidade de RNA usando o método de escolha e armazenação do pesquisador a -80 °C antes de uma análise mais aprofundada.

3. Extração de proteína

  1. Diluir a solução de estoque de lyse de células 10x na solução de estoque de lyse de células 1x usando água de grau de cultura celular.
  2. Reconstituir o inibidor protease cocktail conjunto i com 1 mL de água para fazer um estoque inibidor de protease 100x.
  3. Adicione 100 μL de inibidor de protease a 9,9 mL de lyse celular 1x para fazer uma solução de estoque final 1x.
  4. Adicione 4 μL de gelo frio 1x Cell Lysis Buffer por mg de tecido em pó (por exemplo, 800 μL de dbuffer de lyse para 200 mg de tecido em pó).
  5. Adicione uma conta de aço inoxidável de 5 mm ao tubo.
  6. Vortex o tubo em 3.000 RPM para 60 s. Transfira o tubo para o gelo molhado e continue para a próxima amostra.
  7. Coloque todos os tubos de amostra em uma caixa e agite a caixa de centrífuga em um roqueiro a 1.000 RPM, 4 °C por 1 h.
    Nota: Os investigadores podem encontrar que coloc a caixa vertical pode facilitar a melhor mistura com o grânulo.
  8. Centrífugas os tubos a 10.000 x g e 4 °C por 15 min.
  9. Transfira as supernatantes em um tubo fresco e evite a camada gorda na parte superior.
  10. Determinar a concentração total de proteínas. 10 a 30 vibrações duplas de liceu de proteína são ideais para um teste de BCA.
  11. Aliquot a amostra em tubos de microcentrírífuga de 1,5 mL e armazenar a -80 °C antes de uma análise mais aprofundada.

Resultados

Aqui, nós mostramos uma visualização representativa da imagem do gel do RNA extraído das patas dianteiras de ratos do CIA na figura 2A. O rRNA 28S e a banda rRNA 18S indicam que todas as amostras têm quantidade suficiente de RNA intacto. Em seguida, mostramos um gráfico representativo de dispersão de concentrações totais de proteínas com base na análise de proteína BCA na Figura 2B. A...

Discussão

Embora haja uma forte lógica científica para avaliar as vias moleculares nos tecidos sinoviais, muitos relatórios sobre o perfil imunológico do modelo da CIA murine foram focados no sangue periférico, enquanto os dados de análise de proteínas e RNA de patas inflamadas são bastante limitados. Existem várias razões possíveis para este viés: as articulações do tornozelo murine não são maiores do que ~ 2 cm; as áreas afetadas consistem em tecidos de pele, osso e conjuntivo, que muitas vezes são difíceis de...

Divulgações

Os autores BJ, SH, ML, RM, ML, TO e FS são funcionários da Janssen Research & Development Inc e são acionistas da empresa-mãe, Johnson & Johnson, Inc.

Agradecimentos

Os autores desejam agradecer a Edith Janssen pela revisão crítica do manuscrito e Navin Rao e Jennifer Towne por seu apoio à publicação deste manuscrito.

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
5 mm stainless steel beadQiagen69989
beta-mercaptoethanolSigmaM6250Sample reducing agent that inhibits RNASE enzymes
Bioanalyzer KitAgilent5067-1511RNA qualification kit
b-mercaptoethanolSigmaM6250
Cell Culture Grade WaterCorning25-055-CIWater
Cell lysis stock solutionCell Signaling9803
Eppendorf TubeEppendorf22363204Microfuge tubes
Eppendorf tube centrifuge boxNalgene5055Box for holding eppendorf tubes in horizontal tube arrangement
Everlast 247 Variable Speed RockerBenchmark ScientificBR5000
Freezer MillSpex Sample Prep6875Freezer/Mill for processing paws into pulverized powder
Grinding VialSpex Sample Prep6801Polycarbonate vial for processing paws into pulverized powder
Pierce BCA kitPierce23225Kit for Total Protein Quantification
Protease Inhibitor Cocktail set 1Calbiochem539131Protease Inhibitors
Protein BCA KitPierce23225
Quantigene KitThermofisherQP1013bDNA analysis Kit
Refrigerated microcentrifugeEppendorf5417RCentrifugation
RLT BufferQiagen79216RNA extraction buffer
RNeasy mini kitQiagen74104including RNeasy column, RLT Buffer and RW1 Buffer
ShakerBenchmark ScientificBR5000Rocker/Shaker
SpatulaVWR10806-412Spatula for powder transfer
Stainless Steel BeadQiagen69989Bead for mixing during protein extraction
Tube ExtractorSpex Sample Prep6884Extractor for removing the top of grinding vial
VortexerVWR10153-838Sample mixing

Referências

  1. Firestein, G. S. Immunologic mechanisms in the pathogenesis of rheumatoid arthritis. Journal of Clinical Rheumatology. 11, S39-S44 (2005).
  2. McInnes, I. B., Schett, G. The pathogenesis of rheumatoid arthritis. New England Journal of Medicine. 365, 2205-2219 (2011).
  3. Ahlqvist, E., Hultqvist, M., Holmdahl, R. The value of animal models in predicting genetic susceptibility to complex diseases such as rheumatoid arthritis. Arthritis Research and Therapy. 11, 226 (2009).
  4. David, C. S., Taneja, V. Role of major histocompatibility complex genes in murine collagen-induced arthritis: a model for human rheumatoid arthritis. American Journal of the Medical Sciences. 327, 180-187 (2004).
  5. Tarkowski, A., Holmdahl, R., Klareskog, L. Rheumatoid factors in mice. Monographs in Allergy. 26, 214-229 (1989).
  6. Schurgers, E., Billiau, A., Matthys, P. Collagen-induced arthritis as an animal model for rheumatoid arthritis: focus on interferon-gamma. Journal of Interferon & Cytokine Research. 31, 917-926 (2011).
  7. Joosten, L. A., Helsen, M. M., van de Loo, F. A., van den Berg, W. B. Anticytokine treatment of established type II collagen-induced arthritis in DBA/1 mice. A comparative study using anti-TNF alpha anti-IL-1 alpha/beta, and IL-1Ra. Arthritis & Rheumatology. 39, 797-809 (1996).
  8. Asquith, D. L., Miller, A. M., McInnes, I. B., Liew, F. Y. Animal models of rheumatoid arthritis. European Journal of Immunology. 39, 2040-2044 (2009).
  9. Williams, R. O. Collagen-induced arthritis as a model for rheumatoid arthritis. Methods in Molecular Medicine. 98, 207-216 (2004).
  10. Shen, F., et al. Combined Blockade of TNF-alpha and IL-17A Alleviates Progression of Collagen-Induced Arthritis without Causing Serious Infections in Mice. Journal of Immunology. 202, 2017-2026 (2019).

Reimpressões e Permissões

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