Os autores reconhecem o apoio e o financiamento do GW Center for Biomimetics and Bioinspired Engineering. Agradecemos à professora L. Patricia Hernandez, do Departamento de Ciências Biológicas da Universidade George Washington, por inspirar a investigação e a colaboração em andamento, fornecendo conhecimento biológico sobre a fisiologia da carpa prateada e fornecendo amostras de muco. Agradecemos aos alunos, Sr. David Palumbo, Sra. Carly Cohen, Sr. Isaac Finberg, Sr. Dominick Petrosino, Sr. Alexis Renderos, Sra. Priscilla Varghese, Sr. Carter Tegen e Sr. Raghav Pajjur pela ajuda no laboratório e Sr. Thomas Evans e Sr. James Thomas da TA Instruments, New Castle, DE para apoio com treinamento e manutenção do reômetro. Imagens para figuras 5A,C foram tiradas durante uma dissecção realizada pela professora L. Patricia Hernandez, do Departamento de Ciências Biológicas da Universidade George Washington.

1. Preparação das soluções de muco de várias concentrações
NOTA: Três concentrações da solução de muco (400 mg/mL, 200 mg/mL e 100 mg/mL com volumes aproximados, 1 mL, 1 mL e 2 mL, respectivamente) estão preparadas para este experimento.
<ol><li>Para calcular a massa do muco, meça a massa média dos frascos com (Mcom muco ; mg) e sem muco (frascos M; mg). Em seguida, subtraia a massa dos frascos com muco com isso sem muco(Mmucus = M commuco - frascos M ; mg).</li>
	<li>Diluir o muco em três concentrações (400, 200, 100, mg/mL) com água deionizada (DI).<ol>
<li>Prepare a primeira concentração da solução de muco, 400 mg/mL adicionando 0,6 mL de água DI ao muco usando uma micropipette. NOTA: Como o volume aproximado do muco extraído foi de 1,4 mL, a solução de 400 mg/mL terá um volume total de ~ 2 mL.</li>
		<li>Coloque o frasco de solução de muco de 400 mg/mL em um agitador para garantir que a solução de muco esteja adequadamente homogeneizada, e qualquer aglomeração de partículas de muco seja atenuada.</li>
		<li>Prepare a segunda concentração da solução de muco, 200 mg/mL, desenhando metade do volume da solução de muco de primeira concentração em um novo frasco usando uma micropipette e adicionando 1 mL de água DI no novo frasco.</li>
		<li>Repita o passo 1.2.2 para o primeiro e segundo frascos com soluções de muco.</li>
		<li>Prepare a terceira concentração da solução de muco, 100 mg/mL, desenhando metade do volume (1 mL) da solução de 200 mg/mL em um novo frasco usando uma micropipette e adicione água DI no novo frasco.</li>
		<li>Repita o passo 1.2.2 para todas as três concentrações de soluções de muco em seus respectivos frascos (ver Figura Suplementar 1).</li>
		<li>Armazene os frascos de solução de muco em uma geladeira até que a calibração e o teste do reômetro seja realizado.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Medições e aquisição de dados utilizando um reômetro
NOTA: O software utilizado neste protocolo para controle de instrumentos e aquisição de dados com reômetro são observados na Tabela de Materiais. Este software será chamado de "software de controle de instrumentos reômetro".
<ol><li>Configure e calibrar o instrumento de reômetro.<ol>
<li>Ligue a fonte de ar comprimido ao reômetro e certifique-se de que a tabela pneumática e o reômetro sejam nivelados usando um medidor de bolhas. Gire a tampa protetora no eixo do reômetro e segure o eixo ainda enquanto desaparafusa.</li>
		<li>Ligue os interruptores principais do reômetro para ativar os rolamentos magnéticos no reômetro.</li>
		<li>Ligue o computador de controle do reômetro com o software de controle do instrumento reômetro instalado nele e inicie o software de controle de instrumentos reômetro (ver Figura Suplementar 2).</li>
		<li>Execute a calibração do instrumento selecionando as guias,'Calibração | Instrumento' da janela do software. Escolha a opção'Instrumento'. Clique em 'Calibrar' em 'Inércia'. Registo o valor de calibração da inércia do instrumento em μN.m.s2 e a calibração repetida pelo menos 3x para garantir que os valores de calibração estejam dentro de 10% um do outro (ver Figura Suplementar 3).</li>
	</ol></li>
	<li>Instale a geometria do reômetro no eixo do reômetro.<ol>
<li>Clique na guia'Geometrias'no software de controle de instrumentos reômetro.</li>
		<li>Limpe o cone com a geometria desejada, (40 mm de diâmetro, 1◗ 0' 11'' cone) e placa peltier com isopropanol (ver Tabela 1, Tabela de Materiais, Figura 1e Figura 2). NOTA: A placa peltier vem instalada no reômetro; pode ser limpo com isopropanol enquanto está diretamente fixado ao reômetro.</li>
		<li>Certifique-se de que a fixação da placa Peltier esteja livre de qualquer pó visível e limpe, se necessário, com isopropanol. Instale a placa Peltier se não estiver pré-instalada no reômetro e conecte as conexões do dissipador de calor.</li>
		<li>Pressione o 'botão de bloqueio' no reômetro para o eixo de bloqueio que está conectado à geometria do cone. Isso prende a posição do eixo, mas pode girar livremente na posição.</li>
		<li>Clique em 'Smart Swap | Habilitadona guia de software de controle de instrumentos reômetro para permitir a detecção automática da geometria (ver Figura Suplementar 4).</li>
		<li>Gire o eixo em cima do reômetro para aparafusar a geometria. O software detectará a geometria de ângulo de cone de 40 mm, 1◗ 0' 11'' nesta fase (ver Tabela 1 e Tabela de Materiais).</li>
		<li>Repita as etapas 2.2.5 – 2.2.6 para garantir que a geometria seja detectada.</li>
		<li>Selecione 'Gap' sob o ' Painel deControle' do software de controle de instrumentos reômetro, clique em 'Options' ícone e escolha 'Axial Force' opção. Definir força axial para '1 Newton'; isto é para garantir que a geometria do cone toque na placa Peltier para inicialização de lacuna zero (ver Figura Suplementar 5).</li>
	</ol></li>
	<li>Realize a calibração da geometria do reômetro.<ol>
<li>Selecione a guia 'Geometria' na janela do software. Clique em 'Calibrar' em 'Inércia'. Regisso valor de calibração da inércia geometria em μN.m.s2 e repita isso 2-3 vezes para garantir que os valores de calibração estejam dentro de 10% um do outro.</li>
		<li>Clique em 'Calibrar' em 'Atrito' na janela do software. Regissua o valor de calibração do atrito da geometria em μN.m/(rad/s) e repita isso 2-3 vezes para garantir que os valores de calibração estejam dentro de 10% um do outro (ver Figura Suplementar 6).</li>
	</ol></li>
	<li>Realize a inicialização de lacuna zero NOTA: Uma vez que a geometria não pode ser levantada com precisão acima da Placa Peltier para realizar medições sem uma posição "zero" de referência, a inicialização de lacuna zero é realizada. Para efeitos de medição, a geometria tem uma lacuna de geometria embutida de 24 μm e uma abertura de corte de 28 μm. A abertura de corte é definida para limpar efetivamente o excesso de fluido que pode derramar fora da área de superfície da geometria. Essas lacunas são imprescindíveis para medir com precisão os dados usando a amostra e o reômetro. A etapa 2.4.1 é absolutamente necessária para garantir que a geometria seja definida como lacuna zero para alcançar a geometria e aparar lacunas de 24 μm e 28 μm, respectivamente.<ol>
<li>Clique no ícone 'Zero gap' na guia 'Gap' no ' Painelde Controle' na janela do software. A inicialização é completa quando a força axial experimentada pela geometria é maior ou igual a 1 N, pois toca a placa peltier. Certifique-se de que a lacuna do reômetro seja zerada para que sua posição de referência seja precisa (ver Figura Suplementar 7 e Figura Suplementar 8).</li>
		<li>Pressione os controles desetapara cima e para baixo no instrumento reômetro ou 'geometria levantar e baixar' ícones sob a guia 'Gap' no software de controle de instrumentos de reômetro para elevar a geometria a qualquer altura arbitrária. A tela de controle no instrumento reômetro e no painel de controle do software de controle de instrumentos reômetro exibirão a (mesma) altura de lacuna.</li>
	</ol></li>
	<li>Configure o procedimento experimental no software de controle do instrumento reômetro. Realize a caracterização das propriedades reológicas usando uma geometria da placa cone-on-Peltier a 22 °C. NOTA: O site do Serviço Geológico dos EUA foi usado para verificar a temperatura da água do rio em 20 de setembro de 2018, quando a carpa prateada usada para os experimentos de muco GR foram pescadas na localização36de Hart Creek . A temperatura do muco pode afetar as propriedades reológicas. A importância de ajustar os valores à temperatura do rio é aproximadamente igualar a temperatura sob a qual as propriedades do muco podem ser estimadas realisticamente.<ol>
<li>Selecione a guia ' Experimentos ' no software de controle deinstrumentosde reômetro e preencha as informações relevantes como 'Name', 'Operator', 'Project' etc.  (ver Figura Suplementar 9)</li>
		<li>Selecione a guia 'Geometria' e certifique-se de que as informações concordem com as etapas 2.2.5. - 2.2.7. (ver Figura Suplementar 10).</li>
		<li>Selecione a guia 'Procedimento', e use as teclas de seta configuradas '1: Amplitude de oscilação' procedimento. (ver Figura Suplementar 11).</li>
		<li>Inicialize as configurações do 'Controle Ambiental' como as seguintes: 'Temperatura = 22 °C'; 'Soak Time = 120 s' e marque a caixa 'Aguarde a Temperatura' (ver Figura Suplementar 11).</li>
		<li>Inicialize as configurações dosparâmetros de testecomo as seguintes: 'Frequência = 1 Hz'; definir 'varredura logarítmica'; 'Torque = 10 a 10000 μN.m'; 'Pontos por década = 5' (ver Figura Suplementar 11).</li>
	</ol></li>
	<li>Configure o experimento para determinar a Faixa Viscoelástica Linear (LVR) do muco da concentração conhecida (100 mg/mL)<ol>
<li>Utilizando uma dica de micropipette e pipeta adequada, desenhe aproximadamente 0,3 mL de solução de muco de peixe de concentração de 100 mg/mL (ver Passo 1.2, Tabela de Materiais).</li>
		<li>Introduza a solução de muco na placa Peltier usando a micropipette (ver Figura 2).</li>
		<li>Pressione o botão 'Trim Gap' no reômetro para baixar a geometria sobre a placa Peltier. Alternativamente, clique em 'Trim Gap' ícone na guia 'Gap' na opção ' Painelde Controle' no software de controle de instrumentos reômetro (ver Figura Suplementar 12).</li>
		<li>Use a micropipette com a ponta da pipeta para remover qualquer solução de muco em excesso e garantir que o fluido esteja sob a geometria sem qualquer derramamento perto da periferia da geometria. NOTA: O carregamento inadequado do fluido levará a erros nas medições. Sob amostra preenchida, a distribuição do torque diminuirá e a amostra sobre a amostra preenchida levará distribuições de estresse errôneas devido ao derramamento ao longo das bordas.</li>
		<li>Selecione as guias 'Motor' e 'Velocity' para 5 rad/s e 0 rad/s alternadamente, até que haja inércia mínima e velocidade na amostra sob a geometria. A tela de controle do instrumento reômetro e o painel de controle do software de controle de instrumentos reômetro exibirão a velocidade (ver Figura Suplementar 13).</li>
		<li>Pressione o botão 'Geometry Gap' no reômetro para diminuir a geometria para a lacuna adequada predefinida por geometria específica. Alternativamente, clique em 'Geometry Gap' ícone em 'Gap' na opção 'Painel de Controle' no software de controle de instrumentos reômetro (ver Figura Suplementar 14).</li>
	</ol></li>
	<li>Execute o experimento para determinar a Faixa Viscoelástica Linear (LVR) do muco da concentração conhecida (100 mg/mL).<ol>
<li>Clique no ícone 'Iniciar' no software de controle de instrumentos reômetro (ver Figura Suplementar 15). NOTA: O reômetro realiza medições automáticas; uma vez que o botão'Iniciar' é pressionado, o reômetro levará aproximadamente 20 minutos para completar o teste. A configuração 'Pontos por década' na Etapa 2.5.5 determina quanto tempo o reômetro precisará para completar as medições.</li>
		<li>Execute o experimento clicando em 'Sim' na caixa pop-up que aparece e sugere que a lacuna de geometria seja reduzida à distância correta para iniciar o experimento, se ainda não abaixado.</li>
		<li>Observe o gráfico em tempo real gerado pelo reômetro que relata o moduli de armazenamento (G') e perda (G''). NOTA: Os G' e G" são o moduli de armazenamento e perda, respectivamente. O módulo de armazenamento representa a tendência do material recuperar sua forma original após a deformação induzida pelo estresse e equivale à elasticidade. O módulo de perda representa até que ponto o material resiste à tendência ao fluxo e representa a viscosidade fluida (ver Figura 4).</li>
		<li>Defina o eixo X da trama como ' porcentagem detensão de oscilação'. Para isso, clique com o botão direito do mouse no gráfico apresentado e escolha aguia 'Variáveis de Gráfico' (ver Figura Suplementar 16).</li>
		<li>Regisso recorde a porcentagem de tensão de oscilação da trama antes que o material entre na faixa viscoelástica não linear, uma vez que o teste esteja concluído.</li>
		<li>Pressione os controles desetapara cima e para baixo no instrumento reômetro ou 'geometria levantar e baixar' ícones sob a guia 'Gap' no software de controle de instrumentos de reômetro para elevar a geometria a qualquer altura arbitrária acima da placa Peltier.</li>
		<li>Salve o arquivo que contém tanto o procedimento experimental quanto resulta no formato de arquivo nativo do software de controle do instrumento reômetro para verificar a região viscoelástica linear (LVR) da amostra de muco. NOTA: Isso pode ser feito definindo o eixo X da trama para coar amplitude (%) e/ou tensão de oscilação <img alt="Equation omega" src="/files/ftp_upload/61379/61379eqomega.jpg" style="font-size: 14px;"> antes que os dados entrem na região viscoelástica não linear (NLVR) (ver Figura Suplementar 16).</li>
	</ol></li>
	<li>Execute as varreduras dinâmicas e os experimentos de teste de fluxo de taxa de cisalhamento de estado constante em Faixa Viscoelástica Linear (LVR) para o muco da concentração conhecida 100, mg/mL para gerar resultados de três amostras independentes de muco de 100 mg/mL. Realize estas etapas nas amostras de concentração de muco disponíveis individualmente.<ol>
<li>Repetição passos 2.5.1 – 2.5.4.</li>
		<li>Inicialize as configurações dosparâmetros de testecomo as seguintes: 'Frequência = 1 Hz'; definir 'varredura logarítmica'; 'Coe % = 100 a 10000 %; 'Pontos por década = 10'.</li>
		<li>Selecione a guia'Procedimento'e use as teclas de seta configuradas '2: Frequência de oscilação'.</li>
		<li>Inicialize as configurações do 'Controle Ambiental' como as seguintes: 'Temperatura = 22 °C'; 'Soak Time = 0.0 s'.</li>
		<li>Inicialize as configurações dosparâmetros de testecomo as seguintes: 'Coestirão % = 1 %'; definir 'varredura logarítmica'; 'Frequência = 20 a 1 Hz'; 'Pontos por década = 10'.</li>
		<li>Selecione a guia'Procedimento'e use as teclas de seta configuradas '3: Varredura de fluxo'.</li>
		<li>Inicialize as configurações do 'Controle Ambiental' como as seguintes: 'Temperatura = 22 °C'; 'Soak Time = 0.0 s'.</li>
		<li>Inicialize as configurações dos' parâmetrosde teste ' como as seguintes: 'Taxa de tesoura = 1 a 10000 1/s'; 'Pontos por década = 10'; caixa de seleção 'Detecção de estado constante'.</li>
		<li>Repita as etapas 2.7.1 – 2.7.2 e espere até que o experimento esteja concluído, aproximadamente 45 minutos.</li>
		<li>Pressione os controles deseta' para cima e para baixo ' no instrumento reômetro ou ícones de 'geometria aumentar e diminuir' na guia 'Gap' no software de controle de instrumentos de reômetro para elevar a geometria a qualquer altura arbitrária.</li>
		<li>Use lenços e luvas descartáveis para remover e limpar o muco na placa Peltier com solução isopropanol (ver Tabela de Materiais).</li>
		<li>Salve o arquivo que contém tanto o procedimento experimental quanto os resultados no formato de arquivo nativo do software de controle do instrumento reômetro.</li>
	</ol></li>
</ol>3. Repita o protocolo para outras concentrações de soluções de muco de 200 mg/mL e 400 mg/mL.
<ol><li>Realizar as etapas 2.5 – 2.8 incluindo todas as sub-etapas listadas para as duas concentrações restantes de soluções de muco, 200 mg/mL e 400 mg/mL.</li>
</ol>4. Representação gráfica e análise de dados
NOTA: O código fornecido no arquivo de código suplementar executa a média de dados e gera erros de repetibilidade, sobreponha os dados de todos os experimentos. Os recursos de cálculo de desvio padrão não estão disponíveis no software de controle de instrumentos reômetro. O código está escrito em uma linguagem de programação para análise de dados, pós-processamento e representação gráfica (ver Tabela de Materiais para obter detalhes).
<ol><li>Dados de exportação gerados a partir da etapa 2.8 relativa à concentração de muco gr de 100 mg/mL e passo 3.1 relativos às concentrações de muco GR de 200mg/mL e 400 mg/mL em formato de planilha clicando na guia, 'Arquivo | | de exportação Excel' no software de controle de instrumentos reômetro (ver Figura Suplementar 17).</li>
	<li>Execute códigos suplementares para gerar parcelas de viscosidade aparente (η) para taxas variadas de tensão de <img alt="Equation y" src="/files/ftp_upload/61379/61379eqy.jpg"> cisalhamento () e módulo de perda (G"), módulo de armazenamento (G') e ângulo de fase (δ) para tensão de oscilação variada <img alt="Equation omega" src="/files/ftp_upload/61379/61379eqomega.jpg"> () e gerar resultados representativos.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Cohen, K. E., Hernandez, L. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+complex+trophic+anatomy+of+silver+carp,+Hypophthalmichthys+molitrix,+highlighting+a+novel+type+of+epibranchial+organ.">The complex trophic anatomy of silver carp, Hypophthalmichthys molitrix, highlighting a novel type of epibranchial organ.</a> Journal of Morphology. 279, 1615-1628 (2018).</li><li>Cohen, K. E., Hernandez, L. 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Nenhum conflito de interesses declarado.

Um dos principais objetivos do desenvolvimento deste protocolo é estabelecer que ele é adequado para a caracterização reológica do muco GR quando são disponíveis volumes amostrais muito pequenos. Reconhecemos que mais amostras de uma escola de carpas prateadas são necessárias para caracterizar totalmente as propriedades reológicas do muco GR e os dados aqui apresentados não são uma generalização em toda a população de carpas de prata. Nossa técnica se justifica por sua eficácia com caracterização reol...

A carpa prateada, Hypophthalmichthys molitrix,é um alimentador de filtros plâncido e uma espécie invasora que se infiltrou em várias vias navegáveis naturais nos Estados Unidos. Esta espécie foi inicialmente introduzida na bacia do alto rio Mississippi para controlar as flores de algas1,2,3. A carpa prateada é um alimentador extremamente eficiente. Normalmente, seus tamanhos de partículas de alimentos consumíveis variam de 4 a 20 μm a zooplâncton maior que são em torno de 80 μm3,4,5. Esta espécie superou outros peixes nativos e pode potencialmente causar enormes danos às vias navegáveis nativas limitando os recursos disponíveis1,2,6. Assim, filtrar peixes que alimentam como a carpa prateada e a carpa cabeça grande representam uma grande ameaça para os Grandes Lagos1,2,6,7,8.
Os peixes de alimentação de filtros possuem órgãos especiais chamados de rakers de brânquias (GRs) com uma fina camada de muco residente em sua superfície. Esses órgãos melhoram a eficiência da filtração e agregação de pequenas partículas do fluido de entrada. O objetivo do protocolo aqui apresentado é caracterizar a propriedade material não newtoniana, de corte e produzir estresse do muco GR adquirido da superfície interna dos rakers de brânquia na carpa prateada. O valor do estresse de rendimento do GR-muco, verificado por meio de um reômetro rotacional, é de interesse neste estudo. O estresse de rendimento medido também chamado de "estresse de rendimento aparente" depende dos métodos de teste, como taxa de corte constante ou tensão oscilatória dinâmica tipo9,10. O "fluido de estresse de rendimento", sofre uma transição do comportamento sólido para o líquido em um estresse aplicado crítico9,11. O estresse de rendimento aparente é o estresse mínimo de cisalhamento necessário para iniciar o fluxo ou aquele em que a deformação plástica irreversível é observada pela primeira vez quando o muco transita de um material semelhante a gel para um material semelhante a um fluido. Esse comportamento pode ser observado em materiais viscoelásticos estruturados. A transição do comportamento em gel para fluido do muco GR implica duas funções, ou seja, um papel adesivo para coletar partículas de alimentos e um papel de veículo de transporte para auxiliar no processo de entrega e filtragem de partículas. A função estendida do muco inclui a criação de barreiras de difusão na resistência e respiração da doença, fornecendo liberação controlada de fatores nutricionais, componentes tóxicos e excreção, criação de vias metabólicas para alimentação e aninhamento, auxiliando na proteção de predadores e produzindo modificações de camadas de fronteira que melhoram a locomoção e eficiência propulsiva12,13,14.
Ao contrário dos fluidos simples, fluidos complexos como o muco possuem propriedades que variam com as condições de fluxo e requerem parâmetros adicionais de medição para definir seu comportamento físico em escala a granel. Para monitorar a viscosidade e o estresse de rendimento do muco GR, as medições reológicas são realizadas utilizando um reômetro rotacional. O reômetro rotacional aplica um estresse ou tensão de tesoura estável ou oscilatória por meio de um disco rotativo em contato com a amostra de fluido e mede sua resposta. A lógica por trás do uso deste instrumento e técnica é que o reômetro pode fornecer um conjunto de medidas para descrever as propriedades materiais do muco GR da carpa prateada, que não pode ser definida apenas pela viscosidade.
O muco é um material viscoelástico e sua resposta mecânica a uma deformação imposta é entre a de um sólido puro (regido pela lei de elasticidade de Hooke) e o de um líquido puro (regido pela lei de viscosidade de Newton)15,16. A complexa rede macromolecular contida no muco pode esticar e reorientar em resposta a forças externas ou deformação. Um reômetro rotacional é composto por uma geometria de cone e uma placa Peltier, como mostrado na Figura 1 e Figura 2 (ver Tabela 1 para especificações de instrumentação). O objetivo deste estudo foi desenvolver um protocolo para determinar as propriedades reológicas do muco gr. Uma vantagem do reômetro rotacional sobre um viscometro é sua capacidade de fazer medições dinâmicas usando pequenos volumes de amostra. O volume da amostra de muco GR neste estudo foi de aproximadamente 1,4 mL. O viscometro, por outro lado, limita-se a taxas constantes de tesoura e requer grandes volumes amostrais.
Espera-se que as propriedades reológicas do muco variem muito dentro da anatomia da carpa prateada. Por exemplo, as propriedades do muco residente nas superfícies gr podem ser diferentes do órgão epibranchial. Para explicar a potencial variabilidade das propriedades do muco em diferentes regiões do peixe, a amostra de muco GR adquirida foi diluída, e soluções de três concentrações foram criadas e testadas utilizando-se o reômetro rotacional.. Os dados e resultados relativos à reologia muco relatados após a execução do protocolo demonstraram a eficácia da técnica de medição. Os dados ilustrativos apresentados neste artigo não devem ser generalizados em toda a população de carpas de prata. O protocolo aqui apresentado pode ser estendido para investigar a reologia do muco em conjuntos de amostras maiores para testar outras hipóteses.
O objetivo deste estudo é demonstrar a variação das propriedades reológicas da reologia do muco GR com três concentrações diferentes de muco (400 mg/mL, 200 mg/mL e 100 mg/mL). A concentração de 400 mg/mL representa a amostra de muco cru colhida do peixe GRs. A água desionizada (DI) foi utilizada para diluir a amostra de muco cru em concentrações de 200 mg/mL e 100 mg/mL. Diluir as amostras de muco permitiu a avaliação do grau de afinamento da tesoura e do estresse de rendimento aparente em função da concentração e da determinação da concentração em que o muco gr transita para o comportamento não newtoniano. Um shaker foi usado para quebrar qualquer grande aglomerado de muco nas amostras para mitigar erros nos dados reológicos devido à inhomogeneidade.
Na maioria dos vertebrados, incluindo os peixes, as macromoléculas predominantes formadoras de muco são glicoproteínas (mucinas) que tendem a inchar na água por emaranhados ou cruzamentos químicos e criam um material semelhante a gel12,13,17,18,19,20. As macromoléculas de alto peso molecular, formadoras de gel e o alto teor de água refletem a escorregadia no muco13. Um alto grau de interações intermoleculares leva à formação de gel, enquanto níveis mais baixos de interações intermoleculares ou ligações quebradas resultam em fluidos de alta viscosidade21.
Os processos de filtragem de partículas alimentares em peixes de alimentação de filtros são auxiliados por propriedades relacionadas ao muco GR, como coesão e viscosidade que determinam seu potencial de adesão e aderência22. A força da adesão à base de muco depende de interações intermoleculares, eletrostáticas ou hidrofóbicas específicas23. Sanderson et al.24 realizaram um estudo de alimentação suspensa em peixes negros onde encontraram evidências de adesão à base de muco. Eles afirmaram que a adesão de partículas de alimentos suspensas com uma superfície mucosa é seguida pelo transporte de aglomerados agregados de partículas ligadas ao muco por fluxo de água direcionado agindo sobre ele24. O muco exposto às taxas de cisalhamento geradas a partir do fluxo de água facilita a entrega de partículas alimentares para órgãos digestivos. Técnicas endoscópicas foram utilizadas para observar partículas filtradas24.
A literatura sobre a gama de taxas de tesoura e limites práticos nos testes reológicos do muco gr é escassa. Assim, foram buscadas orientações de estudos reológicos sobre muco gástrico, nasal, cervical e pulmonar, muco da pele de salmão, lodo de peixe-bruxa e lubrificante da superfície da articulação óssea em que foram estudados os atributos reológicos e não newtonianos11,12,25,26,27,28,29,30,31. Mais recentemente, o efeito do muco da pele do peixe na locomoção e eficiência propulsiva tem sido estudado usando viscometria constante da taxa de corte. Estudos de reologia do muco da pele (sem qualquer diluição ou homogeneização) relativos ao seabream, sea bass e mísero demonstraram comportamento não newtoniano a taxas tipicamente baixas de tesoura14.  Em outro estudo relacionado, as amostras de muco de pele crua dos lados dorsal e ventral da sola senegalesa apresentaram comportamento não newtoniano, indicando maior viscosidade do muco ventral em todas as taxas de corte consideradas32. Outros protocolos reológicos relativos ao desenvolvimento de andaimes de hidrogel e para suspensões altamente concentradas utilizando um viscometro de taxa de corte constante também foram relatados na literatura33,34.
Neste estudo, as propriedades de muco GR foram investigadas utilizando-se um reômetro controlado e rotacional controlado pela taxa de tensão que tem sido amplamente utilizado em experimentos de reologia em fluidos biológicos complexos25. Para os fluidos newtonianos, a viscosidade aparente permanece constante, é independente da taxa de corte e as tensões de tesoura variam linearmente com as taxas de tensão de tesoura(Figura 3A, B). Para fluidos não newtonianos (como fluidos de corte), a viscosidade é dependente da taxa de corte ou dependente da história de deformação(Figura 3A,B). O módulo de perda (G) representa até que ponto o material resiste à tendência ao fluxo e representa a viscosidade fluida(Figura 4). O módulo de armazenamento (G') representa a tendência do material de recuperar sua forma original após a deformação induzida pelo estresse e equivale à elasticidade(Figura 4). O ângulo de fase (δ) ou o valor tangente de perda, é calculado a partir da tangente inversa de G"/G'. Representa o equilíbrio entre perda de energia e armazenamento e também é parâmetro comum para caracterização de materiais viscoelásticos (δ = 0° para um sólido hookean; δ = 90° para um líquido viscoso; δ < 45° para um sólido viscoelástico e δ > 45° para um líquido viscoelástico) (Figura 4)25. O estresse de rendimento aparente (σy) em fluidos estruturados representa uma mudança de estado que pode ser observada em dados reológicos de varredura de estado constante e varreduras dinâmicas de tensão de estresse10. Se o estresse aplicado externo for menor do que o estresse aparente de rendimento, o material se deformará esteticamente. Quando o estresse excede o estresse aparente de rendimento (marcado como "estresse médio" na Figura 3B), o material passará do elástico para a deformação plástica e começará a fluir em seu estado líquido35. Medir o módulo de armazenamento (G') e o módulo de perda (G") na amostra de muco sob condições de estresse oscilatório (ou tensão) quantifica a mudança no estado material de comportamento líquido semelhante ao gel para o líquido viscoelástico.
Os tipos de testes de reômetro realizados para monitorar dados relativos ao módulo de armazenamento (G'), módulo de perda (G") e viscosidade aparente (η) são descritos aqui. Os testes de oscilação dinâmica (varreduras de tensão e varreduras de frequência) monitoraram G' e G" sob oscilação controlada da geometria do cone. Os testes dinâmicos de varredura de tensão determinaram a região viscoelástica linear (LVR) do muco monitorando a resposta intrínseca do material(Figura 4). As varreduras de tensão foram utilizadas para determinar o comportamento de rendimento na frequência e temperatura constantes de oscilação. Os testes dinâmicos de varredura de frequência monitoraram a resposta do material ao aumento da frequência (taxa de deformação) em uma amplitude constante (tensão ou estresse) e temperatura. A cepa foi mantida na região viscoelástica linear (LVR) para os testes dinâmicos de varredura de frequência. Os testes de taxa de corte de estado estável monitoraram a viscosidade aparente (η) sob rotação constante da geometria do cone. O muco gr foi submetido a etapas de estresse incremental e viscosidade aparente (η, Pa.s) foi monitorado para taxa de corte variada (ý, 1/s).
O protocolo apresentado neste artigo trata o muco GR como um material estruturado complexo de viscoelasticidade desconhecida com uma certa faixa de resposta viscoelástica linear. O muco de peixe foi extraído das RRs da carpa prateada durante uma expedição de pesca no riacho Hart no rio Missouri pela professora L. Patricia Hernandez (Departamento de Ciências Biológicas da Universidade George Washington) 1,2,36.  Uma matriz de GRs dentro da boca de uma carpa prateada é mostrada na Figura 5A e um desenho esquemático é apresentado na Figura 5B. Um GR excised é mostrado na Figura 5C.  A extração de muco de GRs da carpa prateada é apresentada como exemplo nos desenhos esquemáticos, Figura 5D, E. Todos os testes de reômetro foram realizados sob uma temperatura constante e controlada de 22 ± 0,002 °C, temperatura registrada no local de pesca1,2,36.  Cada amostra de muco foi testada três vezes com o reômetro, e os resultados médios são apresentados juntamente com as barras de erro estatístico.

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;Materials&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kim Wipes</td><td>VWR</td><td>470224-038</td><td>To clean Sample from plate</td></tr><tr><td>Gloves</td><td>VWR</td><td>89428-750</td><td>To prevent contamination of sample</td></tr><tr><td>Pipette</td><td>VWR</td><td>89079-974</td><td>To transport sample from vial to rheometer</td></tr><tr><td>Pipette Tips</td><td>Thermo Scientific</td><td>72830-042</td><td>To transport sample from vial to rheometer</td></tr><tr><td>Shaker</td><td>VWR</td><td>89032-094</td><td>To homogenously mix sample of mucus</td></tr><tr><td>Vials</td><td>VWR</td><td>66008-710</td><td>Contains measured sample volumes</td></tr><tr><td>Weigh Scale</td><td>Ohaus</td><td>Scout &amp;ndash;SPX Balances</td><td>To weigh mass of mucus samples</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Chemical Reagents&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>De-Ionized Water (H20)</td><td>-</td><td>-</td><td>Liquid</td></tr><tr><td>Sterile 70% Isopropanol (C3H8O)</td><td>VWR</td><td>89108-162</td><td>Liquid</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;GR Mucus&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>100 mg/mL concentration, 2mL</td><td>-</td><td>-</td><td>Viscoelastic Material</td></tr><tr><td>400 mg/mL concentration, 1mL</td><td>-</td><td>-</td><td>Viscoelastic Material</td></tr><tr><td>200 mg/mL concentration, 1mL</td><td>-</td><td>-</td><td>Viscoelastic Material</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Software&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MATLAB</td><td>Mathworks</td><td>R2017a</td><td>Data analysis, post-processing and graphical representation</td></tr><tr><td>Trios</td><td>TA Instruments</td><td>v4.5.042498</td><td>Rheometer instrument control and analysis software</td></tr></tbody></table>

macro-rheology characterization of gill raker mucus in the silver carp, hypophthalmichthys molitrix

A carpa prateada, Hypophthalmichthys molitrix,é um peixe alimentador de filtros plâncido invasivo que infestava as vias navegáveis naturais da bacia do alto rio Mississippi devido ao seu mecanismo de alimentação de filtro altamente eficiente. Os órgãos característicos chamados gill rakers (GRs), encontrados em muitos desses alimentadores de filtros, facilitam a filtragem eficiente de partículas alimentares como fitoplâncton que são de alguns mícrons de tamanho.
A motivação para investigar a reologia do muco GR decorre do nosso desejo de entender seu papel em auxiliar o processo de alimentação do filtro na carpa prateada. O fluido rico em muco, em um estado "espesso e pegajoso", pode facilitar a adesão de partículas alimentares. A permeação e o transporte através da membrana GR são facilitados pela ação de forças externas de tesoura que induzem taxas variadas de tensão de tesoura. Portanto, a reologia da muco pode fornecer uma pista vital para a tremenda natureza supercompetitante da carpa prateada dentro da piscina de peixes de alimentação de filtros. Com base nisso, foi postulado que o muco GR pode fornecer uma função adesiva às partículas alimentares e atuar como um veículo de transporte para auxiliar no processo de alimentação do filtro.
O principal objetivo do protocolo é determinar o estresse de rendimento do muco, atribuído ao estresse mínimo de cisalhamento necessário para iniciar o fluxo no qual a deformação plástica irreversível é observada pela primeira vez através de um material viscoelástico estruturado. Assim, as propriedades reológicas do muco GR, ou seja, viscosidade, armazenamento e moduli de perda, foram investigadas por sua natureza não newtoniana, de corte-afinamento usando um reômetro rotacional.
Um protocolo apresentado aqui é empregado para analisar as propriedades reológicas do muco extraído dos rakers de uma carpa prateada, pescada na localização de Hart Creek do rio Missouri. O protocolo visa desenvolver uma estratégia eficaz para testes reológicos e caracterização material do muco considerado um material viscoelástico estruturado.

Nesta seção, apresentamos os resultados dos experimentos em muco GR utilizando um reômetro rotacional com geometria de cone (40 mm de diâmetro, 1° 0' 11'') e uma placa peltier. Os experimentos ajudaram a caracterizar o comportamento não newtoniano, desbaste do muco GR e o estresse aparente de rendimento representando a transição do muco de um material semelhante a gel para um material semelhante a um fluido. Os resultados representativos envolvem descrições quantitativas de limites de baixo torque e efeitos sec...

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Macro-Rheology Characterization of Gill Raker Mucus in the Silver Carp, Hypophthalmichthys molitrix

Este protocolo apresenta um método para realizar a caracterização da reologia do muco que reside em rakers de brânquias (GRs) da carpa prateada. Características viscoelásticas do GR-muco, obtidas pela medição da viscosidade, armazenamento e moduli de perda, são avaliadas pelo estresse de rendimento aparente para entender o mecanismo de alimentação do filtro em RGs.

Caracterização macro-reologia de Gill Raker Mucus na Carpa de Prata, Hipophthalmichthys molitrix

The silver carp, Hypophthalmichthys molitrix, is an invasive planktivorous filter feeder fish that infested the natural waterways of the upper Mississippi ...

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Research

JoVE Journal

Engineering

Macro-Rheology Characterization of Gill Raker Mucus in the Silver Carp, Hypophthalmichthys molitrix

3.0K visualizações.  The George Washington University. Este protocolo apresenta um método para realizar a caracterização da reologia do muco que reside em rakers de brânquias (GRs) da carpa prateada. Características viscoelásticas do GR-muco, obtidas pela medição da viscosidade, armazenamento e moduli de perda, são avaliadas pelo estresse de rendimento aparente para entender o mecanismo de alimentação do filtro em RGs.

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A Time Differential Staining Technique Coupled with Full Bilateral Gill Denervation to Study Ionocytes in Fish

Branchial ionocytes (ICs) are the functional units for ionic regulation in fish. In adults, they are found on the filamental and lamellar epithelia of the gill where they transport ions such as Na+, Cl- and Ca2+ via a variety of ion channels, pumps and exchangers. The teleost gill is extrinsically innervated by the facial (VI), glossopharyngeal (IX) and vagus (X) nerves. The IX and X nerves are also the extrinsic source of branchial IC innervation. Here, two techniques used to study the innervation, proliferation and distribution of ICs are described: a time differential staining technique and a full bilateral gill denervation technique. Briefly, goldfish are exposed to a vital mitochondrion-specific dye (e.g., MitoTracker Red) which labels (red fluorescence) pre-existing ICs. Fish were either allowed to recover for 3 - 5 days or immediately underwent a full bilateral gill denervation. After 3 - 5 days of recovery, the gills are harvested and fixed for immunohistochemistry. The tissue is then stained with an &#945;-5 primary antibody (targets Na+/K+ ATPase containing cells) in conjunction with a secondary antibody that labels all (both new and pre-existing) ICs green. Using confocal imaging, it was demonstrated that pre-existing ICs appear yellow (labelled with both a viable mitochondrion-specific dye and &#945;-5) and new ICs appear green (labelled with &#945;-5 only). Both techniques used in tandem can be applied to study the innervation, proliferation and distribution of ICs on the gill filament when fish are exposed to environmental challenges.

This manuscript describes a protocol to track the re-distribution of branchial ionocytes and their innervation using a time differential staining technique coupled with full bilateral gill denervation.

A técnica de coloração diferencial Tempo Juntamente com completa Bilateral Gill denervação para Estudar Ionocytes no Peixe

Branchial ionocytes (ICs) are the functional units for ionic regulation in fish. In adults, they are found on the filamental and lamellar epithelia of the ...

Biologia do Desenvolvimento

VacuSIP, an Improved InEx Method for In Situ Measurement of Particulate and Dissolved Compounds Processed by Active Suspension Feeders

Benthic suspension feeders play essential roles in the functioning of marine ecosystems. By filtering large volumes of water, removing plankton and detritus, and excreting particulate and dissolved compounds, they serve as important agents for benthic-pelagic coupling. Accurately measuring the compounds removed and excreted by suspension feeders (such as sponges, ascidians, polychaetes, bivalves) is crucial for the study of their physiology, metabolism, and feeding ecology, and is fundamental to determine the ecological relevance of the nutrient fluxes mediated by these organisms. However, the assessment of the rate by which suspension feeders process particulate and dissolved compounds in nature is restricted by the limitations of the currently available methodologies. Our goal was to develop a simple, reliable, and non-intrusive method that would allow clean and controlled water sampling from a specific point, such as the excurrent aperture of benthic suspension feeders, in situ. Our method allows simultaneous sampling of inhaled and exhaled water of the studied organism by using minute tubes installed on a custom-built manipulator device and carefully positioned inside the exhalant orifice of the sampled organism. Piercing a septum on the collecting vessel with a syringe needle attached to the distal end of each tube allows the external pressure to slowly force the sampled water into the vessel through the sampling tube. The slow and controlled sampling rate allows integrating the inherent patchiness in the water while ensuring contamination free sampling. We provide recommendations for the most suitable filtering devices, collection vessel, and storing procedures for the analyses of different particulate and dissolved compounds. The VacuSIP system offers a reliable method for the quantification of undisturbed suspension feeder metabolism in natural conditions that is cheap and easy to learn and apply to assess the physiology and functional role of filter feeders in different ecosystems.

VacuSIP, an Improved InEx Method for In Situ Measurement of Particulate and Dissolved Compounds Processed by Active Suspension Feeders

We introduce the VacuSIP, a simple, non-intrusive, and reliable method for clean and accurate point sampling of water. The system was developed and evaluated for the simultaneous collection of the water inhaled and exhaled by benthic suspension feeders in situ, to cleanly measure removal and excretion of particulate and dissolved compounds.

VacuSIP, um método melhorado para Inex<em&gt; In Situ</em&gt; Medição de partículas e dissolvidos compostos Processado por alimentadores de suspensão ativa

Benthic suspension feeders play essential roles in the functioning of marine ecosystems. By filtering large volumes of water, removing plankton and ...

Ambiente

Salinity-dependent Toxicity Assay of Silver Nanocolloids Using Medaka Eggs

Salinity is an important characteristic of the aquatic environment. For aquatic organisms it defines the habitats of freshwater, brackish water, and seawater. Tests of the toxicity of chemicals and assessments of their ecological risks to aquatic organisms are frequently performed in freshwater, but the toxicity of chemicals to aquatic organisms depends on pH, temperature, and salinity. There is no method, however, for testing the salinity dependence of toxicity to aquatic organisms. Here, we used medaka (Oryzias latipes) because they can adapt to freshwater, brackish water, and seawater. Different concentrations of embryo-rearing medium (ERM) (1x, 5x, 10x, 15x, 20x, and 30x) were employed to test the toxicity of silver nanocolloidal particles (SNCs) to medaka eggs (1x ERM and 30x ERM have osmotic pressures equivalent to freshwater and seawater, respectively). In six-well plastic plates, 15 medaka eggs in triplicate were exposed to SNCs at 10 mg/L&#8722;1 in different concentrations of ERM at pH 7 and 25 &#176;C in the dark.
We used a dissecting microscope and a micrometer to measure heart rate per 15 sec and eye diameter on day 6 and full body length of the larvae on hatching day (section 4). The embryos were observed until hatching or day 14; we then counted the hatching rate every day for 14 days (section 4). To see silver accumulation in embryos, we used inductively coupled plasma mass spectrometry to measure the silver concentration of test solutions (section 5) and dechorionated embryos (section 6).The toxicity of the SNCs to medaka embryos obviously increased with increasing salinity. This new method allows us to test the toxicity of chemicals in different salinities.

Embryonic stages are the most susceptible to xenobiotics. Although chemical toxicity depends on salinity, no method exists to test the salinity dependence of toxicity to aquatic organisms. Here, we describe a new and high-throughput method for determining the salinity dependence of toxicity to aquatic embryos.

dependente da salinidade toxicidade Ensaio de prata nanocolóides Usando Medaka Eggs

Salinity is an important characteristic of the aquatic environment. For aquatic organisms it defines the habitats of freshwater, brackish water, and ...

Challenges in Rheological Characterization of Highly Concentrated Suspensions &#8212; A Case Study for Screen-printing Silver Pastes

A comprehensive rheological characterization of highly concentrated suspensions or pastes is mandatory for a targeted product development meeting the manifold requirements during processing and application of such complex fluids. In this investigation, measuring protocols for a conclusive assessment of different process relevant rheological parameters have been evaluated. This includes the determination of yield stress, viscosity, wall slip velocity, structural recovery after large deformation and elongation at break as well as tensile force during filament stretching.
The importance of concomitant video recordings during parallel-plate rotational rheometry for a significant determination of rheological quantities is demonstrated. The deformation profile and flow field at the sample edge can be determined using appropriate markers. Thus, measurement parameter settings and plate roughness values can be identified for which yield stress and viscosity measurements are possible. Slip velocity can be measured directly and measuring conditions at which plug flow, shear banding or sample spillover occur can be identified clearly. 
Video recordings further confirm that the change in shear moduli observed during three stage oscillatory shear tests with small deformation amplitude in stage I and III but large oscillation amplitude in stage II can be directly attributed to structural break down and recovery. For the pastes investigated here, the degree of irreversible, shear-induced structural change increases with increasing deformation amplitude in stage II until a saturation is reached at deformations corresponding to the crossover of G' and G'', but the irreversible damage is independent of the duration of large amplitude shear. 
A capillary breakup elongational rheometer and a tensile tester have been used to characterize deformation and breakup behavior of highly filled pastes in uniaxial elongation. Significant differences were observed in all experiments described above for two commercial screen-printing silver pastes used for front side metallization of Si-solar cells.

A protocol for a robust and application relevant rheological characterization of highly concentrated suspensions is presented. Silver pastes used for screen-printing application in solar cell production are employed as model systems.

Desafios na reológico Caracterização de suspensões altamente concentrado - um estudo de caso para-impressão da tela de prata Cola

A comprehensive rheological characterization of highly concentrated suspensions or pastes is mandatory for a targeted product development meeting the ...

Engenharia

Characterization Of Multi-layered Fish Scales (Atractosteus spatula) Using Nanoindentation, X-ray CT, FTIR, and SEM

The hierarchical architecture of protective biological materials such as mineralized fish scales, gastropod shells, ram&#8217;s horn, antlers, and turtle shells provides unique design principles with potentials for guiding the design of protective materials and systems in the future. Understanding the structure-property relationships for these material systems at the microscale and nanoscale where failure initiates is essential. Currently, experimental techniques such as nanoindentation, X-ray CT, and SEM provide researchers with a way to correlate the mechanical behavior with hierarchical microstructures of these material systems1-6. However, a well-defined standard procedure for specimen preparation of mineralized biomaterials is not currently available. In this study, the methods for probing spatially correlated chemical, structural, and mechanical properties of the multilayered scale of A. spatula using nanoindentation, FTIR, SEM, with energy-dispersive X-ray (EDX) microanalysis, and X-ray CT are presented.

Characterization Of Multi-layered Fish Scales Atractosteus spatula Using Nanoindentation, X-ray CT, FTIR, and SEM

This paper presents the methods used for probing spatially correlated chemical, structural, and mechanical properties of the multilayered scale of Atractosteus spatula (A. spatula) using nanoindentation, Fourier transform infrared (FTIR) spectroscopy, scanning electron microscopy (SEM), and X-ray computed tomography (X-ray CT). The experimental results have been used to investigate the design principles of protective biological materials.

Caracterização de escamas de peixe multi-camadas (<em&gt; Atractosteus espátula</em&gt;) Usando Nanoindentação, X-ray CT, FTIR, e SEM

The hierarchical architecture of protective biological materials such as mineralized fish scales, gastropod shells, ram&#8217;s horn, antlers, and turtle ...

Bioengenharia

Modeling the Size Spectrum for Macroinvertebrates and Fishes in Stream Ecosystems

The size spectrum is an inverse, allometric scaling relationship between average body mass (M) and the density (D) of individuals within an ecological community or food web. Importantly, the size spectrum assumes that individual size, rather than species&#8217; behavioral or life history characteristics, is the primary determinant of abundance within an ecosystem. Thus, unlike traditional allometric relationships that focus on species-level data (e.g., mean species&#8217; body size vs. population density), size spectra analyses are &#8216;ataxic&#8217; &#8211; individual specimens are identified only by their size, without consideration of taxonomic identity. Size spectra models are efficient representations of traditional, complex food webs and can be used in descriptive as well as predictive contexts (e.g., predicting responses of large consumers to changes in basal resources). Empirical studies from diverse aquatic ecosystems have also reported moderate to high levels of similarity in size spectra slopes, suggesting that common processes may regulate the abundances of small and large organisms in very different settings. This is a protocol to model the community-level size spectrum in wadable streams. The protocol consists of three main steps. First, collect quantitative benthic fish and invertebrate samples that can be used to estimate local densities. Second, standardize the fish and invertebrate data by converting all individuals to ataxic units (i.e., individuals identified by size, irrespective of taxonomic identity), and summing individuals within log2 size bins. Third, use linear regression to model the relationship between ataxic M and D estimates. Detailed instructions are provided herein to complete each of these steps, including custom software to facilitate D estimation and size spectra modeling.

This is a protocol to model the size spectrum (scaling relationship between individual mass and population density) for combined fish and invertebrate data from wadable streams and rivers. Methods include: field techniques to collect quantitative fish and invertebrate samples; lab methods to standardize the field data; and statistical data analysis.

Modelagem do espectro de tamanho para macroinvertebrados e peixes em ecossistemas de fluxo

The size spectrum is an inverse, allometric scaling relationship between average body mass (M) and the density (D) of individuals within an ecological ...

Combining Microfluidics and Microrheology to Determine Rheological Properties of Soft Matter during Repeated Phase Transitions

The microstructure of soft matter directly impacts macroscopic rheological properties and can be changed by factors including colloidal rearrangement during previous phase changes and applied shear. To determine the extent of these changes, we have developed a microfluidic device that enables repeated phase transitions induced by exchange of the surrounding fluid and microrheological characterization while limiting shear on the sample. This technique is &#181;2rheology, the combination of microfluidics and microrheology. The microfluidic device is a two-layer design with symmetric inlet streams entering a sample chamber that traps the gel sample in place during fluid exchange. Suction can be applied far away from the sample chamber to pull fluids into the sample chamber. Material rheological properties are characterized using multiple particle tracking microrheology (MPT). In MPT, fluorescent probe particles are embedded into the material and the Brownian motion of the probes is recorded using video microscopy. The movement of the particles is tracked and the mean-squared displacement (MSD) is calculated. The MSD is related to macroscopic rheological properties, using the Generalized Stokes-Einstein Relation. The phase of the material is identified by comparison to the critical relaxation exponent, determined using time-cure superposition. Measurements of a fibrous colloidal gel illustrate the utility of the technique. This gel has a delicate structure that can be irreversibly changed when shear is applied. &#181;2rheology data shows that the material repeatedly equilibrates to the same rheological properties after each phase transition, indicating that phase transitions do not play a role in microstructural changes. To determine the role of shear, samples can be sheared prior to injection into our microfluidic device. &#181;2rheology is a widely applicable technique for the characterization of soft matter enabling the determination of rheological properties of delicate microstructures in a single sample during phase transitions in response to repeated changes in the surrounding environmental conditions.

We demonstrate the fabrication and use of a microfluidic device that enables multiple particle tracking microrheology measurements to study the rheological effects of repeated phase transitions on soft matter.

Combinando microfluídica e Microrheology para determinar as propriedades reológicas de matéria mole durante as transições de fase repetidas

The microstructure of soft matter directly impacts macroscopic rheological properties and can be changed by factors including colloidal rearrangement ...

Automatic Image Processing to Determine the Community Size Structure of Riverine Macroinvertebrates

Body size is an important functional trait that can be used as a bioindicator to assess the impacts of perturbations in natural communities. Community size structure responds to biotic and abiotic gradients, including anthropogenic perturbations across taxa and ecosystems. However, the manual measurement of small-bodied organisms such as benthic macroinvertebrates (e.g., &gt;500 &#181;m to a few centimeters long) is time-consuming. To expedite the estimation of community size structure, here, we developed a protocol to semi-automatically measure the individual body size of preserved river macroinvertebrates, which are one of the most commonly used bioindicators for assessing the ecological status of freshwater ecosystems. This protocol is adapted from an existing methodology developed to scan marine mesozooplankton with a scanning system designed for water samples. The protocol consists of three main steps: (1) scanning subsamples (fine and coarse sample size fractions) of river macroinvertebrates and processing the digitized images to individualize each detected object in each image; (2) creating, evaluating, and validating a learning set through artificial intelligence to semi-automatically separate the individual images of macroinvertebrates from detritus and artifacts in the scanned samples; and (3) depicting the size structure of the macroinvertebrate communities. In addition to the protocol, this work includes the calibration results and enumerates several challenges and recommendations to adapt the procedure to macroinvertebrate samples and to consider for further improvements. Overall, the results support the use of the presented scanning system for the automatic body size measurement of river macroinvertebrates and suggest that the depiction of their size spectrum is a valuable tool for the rapid bioassessment of freshwater ecosystems.

The article is based on the creation of an adapted protocol to scan, detect, sort, and identify digitized objects corresponding to benthic river macroinvertebrates using a semi-automatic imaging procedure. This procedure allows the acquisition of the individual size distributions and size metrics of a macroinvertebrate community in about 1 h.

Processamento Automático de Imagem para Determinar a Estrutura do Tamanho da Comunidade de Macroinvertebrados Ribeirinhos

Body size is an important functional trait that can be used as a bioindicator to assess the impacts of perturbations in natural communities. Community ...

<meta charset="utf8"></head><body>Remoção de escamas de peixe-zebra para cultura e estudos de biologia óssea

In Vitro Culturing Technique for Studying Cellular Dynamics in Zebrafish Scales

Zebrafish scales offer a variety of advantages for use in standard laboratories for teaching and research purposes. Scales are easily collected without the need for euthanasia, regenerate within a couple of weeks, and are translucent and small, allowing them to be viewed using a standard microscope. Zebrafish scales are especially useful in educational environments, as they provide a unique opportunity for students to engage in hands-on learning experiences, particularly in understanding cellular dynamics and in vitro culturing methods. The main objective of this protocol is to describe a method for collecting and maintaining zebrafish scales in culture for use in a variety of biological studies using basic laboratory equipment. Additionally, the protocol details their use in understanding bone homeostasis by examining the activity of bone cells involved in bone resorption and deposition. It also includes additional protocols for general techniques, such as the visualization of nuclei and apoptotic cells. The in vitro culturing protocol produces reliable results with minimal reagents and equipment. This article discusses the benefits of using in vitro cultures of zebrafish scales to foster scientific inquiry and outlines the resources needed to support their integration into educational settings.

<meta charset="utf8"></head><body>Autor em destaque: Avançando na pesquisa da atividade das células ósseas com escamas de peixe-zebra

This protocol offers a method to study cellular dynamics using a simple in vitro culture technique. It provides an opportunity for zebrafish researchers and educators to study cellular processes, such as those related to bone homeostasis and basic cell biology, by visualizing fluorescent nuclei and apoptotic cells within the scales.

Técnica de cultivo in vitro para estudo da dinâmica celular em escamas de peixe-zebra

Zebrafish scales offer a variety of advantages for use in standard laboratories for teaching and research purposes. Scales are easily collected without ...

Caracterização macro-reologia de Gill Raker Mucus na Carpa de Prata, Hipophthalmichthys molitrix

Resumo

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A técnica de coloração diferencial Tempo Juntamente com completa Bilateral Gill denervação para Estudar Ionocytes no Peixe

VacuSIP, um método melhorado para Inex

dependente da salinidade toxicidade Ensaio de prata nanocolóides Usando Medaka Eggs

Desafios na reológico Caracterização de suspensões altamente concentrado - um estudo de caso para-impressão da tela de prata Cola

Caracterização de escamas de peixe multi-camadas (

Modelagem do espectro de tamanho para macroinvertebrados e peixes em ecossistemas de fluxo

Combinando microfluídica e Microrheology para determinar as propriedades reológicas de matéria mole durante as transições de fase repetidas

Processamento Automático de Imagem para Determinar a Estrutura do Tamanho da Comunidade de Macroinvertebrados Ribeirinhos

Técnica de cultivo in vitro para estudo da dinâmica celular em escamas de peixe-zebra

Técnica de cultivo in vitro para estudo da dinâmica celular em escamas de peixe-zebra