Os autores agradecem Robert Kelsh por gentilmente compartilhar o reagente SOX10 promotor peixe-zebra.

1. De colheita de embriões para Fotoconversão <ol><li> Instituído pelo menos dez pares de SOX10: zebrafish transgênicos Kaede entre 5 e 6:00 da noite. </li><li> Na manhã seguinte, puxe divisores e recolher os ovos em torno de meio-dia. Transfira-os para placas de Petri e colocá-los em 28,5 ° C incubadora. </li><li> Por volta das 24 horas pós fertilização, limpe as placas de Petri, removendo os embriões mortos. Para verificar o estágio de desenvolvimento de embriões 13 usando microscopia de campo claro e qualquer microscópio de fluorescência com maior proteína verde fluorescente (EGFP) filtro. Kaede será visível através deste filtro. </li><li> Quando chegar a 60 embriões transferência hpf cinco embriões fluorescentes brilhantemente em um prato separado Petri e dechorionate-los, se necessário. </li></ol> 2. Montagem do embrião para Fotoconversão <ol><li> Montar o embrião usando um microscópio fluorescente normal. Montagem de embriões em microscópio confocal é extremamente desafiador. </li><li> Use estandeágua ard E3 ou E3 preparar fresco utilizando a seguinte receita: Adicione o seguinte por um litro de água destilada dH 2 O, adicione o seguinte para fazer 1x E3L: 0,292 g de 5,0 mM de NaCl 0,013 g 0.17mm KCl 0,044 g 0,33 mm de CaCl2 (dessecante, 96%, ACS reagente) 0,081 g 0,33 mM de MgSO4 (anihidro) Opcional: adicionar 200 mL de 0,05% de azul de metileno a 1X E3 como fungicida e mexa. Meio mantém à temperatura ambiente durante 1 semana. </li><li> Use tricaina padrão ou preparar tricaina usando seguinte receita: Para 5 L de 0,2% tricaina misturar os seguintes ingredientes: 45 ml de Tris-Cl (pH 9,5 1M) 5 LH H2O 10 g tricaina </li><li> Prepare &#39;suco filme&#39; (50 ml E3, solução tricaina 0,015%), pela adição de 3,75 ml de 0,2% para 46,25 ml tricaina E3. </li><li> Prepare agarose através da mistura de 46,25 ml de água E3 com 46,35 mg de baixo ponto de fusão (LMP) de agarose em um frasco de vidro de 50 ml e dissolver partículas sólidas por microondas. Em seguida, adicionar3,73 ml de 0,2% de agarose tricaina e colocar frasco de vidro com agarose em 50 ° C banho-maria até o uso. </li></ol> 3. Preparação e montagem de Embrião <ol><li> Anestesiar embriões com solução tricaina E3/0.015% feita no passo 1.1.2 e transferência de embriões para slides câmara. </li><li> Deixe-se envolver todo o excesso de E3 com lenço de papel ea colocou de agarose para embrião. </li><li> Posição embrião perfeitamente dorsal com dicas Microloader. Certifique-se de todo o embrião não flutua em cima da agarose, mas empurrar todo o corpo para baixo. Em seguida, despeje solução tricaina E3/0.015% em relação ao embrião agarose incorporado até câmara está totalmente preenchido com fluido. </li></ol> 4. Como ajustar as configurações de software em Microscópio Confocal <ol><li> Use 20X ar objetivo submergível (abertura numérica 0,75; pinhole tamanho 20) para focar o embrião. Em seguida, pressione o botão da luz L100 no microscópio e selecionar canais de software. Controls/A1settings abrir a ícones ver / aquisição e click o botão de configuração confocal. Em seguida clique em &quot;auto&quot; e selecione os canais seguintes antes de fechar a janela novamente: Ch1: DAPI canal de 403,4 nm (comprimentos de onda entre 350-410 nm pode ser usado) CH2: 488,0 nm CH3: 561,9 nm </li></ol> 5. Fotoconversão <ol><li> Desligue Ch1 e 3 e ligue Ch2 antes de clicar no botão remover interlock e digitalização. </li><li> Concentre-se em células de interesse para fotoconversão, que é o melhor feito por começando com 1frame/sec e alta tensão (HV) 200 e, em seguida, subir no frames / seg e diminuindo o HV em conformidade até chegar a 1/32 frames / seg e HV em torno 100-120, de acordo com o ruído de fundo. </li><li> Quando o embrião está em foco, olhar para a borda direita da tela, pegue a borda verde e torná-lo menor para que caiba a área de interesse para fotoconversão e clique direito com o mouse. Menor é melhor porque o fotoconversão é irreversível. </li><li> Vire frames / seg a 1 e HV para 200 e baterdigitalizar. Um zoom na imagem da área de fotoconversão é agora visível. </li><li> Photoconvert células ativando Ch1 (403,4 nm). Expor ao laser photoconverting em qualquer lugar 5-60 segundos, dependendo do tamanho da região até Kaede verde como visto através do canal de GFP é quase ausente. </li><li> Quando o sinal de Kaede verde é quase ausente, vire Ch1 fora. Vire Ch2 e 3 no. Em seguida, clique direito sobre a janela no campo área de digitalização A1 e clique em &#39;retorno ao tamanho original&#39; para verificar se as células pretendidas foram photoconverted. </li></ol> 6. Fazendo uma pilha Z <ol><li> Encontre o ícone &quot;captura Z-series &#39;na barra de menu e definir os limites superior e inferior do Z-stack antes de iniciá-lo. Definir LUTs. </li></ol> 7. Software-Configurações Time-lapse <ol><li> Vá para a caixa A1Simple GUI e marque seguintes definições: 1/32 frames / seg Tamanho 1024 média de 4 ou 8 X, dependendo do número de Z-pilhas que tem de ser feita em um circuito </li><li> Vá para:controles view / aquisição / aquisição seqüência ND e definir intervalo de tempo (8-30min), clique em contínua e clique Z-stack. Definir fronteiras como testado antes e começar filme. </li><li> Continue adicionando E3/0.015% tricaina solução câmara de slides durante todo o dia. À noite, encher câmara completamente. Isso vai durar até a manhã seguinte. </li><li> Na manhã seguinte, encher solução tricaina E3/0.015% e verifique se embrião ainda está vivo. A perda de fluorescência indica morte. Continuar recargas e verificações ao longo do dia. </li><li> Quando a estrutura de terminar a formação, ou o embrião tenha morrido, o filme terminar. </li></ol> 8. Processamento de pós-produção <ol><li> Clique &#39;show projeção intensidade máxima&#39; na barra de ferramentas, em seguida, clique direito sobre a imagem e criar um novo documento. O vídeo é agora visível na melhor qualidade possível. Vá em frente para eliminar quadros que não são necessários e ajustar LUTs. Finalmente salvar como. Avi. Este formato será bom para o Windows. Para download de software Mac to converter. mov ou. wmv. </li></ol>

<ol>
	<li>. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevalence+at+Birth+of+Cleft+Lip+With+or+Without+Cleft+Palate:+Data+From+the+International+Perinatal+Database+of+Typical+Oral+Clefts+(IPDTOC).">Prevalence at Birth of Cleft Lip With or Without Cleft Palate: Data From the International Perinatal Database of Typical Oral Clefts (IPDTOC).</a> Cleft Palate Craniofac. J. 48 (1), 66-81 (2011).</li><li>Dixon, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cleft+lip+and+palate:+understanding+genetic+and+environmental+influences.">Cleft lip and palate: understanding genetic and environmental influences.</a> Nat. Rev. Genet. 12 (3), 167-178 (2011).</li><li>Mangold, E., Ludwig, K. U., Nothen, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Breakthroughs+in+the+genetics+of+orofacial+clefting.">Breakthroughs in the genetics of orofacial clefting.</a> Trends Mol. Med. 17 (12), 725-733 (2011).</li><li>Kimmel, C. B., Miller, C. T., Moens, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Specification+and+morphogenesis+of+the+zebrafish+larval+head+skeleton.">Specification and morphogenesis of the zebrafish larval head skeleton.</a> Dev. Biol. 233 (2), 239-257 (2001).</li><li>Dougherty, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Embryonic+Fate+Map+of+First+Pharyngeal+Arch+Structures+in+the+sox10:+kaede+Zebrafish+Transgenic+Model.">Embryonic Fate Map of First Pharyngeal Arch Structures in the sox10: kaede Zebrafish Transgenic Model.</a> J. Craniofac. Surg. 23 (5), 1333-1337 (2012).</li><li>Trainor, P. A., Krumlauf, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hox+genes,+neural+crest+cells+and+branchial+arch+patterning.">Hox genes, neural crest cells and branchial arch patterning.</a> Curr. Opin. Cell Biol. 13 (6), 698-705 (2001).</li><li>Schilling, T. F., Kimmel, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Segment+and+cell+type+lineage+restrictions+during+pharyngeal+arch+development+in+the+zebrafish+embryo.">Segment and cell type lineage restrictions during pharyngeal arch development in the zebrafish embryo.</a> Development. 120 (3), 483-494 (1994).</li><li>Swartz, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Examination+of+a+palatogenic+gene+program+in+zebrafish.">Examination of a palatogenic gene program in zebrafish.</a> Dev. Dyn. 240 (9), 2204-2220 (2011).</li><li>McCollum, C. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Developmental+toxicity+screening+in+zebrafish.+Birth+Defects+Res.">Developmental toxicity screening in zebrafish. Birth Defects Res.</a> C. Embryo Today. 93 (2), 67-114 (2011).</li><li>Wada, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hedgehog+signaling+is+required+for+cranial+neural+crest+morphogenesis+and+chondrogenesis+at+the+midline+in+the+zebrafish+skull.">Hedgehog signaling is required for cranial neural crest morphogenesis and chondrogenesis at the midline in the zebrafish skull.</a> Development. 132 (17), 3977-3988 (2005).</li><li>Eberhart, J. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Early+Hedgehog+signaling+from+neural+to+oral+epithelium+organizes+anterior+craniofacial+development.">Early Hedgehog signaling from neural to oral epithelium organizes anterior craniofacial development.</a> Development. 133 (6), 1069-1077 (2006).</li><li>Ando, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+optical+marker+based+on+the+UV-induced+green-to-red+photoconversion+of+a+fluorescent+protein.">An optical marker based on the UV-induced green-to-red photoconversion of a fluorescent protein.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 99 (20), 12651-12656 (2002).</li><li>Kimmel, C. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stages+of+embryonic+development+of+the+zebrafish.">Stages of embryonic development of the zebrafish.</a> Dev. Dyn. 203 (3), 253-310 (1993).</li><li>Kawakami, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+zebrafish-secreted+matrix+protein+you/scube2+is+implicated+in+long-range+regulation+of+hedgehog+signaling.">The zebrafish-secreted matrix protein you/scube2 is implicated in long-range regulation of hedgehog signaling.</a> Curr. Biol. 15 (5), 480-488 (2005).</li><li>Lombardo, V. A., Sporbert, A., Abdelilah-Seyfried, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+tracking+using+photoconvertible+proteins+during+zebrafish+development.">Cell tracking using photoconvertible proteins during zebrafish development.</a> J. Vis. Exp. (67), e4350 (2012).</li></ol>

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Aqui, um novo método para a visualização de desenvolvimento craniofacial no modelo do peixe-zebra é mostrado. Os SOX10: kaede linha de peixes-zebra transgénicos tem sido usado com sucesso para descrever o padrão de migração de CNCC em detalhe é usado como um organismo modelo 5. Estudos anteriores já haviam utilizado marcos brutas, como o olho às células-alvo e têm contado com injeção mRNA Kaede, ensaios fotoconversão ou enjaulado dextrano fluoresceína para fotocon...

Fendas orofaciais representam a deformidade craniofacial mais prevalente, com 1/700-1, 000 entregas afetadas 1. Rompimento de desenvolvimento craniofacial embrionário precoce pode levar à formação de fissura de lábio e palato (FL / P). Enquanto causas para fenda sindrômica foram amplamente demonstrado, as bases genéticas e epigenéticas de formas não sindrômicas de fissuras orofaciais ainda precisa ser descoberto 2-4. A fim de compreender a etiologia e patogénese destas malformações, é necessário para elucidar o desenvolvimento de estruturas craniofaciais numa base celular. Em todas as espécies de vertebrados células da crista neural cranianos (CNCC) migram do tubo neural dorsal para preencher os arcos da faringe, o que contribuirá para a formação das estruturas orofaciais. Rompimento de desenvolvimento da crista neural embrionária precoce pode levar à formação de malformações craniofaciais incluindo CL / P 5-7. Em anúnciodição de semelhanças estruturais entre peixe-zebra e desenvolvimento craniofacial mamíferos (CNCCs residem nas regiões homólogas), a rede reguladora do gene é altamente conservado. Também tem sido mostrado que CNCCs desenvolver da mesma maneira entre as espécies de peixe-zebra e amniote 8, fazendo com que o peixe-zebra de um organismo poderosa para o estudo da base de desenvolvimento e genética de CL / P. Tem muitas vantagens, incluindo o tamanho pequeno, rápido e ex-utero desenvolvimento embrionário, e as taxas de reprodução de altura. Além disso, o embrião é opticamente transparente, tornando-se passível de observação de eventos complexos de desenvolvimento sob o microscópio 9. É um modelo animal ideal para o estudo de migração e diferenciação de células da crista neural cranianos. Expandindo publicado anteriormente de trabalho de 8, 10, 11, o padrão migratório da CNCC foi descrito em detalhes usando as SOX10: Kaede modelo transgênico 5. Kaede é uma proteína de foto-conversível que turns de verde para vermelho após a ativação de fotos e faz com que seja possível traçar CNCCs precisão. Durante esta transformação da estrutura peptídica é clivada, sugerindo que a conversão é estável, o que significa que as células podem ser rastreados para o seu destino final 12. Linhas transgénicas marcadas com kaede sob o controlo transcricional de SOX10 mostrou que o paladar e a placa amniota etmóide de peixe-zebra são formados por fusão de homologamente saliências maxilares bilaterais (MXP) com a proeminência ITontonasal (FNP) e que a costura de fusão em forma de Y é análoga entre espécies. Entre outras aplicações, as SOX10: kaede modelo transgénico de peixe-zebra foi usado para gerar o vídeo de embriões de peixes-zebra em diferentes estágios de desenvolvimento para mostrar a formação de estruturas craniofaciais normais e anormais. Fotoconversão de grupos específicos de células faz com que seja possível acompanhar o seu desenvolvimento. Com este método de abordagem para criar imagens em tempo real de desenvolver craniofacestruturas ial em peixe-zebra é introduzida, tornando mais fácil para demonstrar visualmente esse processo complexo de desenvolvimento. Este protocolo destina-se a partilhar a experiência de gerar esses vídeos usando o desenvolvimento normal da placa etmoidal em SOX10: zebrafish transgênicos Kaede como exemplo. Este protocolo pode ainda ser aplicada a fazer vídeos de lapso de tempo de qualquer estrutura derivadas de células da crista neural cranial em peixe-zebra.

<table border="1">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Name of Reagent/Material</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sox10: kaede transgenic zebrafish line</td>
			<td>MGH</td>
			<td></td>
			<td>Available via the Liao lab</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes 100x15 mm</td>
			<td>BD Falcon</td>
			<td>351029</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes 35 mmx10 mm</td>
			<td>BD Falcon</td>
			<td>351008</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrapure Low melting point (LMP) Agarose</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>15517022</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lab Tek 2 Chamber SlideSystem</td>
			<td>LabTek</td>
			<td>154453</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microloaders 200/pk</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>E5242956003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nikon A1R Si Confocal Ti series</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>No Catalog number</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NIS Elements Software AR3.2 64-bit</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>No Catalog number</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

visualization of craniofacial development in the sox10: kaede transgenic zebrafish line using time-lapse confocal microscopy

Vertebrate palatogenesis é um processo de desenvolvimento altamente coreografada e complexo, que envolve a migração de crista neural craniana (CNC) células, convergência e extensão de proeminências faciais e maturação do esqueleto craniofacial. Para estudar a contribuição da crista neural craniana para regiões específicas do paladar zebrafish um SOX10: Kaede linha zebrafish transgênicos foi gerada. SOX10 fornece restrição linhagem da proteína kaede repórter para a crista neural, tornando assim o processo de marcação de uma célula mais precisa do que a tradicional corante ou injecção de ARNm repórter. Kaede é uma proteína de foto-conversível que muda de verde para vermelho após a ativação da foto e faz com que seja possível seguir as células com precisão. Os SOX10: linha transgênica Kaede foi utilizada para realizar a análise de linhagem para delinear as populações de células CNC que dão origem ao maxilar contra elementos mandibulares e ilustram homologia de proeminências faciais para amniotas. Este protocolo descreve o passos para gerar um vídeo time-lapse ao vivo de um SOX10: embrião de peixe-zebra Kaede. Desenvolvimento da placa etmoidal servirá como um exemplo prático. Este protocolo pode ser aplicado para fazer uma gravação confocal de lapso de tempo de qualquer kaede ou semelhante da proteína repórter em peixes-zebra transgénicos photoconvertible. Além disso, ele pode ser usado para capturar não só o normal, mas também o desenvolvimento anormal de estruturas craniofaciais nos mutantes de peixe-zebra.

No SOX10: CNCCs linhagem transgênica Kaede, migratórias e pós migratórias são rotulados fluorescente verde. As células marcadas com CNCC Kaede verde fluorescente recapitular endógeno expressão de mRNA SOX10 5. Entre outras aplicações, este modelo animal foi usado para visualizar melhor o desenvolvimento de estruturas craniofaciais CNCC dependentes. O desenvolvimento normal das estruturas específicas e também o desenvolvimento patológico de malformações craniofaciais...

Watch this Scientific Journal Video about Visualization of Craniofacial Development in the sox10: kaede Transgenic Zebrafish Line Using Time-lapse Confocal Microscopy at JoVE.com

Visualization of Craniofacial Development in the sox10: kaede Transgenic Zebrafish Line Using Time-lapse Confocal Microscopy

Visualização de dados experimental tornou-se um elemento-chave na apresentação de resultados para a comunidade científica. Geração de gravação de lapso de tempo ao vivo de embriões de crescimento contribui para uma melhor apresentação e compreensão dos processos de desenvolvimento complexos. Este protocolo é um guia para marcação celular passo-a-passo através de fotoconversão de proteína Kaede no peixe-zebra.

Visualização de Desenvolvimento Craniofacial nas SOX10: Kaede Transgênicos Zebrafish Linha Usando Time-lapse microscopia confocal

Vertebrate palatogenesis is a highly choreographed and complex developmental process, which involves migration of cranial neural crest (CNC) cells, ...

visualization-craniofacial-development-sox10-kaede-transgenic

Research

JoVE Journal

Biology

12.7K visualizações.  Massachusetts General Hospital.  Visualização de dados experimental tornou-se um elemento-chave na apresentação de resultados para a comunidade científica. Geração de gravação de lapso de tempo ao vivo de embriões de crescimento contribui para uma melhor apresentação e compreensão dos processos de desenvolvimento complexos. Este protocolo é um guia para marcação celular passo-a-passo através de fotoconversão de proteína Kaede no peixe-zebra. 