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Neste Artigo

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  • Agradecimentos
  • Materiais
  • Referências
  • Reimpressões e Permissões

Resumo

Introduzimos um método de análise cinemática que usa um aparelho de captura de movimento tridimensional contendo quatro câmeras e software de processamento de dados para realizar avaliações funcionais durante pesquisas fundamentais envolvendo modelos de roedores.

Resumo

Em comparação com o Índice Funcional Ciático (SFI), a análise cinemática é um método mais confiável e sensível para a realização de avaliações funcionais de modelos de roedores ciáticos de lesões nervosas. Neste protocolo, descrevemos um novo método de análise cinética que usa um aparelho de captura de movimento tridimensional (3D) para avaliações funcionais usando um modelo de lesão de esmagamento de esmagamento de nervos ciático de ratos. Primeiro, o rato é familiarizado com a caminhada da esteira. Os marcadores são então anexados aos marcos ósseos designados e o rato é feito para andar na esteira na velocidade desejada. Enquanto isso, os movimentos posteriores dos membros do rato são registrados usando quatro câmeras. Dependendo do software utilizado, as traçações de marcadores são criadas usando modos automáticos e manuais e os dados desejados são produzidos após ajustes sutis. Este método de análise cinemática, que usa um aparelho de captura de movimento 3D, oferece inúmeras vantagens, incluindo precisão superior e precisão. Muitos mais parâmetros podem ser investigados durante as avaliações funcionais abrangentes. Este método tem várias deficiências que requerem consideração: O sistema é caro, pode ser complicado de operar, podendo produzir desvios de dados devido à mudança de pele. No entanto, a análise cinemática usando um aparelho de captura de movimento 3D é útil para realizar avaliações funcionais de membros anteriores e posteriores. No futuro, esse método pode se tornar cada vez mais útil para gerar avaliações precisas de vários traumas e doenças.

Introdução

O Índice Funcional Ciático (SFI) é o método de referência para a realização de avaliações de nervo ciático funcional1. O SFI tem sido amplamente adotado e é frequentemente utilizado dentro de vários estudos de avaliação funcional sobre lesões nervosas ciáticas de ratos2,3,4,5,6. Apesar de sua popularidade, há vários problemas com a SFI, incluindo automutilação7, risco de contratura conjunta e difamação das pegadas8. Esses problemas afetam seriamente seu valor prognóstico9. Portanto, um método alternativo, menos propenso a erros, é necessário como substituto para o SFI.

Um desses métodos alternativos é a análise cinemática. Isso inclui análise abrangente de marchas usando marcadores de rastreamento ligados a marcos ou articulações ósseas. A análise cinemática é cada vez mais utilizada para avaliações funcionais9. Este método está sendo reconhecido progressivamente como uma ferramenta confiável e sensível para avaliação funcional10 sem as deficiências atribuídas ao SFI11,12.

Neste protocolo, descrevemos uma série de análises cinemáticas que usam um aparelho de captura de movimento 3D composto por uma esteira, quatro câmeras de dispositivo acoplado carregado de 120 Hz (CCD) e software de processamento de dados (ver Tabela de Materiais). Este método de análise cinemática difere da análise geral de vídeo ou marcha13,14. Duas câmeras estão posicionadas em direções diferentes para registrar movimentos posteriores de membros de um único lado. Posteriormente, um modelo digital 3D do membro posterior é construído usando computação gráfica9. Podemos calcular ângulos articulares designados, como quadril, joelho, tornozelo e articulação do dedo do pé, recapitulando de perto as dimensões reais dos membros. Além disso, podemos determinar vários parâmetros, como passo/passo e a razão da fase de postura para a fase de oscilação. Essas reconstruções são baseadas em um modelo digital 3D completamente reconstruído dos membros posteriores, gerado a partir de dados transmitidos por dois conjuntos de câmeras. Mesmo a trajetória do centro imaginário de gravidade (CoG) pode ser calculada automaticamente.

Usamos este aparelho de captura de movimento 3D para introduzir e avaliar vários parâmetros cinémáticos que revelam mudanças funcionais ao longo do tempo no contexto do modelo de lesão de esmagamento do nervo ciático do rato.

Protocolo

O protocolo foi aprovado pelo comitê de experimentação animal da Universidade de Kyoto, e todas as etapas do protocolo foram realizadas de acordo com as Diretrizes do Comitê de Experimentação Animal, universidade de Kyoto (número de aprovação: MedKyo17029).

1. Familiarizar ratos com caminhada de esteira

  1. Coloque duas folhas de plástico transparentes em ambos os lados da esteira para deixar um rato Lewis, de 12 semanas, andar em direção reta e frontal, e depois ligar a rede de choque elétrico.
  2. Ter cada rato andando na esteira. Acelera gradualmente a esteira para a velocidade desejada (20 cm/s ou 12 m/min) e deixe o rato andar normalmente a esta velocidade por 5 min. Após cada sessão de caminhada, forneça uma pausa de 1 a 2 min. Repita esse processo 3x por dia, 5 dias por semana, por 1 semana.
    NOTA: Comece a esteira andando 1 semana antes da etapa 2.
  3. Abrigar ratos em grupos de três por gaiola com um ciclo de 12h claro-escuro e alimentá-los comida comercial de ratos e água da torneira ad libitum.

2. Realizar a lesão ciática de esmagamento nervoso

  1. Coloque o rato em uma câmara de indução de anestesia e introduza 5% de solução de inalação isoflurane.
  2. Forneça uma injeção intraperitoneal de uma combinação anestésica preparada com cloridrato de medetomidina de 0,15 mg/kg, 2 mg/kg midazolam e 2,5 mg/kg de tartrate butórbico ao rato. Verifique se há falta de reflexos do pedal. Em seguida, raspe uma área do trochanter maior esquerdo para o meio da coxa com uma barbeador elétrica.
  3. Espalhe um pedaço de pano asséptico, coloque o rato nele, e coloque-o na posição lateral esquerda. Coloque instrumentos cirúrgicos estéreis no pano também.
  4. Crie uma incisão reta do trochanter maior para o meio da coxa com uma lâmina cirúrgica nº 10. Em seguida, realize uma dissecação contundente entre femoris quadríceps e femorse de bíceps usando um hemostata cirúrgico para expor o nervo ciático.
  5. Retire o nervo ciático do tecido circundante com dois pares de microfóceps e esmague o nervo ciático por 10 s, usando um hemostatcirúrgico padrão, para criar uma lesão de esmagamento de 2 mm de comprimento no local diretamente abaixo da tuberosidade glútea.
  6. Realize um ponto epineural de nylon 9-0 na extremidade proximal da lesão usando um par de microfóceps e, em seguida, feche o músculo e a pele com suturas de nylon 4-0.
  7. Forneça uma injeção intraperitoneal de um anestésico antagonista preparado com 0,3 mg/kg de cloridrato atipamezol ao rato, para acordá-lo dentro de 10 minutos. Depois que o rato se recupera da anestesia, observe os movimentos dos dedos do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo enquanto o rato é suspenso pela base de sua cauda. Se o dedo do pé não se espalhar, a cirurgia foi bem sucedida.
  8. Abrigar os ratos individualmente após a cirurgia com um ciclo de 12h claro-escuro e alimentá-los comida comercial de ratos e água da torneira ad libitum.

3. Anexando os marcadores

  1. Coloque o rato treinado em uma câmara de indução de anestesia e introduza uma solução de inalação isoflurano de 5%. Verifique se há falta do reflexo do pedal beliscando o dedo do pé.
  2. Permita que o rato seja continuamente anestesiado usando uma máscara anestéstica (2% solução de inalação isoflurane). Enquanto o rato recebe anestesia estável, raspe uma área da parte inferior das costas para o malleoli bilateral usando uma máquina elétrica.
    ATENÇÃO: Para evitar expor os pesquisadores ao isoflurano vazando, certifique-se de que a máscara cubra firmemente a cabeça e o rosto do rato.
    NOTA: Para evitar ferimentos no rato, raspe o cabelo o mais suavemente possível.
  3. Coloque o rato na posição propensa. Use uma caneta marcadora preta para marcar os seguintes marcos ósseos na pele raspada: Uma linha através dos processos espinhosos do lombar às vértebras sacral, as espinhas superiores anteriores, as maiores trocana, as articulações do joelho, o malleoli lateral, o quinto metatarsofralangeais articulações, e a ponta do quarto dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo.
    NOTA: A linha através dos processos espinhosos é usada para determinar se os marcadores bilaterais são axilares simétricos.
  4. Use um adesivo líquido para anexar marcadores hemisféricos a esses marcos ósseos, exceto pela linha através dos processos espinhosos da lombar às vértebras sacadas, e a ponta do quarto dedo do pé. Use cores distintas para todos os outros marcos para evitar confusão. A ponta do quarto dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do dedo do de
    ATENÇÃO: Tome cuidado para não pingar adesivo na pele exposta do operador.
  5. Depois de colocar todos os marcadores, coloque o rato de volta na gaiola. Não coloque o rato na esteira até que se recupere totalmente da anestesia.
    NOTA: A consciência reduzida pode influenciar seriamente a caminhada normal se o rato não se recuperar totalmente da anestesia.

4. Calibração e configuração de software

  1. Coloque duas folhas de plástico transparentes em ambos os lados da esteira e coloque a caixa de calibração no meio da esteira. Abra o software de gravação e clique no ícone Calibração Imagem no visor (Arquivo Complementar 1).
  2. Clique no ícone Gravação para gravar 1-2 s de vídeo de quatro direções usando câmeras CCD de 120 Hz. Clique no ícone de gravação novamente para parar a gravação.
    NOTA: O vídeo será salvo automaticamente quando a gravação parar.
  3. Abra o arquivo de vídeo no software de cálculo. Clique e arraste os pontos característicos dos modelos 3D da caixa de calibração no canto inferior direito da tela para os marcadores correspondentes nas quatro imagens, que são automaticamente transformados a partir do vídeo no padrão de calibração (Arquivo Suplementar 2). Em seguida, clique no ícone Salvar.
    NOTA: Não altere as posições das câmeras após a conclusão da calibração.

5. Gravando a caminhada

  1. Tire a caixa de calibração da esteira, ligue a grade de choque elétrico e coloque o rato totalmente acordado na esteira. Abra o software de gravação e insira as informações básicas sobre o rato, incluindo seu número de série, velocidade de caminhada e o nome do operador principal.
  2. Ligue a esteira e coloque a velocidade em 20 cm/s. Depois que o rato se adapta à velocidade e é capaz de andar normalmente, clique no ícone Gravação no visor para gravar o rato ambulante com as quatro câmeras. Uma vez que passos suficientes sejam gravados (>10), clique no ícone novamente para parar de gravar e desligue a esteira.
    NOTA: O vídeo será salvo automaticamente quando a gravação parar.
  3. Coloque o rato de volta na câmara de indução da anestesia para anestesia. Enquanto o rato estiver anestesia contínua (administrada através da máscara anestéstica), remova os marcadores hemisféricos.
    NOTA: Remova os marcadores o mais gentilmente possível para evitar causar dor ao rato.
  4. No horário designado (por exemplo, 1 semana, 3 semanas ou 6 semanas após a cirurgia), realize a medição cinemática no rato repetindo as etapas 3.1-5.3. Faça a medição cinemática apenas uma vez, no início do experimento, para os ratos que não receberam cirurgia (ou seja, o grupo controle).

6. Rastreamento de marcadores

  1. Abra o software de cálculo e abra o arquivo de vídeo na interface.
  2. Clique e arraste a barra de controle bilateral na barra de progresso do vídeo para garantir que apenas um registro de caminhada de esteira de 10 etapas seja exibido ( Arquivo Complementar3). Clique e arraste cada ponto característico do modelo 3D no canto inferior direito da tela até o marcador correspondente em cada uma das quatro fotos iniciais dos vídeos que foram tiradas pelas câmeras ( ArquivoComplementar 4).
  3. Clique no ícone de rastreamento automático para iniciar o processo automático de rastreamento de marcadores ( Arquivo Suplementar5, Arquivo Suplementar 6). Se o sistema não rastrear com precisão um marcador, clique no ícone Digitalize Manualpara alternar para o modo de rastreamento manual (Arquivo 7 Suplementar),clique no ponto característico de rastreamento no modelo 3D e, em seguida, no marcador de resposta na imagem.
  4. Uma vez que o marcador seja clicado, certifique-se de que a imagem mude para o próximo quadro do vídeo. Agora clique continuamente no marcador até que o processo de rastreamento de marcadores seja concluído. Uma vez terminado, clique no ícone Salvar.

7. Análise cinemática

  1. Abra o software de análise e, em seguida, abra o arquivo de vídeo processado na interface.
  2. Clique no ícone Configuração e selecione e adicione parâmetros designados como o ângulo do tornozelo, ângulo de dedo do pé e mudança pélvica (eixos X e Z) para a Lista de Exibição na janela pop-up à direita (Arquivo Suplementar 8). Clique em OK,para que as curvas que representem as mudanças de valor nos parâmetros apareçam na interface.
  3. Clique no ícone Measurement e selecione o processamento suave em seu menu pull-down. Digite 20 Hz na janela pop-up para remover frequências superiores a 20 Hz dentro das curvas (Arquivo Suplementar 9).
  4. Certifique-se de que existam cinco painéis na interface: o vídeo ambulante do rato, o modelo 3D dinâmico, curvas que representam mudanças de valor nos parâmetros do ciclo de 10 etapas, curvas que representam mudanças médias de valor nos parâmetros, e histogramas e diagramas esquemáticas que representam a razão da postura e fase de balanço(Arquivo Complementar 10).
  5. Clique no painel para obter curvas que representem alterações médias de valor nos parâmetros e selecione A Saída de Dados no menu pull-down ( Arquivo Complementar11). Isso produzirá os valores médios dos ângulos articulados posteriores dos membros, incluindo os ângulos do tornozelo e do dedo do dodo do dedo do dedo, mudança pélvica e quaisquer outros parâmetros desejados em períodos de ciclo de 10 etapas.

Resultados

Selecionamos quatro parâmetros para investigar mudanças funcionais ao longo do tempo em um modelo de lesão de esmagamento de esmagamento nervoso ciático. Estas foram a razão da fase stance-to-swing, trajetória central de gravidade (CoG), ângulos do tornozelo e ângulos do dedo do dedo do dedo do dedo do do dodo do dedo do do dodo do dedo do do dodo do dedo do do dodo do dedo do do dodo do dedo do dodo do dedo do dodo do dedo. Vinte e quatro ratos foram aleatoriamente atribuídos a um dos qu...

Discussão

Neste protocolo, um rato estável e continuamente ambulante é o componente mais vital da análise cinemática. A velocidade da esteira foi fixada em 20 cm/s. Essa velocidade de caminhada não é considerada "alta" se os ratos se moverem sem restrições de espaço16. No entanto, essa velocidade é muito rápida para ratos destreinados andarem na esteira e provavelmente resultariam em uma marcha anormal e movimentos não uniformes. Esses eventos podem afetar seriamente a confiabilidade e a autenti...

Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Este estudo foi apoiado pelo JSPS KAKENHI Grant Number JP19K19793, JP18H03129 e JP18K19739.

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
9-0 nylon sutureBear Medic Corporation.T06A09N20-25
Anesthetic Apparatus for Small AnimalsSHINANO MFG CO.,LTD.SN-487-0T
ISOFLURANE Inhalation SolutionPfizer Japan Inc.(01)14987114133400
Kine AnalyzerKISSEI COMTEC CO.,LTD.N.A.A analysis software
Liquid adhesiveKANBO PRAS CORPORATIONPT-B180
Micro forcepsBRC CO.16171080
Motion RecorderKISSEI COMTEC CO.,LTD.N.A.A recording software
Standard surgical hemostatFine Science Tools, Inc.12501-13
Surgical blade No.10FEATHER Safety Razor CO., LTD100D
Surgical hemostatWorld Precision Instruments503740
Three-dimensional motion capture apparatus (KinemaTracer for Animal)KISSEI COMTEC CO.,LTD.N.A.A 3D motion analysis system that consists of cameras
Three-dimensional(3D) CalculatorKISSEI COMTEC CO.,LTD.N.A.A marker tracing software
TreadmillMUROMACHI KIKAI CO.,LTDMK-685a treadmill with affialiated the electrical schocker, transparent sheats and a speed control apparatus

Referências

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