We would like to thank CSL Ltd. for supporting the purchase of the endoscopy equipment. The research in the laboratory of ME is supported by the Ludwig Institute for Cancer Research, and the laboratories of TP and ME are supported by the Victorian State Government Operational Infrastructure Support and the National Health and Medical Research Council of Australia. ME is an NHMRC Senior Research Fellow.

O Institute of Medical Research comissão ética animal Walter e Eliza Salão aprovado cada um dos procedimentos descritos nestes protocolos. 1. Preparação de Experimental Ratos <ol><li> Componha coortes experimentais de pelo menos 4 sexo do 6-8 semanas de idade camundongos C57BL / 6 (M. musculus) que são criados e mantidos no mesmo patógeno específico livre (SPF) facilidade animal / quarto e fornecidos com alimentos e água autoclavada. A utilização de ratinhos fêmea irá permitir a co-habitação de ratos a partir de diferentes linhas, número de caixa de limite, e reduzir a variação gaiola para gaiola. </li><li> Certifique-se de que os ratos são pelo menos 6 semanas da idade para permitir procedimentos de endoscopia usando a 3,0 milímetros de diâmetro endoscopia bainha. </li><li> Use ratinhos do mesmo fundo genético, e sempre que possível, a partir de gaiolas armazenados na mesma prateleira para reduzir as variações associadas com a microflora intestinal. Variações na microflora entre instalações para animais deve ser tomado em consideração when determinar os ratos e genótipos de controlo adequadas para cada experimento 22. </li><li> Mark camundongos por recortes de ouvido / dedo do pé, tatuagens, ou similares para permitir a fácil identificação. </li><li> Pese ratinhos no dia 0, para determinar pesos de base experimental. </li><li> Realizar endoscopia (ver Seção 5) de ratos no dia 0 para gravar fenótipos colônicas basais. </li></ol> 2. Julgamento pré-clínicos em um dano epitelial e aguda Colite Modelo <ol><li> Prepara-se uma solução do agente terapêutico a ser testado. Para terapêutica entregues por sonda oral (po), preparar soluções para um volume máximo de 100 mL. Para terapêutica entregues por (ip) injecção intraperitoneal, preparar soluções para um volume máximo de 200 mL. NOTA: repetida ip ou po administração da droga por períodos prolongados de tempo pode resultar em alteração de comportamento mouse. Alternar o local da injecção ip para evitar desconforto prolongado. Para a administração po, fornecer os camundongos com autocsementes de girassol laved como um &#39;mimo&#39; para minimizar a associação negativa com o procedimento gavage. </li><li> No Dia 1, administrar o agente terapêutico de interesse (preparado no passo 2.1) e veículos de controlo apropriados. No exemplo fornecido (Figura 6A), 5 ug de humano recombinante (rh) iInterleukin (IL) -11 proteína foi dissolvido em 200 ul de tampão fosfato salino (PBS) e administrado ip </li><li> Determine o tempo e frequência das administrações, que será dependente da perfil farmacocinético estabelecido para o reagente terapêutico que está sendo testado. A Figura 1 delineia o tratamento profilático com injecções ip duas vezes ao dia ao longo do curso do experimento. </li><li> Monitorar, incluindo a consistência das fezes e da presença de sangue, e pesar cada rato diariamente. Nos dias de tratamento, a pesagem deve coincidir com a administração do fármaco terapêutico para minimizar o stress aos ratinhos por manuseamento repetido. </li&gt; <li> No Dia 3, preparar 2,5% (2,5 g / 100 ml) solução de DSS na água potável rotineiramente fornecida aos ratinhos pela instalação para animais. Cerca de 5 ml / rato / dia de solução DSS é necessário para o experimento. O consumo da água DSS podem alterar-se a temperatura ambiente da instalação para animais flutua. NOTA: DSS é um agente irritante e devem ser tratados de acordo com as instruções FDSM. </li><li> Fornecer DSS fresco para o ad libitum camundongos em garrafas de água potável para 5 dias contínuos. Na noite do dia 5, fornecer água potável normal, além de pelotas de alimentos purê e um suplemento de proteína fornecida em pequenas placas de Petri (100 g pelotas de alimentos / 10 g shake de proteína / 10 ml de água). Isso evita a desidratação e ajuda com a minimização de perda de peso grave. </li><li> Eutanásia camundongos por CO 2 intoxicação e coletar tecidos para posterior análise histológica, na manhã do dia 8, ou quando os ratos experimentar a perda de peso ≥15% por mais de três consecutive dias, o que ocorrer primeiro. NOTA: Ajustar a dose DSS entre 1-4% (w / v) dependendo da microflora da instalação para animais e o lote de DSS. Realizar, testes em lotes de rotina para determinar a dosagem apropriada DSS e contornar variação de lote para lote. A dosagem apropriada deve ser baseada na perda de peso (não superior a 15% do peso original) e histopatologia confirmou colite. </li></ol> 3. Teste pré-clínica numa colite crónica ou cancro do Modelo-colite associada <ol><li> Para o modelo de colite crônica começam a partir do passo 3.7. </li><li> Para o modelo de cancro associado a colite (CAC), no dia 1, cada rato com injectar 10 mg / kg (w / w) Azoximetano (AOM, 250 ul, ip). NOTA: OMA é uma substância cancerígena e devem ser tratados de acordo com as instruções FDSM. </li><li> As soluções de reserva são preparadas como AOM a 10 mg / ml e alíquotas armazenadas a -20 ° C. No dia da injecção, a solução estoque AOM é descongelado e diluído para 1 mg / ml em PBS. Congelamento e descongelamento da solução estoque OMA repetida deve ser evitada. </li><li> A dose AOM pode ser ajustado entre 8-12 mg / kg. São necessários ensaios lote de rotina para estabelecer a dosagem AOM apropriado a fim de contornar a toxicidade para camundongos, devido a variação de lote para lote. </li><li> Durante os dias 07/01 seguinte pesos administração AOM será estável e por esta razão a monitorização do peso pode ser omitido durante Dias 1-7 para evitar manipulação de animais que excretam metabólitos citotóxicos em suas fezes. </li><li> No dia 7 de roupa de cama precisa ser mudado de acordo com procedimentos citotóxicos. Uma vez que a mudança de roupa de cama é completa, os animais já não necessitam de procedimentos de manuseio citotóxicos, como eles não serão mais excretando metabolitos citotóxicos. </li><li> No Dia 8, preparar 2,5% (2,5 g / 100 ml) solução de DSS (tal como descrito no passo 2.5) e fornecer para o ad libitum ratinhos. </li><li> Pesar ratos diariamente durante todo o experimento e monitorar os sinais de doença, incluindo fu babadosr, curvando, fezes com sangue e movimento reduzido. </li><li> No dia 13, remover a solução DSS e fornecer os ratos com água potável normal até o dia 28. Dias 28/08 constituem um &quot;ciclo&quot; do protocolo colite / CAC crônica. </li><li> Nos dias 13-28, quando os ratos recebem água potável normal, fornecer os ratos com pelotas de alimentos purê e um suplemento de proteína fornecida em pequenas placas de Petri (100 g grãos de ração / 10 g de proteína de agitação / 10 ml de água). Isso evita a desidratação e ajuda com a minimização de perda de peso grave. NOTA: Os suplementos de proteína em puré não deve ser fornecida quando os ratos estão recebendo DSS contendo água potável, a fim de garantir a consistência no consumo DSS. </li><li> No dia 20 a realização do segundo exame endoscópico para monitorar a saúde individual do rato (ver item 5). </li><li> No dia 29 de repetir o ciclo DSS (Ciclo 2: 2,5% (w / v) DSS oferecido durante Dias 29-33 e água potável normal durante 34-50 dias). </li><li> No dia 40 realizar o thiEterno endoscopia para monitorar de saúde individual do mouse e determinar carga tumoral (veja seção 5). </li><li> Se não há tumores são visíveis por endoscopia no dia 40, começa um terceiro ciclo DSS nos dias 50-72 (Ciclo 3: 2,5% (w / v) DSS oferecido durante Dias 50-55 e água potável normal durante 56-72 dias). Em geral, os tumores são visíveis por Dia 40 e, por conseguinte, o terceiro ciclo de DSS podem ser omitidos. </li><li> Uma vez que os tumores se tornam visíveis por exame endoscópico, atribua a cada rato um score tumor endoscópica (ver item 5) e atribuir camundongos individuais para coortes com encargos semelhantes tumores basais. </li><li> No dia 42 (ou quando os tumores são visíveis), administrar o composto terapêutico ou o controle do veículo relevante (ver secção 2.2). A calendarização das doses será dependente do perfil farmacocinético da terapêutica. Um exemplo de um tratamento de intervenção injectados ip três vezes por semana em ratinhos com tumores estabelecidos é fornecida (Figura 2). </li><li> Execute eexames ndoscopic uma vez por semana durante a duração do tratamento terapêutico para monitorar a carga tumoral. Geralmente, 4 semanas de um tratamento terapêutico é suficiente para observar uma resposta objetiva tratamento. Após a cessação do tratamento, um grupo de ratinhos pode também ser monitorizada por endoscopia de recidiva tumoral. </li><li> Eutanásia camundongos por CO 2 intoxicação e coletar tecidos para análise bioquímica e / ou histológica na manhã do dia 72 ou quando os ratos experimentar a perda de peso ≥15% por mais de três dias consecutivos, o que ocorrer primeiro. </li></ol> 4. Julgamento pré-clínica em uma Cancro colorretal esporádico <ol><li> No dia 1, injetar cada ip rato com 10 mg / kg AOM (veja o passo 3.2). A dose AOM pode ser ajustado entre 8-12 mg / kg. São necessários ensaios lote de rotina para estabelecer a dosagem AOM apropriado a fim de contornar a toxicidade para camundongos, devido a variação de lote para lote. </li><li> Repetir a injecção no primeiro dia de cada semanapara as cinco semanas seguintes (Figura 3). Os ratinhos devem ser tratados de acordo com os procedimentos de segurança citotóxicos para toda a 6 semanas. </li><li> Pesar cada rato no dia da injeção AOM para minimizar o sofrimento para os ratos causados ​​pelo manuseio repetido. NOTA: OMA é uma substância cancerígena e devem ser tratados de acordo com as instruções FDSM. </li><li> Todos os animais devem ser tratados de acordo com os procedimentos de segurança citotóxicos para as 6 semanas de injeções ip OMA necessários para este protocolo. </li><li> Durante a semana 8 realizar exame endoscópico para monitorizar tumores emergentes (ver seção 5). O exame endoscópico deve ser realizada a cada duas semanas até que os tumores se tornam visíveis. De um modo geral, de tipo selvagem C57BL / 6 animais começam a desenvolver tumores de cerca de 40 semanas após a administração inicial de AOM. </li><li> Uma vez que os tumores se tornam visíveis por exame endoscópico, atribuir a cada rato uma pontuação tumor endoscópica (ver item 5) e atribuir camundongos indivíduo a uma coorte com semelhante<html> cargas de tumor antes do início do tratamento terapêutico. </li><li> Durante a semana de 40 (ou quando os tumores são de primeira visível), administrar o composto terapêutico ou o controle do veículo em questão. </li><li> A calendarização das doses será dependente do perfil farmacocinético da terapêutica (ver passo 2.1). Um exemplo de um tratamento de intervenção injectado ip 3 vezes por semana em ratinhos com tumores estabelecidos é fornecida (Figura 3). </li><li> Realizar semanal para o exame endoscópico duração dos períodos de tratamento terapêutico para monitorar a carga tumoral. Geralmente, um de 4 semanas de tratamento terapêutico são suficientes para uma resposta objectiva tratamento. Após a interrupção do tratamento, um grupo de ratos também podem ser monitorados por endoscopia para recidiva tumoral. </li><li> Eutanásia ratinhos por CO 2 intoxicação e colher tecidos para análise bioquímica e / ou histológico do cólon e tumores durante 45 semanas, ou após 4 semanas de terapia. </li></ol>ve_title &quot;&gt; 5. exames endoscópicos <ol><li> O equipamento de endoscopia deve ser montada de acordo com os procedimentos padrão 16. </li><li> Esterilizar e endoscópio limpar a sonda com etanol a 70% ou um lubrificante anti-bacteriana. </li><li> Os vídeos podem ser gravados utilizando um computador laptop ou desktop e software de mídia padrão, como o iMovie. Um monitor de computador padrão, em vez de um monitor de grau médico, é suficiente para a visualização do cólon durante o procedimento endoscópico (Figura 4). </li><li> Anestesiar grupos de 5-6 ratos em simultâneo numa câmara com 3% de isoflurano em 100% de O 2 a uma taxa de 0,2-0,4 l / min. Uma vez que os ratos são anestesiados, o que é confirmado por aperto do dedo do pé; os níveis de anestésico deve ser alterada para 0,5-2% para manutenção. </li><li> Remover um ratinho individual da câmara, e colocá-lo lado ventral com a cabeça presa em um nariz de cone. Anestesia cheios devem ser monitorizadas e as patas traseiras deve ser ajustada de modo que eles são stretched atrás do mouse. </li><li> Coloque uma pomada veterinário sobre os olhos dos ratos para prevenir o ressecamento. </li><li> Segure a cauda do rato, onde se encontra com a parte inferior da coluna para revelar claramente o ânus. Introduza a bainha endoscópio rígido para uma proveta de água e ajustar o fluxo de ar para permitir a libertação de uma pequena bolha de cada vez. </li><li> O fluxo de ar vai permitir que o cólon para inflar. Se o fluxo de ar é muito forte, o ar será bombeado para dentro do estômago do rato. Nenhuma lubrificação adicional é necessária. </li><li> Insira cuidadosamente a bainha endoscópio rígido no recto. Geralmente, o endoscópio pode ser inserido até 3 cm, altura em que os dois pontos em curvas de ratos e não é acessível ao endoscópio rígido. </li><li> Uma dificuldade comum durante procedimentos endoscópicos é o bloqueio do acesso ao lúmen do cólon devido à matéria fecal. Evite isso, massageando suavemente da barriga de ratos antes do procedimento para incentivar a defecação, ou cuidadosamente manobrar o endoscópio em torno do Fecal assunto durante o procedimento. Peristaltismo também pode ocorrer, durante o qual o endoscópio deve ser mantido em posição até que a musculatura do cólon relaxa. </li><li> Iniciar a gravação de vídeo em qualquer fase do procedimento de endoscopia. Scoring doença pode ser gravado por um assistente experiente durante o procedimento, ou em um ponto de tempo mais tarde a partir dos arquivos de vídeo. </li><li> Após o exame endoscópico, retornar os ratos para sua gaiola e monitorá-los durante a recuperação da anestesia. Os animais são geralmente acordado e móvel em até 2 minutos após a remoção do isoflurano administrar nariz cone. </li><li> Certifique-se de que esses procedimentos são realizados por um cientista experiente. Cada procedimento de endoscopia levará aproximadamente 2 min por mouse. </li></ol> 6. Doença Scoring <ol><li> Para monitorar colite, marcar vídeos para o Índice de murino endoscópica de Colite Gravidade (MEICS) 16, que documenta mudanças em (i) a espessura da parede do cólon indicado pela transparência, (Ii) a consistência das fezes, (iii) a integridade dos vasos sanguíneos e na presença, (iv) as úlceras e as zonas de regeneração que se apresentam numa forma granular, (v) o sangramento indicado por depósitos de fibrina (Figura 5a). </li><li> Para monitorar a carga tumoral, marcar vídeos para incidência e tamanho do tumor. A dimensão do tumor é determinada pelo diâmetro do lúmen do cólon ocupados pelo tumor 16 (Figura 5b). É comum a utilização de ambos os parâmetros de pontuação e colite tumor para um único rato. Usando endoscopia, tumores individuais e a saúde da mucosa do cólon pode ser monitorizado ao longo do tempo, fornecendo uma li-a para o sucesso de novas terapêuticas num único animal. </li><li> (Opcional) As imagens fixas podem ser extraídos dos vídeos para a geração de números representativos (Figura 6). </li></ol>

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T., Merlin, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dextran+sodium+sulfate+inhibits+the+activities+of+both+polymerase+and+reverse+transcriptase:+lithium+chloride+purification,+a+rapid+and+efficient+technique+to+purify+RNA.">Dextran sodium sulfate inhibits the activities of both polymerase and reverse transcriptase: lithium chloride purification, a rapid and efficient technique to purify RNA.</a> BMC Res Notes. 6, 350 (2013).</li><li>Kerr, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dextran+sodium+sulfate+inhibition+of+real-time+polymerase+chain+reaction+amplification:+a+poly-A+purification+solution.">Dextran sodium sulfate inhibition of real-time polymerase chain reaction amplification: a poly-A purification solution.</a> Inflamm Bowel Dis. 18, 344-348 (2012).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Os três protocolos que são descritos os métodos de contorno de indução confiável e reprodutível da patologia da doença do cólon em camundongos. Quando combinado com as estratégias de intervenção descritas aqui acompanhamento endoscópico de rotina e, estes protocolos irá fornecer poderosa visão pré-clínicos sobre a eficácia da terapêutica. Nossos laboratórios rotineiramente usar todos esses protocolos para monitorar o sucesso de novas terapias 10,23,24. Há um número de considerações ao escolher um modelo animal pré-clínica para testar novas terapêuticas. Estes incluem a relevância do modelo para a doença humana, e a contribuição do microambiente do tumor para a acção proposta do alvo terapêutico. Aqui nós fornecemos três protocolos de intervenção terapêutica em modelos de doenças intestinais estabelecidos. Estes modelos são reprodutíveis e a entrega de reagentes para induzir a doença é fácil de gerir. É importante ressaltar que os modelos são altamente relevantesde múltiplas facetas e fases de início colite, e de iniciação e progressão tumoral. Os investigadores devem levar em consideração o fundo genético das linhagens de camundongos utilizados na concepção experiências, como a susceptibilidade à doença induzida por DSS e / ou AOM podem variar consideravelmente 25. Além disso, diferentes comunidades microbianas podem ter diferentes capacidades metabólicas no contexto de AOM, a qual é metabolizada pelas bactérias. Advertimos contra o uso de diferentes grupos de ratos que nasceram em diferentes instalações para animais (incluindo fornecedores comerciais) em um único experimento. Da mesma forma, o diferente microflora em camundongos usados ​​de diferentes instalações podem provocar diferentes respostas do hospedeiro para DSS-induzida danos barreira epitelial 11. Além disso, a análise de tecido apropriado (por exemplo, a purificação de ARN) também deve ser considerado, uma vez que a capacidade de DSS a inibir a transcriptase reversa terá um impacto sobre a análise molecular subsequente 26,27. <p class = &quot;jove_content&quot;&gt; Mouse endoscopia é uma técnica de ponta para monitorar constantemente o início da doença e progressão em um mouse individual. A capacidade de gravar vídeos e extrair imagens ainda permite fácil monitoramento de vários parâmetros de doenças e tumores. Além de melhorar o bem-estar animal, a monitorização endoscópica também reduz a necessidade de vários grupos de camundongos experimentais, que tradicionalmente foram abatidos em diferentes pontos de tempo para acompanhar a evolução da doença. O sistema de pontuação MEICS não é um substituto para a análise histopatológica, mas fornece um meio alternativo para monitorar danos a saúde animal e da mucosa em camundongos vivos. Rato endoscopia é uma técnica de laboratório especializado, e todos os procedimentos devem ser realizados por pessoal treinado para garantir a manipulação e manejo adequado dos camundongos, bem como para proporcionar qualidade consistente nas imagens usadas para marcar doença. Nas mãos de pessoal qualificado, descobrimos que a endoscopia induz pouco ou nenhum dano para o tumors que poderiam causar hemorragia intra-tumoral. Para os protocolos terapêuticos esboçados, consideramos endoscopia altamente vantajoso, uma vez que fornece uma maneira de determinar a carga do tumor inicial, e nos permite coortes grupo de animais com tumor encargos semelhantes antes da administração de uma droga terapêutica. Monitoramento seqüencial da camundongos permite aos pesquisadores determinar a eficácia de novas terapias no início, com a opção de terminar de experiências sem sucesso em tempo hábil. Como nossa compreensão da doença inflamatória intestinal e colorectal cânceres antecedência, novos alvos para a terapia será identificado. Modelos animais apropriados fará parte integrante de garantir que as novas terapias mais promissoras são movidos em direção ensaios clínicos.

O câncer colorretal (CCR) é a 4ª causa mais comum de tumor maligno em todo o mundo 1. Apesar dos progressos significativos em nossa compreensão da base familiar desta doença, a predisposição genética contribui apenas para ~ 20% dos casos 2 CRC. O restante é atribuído a vários fatores extrínsecos e ambientais, incluindo a inflamação crônica. Nos seres humanos, a ligação entre a inflamação crónica e o cancro do cólon é evidente em colite ulcerosa (UC) pacientes, que têm um maior risco de desenvolvimento de cancro do cólon associada à colite (CAC), dependendo da duração, amplitude e da gravidade da doença inflamatória 3 -5. Consequentemente, novas terapias estão em desenvolvimento para controlar a resposta imunitária e a produção de factores de crescimento associados factores pelo microambiente tumoral inflamatório 6-8. Existe uma exigência crescente de modelos animais pré-clínicos apropriados para caracterizar a eficácia terapêutica deestas drogas contra o desenvolvimento e progressão da doença. Modelos de ratos têm inequivocamente demonstrado que o microambiente inflamatório contribui para a progressão da CRC, mesmo na ausência de inflamação evidente 9,10. Estes modelos incluem a utilização do sulfato de sódio polissacárido dextrano (DSS), fornecido na água de beber dos ratos, para modelar lesão epitelial e doença intestinal inflamatória aguda e crónica (IBD) 11,12. Embora o mecanismo pelo qual DSS induz lesão da mucosa e colite não é completamente compreendido, alguns estudos sugerem que o DSS inibe as actividades de transcriptase reversa e de ribonuclease celulares no interior das células, ou promove a formação de complexos de nano-lipídico que se fundem com a membrana epitelial do cólon levando a danos 13,14. Modificações ao modelo DSS padrão também forneceram uma visão significativa sobre os mecanismos pelos quais as células epiteliais do cólon manter a homeostase do tecido e regularidadetarde respostas imunes nas mucosas 15. A administração intraperitoneal de Azoximetano (OMA) sozinho, ou em combinação com DSS, fornece um modelo para a análise da interacção entre as mutações somáticas na mucosa epitelial e estromal no microambiente inflamatório e 16,17. OMA é um metabólito da substância cancerígena 1,2-dimetil-hidrazina (DMH), que não resultam diretamente em mutações no DNA. Em vez disso, a AOM é hidrolisado para methylazoxymethanol (MAM) pela isoforma do citocromo CYP2E1 no fígado, onde MAM é conjugado com o ácido glucorónico e, em seguida, transportados para o intestino através de secreções biliares 18. Pensa-se que o β-glucuronidase bacteriana contribui para a degradação do MAM resultando na alquilação de DNA e a acumulação de mutações em células epiteliais 19. A maioria dos tumores do cólon induzida por AOM abrigar mutações missense no gene que codifica a β-catenina, tornando a proteína resistente a degradação de proteossomono, o que resulta na activação aberrante da canónica via de sinalização Wnt-20. Quando a atividade da OMA é combinada com a lesão da mucosa provocada por DSS, a ferida que se seguiu a resposta de cura cria um microambiente que é propício para o crescimento e expansão do epitélio mutado. Numa variação deste modelo, a administração repetitiva de OMA sozinho ao longo de um período de várias semanas pode ser usado para modelar o cancro colorectal esporádica, na ausência de colite induzida por DSS 10,17. Estes dois modelos de cortesia fornecer configurações experimentais para estudar as CAC e esporádica CRC, respectivamente, ambas as quais estão associadas com um microambiente tumoral pró-inflamatória 10. O uso de endoscopia de série em camundongos foi iniciada por Becker e seus colegas 21, e permite o monitoramento longitudinal da colite e progressão tumoral. Aqui nós fornecemos três protocolos pré-clínicos com base em danos na mucosa induzida por DSS e / ou mediada por AOM tumor indução para induzir reproducibly patologias do cólon específicos. O primeiro protocolo descreve induzir danos na mucosa aguda em resposta à administração de DSS para induzir muitas das características histológicas associadas com IBD. O segundo protocolo baseia-se em três ciclos consecutivos de administração DSS para simular as chamas de inflamação normalmente observadas em doentes de IBD, e pode ser levada a cabo em conjunção com mutações induzidas por AOM. O protocolo final é baseado em mutações esporádicas epiteliais induzida pela OMA. Para cada um destes protocolos, vamos expandir sobre os procedimentos padrões relevantes a incluir métodos de intervenção profiláticas e terapêuticas que temos desenvolvido para monitorar a eficácia de novos medicamentos.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1021">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:281px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:112px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:509px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:281px;">Dextran Sulfate Sodium (MW 36,000-50,000)</td>
			<td style="width:112px;">MP Biochemicals</td>
			<td style="width:119px;">160110</td>
			<td>Requires batch testing.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:281px;">Azoxymethane</td>
			<td style="width:112px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">A5486-100MG</td>
			<td>Requires batch testing.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:281px;">Vanilla Protein Shake</td>
			<td style="width:112px;">N/A</td>
			<td style="width:119px;">N/A</td>
			<td>Available from hospital pharmacies.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:281px;">Isoflourane</td>
			<td style="width:112px;">PPC</td>
			<td style="width:119px;">M60303</td>
			<td>This is a restricted reagent, which should be stored under lock and key.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:281px;">70% Ethanol</td>
			<td style="width:112px;">N/A</td>
			<td style="width:119px;">N/A</td>
			<td>Standard lab reagent.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:281px;"></td>
			<td style="width:112px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:281px;">Coloview miniendoscopic system</td>
			<td style="width:112px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:281px;">Endovision Tricam</td>
			<td style="width:112px;">Karl Storz</td>
			<td style="width:119px;">20212001-020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:281px;">Xenon 175 light source with anti-fog pump</td>
			<td style="width:112px;">Karl Storz</td>
			<td style="width:119px;">20134001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:281px;">HOPKINS straight Forward Telescope</td>
			<td style="width:112px;">Karl Storz</td>
			<td style="width:119px;">64301AA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:281px;">Endoscopic Sheath (total diameter 3 mm)</td>
			<td style="width:112px;">Kalr Stroz</td>
			<td style="width:119px;">61029C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:281px;">Fubre Optic Light Cable</td>
			<td style="width:112px;">Kalr Stroz</td>
			<td style="width:119px;">69495ND</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:281px;">Computer and media player software</td>
			<td style="width:112px;">MAC, imovies</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:281px;">Scale</td>
			<td style="width:112px;">Any</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Any scale suitable for weighing mice.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

non-invasive assessment of the efficacy of new therapeutics for intestinal pathologies using serial endoscopic imaging of live mice

Animal models of inflammatory bowel disease (IBD) and colorectal cancer (CRC) have provided significant insight into the cell intrinsic and extrinsic mechanisms that contribute to the onset and progression of intestinal diseases. The identification of new molecules that promote these pathologies has led to a flurry of activity focused on the development of potential new therapies to inhibit their function. As a result, various pre-clinical mouse models with an intact immune system and stromal microenvironment are now heavily used. Here we describe three experimental protocols to test the efficacy of new therapeutics in pre-clinical models of (1) acute mucosal damage, (2) chronic colitis and/or colitis-associated colon cancer, and (3) sporadic colorectal cancer. We also outline procedures for serial endoscopic examination that can be used to document the therapeutic response of an individual tumor and to monitor the health of individual mice. These protocols provide complementary experimental platforms to test the effectiveness of therapeutic compounds shown to be well tolerated by mice.

Perda de peso é utilizada como um parâmetro padrão para monitorizar a doença associada com colite, que é utilizada rotineiramente para monitorizar a saúde geral dos ratos. Animais em geral, manter o seu peso enquanto DSS contendo água é administrado, e só começar a perder peso quando eles são devolvidos à água potável normal. Parâmetros de perda de peso aceitável deve ser estabelecida de acordo com o comitê de ética animal da instituição. A fim de evitar a desidratação associada à diarreia prolongada, utilizar o fornecimento de mosto de rotina (peletes alimentares amassada e misturada com água de beber), suplementado com uma agitação da proteína em adição à água de beber normal. Como uma alternativa a anestesia, a cetamina / xilazina ou agentes similares pode ser usado, se o equipamento isoflurano não está disponível. Devido à natureza rígida do endoscópio, estes processos permitem apenas a visualização das mais 3 centímetros distais do cólon do rato. Endoscópios mais novos, com<html> recursos adicionais (incluindo flexibilidade e fluorescência) estão disponíveis, dependendo das necessidades do experimento. No entanto, uma vez que os efeitos deletérios da SCD é limitada principalmente no cólon distai de ratinhos, com a patologia mais suave observada no cólon médio, o endoscópio rígido não prejudicar o acompanhamento da saúde das mucosas de ratinhos individuais. Embora os autores descrevem um protocolo para o tratamento profilático de colite induzida por DSS aguda, este protocolo pode facilmente ser modificado para testar estratégias de tratamento de intervenção. A eficácia de um fármaco de modo a aliviar danos epiteliais e colite pode ser monitorizada longitudinalmente em ratinhos individuais e quantificada com base nos parâmetros de pontuação descritas (Figura 5). Isto é vantajoso em relação a modelos experimentais tradicionais, as quais requerem o abate de ratinhos, em pontos de tempo específicos durante o protocolo experimental, e não permite a caracterização da resposta a um tratamento da doença ao longo do tempo. <html> t &quot;&gt; estudos clínicos em seres humanos revelaram uma considerável variabilidade em como diferentes tumores num paciente individual responder aos tratamentos. Os procedimentos que são descritos aqui proporcionam um meio para monitorar a carga tumoral total, bem como a resposta ao tratamento de tumores individuais ao longo de um experimento. É importante considerar que as protocolos de intervenção que são descritas para os modelos de câncer não levam em conta os efeitos de uma terapia em iniciação tumor. protocolos de profilaxia, com o tratamento prestado antes quando os tumores se tornam visíveis por endoscopia, são necessários para obter essa informação. Os protocolos descritos aqui fornecem informações sobre os efeitos terapêuticos sobre o sobre a progressão (medida pelo tamanho do tumor) de tumores individuais. regressão do tumor pode também ser indicada por uma redução no número de tumores visíveis. g &quot;/&gt; Figura 1:. A monitorização da eficácia de uma terapia de tratamento profilático num modelo de dano agudo do cólon O protocolo experimental (um) requer oito dias do início ao fim. Therapeutics são administrados (b) a partir do dia 1 para tratamentos profiláticos. DSS é fornecido na água de beber (c) a partir do dia 3 do protocolo experimental. A endoscopia é realizada (d) acompanhar a progressão da doença nos animais. Timepoints sugeridas incluem Dia 0 (sem tratamento) e Dia 2 (vigilância da saúde), Dia 5 e 8 (para determinar a carga de doença). A experiência é terminada (e) na manhã do Dia 8. Em um ratinho de tipo selvagem (f) a progressão da doença aumenta com o tempo. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/52383/52383fig2highres.jpg" /> Figura 2: Monitorando a eficácia da terapia de intervenção em um modelo of colite associada ao cancro. O protocolo experimental (um) requer 72 dias do início ao fim. Therapeutics (b) são administrados a ratinhos com tumores estabelecidos a partir do dia 46 para os tratamentos de intervenção. AOM (c) é injectado no Dia 1, e DSS é fornecido na água de beber durante o decurso de três ciclos do protocolo experimental, começando no Dia 8. A endoscopia (d) é realizado para monitorar a progressão da doença nos animais. Timepoints sugeridas incluem Dia 0 (não tratada), Dia 20 (vigilância da saúde), e dia 40 (para os animais do grupo de acordo com a carga tumoral). A endoscopia é realizada semanalmente durante o curso do tratamento terapêutico para monitorizar os efeitos da doença. O experimento (e) é encerrado na manhã do dia 72. Em um fardo tumor do tipo selvagem do mouse (f) aumenta de dia 40 em diante. <img alt="Figura 3"src = &quot;/ files / ftp_upload / 52383 / 52383fig3highres.jpg&quot; /&gt; Figura 3:. Acompanhamento da eficácia da terapia de intervenção em um modelo de câncer colorretal espontânea O protocolo experimental (a) requer&gt; 50 semanas do início ao fim. Therapeutics (b) são administrados a ratinhos com tumores estabelecidos para tratamentos de intervenção. AOM (c) é injectado no dia 1, e em seguida semanalmente durante 6 injecções consecutivas ao longo do curso do protocolo experimental. A endoscopia (d) é realizado para monitorar a progressão da doença nos animais. Timepoints sugeridas incluem Dia 0 (sem tratamento) e Semana 8 (monitoramento de tumor) e quinzenal lá depois (para estabelecer a carga tumoral). A endoscopia é realizada semanalmente durante o curso de tratamento para monitorizar os resultados terapêuticos. O experimento (e) é encerrado na Semana 50. Em uma carga tumoral de tipo selvagem do rato (f) aumenta desde a Semana 40 em diante. </<html> p&gt; <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/52383/52383fig4highres.jpg" width="650" /> Figura 4:. Equipamento set-up O experimental set-up (a) para a unidade endoscópica, com peças individuais de equipamento indicado. O endoscópio rígido (b), com os componentes individuais indicados. Barra de escala = 2,5 cm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52383/52383fig4highres.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/52383/52383fig5highres.jpg" width="650" /> Figura 5:. Scoring parâmetros de doença por endoscopia Um esboço (a) do Índice Endoscopic Murino de Colite Gravidade (MEICS). Um esboço (b) dos parâmetros de pontuação tumor individuais.es / ftp_upload / 52383 / &quot;target =&quot; _ 52383fig5highres.jpg blank &quot;&gt; Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. <img alt="Figura 6" src="/files/ftp_upload/52383/52383fig6highres.jpg" width="650" /> Figura 6: tratamentos terapêuticos representativos perda de peso-Representante, imagens endoscópicas e partituras para:. (A) Aguda DSS-induzida lesão da mucosa (b) tumores que se desenvolveram seguindo o protocolo / DSS AOM (c) Os tumores que se desenvolveram após o seqüencial.. protocolo OMA. N = 3 ratos por grupo. * P &lt;0,05, *** P &lt;0,001 (T-Student). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52383/52383fig6highres.jpg" target="_blank">Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>

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Non-invasive Assessment of the Efficacy of New Therapeutics for Intestinal Pathologies Using Serial Endoscopic Imaging of Live Mice

We describe methods for longitudinal monitoring of the efficacy of therapeutics for the treatment of colonic pathologies in mice using a rigid endoscope. This protocol can be readily used for the characterization of the therapeutic response of an individual tumor in live mice and also for monitoring potential disease relapse.

Avaliação não invasiva da eficácia de novos Therapeutics para Intestinal Patologias Usando imagem endoscópica série da Vivo Ratos

Animal models of inflammatory bowel disease (IBD) and colorectal cancer (CRC) have provided significant insight into the cell intrinsic and extrinsic ...

non-invasive-assessment-efficacy-new-therapeutics-for-intestinal

Research

JoVE Journal

Medicine

9.9K visualizações.  The Walter and Eliza Hall Institute for Medical Research. We describe methods for longitudinal monitoring of the efficacy of therapeutics for the treatment of colonic pathologies in mice using a rigid endoscope. This protocol can be readily used for the characterization of the therapeutic response of an individual tumor in live mice and also for monitoring potential disease relapse.

Vídeo: Non-invasive Assessment of the Efficacy of New Therapeutics for Intestinal Pathologies Using Serial Endoscopic Imaging of Live Mice

Magnetic Resonance Derived Myocardial Strain Assessment Using Feature Tracking

Purpose: An accurate and practical method to measure parameters like strain in myocardial tissue is of great clinical value, since it has been shown, that strain is a more sensitive and earlier marker for contractile dysfunction than the frequently used parameter EF. Current technologies for CMR are time consuming and difficult to implement in clinical practice. Feature tracking is a technology that can lead to more automization and robustness of quantitative analysis of medical images with less time consumption than comparable methods.
Methods: An automatic or manual input in a single phase serves as an initialization from which the system starts to track the displacement of individual patterns representing anatomical structures over time. The specialty of this method is that the images do not need to be manipulated in any way beforehand like e.g. tagging of CMR images.
Results: The method is very well suited for tracking muscular tissue and with this allowing quantitative elaboration of myocardium and also blood flow.
Conclusions: This new method offers a robust and time saving procedure to quantify myocardial tissue and blood with displacement, velocity and deformation parameters on regular sequences of CMR imaging. It therefore can be implemented in clinical practice.

An accurate and practical method to measure parameters like strain in myocardial tissue is of great clinical value, since it has been shown, that strain is a more sensitive and earlier marker for contractile dysfunction than the frequently used parameter EF.

Avaliação Strain Ressonância Magnética Derivado do Miocárdio Usando o controle de recursos

Purpose: An accurate and practical method to measure parameters like strain in myocardial tissue is of great clinical value, since it has been shown, that ...

Medicina

Rapid Point-of-Care Assay of Enoxaparin Anticoagulant Efficacy in Whole Blood

There is the need for a clinical assay to determine the extent to which a patient's blood is effectively anticoagulated by the low-molecular-weight-heparin (LMWH), enoxaparin. There are also urgent clinical situations where it would be important if this could be determined rapidly. The present assay is designed to accomplish this. We only assayed human blood samples that were spiked with known concentrations of enoxaparin. The essential feature of the present assay is the quantification of the efficacy of enoxaparin in a patient's blood sample by degrading it to complete inactivity with heparinase. Two blood samples were drawn into Vacutainer tubes (Becton-Dickenson; Franklin Lakes, NJ) that were spiked with enoxaparin; one sample was digested with heparinase for 5 min at 37 &deg;C, the other sample represented the patient's baseline anticoagulated status. The percent shortening of clotting time in the heparinase-treated sample, as compared to the baseline state, yielded the anticoagulant contribution of enoxaparin. We used the portable, battery operated Hemochron 801 apparatus for measurements of clotting times (International Technidyne Corp., Edison, NJ). The apparatus has 2 thermostatically controlled (37 &deg;C) assay tube wells. We conducted the assays in two types of assay cartridges that are available from the manufacturer of the instrument. One cartridge was modified to increase its sensitivity. We removed the kaolin from the FTK-ACT cartridge by extensive rinsing with distilled water, leaving only the glass surface of the tube, and perhaps the detection magnet, as activators. We called this our minimally activated assay (MAA). The use of a minimally activated assay has been studied by us and others. 2-4 The second cartridge that was studied was an activated partial thromboplastin time (aPTT) assay (A104). This was used as supplied from the manufacturer. The thermostated wells of the instrument were used for both the heparinase digestion and coagulation assays. The assay can be completed within 10 min. The MAA assay showed robust changes in clotting time after heparinase digestion of enoxaparin over a typical clinical concentration range. At 0.2 anti-Xa I.U. of enoxaparin per ml of blood sample, heparinase digestion caused an average decrease of 9.8% (20.4 sec) in clotting time; at 1.0 I.U. per ml of enoxaparin there was a 41.4% decrease (148.8 sec). This report only presents the experimental application of the assay; its value in a clinical setting must still be established.

Demonstration of a rapid quantitative assay of the inhibition of blood coagulation by the low-molecular-weight-heparin, enoxaparin. The contribution of enoxaparin is assessed by removing its influence through digestion with heparinase. A fuller description of the assay is detailed in our published paper.1 The assay still requires clinical confirmation.

Ensaio de Point-of-Care rápida de eficácia anticoagulante enoxaparina em sangue total

There is the need for a clinical assay to determine the extent to which a patient's blood is effectively anticoagulated by the ...

Non-invasive Imaging of Acute Allograft Rejection after Rat Renal Transplantation Using 18F-FDG PET

The number of patients with end-stage renal disease, and the number of kidney allograft recipients continuously increases. Episodes of acute cellular allograft rejection (AR) are a negative prognostic factor for long-term allograft survival, and its timely diagnosis is crucial for allograft function 1. At present, AR can only be definitely diagnosed by core-needle biopsy, which, as an invasive method, bares significant risk of graft injury or even loss. Moreover, biopsies are not feasible in patients taking anticoagulant drugs and the limited sampling site of this technique may result in false negative results if the AR is focal or patchy. As a consequence, this gave rise to an ongoing search for new AR detection methods, which often has to be done in animals including the use of various transplantation models.
Since the early 60s rat renal transplantation is a well-established experimental method for the examination and analysis of AR 2. We herein present in addition small animal positron emission tomography (PET) using 18F-fluorodeoxyglucose (FDG) to assess AR in an allogeneic uninephrectomized rat renal transplantation model and propose graft FDG-PET imaging as a new option for a non-invasive, specific and early diagnosis of AR also for the human situation 3. Further, this method can be applied for follow-up to improve monitoring of transplant rejection 4.

Non-invasive Imaging of Acute Allograft Rejection after Rat Renal Transplantation Using 18F-FDG PET

We herein present a rat renal transplantation model to non-invasively assess acute allograft rejection using positron emission tomography with 18F-fluorodeoxyglucose.

Imagem não invasivo de rejeição do enxerto aguda após Rat Transplante Renal Usando<sup&gt; 18</sup&gt; F-FDG PET

The number of patients with end-stage renal  disease, and the number of kidney allograft recipients continuously increases.  Episodes of acute cellular ...

Non-invasive Optical Measurement of Cerebral Metabolism and Hemodynamics in Infants

Perinatal brain injury remains a significant cause of infant mortality and morbidity, but there is not yet an effective bedside tool that can accurately screen for brain injury, monitor injury evolution, or assess response to therapy. The energy used by neurons is derived largely from tissue oxidative metabolism, and neural hyperactivity and cell death are reflected by corresponding changes in cerebral oxygen metabolism (CMRO2). Thus, measures of CMRO2 are reflective of neuronal viability and provide critical diagnostic information, making CMRO2 an ideal target for bedside measurement of brain health.
Brain-imaging techniques such as positron emission tomography (PET) and single-photon emission computed tomography (SPECT) yield measures of cerebral glucose and oxygen metabolism, but these techniques require the administration of radionucleotides, so they are used in only the most acute cases.
Continuous-wave near-infrared spectroscopy (CWNIRS) provides non-invasive and non-ionizing radiation measures of hemoglobin oxygen saturation (SO2) as a surrogate for cerebral oxygen consumption. However, SO2 is less than ideal as a surrogate for cerebral oxygen metabolism as it is influenced by both oxygen delivery and consumption. Furthermore, measurements of SO2 are not sensitive enough to detect brain injury hours after the insult 1,2, because oxygen consumption and delivery reach equilibrium after acute transients 3. We investigated the possibility of using more sophisticated NIRS optical methods to quantify cerebral oxygen metabolism at the bedside in healthy and brain-injured newborns. More specifically, we combined the frequency-domain NIRS (FDNIRS) measure of SO2 with the diffuse correlation spectroscopy (DCS) measure of blood flow index (CBFi) to yield an index of CMRO2 (CMRO2i) 4,5.
With the combined FDNIRS/DCS system we are able to quantify cerebral metabolism and hemodynamics. This represents an improvement over CWNIRS for detecting brain health, brain development, and response to therapy in neonates. Moreover, this method adheres to all neonatal intensive care unit (NICU) policies on infection control and institutional policies on laser safety. Future work will seek to integrate the two instruments to reduce acquisition time at the bedside and to implement real-time feedback on data quality to reduce the rate of data rejection.

We combined frequency-domain near-infrared spectroscopy measures of cerebral hemoglobin oxygenation with diffuse correlation spectroscopy measures of cerebral blood flow index to estimate an index of oxygen metabolism. We tested the utility of this measure as a bedside screening tool to evaluate the health and development of the newborn brain.

Não-invasivo de medição óptica do metabolismo cerebral e Hemodinâmica em Lactentes

Perinatal brain injury remains a significant cause of infant mortality  and morbidity, but there is not yet an effective bedside tool that can  accurately ...

Intranasal Administration of CNS Therapeutics to Awake Mice

Intranasal administration is a method of delivering therapeutic agents to the central nervous system (CNS). It is non-invasive and allows large molecules that do not cross the blood-brain barrier access to the CNS. Drugs are directly targeted to the CNS with intranasal delivery, reducing systemic exposure and thus unwanted systemic side effects1. Delivery from the nose to the CNS occurs within minutes along both the olfactory and trigeminal neural pathways via an extracellular route and does not require drug to bind to any receptor or axonal transport2. Intranasal delivery is a widely publicized method and is currently being used in human clinical trials3.
Intranasal delivery of drugs in animal models allows for initial evaluation of pharmacokinetic distribution and efficacy. With mice, it is possible to administer drugs to awake (non-anesthetized) animals on a regular basis using a specialized intranasal grip. Awake delivery is beneficial because it allows for long-term chronic dosing without anesthesia, it takes less time than with anesthesia, and can be learned and done by many people so that teams of technicians can dose large numbers of mice in short periods. Efficacy of therapeutics administered intranasally in this way to mice has been demonstrated in a number of studies including insulin in diabetic mouse models 4-6 and deferoxamine in Alzheimer's mouse models. 7,8
The intranasal grip for mice can be learned, but is not easy and requires practice, skill, and a precise grip to effectively deliver drug to the brain and avoid drainage to the lung and stomach. Mice are restrained by hand using a modified scruff in the non-dominant hand with the neck held parallel to the floor, while drug is delivered with a pipettor using the dominant hand. It usually takes 3-4 weeks of acclimating to handling before mice can be held with this grip without a stress response. We have prepared this JoVE video to make this intranasal delivery technique more accessible.

A method to intranasally administer drugs to awake mice for the purpose of targeting the brain is described. This method allows for repeat dosing over long periods using intranasal administration of drug without anesthesia, and nose-to-brain delivery with minimal systemic exposure.

A administração intranasal de Terapêutica do SNC para Ratos Awake

Intranasal administration is a method of delivering  therapeutic agents to the central nervous system (CNS). It is  non-invasive and allows large ...

Non-invasive Assessment of Microvascular and Endothelial Function

The authors have utilized capillaroscopy and forearm blood flow techniques to investigate the role of microvascular dysfunction in pathogenesis of cardiovascular disease. Capillaroscopy is a non-invasive, relatively inexpensive methodology for directly visualizing the microcirculation. Percent capillary recruitment is assessed by dividing the increase in capillary density induced by postocclusive reactive hyperemia (postocclusive reactive hyperemia capillary density minus baseline capillary density), by the maximal capillary density (observed during passive venous occlusion). Percent perfused capillaries represents the proportion of all capillaries present that are perfused (functionally active), and is calculated by dividing postocclusive reactive hyperemia capillary density by the maximal capillary density. Both percent capillary recruitment and percent perfused capillaries reflect the number of functional capillaries. The forearm blood flow (FBF) technique provides accepted non-invasive measures of endothelial function: The ratio FBFmax/FBFbase is computed as an estimate of vasodilation, by dividing the mean of the four FBFmax values by the mean of the four FBFbase values. Forearm vascular resistance at maximal vasodilation (FVRmax) is calculated as the mean arterial pressure (MAP) divided by FBFmax. Both the capillaroscopy and forearm techniques are readily acceptable to patients and can be learned quickly.
The microvascular and endothelial function measures obtained using the methodologies described in this paper may have future utility in clinical patient cardiovascular risk-reduction strategies. As we have published reports demonstrating that microvascular and endothelial dysfunction are found in initial stages of hypertension including prehypertension, microvascular and endothelial function measures may eventually aid in early identification, risk-stratification and prevention of end-stage vascular pathology, with its potentially fatal consequences.

Capillaroscopy is a non-invasive, relatively inexpensive methodology for directly visualizing the microcirculation. The forearm blood flow technique provides accepted non-invasive measures of endothelial function.

Avaliação não invasiva da função microvascular e endotelial

The authors have utilized capillaroscopy and forearm blood flow techniques to investigate the role of microvascular dysfunction in pathogenesis of ...

Non-invasive Imaging and Analysis of Cerebral Ischemia in Living Rats Using Positron Emission Tomography with 18F-FDG

Stroke is the third leading cause of death among Americans 65 years of age or older1. The quality of life for patients who suffer from a stroke fails to return to normal in a large majority of patients2, which is mainly due to current lack of clinical treatment for acute stroke. This necessitates understanding the physiological effects of cerebral ischemia on brain tissue over time and is a major area of active research. Towards this end, experimental progress has been made using rats as a preclinical model for stroke, particularly, using non-invasive methods such as 18F-fluorodeoxyglucose (FDG) coupled with Positron Emission Tomography (PET) imaging3,10,17. Here we present a strategy for inducing cerebral ischemia in rats by middle cerebral artery occlusion (MCAO) that mimics focal cerebral ischemia in humans, and imaging its effects over 24 hr using FDG-PET coupled with X-ray computed tomography (CT) with an Albira PET-CT instrument. A VOI template atlas was subsequently fused to the cerebral rat data to enable a unbiased analysis of the brain and its sub-regions4. In addition, a method for 3D visualization of the FDG-PET-CT time course is presented. In summary, we present a detailed protocol for initiating, quantifying, and visualizing an induced ischemic stroke event in a living Sprague-Dawley rat in three dimensions using FDG-PET.

Non-invasive Imaging and Analysis of Cerebral Ischemia in Living Rats Using Positron Emission Tomography with 18F-FDG

Brain damage resulting from cerebral ischemia may be non-invasively imaged and studied in rats using pre-clinical positron emission tomography coupled with the injectable radioactive probe, 18F-fluorodeoxyglucose. Further, the use of modern software tools that include volume of interest (VOI) brain templates dramatically increase the quantitative information gleaned from these studies.

Imagem não invasivo e Análise de Isquemia Cerebral em Ratos de Vida Usando Positron Emission Tomography com<sup&gt; 18</sup&gt; F-FDG

Stroke is the third leading cause of death among Americans 65 years of age or older1. The quality of life for patients who suffer from a stroke fails to ...

Murine Model for Non-invasive Imaging to Detect and Monitor Ovarian Cancer Recurrence

Epithelial ovarian cancer is the most lethal gynecologic malignancy in the United States. Although patients initially respond to the current standard of care consisting of surgical debulking and combination chemotherapy consisting of platinum and taxane compounds, almost 90% of patients recur within a few years. In these patients the development of chemoresistant disease limits the efficacy of currently available chemotherapy agents and therefore contributes to the high mortality. To discover novel therapy options that can target recurrent disease, appropriate animal models that closely mimic the clinical profile of patients with recurrent ovarian cancer are required. The challenge in monitoring intra-peritoneal (i.p.) disease limits the use of i.p. models and thus most xenografts are established subcutaneously. We have developed a sensitive optical imaging platform that allows the detection and anatomical location of i.p. tumor mass. The platform includes the use of optical reporters that extend from the visible light range to near infrared, which in combination with 2-dimensional X-ray co-registration can provide anatomical location of molecular signals. Detection is significantly improved by the use of a rotation system that drives the animal to multiple angular positions for 360 degree imaging, allowing the identification of tumors that are not visible in single orientation. This platform provides a unique model to non-invasively monitor tumor growth and evaluate the efficacy of new therapies for the prevention or treatment of recurrent ovarian cancer.

We describe a non-invasive animal imaging platform that allows the detection, quantification, and monitoring of ovarian cancer growth and recurrence. This intra-peritoneal xenograft model mimics the clinical profile of patients with ovarian cancer.

Modelo murino de imagem não invasivo para detectar e monitorar o cancro do ovário Recorrência

Epithelial ovarian cancer is the most lethal gynecologic malignancy in the United States. Although patients initially respond to the current standard of ...

Non-invasive Assessment of Dorsiflexor Muscle Function in Mice

Assessment of skeletal muscle contractile function is an important measurement for both clinical and research purposes. Numerous conditions can negatively affect skeletal muscle. This can result in a loss of muscle mass (atrophy) and/or loss of muscle quality (reduced force per unit of muscle mass), both of which are prevalent in chronic disease, muscle-specific disease, immobilization, and aging (sarcopenia). Skeletal muscle function in animals can be evaluated by a range of different tests. All tests have limitations related to the physiological testing environment, and the selection of a specific test often depends on the nature of the experiments. Here, we describe an in vivo, non-invasive technique involving a helpful and easy assessment of force frequency-curve (FFC) in mice that can be performed on the same animal over time. This permits monitoring of disease progression and/or efficacy&#160;of a potential therapeutic treatment.

Measurement of rodent skeletal muscle contractile function is a useful tool that can be used to track disease progression as well as efficacy of therapeutic intervention. We describe here the non-invasive, in vivo assessment of the dorsiflexor muscles that can be repeated over time in the same mouse.

Avaliação não-invasiva da função de músculos levantadores em ratos

Assessment of skeletal muscle contractile function is an important measurement for both clinical and research purposes. Numerous conditions can negatively ...

Assessment and Characterization of Hyaloid Vessels in Mice

In the eye, the embryonic hyaloid vessels nourish the developing lens and retina and regress when the retinal vessels develop. Persistent or failed regression of hyaloid vessels can be seen in diseases such as persistent hyperplastic primary vitreous (PHPV), leading to an obstructed light path and impaired visual function. Understanding the mechanisms underlying the hyaloid vessel regression may lead to new molecular insights into the vascular regression process and potential new ways to manage diseases with persistent hyaloid vessels. Here we describe the procedures for imaging hyaloid in live mice with optical coherence tomography (OCT) and fundus fluorescein angiography (FFA) and a detailed technical protocol of isolating and flat-mounting hyaloid ex vivo for quantitative analysis. Low-density lipoprotein receptor-related protein 5 (LRP5) knockout mice were used as an experimental model of persistent hyaloid vessels, to illustrate the techniques. Together, these techniques may facilitate a thorough assessment of hyaloid vessels as an experimental model of vascular regression and studies on the mechanism of persistent hyaloid vessels.

This protocol describes both in vivo and ex vivo methods to fully visualize and characterize hyaloid vessels, a model of vascular regression in mouse eyes, using optical coherence tomography and fundus fluorescein angiography for the live imaging and ex vivo isolation and subsequent flat mount of hyaloid for quantitative analysis.

Avaliação e caracterização de vasos Hialóides em camundongos

In the eye, the embryonic hyaloid vessels nourish the developing lens and retina and regress when the retinal vessels develop. Persistent or failed ...