Name: Vídeo: High-throughput Quantitative Real-time RT-PCR Assay for Determining Expression Profiles of Types I and III Interferon Subtypes
Uploaded: 2015-03-24T16:00:00
Duration: 10 min
Description: 13.2K visualizações. US Food and Drug Administration. This protocol describes a high-throughput qRT-PCR assay for the analysis of type I and III IFN expression signatures. The assay discriminates single base pair differences between the highly similar transcripts of these genes. Through batch assembly and robotic pipetting, the assays are consistent and reproducible.

Este trabalho foi financiado pela CBER / FDA-NIAID / NIH Interagency Acordo YI-AI-6153-01, FDA / CBER fundos intramurais, eo contramedidas médicas Initiative FDA. TCT, MNB, VPM, LMS, e KDK foram apoiados por uma nomeação para o Programa de Participação de Pesquisa do Centro de Avaliação e Pesquisa Biológica administrado pelo Instituto Oak Ridge para a Educação Ciência por meio de um convênio interinstitucional entre o Departmen de Energia dos EUA e os EUA Food and Drug Administration.

1. Preparação de diluições seriais padrão (Figura 3A) NOTA: uma série de diluição de série de plasmídeos linearizados contendo as sequências alvo de um conjunto Pr / Pb são usadas como padrões quantitativos para o ensaio de qRT-PCR. Cada conjunto de diluição serial padrão para os subtipos de IFN contém um volume suficiente para executar 90 placas de ensaio. Os quatro pontos da curva de diluição padrão utilizado para o ensaio são seleccionados para cobrir os valores Ct de uma gama de 20 a 32 (Tabela 3). <ol><li> Descongelar, vortex, centrifugar e brevemente o padrão (50 pM) e ADN de esperma de salmão (ssDNA, 10 mg / ml) soluções de estoque. </li><li> Preparar a mistura de ssDNA / água para os 17 conjuntos de diluição padrão por mistura de 51 ul de ADNcs com 20,3 ml de água. </li><li> Rotular um 8-tube tira PCR para um conjunto de diluição padrão. NOTA: Preparação das diluições em série standard de as soluções de reserva vai levar 2-3 horas. </li><li> Dispensar 190 mL da mistura ADNss / água para a ftubo de irst na faixa e 180 mL de ssDNA mix / água para os cinco tubos restantes. </li><li> Realize uma diluição de 1:20 de transferência de 10 ul do estoque padrão de 50 horas para a tubo com 190 ul da ADNss / água, misture; vortex rapidamente e centrifugar a tira de PCR. </li><li> Efectuar uma diluição 1:10 em transferindo 20 ul do tubo mais recentemente diluído para o tubo seguinte na série; vortex rapidamente e centrifugar a tira de PCR. </li><li> Repetir o passo 1.6 até o último tubo da série de diluição recebeu o padrão. </li><li> Repita os passos de 1,3-1,7 para cada padrão. </li></ol> Ver Tabela 3 abaixo 2. Preparação de Primer / Probe (Pr / Pb) e No Control Template (NTC) Trabalho da Mixes (Figura 3B) NOTA: Cada 1,7 ml Pr / Pb conjunto de trabalho estoque e 128,6 ul nenhum controle Template (NTC) que trabalham mix de ações vai fazer 30 placas de ensaio. <ol><li> Prepare o Pr / Pb definir mixes de ações de trabalho. NÃOE: Preparação do conjunto Pr / Pb e estoque trabalhando NTC mistura das soluções de reserva terá de 2-3 horas. <ol><li> Ressuspender os primers e sondas em 100 um com água ultra-pura para a preparação das soluções de reserva. </li><li> Rotular até dezessete 2 ml tubos; uma para cada conjunto Pr / Pb incluídas no ensaio. </li><li> Descongelar, vortex, centrifugar e brevemente os iniciadores (100 uM), as sondas (100 uM), e ssDNA (10 mg / ml) soluções de estoque. </li><li> Adicionar 2 mL de ssDNA a cada tubo, utilizando a pipeta de canais múltiplos electrónico 12,5 ul. Adicione o primer forward adequado, primer reverso, e sonda a cada Pr / Pb conjunto de trabalho tubo estoque. Ver Tabela 1 para os conjuntos Pr / Pb segmentação subtipos de IFN humanos e Tabela 2 para o macaco rhesus sets Pr / Pb. Juntar água até que o volume de cada Pr / Pb conjunto de trabalho tubo de ações para 200 mL. NOTA: O volume de iniciadores, sonda, e água a adicionar depende da concentração final pretendida reacção de uma Pr / Pbdefinido. </li></ol></li><li> Prepare as misturas de ações NTC trabalho. <ol><li> Etiqueta duas tiras de PCR 5-tubo para os stocks de trabalho NTC mistura. </li><li> Transferir 14,3 mL de cada Pr / Pb definido para o NTC tubo mix de ações de trabalho adequado. Veja a Tabela 4 para o conjunto de combinações Pr / Pb para poços NTC. Adiciona-se água a cada uma o estoque de trabalho NTC mistura para trazer o volume final de 128,6 ul. </li><li> Vortex, centrifugar brevemente, e colocar os tubos no escuro em gelo ou a -20 ° C para armazenamento a longo prazo. </li></ol></li></ol> Ver Tabela 4 Abaixo <ol start="3"><li> Diluir o Pr / Pb definir estoques de trabalho. <ol><li> Após a remoção de uma aliquota dos conjuntos Pr / Pb necessários para as misturas NTC banco de trabalho, adicionar 1,5 ml de água para trazer o volume final de cada Pr / Pb conjunto de trabalho tubo estoque para 1,7 ml. </li><li> Vortex, centrifugar brevemente, e colocar os tubos no escuro em gelo ou a -20 ° C para armazenamento a longo prazo. </li></ol></li></ol><pclass = &quot;jove_title&quot;&gt; 3. Preparação das placas de ensaio de 384 pos utilizando o pipetador multicanal automatizado <ol><li> Prepare um prato de origem de 96 poços dos conjuntos Pr / Pb e misturas NTC para alíquotas de 384 poços placas de ensaio. NOTA: Preparação da placa de fonte a partir do Pr / Pb mixes banco de funcionamento vai demorar menos de 1 hora. Cada placa de 96 poços fonte é suficiente para fazer seis placas de ensaio de 384 cavidades (Figura 3C). <ol><li> Vortex e brevemente centrifugar o Pr / Pb definir stocks de trabalho e NTC mixes de ações de trabalho. </li><li> Coloque uma nova placa de 96 poços em um bloco de 96 poços de arrefecimento refrigerado e designar os poços para cada conjunto Pr / Pb ou NTC misturar os poços receber (ver Figura 2). </li><li> Adicionar água à placa de 96 poços, utilizando uma pipeta multicanal 250 ul electrónico: Dispense 66 ul de água a cada Pr / Pb definido poço (excepto os poços 4 do Target 17). Dispensar 82,5 l de água para os 4 Alvo 17 poços. Dispensar 27,5 l de água para cada mix NTC bem. </li&gt; <li> Adicione o correto Pr / Pb conjunto de trabalho estoque aos poços da placa de 96 poços: Dispense 54 ul da correta Pr / Pb conjunto de trabalho de ações para o conjunto poços Pr / Pb designados (exceto os 4 poços para Meta 17). Dispensar 67,5 ul da Meta 17 Pr / Pb conjunto de trabalho de ações para os designados Meta 17 set poços Pr / Pb. Adicionar 22,5 ul da NTC mix correto de ações de trabalho aos poços. </li><li> Selar a placa de 96 poços com uma placa vedante adesivo e centrifugar durante 1 minuto a 700 xg de modo que o conteúdo está no fundo dos poços. </li><li> Colocar a placa de 96 poços no misturador de vórtice usando um adaptador de placa de 96 poços e mistura-se durante 1 min a 1000 rpm. Centrifugar a placa de 96 poços durante 5 minutos a 700 x g. </li><li> Armazenar a placa de fonte de 96 poços no escuro a 4 ° C, se utilizar no mesmo dia, caso contrário, armazenar a -20 ° C até à sua utilização. </li></ol></li><li> Preparar as placas de 384 poços de ensaio por adição do Pr / Pb conjuntos utilizando o pipetador multicanal automatizado. NOTA: Preparação de seis placas de ensaio a partir da placa de 96 poços fonte terá 3-4 h. <ol><li> Antes de fazer placas, pré-arrefecer a ninho de arrefecimento a 4 ° C e pré-aquecer a placa de evaporação a 125 ° C e o bloco de aquecimento inferior a 80 ° C com fluxo de ar de sopro entre 20-25 litros por minuto (LPM). </li><li> Ligue a pipeta multicanal automatizada e abrir o protocolo para fazer placas de ensaio IFN clicando duas vezes no ícone do software. </li><li> Para configurar a plataforma, colocar uma caixa de ponta da pipeta completamente cheio na posição da plataforma 1, a placa de fonte de 96 poços na posição 4, e uma nova placa de 384 poços na posição 6. Comece a corrida pressionando o botão play. NOTA: Após a conclusão de uma corrida, cada poço conterá 5 jul da mistura Pr / Pb. NOTA: A quantidade final de ssDNA adicionado por poço da placa de 384 poços de ensaio é de 0,025 mg. </li><li> Bater levemente na placa de ensaio de 384 cavidades sobre uma superfície plana para garantir fluidos são no fundo dos poços e aplicar um adesivoplaca de vedação. </li><li> Centrifugar a placa durante 1 min a 700 x g. Remova a placa de vedação adesivo, colocar a placa de 384 poços de ensaio para o secador e posicionar a placa de 384 poços colector directamente acima dos poços. </li><li> Quando o conteúdo da placa de 384 poços de ensaio seco, aplique um novo selo placa adesiva, embrulhe em papel alumínio, etiqueta, e guardar no escuro a 4 ° C até o uso. NOTA: As placas podem ser armazenadas a 4 ° C durante pelo menos 6 meses. </li><li> Repetir passos 3.2.3-3.2.6 até 6 x 384 poços das placas de ensaio são preparadas ou o líquido na placa de 96 poços fonte se esgotar. </li><li> Desligue o ninho de arrefecimento, feche o software, e desligue a pipeta multicanal automatizada. Desligue o secador de prato. </li></ol></li></ol> 4. Carregando e executando uma placa de 384 poços Assay <ol><li> Prepare dois gene housekeeping (HKG) bem mixes, que consistem em conjunto Pr / Pb para a HKG, ssDNA, PCR mix mestre, e água, para ser adicionado a uma placa de 384 poços ensaio seca ( <strong&gt; Figura 3D). NOTA: Preparação das misturas e carregar a placa de ensaio terá 1-2 h. Executando a placa de ensaio vai demorar menos de 2 horas. <ol><li> Rotular um tubo de 1,5 ml para cada mistura HKG. </li><li> Diluir 2 mL de ssDNA (10 mg / ml) com 84,9 ul de água. Adicionar 2 mL de ssDNA a diluída, 11,8 ul de água, 23 ul de mistura principal, e 9,2 mL da correcta 20x HKG Pr / Pr definido para cada tubo, vórtice, e centrifugar brevemente. </li><li> Use desidrogenase do gliceraldeído-3-fosfato (GAPDH) e da ubiquitina C (UBC) como o HKG para o ensaio humano (ver Tabela de Materiais). Use GAPDH e 18S ribosomal RNA como a HKG para o ensaio de Rhesus. NOTA: O HKG utilizado para realizar o ensaio são flexíveis e reflectir os genes apropriados para o tipo de célula a ser testada GAPDH, UBC, e 18S são exemplos de HKG utilizada;. HKG outra poderá ser mais apropriado. </li></ol></li><li> Prepare a amostra e positive controlar bem misturas, que consistem de amostra ou de ADNc de controlo positivo, a mistura principal, e de água, para ser adicionado a uma placa de 384 poços de ensaio seca. Preparar a amostra e as misturas de controlo positivo em quantidade suficiente para dispensar a 21 poços de placas (Figura 3D). <ol><li> Antes da síntese de cDNA, siga as instruções do fabricante para preparar as amostras de ARN com uma etapa de digestão de DNase. </li><li> Preparar as amostras de controlo positivo e com antecedência a partir da síntese de cDNA de pelo menos 500 ng de ARN seguida por tratamento com RNase H (volume final de 24 uL de cada amostra), seguindo as instruções do fabricante. Armazenar o ADNc preparado a -20 ° C até à sua utilização. Thaw, vortex, e centrifugar brevemente o cDNA amostra. </li><li> Adicionar 78,8 mL de mistura principal e 54,8 l de água para cada amostra de 24 ul e tubo de controlo positivo. </li><li> Vortex e brevemente centrifugar os tubos. </li></ol></li><li> Prepare as normas e NTC bem mistura, consistindo de mistura principal e de água, para ser adicionado a uma placa de ensaio de 384 cavidades secas (Figura 3D). Para os padrões de bem misturar, adicione 165 mL de água para 275 mL de mistura principal em um tubo de 1,5 ml. Para a NTC bem misturar, adicionar 52,5 mL de água para 52,5 l de mistura principal em um tubo de 1,5 ml. Vortex e brevemente centrifugar os tubos. </li><li> Prepara-se uma placa seca ensaio de 384 cavidades para o carregamento das misturas e amostras. <ol><li> Retirar uma placa de 384 cavidades de ensaio secas a partir de 4 ° C e centrifugação durante 1 min a 700 x g. </li><li> Colocar a placa num bloco de 384 poços de arrefecimento refrigerado, remover a placa vedante adesivo e delinear as cavidades da placa para designar onde as várias combinações e amostras serão pipetados (Figura 1). </li></ol></li><li> Coloque a placa de 384 poços ensaio com mix bem padrão, normas, NTC bem misturar, amostras, controle positivo, e mix HKG (Figura 3E). Vortex e brevemente centrífuga todas as soluções antes de dispensar a placa. <ol><li> Dispensar 6 ul dos padrões de misturar bem a cada poço com o padrão de 30 ul pipeta multicanal electrónico. Dispense 1,5 mL da diluição em série padrão correto para o bem designado com o 12,5 pipeta multicanal eletrônico ul. </li><li> Dispense 7,5 l de NTC bem misturar a cada NTC bem com a 30 ul pipeta multicanal eletrônico. Dispensar 7,5 ul da amostra para os poços designados com a pipeta multicanal electrónico 30 ul. Dispensar 2,5 ul da HKG Pr / Pb mistura aos poços designados com a pipeta multicanal electrónico 12,5 ul. </li><li> Preencha todos os poços vazios com 7,5 mL da mistura de água e mistura principal sobra com a 30 ul multicanal eletrônico pipeta; 7,5 l de água por si só também irá funcionar. </li><li> Selar a placa de 384 poços de ensaio com o filme adesivo óptico e centrifugação durante 1 min a 700 x g. Agitar as selado placa de 384 poços no misturador de vórtice durante 2 min a 2600 rpme centrifugar durante 5 min a 700 x g. </li><li> Coloque a placa de ensaio de 384 poços lacrados na máquina de qRT-PCR, abra o modelo para o layout de ensaio e começar a correr. Nota: Os resultados podem ser exportados como uma planilha ou como um arquivo de texto para análise. </li><li> Use as seguintes condições óptimas de reacção do termociclador para o ensaio: i) de 50 ° C durante 2 min, ii) 95 ° C durante 10 min, iii) 95 ° C durante 25 segundos, iv) a 59 ° C durante 1 min. Repita os passos iii e iv durante 40 ciclos. </li><li> Exportar os dados brutos a partir da plataforma qRT-PCR em um software aplicativo de planilha. Traçar cada padrão 4 ponto definido como uma curva padrão para observar linearidade. Realizar análise através do cálculo da ΔCq ou pelo número de cópias com base nas curvas padrão quatro ponto 27. </li></ol></li></ol> Veja a Figura 3 abaixo

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	<li>Yan, N., Chen, Z. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intrinsic+antiviral+immunity.">Intrinsic antiviral immunity.</a> Nature. 13, 214-222 (2012).</li><li>Pestka, S., Krause, C. D., Walter, M. 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M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-throughput+quantitative+real-time+polymerase+chain+reaction+array+for+absolute+and+relative+quantification+of+rhesus+macaque+types+I,+II,+and+III+interferon+and+their+subtypes.">High-throughput quantitative real-time polymerase chain reaction array for absolute and relative quantification of rhesus macaque types I, II, and III interferon and their subtypes.</a> Journal of interferon &amp; cytokine research : the official journal of the International Society for Interferon and Cytokine Research. 32, 407-415 (2012).</li><li>Wang, Q., Chen, L., Long, Y., Tian, H., Wu, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+beacons+of+xeno-nucleic+acid+for+detecting+nucleic+acid.">Molecular beacons of xeno-nucleic acid for detecting nucleic acid.</a> Theranostics. 3, 395-408 (2013).</li><li>Little, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Amplification-refractory+mutation+system+(ARMS)+analysis+of+point+mutations.">Amplification-refractory mutation system (ARMS) analysis of point mutations.</a> Current protocols in human genetics / editorial board, Jonathan L. Haines ... [et al.]. 9 (Unit 9 8), (2001).</li></ol>

VPM and RLR are co-inventors of the technology to measure expression of IFN- and IFN- subtypes and derive royalty income from it. The remaining authors declare no conflict of interest.

Este relatório descreve design, produção de lotes, e uma abordagem para a análise de um ensaio para medir a transcrição de um conjunto de genes altamente semelhantes em um ambiente de laboratório de pesquisa. O ensaio de alto rendimento de qRT-PCR aqui relatado mede o IFN- e - subtipos λ com alta especificidade. Este método envolve dois aspectos fundamentais, o projeto de conjuntos Pr / Pb que discriminam entre os membros de uma família de genes homólogos e o desenvolvimento de uma plataforma de produção para a criação de placas de ensaio de 384 poços confiáveis ​​e consistentes pré-carregados com os conjuntos Pr / Pb. As sondas de qRT-PCR incorporar um (MB) ou química (LNA) abordagem estrutural no sentido de reforçar a sua especificidade 29. Para dois dos conjuntos de iniciadores no ensaio de Rhesus (Tabela 2), o sistema de amplificação de mutação-refractário (ARMS) foi incorporada nas sequências dos iniciadores para aumentar ainda mais a especificidade 30. Embora seja geralmente melhor para direcionar cruzamentos exão-exão para ENHAnce especificidade de uma reação de qRT-PCR, isso não foi possível porque o IFN tipo I genes falta íntrons. Portanto, o ADN genómico irá ser amplificado na reacção de PCR, e tem de ser degradada por um tratamento com DNase após extracção do ARN. A região alvo para os conjuntos Pr / Pb se restringia às regiões codificantes do péptido maduro para cada IFN. Devido à elevada semelhança de sequências entre os subtipos de IFN-α, particularmente a região do péptido maduro, foi por vezes necessária para comprometer a sensibilidade para assegurar a especificidade. Este foi particularmente o caso com o IFN-α17, onde a transcrição péptido maduro tem apenas quatro bases únicas quando comparada com os outros subtipos de IFN-α. Segmentação IFN-α17 necessário primers que se ligam as transcrições de múltiplos subtipos, restringindo especificidade para a sonda. Como consequência, a reacção de PCR amplifica outros subtipos de IFN-α17, consumindo assim uma percentagem substancial dos reagentes e loweri PCRng a amplitude do sinal de fluorescência da sonda específica para o IFN-α17. Um desafio adicional no sentido de projetar conjuntos Pr / Pb sensíveis e específicos para genes altamente semelhantes, como o IFN é a possibilidade de que as sequências anotados no banco de dados GenBank pode não ser completa e abrangente no momento do design. Novamente, este foi um desafio para IFN-α17, em que as sequências recém anotados não alinhar perfeitamente com a versão da seqüência no banco de dados no momento da concepção. Portanto, ao projetar Pr / Pb define para os genes que não têm sido intensamente estudados, é aconselhável verificar periodicamente a última seqüência anotada de um gene alvo. Finalmente, é necessário assegurar que os conjuntos Pr / Pb não amplificam pseudogenes que podem ser transcritas mas não traduzidas. Depois de projetar os conjuntos Pr / Pb, o próximo desafio é otimizar as condições de PCR de dezessete diferente Pr / Pb define em uma placa de 384 poços. Normas de transcrição são important em testar a especificidade de um conjunto Pr / Pb e tornam-se essenciais para a harmonização das condições de qRT-PCR das inúmeras reações de PCR diferentes. Testando um conjunto Pr / Pb contra as normas de transcrição estabelece a sua eficiência e sensibilidade; Os plasmídeos que expressam os pseudogenes muito semelhantes pode ser necessário para assegurar que o Pr / Pb definido mede selectivamente a transcrição do gene funcional. Os padrões de transcrição também fornecem um meio de análise quantitativos (número de transcritos), em adição à análise semi-quantitativa em relação a um gene de manutenção (ΔCq). Pipetagem multicanal Robotic de uma placa de fonte de 96 poços em várias placas de ensaio de 384 poços melhora a precisão e consistência dos resultados inter-placa. ADN de esperma de salmão (ssDNA) é utilizado como um transportador que estabiliza e mantém os conjuntos Pr / Pb para o armazenamento de longo prazo, assim como a secagem dos reagentes dispensadas para as placas. A secagem das placas também diminui o volume da reacçãonecessária para obter resultados reprodutíveis, os quais, por sua vez preserva amostras preciosos e diminui a utilização de reagentes dispendiosos. Através destas medidas, os lotes de placas são montadas que proporcionam precisão e consistência por mais de seis meses. Após a preparação da placa, medidas de controle de qualidade são fundamentais para verificar a consistência de um lote de placas. Para este propósito, um adicional de quatro conjuntos de padrões são executados sobre um prato. A placa de &quot;padrão de 5x&quot; monitora o desempenho e cria um conjunto de dados ao qual os padrões de uma placa indivíduo são comparados. Enquanto dez diluições de 10 vezes de cada um dos padrões são utilizados durante a concepção do ensaio, considerações de espaço exige que quatro pontos são utilizados para a curva padrão em cada placa de ensaio, e para o padrão em placas de 5x. Além disso, um controlo positivo deve ser incluído em cada placa para assegurar a validade da placa. Normalmente, leva 3-4 horas para preparar seis placas de ensaio de um Pr / Pb splaca ource; é possível preparar doze placas num único dia em laboratório de investigação. Uma vez que cada placa de ensaio subtipo de IFN humano examina dezassete conjuntos Pr / Pb e pode acomodar quinze amostras experimentais, um dia de montagem produz um lote de placas com a capacidade de gerar até 3060 pontos de dados experimentais. Os dados brutos a partir da plataforma qRT-PCR pode ser processado e montados usando scripts de programação em um software aplicativo de planilha para preencher automaticamente um modelo de análise predesigned. Este método minimiza o hands-on de entrada de dados, evitando assim erros de cópia e permite que o investigador se concentrar na análise de dados, em vez de conjunto de dados. Conforme descrito aqui, este ensaio de qRT-PCR, de alto rendimento pode ser aplicado para medir a expressão dos subtipos de interferão em amostras de macacos rhesus e humana ou pode ser adaptada para ser usada em outras espécies ou conjuntos de genes homólogos. A flexibilidade da disposição da placa permite ao utilizador alterar iniciador / sonda define a adaptar os genes deinteresse para um tipo particular de células ou sistema de modelo. Este ensaio pode ser aplicado para medir a expressão de IFN assinaturas em modelos de cultura de células a estudar agentes patogénicos ou em amostras de doentes no contexto de modelos de doenças para elucidar os mecanismos de sinalização envolvidas na resposta imune.

Tipos I e III, os interferões (IFN) são críticas na resposta imune ao vírus e outros estímulos patogénicos e presente em todos os vertebrados 1. As células imunológicas e não-imunológicas expressar e segregar, bem como responder, IFN 2. Sensores imune inata, como receptores toll-like (TLR), picada, e RIG-I, induzir tipo I e III expressão IFN após a detecção de padrões moleculares de patógenos associados (PAMP) 3,4. Nos seres humanos, IFN tipo I incluem IFN-β, -ω, -κ, e 12 subtipos de IFN-α, e se ligam ao receptor IFNAR1 / IFNAR2 complexo 2,5. Tipo III incluem IFN IFN-λ1, -λ2, e -λ3 e se ligam ao complexo receptor IL10RB / IL28RA 2. Classicamente, tipos I e III IFN ligam aos seus respectivos complexos receptores que então recrutar STAT1 / heterodï¿½eros STAT2 e iniciar a transcrição de genes de interferão estimulada (ISG) 6. ISG estão envolvidos em uma variada gama de funções, desde antiviral e antiactividade proliferativa a activação da resposta imunitária adaptativa 7. Os inúmeros mecanismos patogénicos evoluíram para fugir, subverter, e seqüestrar elementos da via de sinalização IFN demonstrar a importância do IFN na resposta imune inata 8. Por exemplo, o vírus vaccinia expressa um receptor de engodo com IFNAR1 homologia que sequestra IFN tipo I 9 enquanto um vírus da doença de Yaba-segrega como uma glicoproteina que inibe a proteínas tipo I e III, IFN 10. Em adição ao seu papel na defesa do hospedeiro, o IFN também estão implicados no controlo do cancro e um número de doenças auto-inflamatória: silenciamento de expressão de IFN em células de cancro da mama restringe imunovigilância 11, excesso de produção de IFN-α é um mecanismo no desenvolvimento de sistémica lúpus eritematoso 12, e ativação errante de STING leva à inflamação sistêmica causada por quantidades excessivas de IFN em vasculopatia associada à STING13. Terapeuticamente, IFN são utilizados para tratar a esclerose múltipla 14, infecções virais crónicas, tais como VHB e VHC 16,17 15, e cancros, tais como leucemia de células pilosas 18 e leucemia mielóide crónica 19. Perguntas sobre a relevância do IFN em um processo fisiológico especial revelam continuamente a natureza ubíqua desta família de citocinas. Tipo I IFN, especialmente os subtipos de IFN-α, são muitas vezes consideradas como uma só entidade 20-23, em vez de como um grupo de intimamente relacionados, mas distintos, proteínas. A existência e persistência de várias espécies de IFN incluindo os subtipos de IFN-α, ao longo da evolução dos vertebrados 24 sugere que pelo menos um subconjunto destes subtipos possuem funções específicas ou únicas. É possível que definem padrões de expressão de IFN irá decifrar e ajudar a caracterizar as funções específicas de um ou mais dos subtipos 17. O desafio de estudar tele tipo I e III subtipos de IFN é com base na sua identidade de sequência partilhada: os doze subtipos de IFN-α partes&gt; 50% e os 25 subtipos de IFN-λ partilham 81-96% 26 das suas sequências de aminoácidos. No ensaio de qRT-PCR descrito, farol molecular (MB) e o ácido nucleico bloqueado (LNA) sondas fluorescentes discrimina diferenças de pares de bases únicas entre as sequências do subtipo de IFN altamente semelhantes e permite a caracterização da expressão de IFN assinatura. 384 poços formato de placa do ensaio inclui tanto (normas de transcrição) e quantitativos (os genes de limpeza (HKG)) semi-quantitativos medidas, permitindo a análise de um número cópia transcrição e ΔCq respectivamente. Montagem Batch, facilitada por pipetagem automatizada multicanal, e armazenamento de longo prazo, possível através de secagem do primer / sonda (Pr / Pb) define nas placas, melhorar a reprodutibilidade, utilidade e praticidade do ensaio. Este protocolo descreve o processo depara a preparação de placas de 384 poços de ensaio de qRT-PCR (Figura 1) com até dezassete conjuntos Pr / Pb diferentes subtipos de IFN segmentação humanos (Tabela 1). Pr / Pb placas do conjunto de trabalho de origem estoque (Figura 2) são usadas para preparar múltipla de 384 poços em placas de ensaio de um processo que pode ser automatizado utilizando um pipetador multicanal robótico. Embora o foco inicial foi a criação de um protocolo para o estudo da expressão de IFN assinaturas humanos, este método tem sido aplicado para macacos rhesus também. Embora os esquemas de chapa são ligeiramente diferentes e os conjuntos Pr / Pb (Tabela 2) são distintos, o método geral de preparação para a criação das chapas humanos e rhesus é idêntica. Com modificações mínimas do protocolo, o método pode ser executado para permitir o desenvolvimento de ensaios para estudar outros grupos de genes intimamente relacionados. Ver figuras 1 e 2 abaixo Ver Tabelas 1 e 2 Below

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1824">
	<tbody>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:485px;"></td>
			<td style="width:668px;"></td>
			<td style="width:141px;"></td>
			<td style="width:531px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">0.2mL PCR Tube Strips&#160;</td>
			<td>Eppendorf (Westbury, NY, USA)</td>
			<td>E0030 124 286</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">12-channel 384 Equalizer Electronic Pipette, 0.5-12.5uL</td>
			<td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td>
			<td>14-387-139</td>
			<td>*Discontinued</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">12-channel 384 Equalizer Electronic Pipette, 1-30uL</td>
			<td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td>
			<td>14-387-137</td>
			<td>*Discontinued</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">12-channel Electronic Pipette, 5-250uL</td>
			<td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td>
			<td style="width:141px;">14-387-118</td>
			<td>*Discontinued</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">2.0mL Micro Centrifuge tube, sterile</td>
			<td>Celltreat Scientific Products (Shirley, MA, USA)</td>
			<td>229446</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">8-channel Electronic Pipette, 15-1250uL</td>
			<td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td>
			<td>14-387-115</td>
			<td>*Discontinued</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Disposable Reagent Reservoirs&#160;</td>
			<td>VWR International (Radnor, PA, USA)</td>
			<td>89094-668</td>
			<td>25mL reservoirs with 2 dividers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">E-Centrifuge</td>
			<td>Wealtec Corp. (Sparks, NV, USA)</td>
			<td>1090003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Eukaryotic 18S rRNA (18S)</td>
			<td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td>
			<td>Hs99999901_s1</td>
			<td>Rhesus HKG Primer/probe set</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Fixed Speed Mini Vortexer</td>
			<td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td>
			<td>02-215-360</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Gas Permeable Adhesive Plate Seal</td>
			<td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td>
			<td>AB-0580</td>
			<td>Disposable plate seal used during the plate preparation process&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH)</td>
			<td>FBR (Silver Spring, MD, USA)</td>
			<td>Custom Order</td>
			<td>Human HKG Primer/probe set</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH)</td>
			<td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td>
			<td>Rh02621745_g1</td>
			<td>Rhesus HKG Primer/probe set</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Hudson Solo automated multichannel pipettor&#160;</td>
			<td>Hudson Robotics (Springfield, NJ, USA)</td>
			<td>800200</td>
			<td>Modified with a 384-well cooling nest</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Linearized plasmids (IFN genes)</td>
			<td>Aldevron (Fargo, ND, USA)</td>
			<td>Custom Order</td>
			<td>Item 3000, 3580; used for assay standards&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">LNA inhibitors</td>
			<td>Exiqon (Woburn, MA, USA)</td>
			<td>Custom Order</td>
			<td>Item 500100</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">LNA Probes</td>
			<td>Sigma-Proligo (St. Louis, MO, USA)</td>
			<td>Custom Order</td>
			<td>Material number VC00023</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Matrix Filtered Pipet Tips, 12.5uL</td>
			<td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td>
			<td>14-387-193</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Matrix Filtered Pipet Tips, 30uL</td>
			<td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td>
			<td>14-387-196</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Matrix TallTip Extended Length Pipet Tips, 1250uL</td>
			<td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td>
			<td>14-387-160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Matrix TallTip Extended Length Pipet Tips, 250uL</td>
			<td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td>
			<td>14-387-152</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">MicroAmp Optical 384-Well Reaction Plate with Barcode</td>
			<td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td>
			<td>4309849</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">MicroAmp Optical 96-Well Reaction Plate</td>
			<td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td>
			<td>N8010560</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">MicroAmp Optical Adhesive Film</td>
			<td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td>
			<td>4311971</td>
			<td>Adhesive film used for sealing the plate prior to the qRT-PCR run&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Microsoft Excel 2010 Spreadsheet</td>
			<td>Microsoft (Redmond, WA, USA)&#160;</td>
			<td>Office 2010</td>
			<td>Visual Basic programming language&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">MixMate Vortex Mixer</td>
			<td>Eppendorf (Westbury, NY, USA)</td>
			<td>5353 000.014</td>
			<td>2 dimensional plate vortex apparatus</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Molecular Beacon Probes</td>
			<td>FBR (Silver Spring, MD, USA)</td>
			<td>Custom Order</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">PCR Cooler, iceless cold storage system for 96 well plates and PCR tubes</td>
			<td>Eppendorf (Westbury, NY, USA)</td>
			<td>Z606634-1EA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Plate Dryer (manifold)</td>
			<td>Mechanical and Electrical Design Fabrications, NIH Office of Research Services (Bethesda, MD, USA)</td>
			<td>Custom Order</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Primer sets</td>
			<td>FBR (Silver Spring, MD, USA)</td>
			<td>Custom Order</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">pUC57 plasmid DNA</td>
			<td>Genescript (Piscataway, NJ, USA)</td>
			<td>SD1176</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Rnase-Free 1.5mL Microfuge Tubes</td>
			<td>Life Technologies (Grand Island, NY, USA)</td>
			<td>AM12400</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">RNase-free DNase Set (50)</td>
			<td>Qiagen (Valencia, CA, USA)</td>
			<td>79254</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">RNase H</td>
			<td>New England Biolabs (Ipswitch, MA, USA)</td>
			<td>M0297L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">RNeasy Mini Kit (250)</td>
			<td>Qiagen (Valencia, CA, USA)</td>
			<td>74106</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Robot Tips (clear tip pre-sterilized pipet tips)</td>
			<td>Hudson Robotics (Springfield, NJ, USA)</td>
			<td>800350-S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Salmon Sperm DNA Solution</td>
			<td>Invitrogen (Carlsbad, CA, USA)</td>
			<td>15632-011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">SoftLinx Version V</td>
			<td>Hudson Robotics (Springfield, NJ, USA)</td>
			<td>Custom Order</td>
			<td>Software for programming pipetting steps</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">TaqMan Fast Universal PCR Master Mix (2x), no AmpErase UNG</td>
			<td>Life Technologies (Grand Island, NY, USA)</td>
			<td>4352042</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">ABgene Adhesive Plate Seals&#160;&#160;</td>
			<td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td>
			<td>AB0580</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:485px;">Ubiquitin C (UBC)</td>
			<td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td>
			<td>Hs01871556_s1</td>
			<td>Human HKG Primer/probe set</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Verso cDNA synthesis Kit</td>
			<td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td>
			<td>AB1453B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">ViiA 7 Real-Time PCR System</td>
			<td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td>
			<td>4453536</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Water-Ultra Pure</td>
			<td>Quality Biological, INC. (Gaithersburg, MD, USA)</td>
			<td>351-029-101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Zipvap 384 (plate dryer heating element)</td>
			<td>Glas-Col LLC (Terre Haute, IN, USA)</td>
			<td>384-109A</td>
			<td>Plate Dryer</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;"></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

high-throughput quantitative real-time rt-pcr assay for determining expression profiles of types i and iii interferon subtypes

Described in this report is a qRT-PCR assay for the analysis of seventeen human IFN subtypes in a 384-well plate format that incorporates highly specific locked nucleic acid (LNA) and molecular beacon (MB) probes, transcript standards, automated multichannel pipetting, and plate drying. Determining expression among the type I interferons (IFN), especially the twelve IFN-&#945; subtypes, is limited by their shared sequence identity; likewise, the sequences of the type III IFN, especially IFN-&#955;2 and -&#955;3, are highly similar. This assay provides a reliable, reproducible, and relatively inexpensive means to analyze the expression of the seventeen interferon subtype transcripts.

O ensaio de qRT-PCR descrito pode ser implementado para analisar os padrões de tipos I e III IFN expressão numa variedade de tipos de células e contextos. Por exemplo, de tipo I e III humano IFN assinaturas de expressão foram analisados ​​em células mononucleares do sangue periférico (PBMC) a partir de 6 dadores estimulados com ligandos de TLR; poli I: C (25 ug / mL), LPS (10 ng / ml), imiquimod (10 uM), e oligonucleótidos CpG (1 uM) (Figura 4). Os dados foram analisados ​​por meio de um software aplicativo de planilha e apresentados como gráficos de radar com os subtipos de IFN-α dispostas no sentido horário de acordo com a árvore filogenética da sua sequência de proteínas 27. Os gráficos de radar de expressão IFN humano são apresentados em uma escala logarítmica calculada usando os dois métodos de análise diferentes incorporado no projeto de ensaio: valor absoluto Cq normalizados para HKG (ΔCq), eo número de cópia do modelo por microgramas (mg) de RNA total . Copiar valores de números são calculados a partir dos resultados o<html> curva padrão de fa transcrição. Os dados mostram que as assinaturas de expressão de IFN humanos induzidos por agonistas de TLR são ligando específico. Ver Figura 4 Abaixo Tal como demonstrado para as assinaturas de expressão de IFN humanos, assinaturas dos tipos I e III de expressão de IFN em macacos rhesus também foram TLR ligando específico. PBMC a partir de 3 dadores foram estimuladas com poli I: C (50 ug / mL), LPS (10 ug / ml), e imiquimod (10 ug / ml) durante 3 horas (Figura 5). IFN subtipo expressão em células não estimuladas no início do estudo foi baixa. Um número limitado de subtipos de IFN- foram expressos em resposta ao LPS, poli I: C. Em contraste, a expressão de IFN em resposta ao imiquimod foi elevada e a expressão do subtipo foi amplo. Expressão de IFN-β e IFN-λ1 foi reforçada por todos os três agonistas de TLR 28. Ver Figura 5 Abaixo always &quot;&gt; <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/52650/52650fig1.jpg" /> Figura 1:. O layout para uma placa de 384 poços ensaio com dezessete sets Pr / Pb Alvo número refere-se a um conjunto Pr / Pb. As curvas padrão de quatro pontos (triângulos cinzento escuro) são adicionados às colunas 1-5. Os conjuntos HKG Pr / Pb (fundo branco) são adicionados ao colunas 6 e 7. As restantes colunas, 8-24, são específicos para uma das dezessete sets Pr / Pb. As amostras são adicionados às linhas de AP, a partir de colunas 6-24 (setas pretas). Os dois poços (O5, P5) na parte inferior da coluna 5 receber apenas água e mistura principal. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52650/52650fig1highres.jpg" target="_blank">Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/52650/52650fig2.jpg" /> Figura 2:. O layout para uma placa de fonte de 96 poços com dezessete sets Pr / Pb número alvo refere-se a um Pr / Pbdefinido. Setas pretas representam quando um conjunto Pr / Pb é adicionado a vários poços. Mixes NTC são adicionados aos poços (fundo cinzento escuro). Os dois poços (F3, G3) com linhas diagonais não são utilizadas. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52650/52650fig2highres.jpg" target="_blank">Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/52650/52650fig3.jpg" /> Figura 3: Esquema de etapas específicas no protocolo de ensaio qRT-PCR AE diagrama selecionar partes do protocolo.. (A) Passo 1: Preparação de diluições em série standard. (B) Passo 2: Preparação de Pr / Pb e NTC mixes de ações de trabalho. (C) Passo 3.1: Preparação de um existências placa de 96 poços de trabalho dos conjuntos Pr / Pb e misturas NTC. (D) Passo 4,1-3: Preparação das misturas para carregar a placa de 384 poços de ensaio. (Husaep 4.5: Carregamento da placa de 384 poços de ensaio. Os diagramas são lidos a partir do canto superior esquerdo para o canto inferior direito. Reagentes para o interferão (IFN) ensaio são armazenadas a -20 ° C e são listados na coluna da esquerda; linhas de ações separadas no protocolo. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52650/52650fig3highres.jpg" target="_blank">Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/52650/52650fig4.jpg" /> Figura 4: A assinatura expressão de IFN humano em células mononucleares do sangue periférico (PBMC) difere em resposta aos ligandos de TLR utilizadas para a estimulação de PBMC foram estimuladas com ligandos de TLR e o ARN foi colhido para análise de qRT-PCR.. As médias geométricas das respostas de pico à de poli I: C (25 ug / ml) às 8 horas (quadrados vermelhos), LPS (10 ng / ml) a 4 h (triângulos verdes), imiquimod (10 uM) a 16 horas ( diamantes roxo), CpG (1 uM) na16 horas (círculos pretos) e controlo não estimulado em 16 horas (círculos azuis) de 6 dadores são mostrados em escala log 10 como uma função de expressão da HKG UBC ΔCq (esquerda) ou como número de cópias por ug de ARN (para a direita) . Subtipos de IFN-α são ordenados de acordo com a trama filogenética de similaridade de sequência de aminoácidos. Esta figura foi originalmente publicado em Immunology and Cell Biology 27. <img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/52650/52650fig5.jpg" /> Figura 5:. A assinatura macaco rhesus IFN expressão em células mononucleares de sangue periférico (PBMC) difere em resposta aos ligandos de TLR utilizadas para a estimulação de PBMC a partir de três macacos rhesus (designados por o diamante, quadrado, triângulo) e foram isolados a partir de sangue total e estimuladas com lipopolissacárido (LPS) (10 ug / ml), poli I: C (50 ug / ml) ou imiquimod (10 ug / ml). As células foram recolhidas a 0 h (open formas) ou depois de 3 horas de estimulação TLR (formas fechadas) para medição de expressão IFN. Níveis de transcrição de tipo I, II, III e IFN são apresentados no registo 10 de escala como uma função de expressão da HKG GAPDH ΔCq (esquerda) ou como número cópia / pg de ARN (para a direita). Esta figura foi originalmente publicado no Journal of Interferon e Cytokine Research 28. <img alt="Tabela 1" fo:content-="" fo:content-width="7in" src="/files/ftp_upload/52650/52650table1.jpg" width="700" /> Tabela 1:. Seqüências conjunto iniciador / sonda IFN Humano e informações reação <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52650/52650table1.jpg" target="_blank">Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta tabela.</a> <img alt="Tabela 2" fo:content-="" fo:content-width="7in" src="/files/ftp_upload/52650/52650table2.jpg" width="700" /> Tabela 2:. Macacos Rhesus IFN seqüências conjunto iniciador / sonda e informações reação <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52650/52650table2.jpg" target="_blank">Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta tabela.</a> <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td></td><td colspan="4"> Concentração de plasmídeo (FM) </td></tr><tr><td></td><td> A </td><td> B </td><td> C </td><td> D </td></tr><tr><td> IFN-α1 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-α2 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-α4 </td><td> 2500 </td><td> 250 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td></tr><tr><td> IFN-α5 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-α6 </td><td> 250 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td>0,25 </td></tr><tr><td> IFN-α7 </td><td> 250 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td></tr><tr><td> IFN-α8 </td><td> 250 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td></tr><tr><td> IFN-α10 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-α14 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-α16 </td><td> 250 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td></tr><tr><td> IFN-α17 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-α21 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-λ1 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-λ2 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-λ3 </td><td>250 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td></tr><tr><td> IFN-β </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-ω </td><td> 250 </td><td> 25 </td><td> 2,5 </td><td> 0,25 </td></tr></tbody></table> Tabela 3: conjunto de diluição Informação padrão de concentração. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td></td><td> Sets IFN Pr / Pb adicionado </td><td> Volume de água adicionada (mL) </td></tr><tr><td> NTC 1 </td><td> IFN-β, -ω, -λ3 </td><td> 85,7 </td></tr><tr><td> NTC 2 </td><td> IFN-α1, -α5 </td><td> 100,0 </td></tr><tr><td> NTC 3 </td><td> IFN-α2 </td><td> 114,3 </td></tr><tr><td> NTC 4 </td><td> IFN-α4 </td><td> 114,3 </td></tr><tr><td> NTC 5 </td><td> IFN-α7 </td><td> 114,3 </td></tr><tr><td>NTC 6 </td><td> IFN-α6, -α8, -α10 </td><td> 85,7 </td></tr><tr><td> NTC 7 </td><td> IFN-α14, -α16 </td><td> 100,0 </td></tr><tr><td> NTC 8 </td><td> IFN-α17 </td><td> 114,3 </td></tr><tr><td> NTC 9 </td><td> IFN-α21, -λ1 </td><td> 100,0 </td></tr><tr><td> NTC 10 </td><td> IFN-λ2 </td><td> 114,3 </td></tr></tbody></table> Tabela 4: estoque trabalhando NTC mistura informações.

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High-throughput Quantitative Real-time RT-PCR Assay for Determining Expression Profiles of Types I and III Interferon Subtypes

This protocol describes a high-throughput qRT-PCR assay for the analysis of type I and III IFN expression signatures. The assay discriminates single base pair differences between the highly similar transcripts of these genes. Through batch assembly and robotic pipetting, the assays are consistent and reproducible.

De alto rendimento quantitativo em tempo real de RT-PCR Ensaio para Determinar Perfis de Expressão do tipo I e III do interferão subtipos

Described in this report is a qRT-PCR assay for the analysis of seventeen human IFN subtypes in a 384-well plate format that incorporates highly specific ...

high-throughput-quantitative-real-time-rt-pcr-assay-for-determining

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

13.2K visualizações.  US Food and Drug Administration. This protocol describes a high-throughput qRT-PCR assay for the analysis of type I and III IFN expression signatures. The assay discriminates single base pair differences between the highly similar transcripts of these genes. Through batch assembly and robotic pipetting, the assays are consistent and reproducible. 

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Quantitative High-throughput Single-cell Cytotoxicity Assay For T Cells

Cancer immunotherapy can harness the specificity of immune response to target and eliminate tumors. Adoptive cell therapy (ACT) based on the adoptive transfer of T cells genetically modified to express a chimeric antigen receptor (CAR) has shown considerable promise in clinical trials1-4. There are several advantages to using CAR+ T cells for the treatment of cancers including the ability to target non-MHC restricted antigens and to functionalize the T cells for optimal survival, homing and persistence within the host; and finally to induce apoptosis of CAR+ T cells in the event of host toxicity5.
Delineating the optimal functions of CAR+ T cells associated with clinical benefit is essential for designing the next generation of clinical trials. Recent advances in live animal imaging like multiphoton microscopy have revolutionized the study of immune cell function in vivo6,7. While these studies have advanced our understanding of T-cell functions in vivo, T-cell based ACT in clinical trials requires the need to link molecular and functional features of T-cell preparations pre-infusion with clinical efficacy post-infusion, by utilizing in vitro assays monitoring T-cell functions like, cytotoxicity and cytokine secretion. Standard flow-cytometry based assays have been developed that determine the overall functioning of populations of T cells at the single-cell level but these are not suitable for monitoring conjugate formation and lifetimes or the ability of the same cell to kill multiple targets8.
Microfabricated arrays designed in biocompatible polymers like polydimethylsiloxane (PDMS) are a particularly attractive method to spatially confine effectors and targets in small volumes9. In combination with automated time-lapse fluorescence microscopy, thousands of effector-target interactions can be monitored simultaneously by imaging individual wells of a nanowell array. We present here a high-throughput methodology for monitoring T-cell mediated cytotoxicity at the single-cell level that can be broadly applied to studying the cytolytic functionality of T cells.

We describe a single-cell high-throughput assay to measure cytotoxicity of T cells when incubated with tumor target cells. This method employs a dense, elastomeric array of sub-nanoliter wells (~100,000 wells/array) to spatially confine the T cells and target cells at defined ratios and is coupled to fluorescence microscopy to monitor effector-target conjugation and subsequent apoptosis.

Quantitativo de alta capacidade ensaio de citotoxicidade de célula única para as células T.

Cancer immunotherapy can harness the specificity of  immune response to target and eliminate tumors. Adoptive cell therapy (ACT)  based on the adoptive ...

Imunologia e Infecção

Pairwise Growth Competition Assay for Determining the Replication Fitness of Human Immunodeficiency Viruses

In vitro fitness assays are essential tools for determining viral replication fitness for viruses such as HIV-1. Various measurements have been used to extrapolate viral replication fitness, ranging from the number of viral particles per infectious unit, growth rate in cell culture, and relative fitness derived from multiple-cycle growth competition assays. Growth competition assays provide a particularly sensitive measurement of fitness since the viruses are competing for cellular targets under identical growth conditions. There are several experimental factors to consider when conducting growth competition assays, including the multiplicity of infection (MOI), sampling times, and viral detection and fitness calculation methods. Each factor can affect the end result and hence must be considered carefully during the experimental design. The protocol presented here includes steps from constructing a new recombinant HIV-1 clone to performing growth competition assays and analyzing the experimental results. This protocol utilizes experimental parameter values previously shown to yield consistent and robust results. Alternatives are discussed, as some parameters need to be adjusted according to the cell type and viruses being studied. The protocol contains two alternative viral detection methods to provide flexibility as the availability of instruments, reagents and expertise varies between laboratories.

Growth competition between nearly isogenic viruses provides a sensitive measurement for determining relative replication fitness. The protocols described here include the construction of recombinant HIV-1 clones, virus propagation and growth competition and analysis methods optimized to yield sensitive and consistent results.

Crescimento Pairwise competição ensaio para determinar a replicação de Fitness de Imunodeficiência vírus humanos

In vitro fitness assays are essential tools for determining viral replication fitness for viruses such as HIV-1. Various measurements have been used to ...

High Throughput, Real-time, Dual-readout Testing of Intracellular Antimicrobial Activity and Eukaryotic Cell Cytotoxicity

Traditional measures of intracellular antimicrobial activity and eukaryotic cell cytotoxicity rely on endpoint assays. Such endpoint assays require several additional experimental steps prior to readout, such as cell lysis, colony forming unit determination, or reagent addition. When performing thousands of assays, for example, during high-throughput screening, the downstream effort required for these types of assays is considerable. Therefore, to facilitate high-throughput antimicrobial discovery, we developed a real-time assay to simultaneously identify inhibitors of intracellular bacterial growth and assess eukaryotic cell cytotoxicity. Specifically, real-time intracellular bacterial growth detection was enabled by marking bacterial screening strains with either a bacterial lux operon (1st generation assay) or fluorescent protein reporters (2nd generation, orthogonal assay). A non-toxic, cell membrane-impermeant, nucleic acid-binding dye was also added during initial infection of macrophages. These dyes are excluded from viable cells. However, non-viable host cells lose membrane integrity permitting entry and fluorescent labeling of nuclear DNA (deoxyribonucleic acid). Notably, DNA binding is associated with a large increase in fluorescent quantum yield that provides a solution-based readout of host cell death. We have used this combined assay to perform a high-throughput screen in microplate format, and to assess intracellular growth and cytotoxicity by microscopy. Notably, antimicrobials may demonstrate synergy in which the combined effect of two or more antimicrobials when applied together is greater than when applied separately. Testing for in vitro synergy against intracellular pathogens is normally a prodigious task as combinatorial permutations of antibiotics at different concentrations must be assessed. However, we found that our real-time assay combined with automated, digital dispensing technology permitted facile synergy testing. Using these approaches, we were able to systematically survey action of a large number of antimicrobials alone and in combination against the intracellular pathogen, Legionella pneumophila.

A high throughput, real-time assay was developed to simultaneously identify (1) eukaryotic cell-penetrant antimicrobials targeting an intracellular bacterial pathogen, and (2) assess eukaryotic cell cytotoxicity. A variation on the same technology was thereafter combined with digital dispensing technology to enable facile, high-resolution, dose-response, and two- and three-dimensional synergy studies.

High Throughput, em tempo real, Teste Dual-leitura dos intracelular Actividade Antimicrobiana e citotoxicidade celular eucariótica

Traditional measures of intracellular antimicrobial activity and eukaryotic cell cytotoxicity rely on endpoint assays. Such endpoint assays require ...

A Fluorescence-based Lymphocyte Assay Suitable for High-throughput Screening of Small Molecules

High-throughput screening (HTS) is currently the mainstay for the identification of chemical entities capable of modulating biochemical reactions or cellular processes. With the advancement of biotechnologies and the high translational potential of small molecules, a number of innovative approaches in drug discovery have evolved, which explains the resurgent interest in the use of HTS. The oncology field is currently the most active research area for drug screening, with no major breakthrough made for the identification of new immunomodulatory compounds targeting transplantation-related complications or autoimmune ailments. Here, we present a novel in vitro murine fluorescent-based lymphocyte assay easily adapted for the identification of new immunomodulatory compounds. This assay uses T or B cells derived from a transgenic mouse, in which the Nur77 promoter drives GFP expression upon T- or B-cell receptor stimulation. As the GFP intensity reflects the activation/transcriptional activity of the target cell, our assay defines a novel tool to study the effect of given compound(s) on cellular/biological responses. For instance, a primary screening was performed using 4,398 compounds in the absence of a &#34;target hypothesis&#34;, which led to the identification of 160 potential hits displaying immunomodulatory activities. Thus, the use of this assay is suitable for drug discovery programs exploring large chemical libraries prior to further in vitro/in vivo validation studies.

We present in the current study a novel fluorescence-based assay using lymphocytes derived from a transgenic mouse. This assay is suitable for high-throughput screening (HTS) of small molecules endowed with the capacity of either inhibiting or promoting lymphocyte activation.

A Fluorescência baseada em Linfócitos ensaio adequado para high-throughput screening de pequenas moléculas

High-throughput screening (HTS) is currently the mainstay for the identification of chemical entities capable of modulating biochemical reactions or ...

Bead Based Multiplex Assay for Analysis of Tear Cytokine Profiles

Tear film is a complex mixture of lipids, proteins and minerals which covers the external surface of the eye, thereby providing lubrication, nutrition and protection to the underlying cells. Analysis of tears is an emerging area for the identification of biomarkers for the prediction, diagnosis, and prognosis of various ocular diseases. Tears are easily accessible and their collection is non-invasive. Therefore, advancing technologies are gaining prominence for identification of multiple analytes in tears to study changes in protein or metabolite composition and its association with pathological conditions. Tear cytokines are ideal biomarkers for studying the health of the ocular surface and also help in understanding the mechanisms of different ocular surface disorders like dry eye disease and vernal conjunctivitis. Bead based multiplex assays have the capability of detecting multiple analytes in a small amount of sample with a higher sensitivity. Here we describe a standardized protocol of tear sample collection, extraction and analysis of cytokine profiling using a bead based multiplex assay.

Analysis of tear film cytokines helps in studying various ocular diseases. Bead based multiplex assays are simple and sensitive and enable the testing of multiple targets in samples with small volumes. Here we describe a protocol for tear film cytokine profiling a using bead based multiplex assay.

Grânulo baseado Multiplex ensaio para análise de perfis de citocinas lágrima

Tear film is a complex mixture of lipids, proteins and minerals which covers the external surface of the eye, thereby providing lubrication, nutrition and ...

Label-Free Identification of Lymphocyte Subtypes Using Three-Dimensional Quantitative Phase Imaging and Machine Learning

We describe here a protocol for the label-free identification of lymphocyte subtypes using quantitative phase imaging and machine learning. Identification of lymphocyte subtypes is important for the study of immunology as well as diagnosis and treatment of various diseases. Currently, standard methods for classifying lymphocyte types rely on labeling specific membrane proteins via antigen-antibody reactions. However, these labeling techniques carry the potential risks of altering cellular functions. The protocol described here overcomes these challenges by exploiting intrinsic optical contrasts measured by 3D quantitative phase imaging and a machine learning algorithm. Measurement of 3D refractive index (RI) tomograms of lymphocytes provides quantitative information about 3D morphology and phenotypes of individual cells. The biophysical parameters extracted from the measured 3D RI tomograms are then quantitatively analyzed with a machine learning algorithm, enabling label-free identification of lymphocyte types at a single-cell level. We measure the 3D RI tomograms of B, CD4+ T, and CD8+ T lymphocytes and identified their cell types with over 80% accuracy. In this protocol, we describe the detailed steps for lymphocyte isolation, 3D quantitative phase imaging, and machine learning for identifying lymphocyte types.

We describe a protocol for the label-free identification of lymphocyte subtypes using quantitative phase imaging and a machine learning algorithm. Measurements of 3D refractive index tomograms of lymphocytes present 3D morphological and biochemical information for individual cells, which is then analyzed with a machine-learning algorithm for identification of cell types.

Livre etiqueta de identificação dos subtipos de linfócito utilizando imagens tridimensionais fase quantitativa e aprendizagem de máquina

We describe here a protocol for the label-free identification of lymphocyte subtypes using quantitative phase imaging and machine learning. Identification ...

A High-throughput Shigella-specific Bactericidal Assay

Serum bactericidal assays (SBAs) measure the functional activity of antibodies and have been used for many decades. SBAs directly measure antibody killing activity by assessing the ability of antibodies in serum to bind to bacteria and activate complement. This complement activation results in the lysis and killing of the target bacteria. These assays are valuable because they go beyond quantifying antibody production to elucidate the biological functions that these antibodies have, allowing researchers to study the role that antibodies may play in preventing infection. SBAs have been used to study immune responses for many human pathogens, but there is no widely accepted methodology for Shigella at present. Historically, SBAs have been very labor-intensive, requiring many time-consuming steps to accurately quantify surviving bacteria. This protocol describes a simple, robust, and high-throughput assay that measures functional antibodies specific for Shigella in serum in vitro. The method described here offers many advantages over traditional SBAs, including the use of frozen bacterial stocks, 96 well assay plates, a micro-culture system, and automated colony-counting. All of these modifications make this assay less labor-intensive and more high-throughput. This protocol is simpler and faster to perform than traditional SBAs while still using simple technologies and readily available reagents. The protocol has been successfully applied in multiple independent laboratories and the assay is robust and reproducible. The assay can be used to assess immune responses in pre-clinical as well as clinical studies. Quantifying shigellacidal antibody titers both before and after antigen exposure (either by immunization or infection) allows for a broader understanding of how functional antibody responses are generated and their contribution to protective immunity. The development of this standardized, well-characterized assay may greatly facilitate Shigella vaccine design.

A High-throughput Shigella-specific Bactericidal Assay

Here we present a protocol to measure Shigellacidal activity of antibodies in serum. Serum is mixed with bacteria and exogenous complement, incubated, and the reaction mixture is plated on agar plates. Viable bacteria form colonies which are counted, using an automated colony enumerator, and used to determine the bactericidal titer.

Um do elevado-throughput Shigella-ensaio bactericida específico

Serum bactericidal assays (SBAs) measure the functional activity of antibodies and have been used for many decades. SBAs directly measure antibody killing ...

Pan-lyssavirus Real Time RT-PCR for Rabies Diagnosis

Molecular assays are rapid, sensitive and specific, and have become central to diagnosing rabies. PCR based assays have been utilized for decades to confirm rabies diagnosis but have only recently been accepted by the OIE (World Organisation for Animal Health) as a primary method to detect rabies infection. Real-time RT-PCR assays provide real-time data, and are closed-tube systems, minimizing the risk of contamination during setup. DNA intercalating fluorochrome real-time RT-PCR assays do not require expensive probes, minimizing the cost per sample, and when the primers are designed in conserved regions, assays that are specific across virus genera rather than specific to just one virus species are possible. Here we describe a pan-lyssavirus SYBR real-time RT-PCR assay that detects lyssaviruses across the Lyssavirus genus, including the most divergent viruses IKOV, WCBV and LLEBV. In conjunction with dissociation curve analysis, this assay is sensitive and specific, with the advantage of detecting all lyssavirus species. The assay has been adopted in many diagnostic laboratories with quality assured environments, enabling robust, rapid, sensitive diagnosis of animal and human rabies cases.

This real-time RT-PCR using dsDNA intercalating dye is suitable to diagnose lyssavirus infections. The method begins with RNA extracted from rabies suspected ante-mortem or post-mortem samples, detailing master mix preparation, RNA addition, setup of the real-time machine and correct interpretation of results.

Tempo real RT-PCR do Pan-lyssavirus para o diagnóstico da raiva

Molecular assays are rapid, sensitive and specific, and have become central to diagnosing rabies. PCR based assays have been utilized for decades to ...

High Throughput Co-culture Assays for the Investigation of Microbial Interactions

The study of interactions between microorganisms has led to numerous discoveries, from novel antimicrobials to insights in microbial ecology. Many approaches used for the study of microbial interactions require specialized equipment and are expensive and time intensive. This paper presents a protocol for co-culture interaction assays that are inexpensive, scalable to large sample numbers, and easily adaptable to numerous experimental designs. Microorganisms are cultured together, with each well representing one pairwise combination of microorganisms. A test organism is cultured on one side of each well and first incubated in monoculture. Subsequently, target organisms are simultaneously inoculated onto the opposite side of each well using a 3D-printed inoculation stamp. After co-culture, the completed assays are scored for visual phenotypes, such as growth or inhibition. These assays can be used to confirm phenotypes or identify patterns among isolates of interest. Using this simple and effective method, users can analyze combinations of microorganisms rapidly and efficiently. This co-culture approach is applicable to antibiotic discovery as well as culture-based microbiome research and has already been successfully applied to both applications.

The co-culture interaction assays presented in this protocol are inexpensive, high throughput, and simple. These assays can be used to observe microbial interactions in co-culture, identify interaction patterns, and characterize the inhibitory potential of a microbial strain of interest against human and environmental pathogens.

Ensaios de co-cultura de alta produtividade para a investigação de interações microbianas

The study of interactions between microorganisms has led to numerous discoveries, from novel antimicrobials to insights in microbial ecology. Many ...

High-Throughput Transcriptome Analysis for Investigating Host-Pathogen Interactions

Pathogens can cause a wide variety of infectious diseases. The biological processes induced by the host in response to infection determine the severity of the disease.&#160;To study such processes, researchers can use high-throughput sequencing techniques (RNA-seq) that measure the dynamic changes of the host transcriptome at different stages of infection, clinical outcomes, or disease severity.This investigation can lead to a better understanding of the diseases, as well as uncovering potential drug targets and treatments. The protocol presented here describes a complete pipeline to analyze RNA-sequencing data from raw reads to functional analysis. The pipeline is divided into five steps: (1) quality control of the data; (2) mapping and annotation of genes; (3) statistical analysis to identify differentially expressed genes and co-expressed genes; (4) determination of the molecular degree of the perturbation of samples; and (5) functional analysis. Step 1 removes technical artifacts that may impact the quality of downstream analyses. In step 2, genes are mapped and annotated according to standard library protocols.&#160;The statistical analysis in step 3 identifies genes that are differentially expressed or co-expressed in infected samples, in comparison with non-infected ones. Sample variability and the presence of potential biological outliers are verified using the molecular degree of perturbation approach in step 4. Finally, the functional analysis in step 5 reveals the pathways associated with the disease phenotype. The presented pipeline aims to support researchers through the RNA-seq data analysis from host-pathogen interaction studies and drive future&#160;in vitro or in vivo experiments, that are essential to understand the molecular mechanism of infections.

The protocol presented here describes a complete pipeline to analyze RNA-sequencing transcriptome data from raw reads to functional analysis, including quality control and preprocessing steps to advanced statistical analytical approaches.

Análise de transcriptome de alto rendimento para investigar interações host-pathogen

Pathogens can cause a wide variety of infectious diseases. The biological processes induced by the host in response to infection determine the severity of ...