JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Метод количественной оценки хемотаксического ответа Caenorhabditis Элеганс Описан. Хемотаксическими индекс (СИ) был использован как способ точно оценить реакцию червей определенные цели, а также служить в качестве платформы для сравнения между штаммами и соединений, представляющих интерес.

Аннотация

Многие организмы используют хемотаксисе искать источники пищи, избегать вредных веществ, а также найти партнеров. Caenorhabditis Элеганс имеет впечатляющие поведения хемотаксиса.

Помещение за тестирование реакции червей одоранта, чтобы разместить их в районе, и наблюдать за движением вызвало в ответ на одоранта. Даже с учетом многих доступных анализов, оптимизация червь местонахождение относительно контрольных и испытательных площадок, при сведении к минимуму взаимодействие червей друг с другом, при сохранении значительных размеров образец остается незавершенное 1-10. Описанный здесь метод направлен на решение этих вопросов, изменив анализа разработанных Баргман и соавт. 1. Чашку Петри разделена на четыре квадранта, два противоположных квадрантах с пометкой "Тест" и два обозначены "Контроль". Обезболивающий размещается во всех исследуемых и контрольных сайтов. Черви помещаются в центре пластины с Circlэлектронной отмечены вокруг начала координат, чтобы неподвижные черви будут игнорироваться. Используя четырехквадрантные система, а не один или два 2 +1 исключает предвзятость в движение червей, так как они находятся на одинаковом расстоянии от опытных и контрольных образцов, независимо от того, с какой стороны от происхождения они начали. Это обходит проблему червей вынуждена путешествовать через кластер других червей, чтобы ответить на одоранта, которые могут задержать червей или заставить их принять более кружным путем, что дает неверное толкование их намеченного пути. Этот метод также показывает практические преимущества, имеющие больший размер выборки и позволяет исследователю для запуска анализа без присмотра и забить червей раз за отведенное время истекло.

Введение

Уорд впервые разработана хемотаксиса в 1973 году 5, и с тех пор она имела далеко идущие приложений. Нейробиологии одно поле, что выиграл от использованием разнообразных хемотаксиса. Обонятельная адаптация, простой формы обучения и памяти, была продемонстрирована в C. Элеганс использованием хемотаксиса 6. Они также показано, что C. Элеганс этанола может развиваться толерантность результат, который не только демонстрирует поведенческую пластичность червей, но это также показывает, что черви могут быть очень полезны в изучении алкогольной зависимости у людей 3. Анализы даже были разработаны, чтобы продемонстрировать способность C. Элеганс для хранения краткосрочной и долгосрочной памяти, показав, что ассоциации сделаны червей между хемоаттрактанты и продукты питания (OP50) 7. Кроме того, учитывая обширную в настоящее время информация о C. Элеганс генома, chemotaxiс поведением C. Элеганс была изменена много раз путем индукции мутаций 1,8. Это позволяет много интересных возможностей техники, таких как развитие C. Элеганс как биологическая очистка инструмента. Таким образом, с момента первоначального развития анализа хемотаксиса в 1973 году, она была изменена и часто используется для выяснения тайн в различных дисциплинах.

Некоторые анализы направленные выявить конкретные пути следования червей к цели. Прототипом анализ такого рода был разработан Ward 5. Три черви были размещены на расплавленный агар в течение 15 мин. Их движения были прослежены отпечаток они оставили на их пути от периферии пластины вверх градиента аттрактанта в центре пластины. Все червей на пластине были задержаны с использованием хлороформа в конце каждого испытания. Один потомок этого метода помещен одного червя в середине пластины с аттрактант и контрольт равными и противоположными расстояние от начала координат 2.

Pierce-Shimomura соавт. разработали анализ наблюдать точный характер движения, участвующих в хемотаксис 9. Индивидуальные червей помещали в 9 см чашки Петри, содержащие либо единой концентрации аттрактанта или радиальную форму градиент, что привело к источнику аттрактанта. Компьютерной программы, которая признала червь был использован для записи наблюдаемого поведения. Видеокамера прикреплена к микроскопу работал совместно с этапом для регулировки чашку Петри автоматически анализа управлял обеспечить червь оставались в поле зрения. Исходя из этого, более подробная информация была обнаружена относительно причины пируэты отображается C. Элеганс.

Другие анализы, более похожий на тот, описанный здесь, испытаны реакции большая популяция червей испытуемых соединений. Два квадранта хемотаксиса былииспользуются для изучения роли, которую различные нейроны, рецепторы, и молекулы передачи сигнала, подаваемого при C. Элеганс подвергают воздействию различных соединений 1. В период 20-50 промытого червей были помещены вблизи центра пластины с аттрактант и контроль на полярных концах вместе с анестетиком, азид натрия (NaN 3). Через 60 мин хемотаксический индекс со значениями от -1,0 до +1,0 был сгенерирован на основе разницы между количеством червей были прикреплены к аттрактант или управления. Аналогичный показатель хемотаксическими был использован в анализе сообщается в этой статье, хотя ранее анализа не удалось строго оценить неподвижные червей. Этот анализ был затем далее применительно к тестирования эффектов нейронов абляции на хемотаксис.

Другой вариант вышеупомянутого Анализ проводили где 100-200 червей были помещены в центр пластины, содержащей четыре квадранта 3. Квадранта или содержатся в тесте иликонтрольного вещества. Как и в предыдущих анализах, черви не могли двигаться под действием азида натрия, прежде чем забил. Аналогичный способ описан здесь как способ оценки отклика С. Элеганс различных соединений. Тем не менее, ниже метод имеет дополнительное преимущество только оценки червей, которые прошли порог расстояния, отделяющего от мобильного неподвижными червей.

Другие анализы включили аналогичных руководящих принципов для игнорирования неподвижными червей. Frøkjær-Йенсена и др.. разработали универсальный анализа, который может быть использован для тестирования как энергозависимые, так и водорастворимые соединения 10. Чашку Петри была разделена на четыре квадранта. Верхний и нижний квадранты не содержит растворителей. Левом квадранте содержал воду, а также право содержащихся аттрактанта. При тестировании летучих одорантов, аналит был помещен на крышку чашки, в течение надлежащего квадранте, тогда как водорастворимые соединения помещали непосредственно на агаR.

Методы существующей в настоящее время для оценки хемотаксиса ответ С. Элеганс постоянно совершенствуются для оптимизации их простоты использования, эффективности и точности. Таким образом, в то время как анализ, описанный здесь, имеет возможность оценки наибольшего количества червей (максимальная пропускная способность:. 250 черви / час на тарелку, немного больше, чем пропускная способность продемонстрировано Ли и др. 3); реальную силу этого метода сжатый кульминацией многих из атрибутов ранее анализа (табл. 1).

протокол

1. Подготовка / стиральная черви

  1. Синхронизация червей молодых взрослых 11.
  2. Пипетки 2 мл базальной S на 5 см Хемотаксис тарелку поставил червей, которые только что очистили газон OP50 Е. палочки. Наклоните пластины мере необходимости для обеспечения червей промывают с поверхности пластины в буфер.
  3. Внесите 1 мл червя-S базальной решение в микроцентрифужную трубки.
  4. Центрифуга в течение 10 сек использованием PicoFuge при 6600 оборотах в минуту.
  5. Аспирируйте базальной S, оставляя осадок червей нетронутыми.
  6. Добавьте 1 мл раствора базальной S в микроцентрифужных трубки, инвертировать несколько раз мыть червей.
  7. Повторите шаги 1,4 до 1,6 еще три раза.
  8. Центрифуга в течение 10 сек пятый раз, на этот раз аспирации супернатант до конечного объема прибл. 100 мкл.
  9. Внесите 2 мкл червей на NGM пластины чтобы у пассажиров было от 50 до 250 червей в каждом 2 мкл образца. Регулироватьконцентрация червей в базальных S мере необходимости ресуспендированием червей в меньшем или большем объеме базальной S.
  10. Используйте червей в анализе сразу после мытья червей на срок до 1 часа.

2. Подготовка тестовых планшетов

  1. Маркировка нижней пластине 5 см, разделите блюдо на 4 равных квадранта. Агар хемотаксиса или NGM могут быть использованы. Минимум 3 испытания требуются в генетическое напряжение проходит испытания.
  2. Отметить окружности радиусом 0,5 см вокруг начала координат (рис. 1).
  3. Отметьте точки в каждом квадранте либо с "T" для "Test" или "C" на "Управление", гарантируя, что сайты находятся на одинаковом расстоянии от начала координат и друг друга. Точек должно быть не менее 2 см от начала координат. Отметить верхний левый и нижний правый квадранта в качестве тест-квадранта и в верхнем правом и нижнем левом квадрантах в качестве контроля (рис. 1).

3. Проведения анализа

  1. Смешать исследуемого раствора путем объединения равных объемах тестируемого соединения и 0,5 М азид (анестезии, чтобы арестовать червей при достижении квадрант). Смешать контрольного раствора путем объединения растворитель, используемый для разбавления тестируемого соединения с 0,5 М азида.
  2. Пипетка 2 мкл червь раствор (полученный в 1.8) из осадка на происхождение (где пересекаются две линии).
  3. Сразу же после пипетки 2 мкл испытуемого раствора на две "Т" сайтов. Кроме того, пипетки такое же количество контрольного раствора на две "С" сайтов.
  4. Как только червь и одоранта капли были поглощены в агар, заменить крышки и инвертировать пластин.
  5. Через 60 мин поместить червей в 4 ° C инкубатора. Только снимите пластину из инкубатора, когда он может быть подсчитаны. Оставив черви при комнатной температуре может позволить им мобилизовать снова.
  6. Запишите количество червей в каждом квадранте, что полностью пересек внутренний контурLe.
  7. Повторите этапы 3,2 до 3,6 использованием контрольного раствора в обеих испытуемых и контрольных квадрантах. Это будет служить в качестве контрольной пластины. Три таких пластин должны быть сделаны и работают в качестве надлежащего контроля.

4. Интерпретируя результаты / определения индекса хемотаксиса

  1. Расчет индекса хемотаксиса с помощью уравнения 1. Это приведет к хемотаксическими индекса от -1,0 до +1,0.

(1)

Индекса хемотаксиса = (# Черви в обоих тестовых Квадранты - # Черви в контрольной Квадранты) / (# Всего Червей забил)

Оценка 1,0 указывает максимальное привлечение к цели и представляет 100% от червей прибывающих в квадрантах содержащие химические цели. Индекс -1,0 свидетельствует о максимальной отталкивания. Подобные методы анализа уже были использованы 3 (Таблица 1).

  1. Сообщить о средней Chemotaxiс индекса (CI) и стандартной ошибки среднего (SEM). Выполните Стьюдента тест сравнении данных испытуемых и контрольных пластин.

Результаты

Сравнение дикого типа (N2) С. Элеганс в УСО-10 (KY10) мутанта.

Мы использовали диацетил, известный C. Элеганс хемоаттрактант, сравнивать дикого типа червей, что и мутант, который не хватает рецепторов Диацетил 1,12. Для дикого типа (N2) червей хемотаксически?...

Обсуждение

Хемотаксиса, хотя контролируется комплексом нейронов и клеточные механизмы, может быть легко и объективно количественно с помощью хемотаксиса. Для получения наилучших результатов анализов, некоторые важные шаги должны быть приняты. Во-первых, постановка червей имеет важное значение ...

Раскрытие информации

Нам нечего раскрывать.

Благодарности

Мы благодарим естественных наук и факультет искусств и наук в Королевском университете для финансирования этой работы. Кроме того, мы благодарим Чин-Санг лабораторию для предоставления необходимых реагентов, оборудования и технической поддержки. Мы также благодарим QGEM 2011 году, особенно Тони Он за его вклад в дискуссию.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
S Basal (- cholesterol) [5.8 g NaCl; 1 M K phosphate buffer, pH 6.0; dH2O to 1 liter.] Autoclave
PicoFugeStratagene400552
MicroscopesLeica
DissectingLeica
P1000 PipetteGilson
P10 PipetteGilson
0.5 M Sodium Azide
Chemotaxis Agar [1.6% BBL-agar (Benton-Dickinson) or 2% Difco-agar. Autoclave. Add 5 mM potassium phosphate, pH 6.0; 1 mM CaCl2, 1 mM MgSO4]
Ethanol/Distilled Water
Test Compounds (eg. 0.5% diacetyl)
AgarBio-Rad166-0600
NH4ClAmrescoCA97062-046
MOPSVWRCA12001-120
NH4OHBDHCABDH8641-2
0.25% Tween 20Bio-Rad170-6531

Ссылки

  1. Bargmann, C. I., Hartwieg, E., Horvitz, H. R. Odorant-selective genes and neurons mediate olfaction in C. elegans. Cell. 74, 515-527 (1993).
  2. Bargmann, C. I., Horvitz, H. R. Chemosensory neurons with overlapping functions direct chemotaxis to multiple chemicals in C. elegans. Neuron. 7, 729-742 (1991).
  3. Lee, J., Jee, C., McIntire, S. L. Ethanol preference in C. elegans. Genes Brain Behav. 8, 578-585 (2009).
  4. Swierczek, N. A., Giles, A. C., Rankin, C. H., Kerr, R. A. High-throughput behavioral analysis in C. elegans. Nat. Methods. 8, 592-598 (2011).
  5. Ward, S. Chemotaxis by the nematode Caenorhabditis elegans: identification of attractants and analysis of the response by use of mutants. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 70, 817-821 (1973).
  6. Colbert, H. A., Bargmann, C. I. Odorant-specific adaptation pathways generate olfactory plasticity in C. elegans. Neuron. 14, 803-812 (1995).
  7. Kauffman, A., Parsons, L., Stein, G., Wills, A., Kaletsky, R., Murphy, C. C. elegans Positive Butanone Learning, Short-term, and Long-term Associative Memory Assays. J. Vis. Exp. (49), e2490 (2011).
  8. Troemel, E. R., Kimmel, B. E., Bargmann, C. I. Reprogramming chemotaxis responses: sensory neurons define olfactory preferences in C. elegans. Cell. 91, 161-169 (1997).
  9. Pierce-Shimomura, J. T., Morse, T. M., Lockery, S. R. The fundamental role of pirouettes in Caenorhabditis elegans chemotaxis. J Neurosci. 19, 9557-9569 (1999).
  10. Frokjaer-Jensen, C., Ailion, M., Lockery, S. R. Ammonium-acetate is sensed by gustatory and olfactory neurons in Caenorhabditis elegans. PLoS One. 3, e2467 (2008).
  11. Porta-de-la-Riva, M., Fontrodona, L., Villanueva, A., Cerón, J. Basic Caenorhabditis elegans Methods: Synchronization and Observation. J. Vis. Exp. (64), e4019 (2012).
  12. Sengupta, P., Bargmann, C. I. Cell fate specification and differentiation in the nervous system of Caenorhabditis elegans. Dev. Genet. 18, 73-80 (1996).
  13. Hart, A. C. Behavior. WormBook. , (1895).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

74CaenorhabditisC

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены