JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Целью данного исследования было формирование синтетического клеточной стенки растений ткани с помощью слой за слоем сборку nanocellulose волокон и изолированный лигнин, собранный из разбавленных водных суспензий. Методы измерения поверхности кристалла кварца и микроскопии атомно-силовых использовались для наблюдения за формирование нанокомпозита полимерного материала-полимера.

Аннотация

Древесные материалы состоят из клеточных стенок растений, которые содержат слоистую вторичной клеточной стенки, состоящей из структурных полимеров полисахаридов и лигнина. Слой за слоем (LBL) в сборе процесс, который зависит от сборки противоположно заряженных молекул из водных растворов был использован для создания автономных композитной пленки изолированных древесины полимеров лигнина и окисленного nanofibril целлюлозы (NFC). Чтобы облегчить сборку этих отрицательно заряженных полимеров, положительно заряженный полиэлектролит, поли (хлорид diallyldimethylammomium) (PDDA), был использован в качестве связующей слоя для создания этой упрощенной модели клеточной стенки. Слоистая процесс адсорбции изучали количественно с помощью кристалла кварца с контролем диссипации (QCM-D) и эллипсометрии. Результаты показали, что масса слоя / толщина в адсорбционном слое увеличен в зависимости от общего количества слоев. Поверхность покрытия из адсорбированных слоев изучали с атомно-силовой микроскопии (АСМ).Полный охват поверхности с лигнином во всех циклов осаждения был найден в системе, однако, покрытие поверхности по NFC увеличивается с числом слоев. Процесс адсорбции проводили в течение 250 циклов (500 бислоев) на ацетата целлюлозы (СА) подложки. Были получены прозрачные свободно стоящие LBL собраны нанокомпозитных пленок, когда Калифорния субстрат позже растворяют в ацетоне. Сканирующей электронной микроскопии (SEM) из разрушенных сечений показали слоистую структуру, а толщина в адсорбционном цикле (PDDA-Лигнин-PDDA-NC), по оценкам, 17 нм для двух различных типов лигнина, используемых в исследовании. Данные показывают, пленку с тщательно контролируемой архитектуры, где nanocellulose и лигнин пространственно нанесенного на наноуровне (а полимер-полимерных нанокомпозитов), аналогично тому, что наблюдается в нативной клеточной стенки.

Введение

Существует большой интерес для получения дополнительных химических веществ и топлива из биомассы, как углерод, поглощенный растениями в процессе фотосинтеза является частью текущей СО 2 цикла. Большинство поглощенного углерода (42-44%) в виде целлюлозы, полимер, состоящий из β 1-4-связанных единиц глюкопиранозы; когда гидролизован, глюкоза может быть использован в качестве основного реагента для ферментации в спирт топлива. Однако клеточной стенки архитектура древесных растений развивалась тысячелетиями, создающих материал, который устойчив к деградации природной среды 1. Эта стабильность переносится в промышленной переработке древесных материалов, таких как энергетических культур делает целлюлозу трудно получить доступ, изолировать, и пробой в глюкозу. Более пристальный взгляд на ультраструктуры вторичном клеточной стенки показывает, что она представляет собой полимер, нанокомпозит состоит из слоистых микрофибриллами паракристаллический целлюлозы, встроенных в аморфной матрице лигнина и подолуicelluloses 2-4. Продольно ориентированные микрофибрилл целлюлозы имеют диаметр приблизительно 2-5 нм, что агрегируются вместе с другими гетероатомов полисахаридов с образованием более крупных единиц фибрилл пучков 5. Фибрилл пучки встроен в лигнин-гемицеллюлозы комплекс, состоящий из аморфного полимера фенилпропанола единиц с некоторыми связи с другими гетероатомов, таких как полисахариды glucoronoxylan 4. Кроме того, эта структура далее организованы в слоях или пластин, на протяжении одревесневшего вторичной клеточной стенки 6-8. Ферменты, как целлюлазы, имеют очень трудное время с доступом целлюлозу в клеточной стенке, как это находится в его фибрилл форме и заливали в лигнина. Суть действительно делает биологического происхождения топлива и возобновляемые источники химического платформы на реальность заключается в разработке процессов, которые экономически позволяющие осахаривания целлюлозы в своей нативной форме.

Новые химические и визуализации технологии пособничество в стUdy из механизмов, участвующих в осахаривания 9,10 целлюлозы. Большая работа была направлена ​​на комбинационного конфокальной микроскопии 11 и атомно-силовой микроскопии 12 для изучения химического состава и морфологии клеточной стенки. Будучи в состоянии внимательно следить механизмы делигнификации и осахаривания является значительным шагом вперед, влияющих на преобразование целлюлозы в глюкозу. Осахаривание модельных поверхностей целлюлозы была проанализирована путем измерения ферментативной кинетики ставки с кристалла кварца с контролем диссипации (QCM-D) 13. Тем не менее, родные стены клеток, являются очень сложными, как указано выше, и это создает двусмысленность, как различные процессы преобразования изменить структуру клеточной стенки растений (молекулярной массы полимера, химических связей, пористости). Отдельно стоящие модели клеточной стенки веществ с известной структурного состава будет решить эту проблему и позволяют интегрировать образцов в состоянии дел искусства химических и томографовнг оборудование.

Существует нехватка моделей клеточной стенки и мало доступны могут быть классифицированы как смесей полимерных материалов и регенерируется целлюлозу или бактериальной целлюлозы 14, ферментативно полимеризованные лигнина-полисахарид композитов 15-17 или модели поверхности 18-21. Некоторые модели, которые начинают походить на клеточную стенку являются образцы, содержащие лигнин предшественники или аналогов полимеризованные ферментативно в присутствии целлюлозы в его микрофибриллярного форме. Однако эти материалы страдают от отсутствия организованной архитектуры слоя. Простой маршрут для создания нанокомпозитных материалов с организованной архитектуры является слой за слоем (LBL) метод сборки, на основе последовательного адсорбции полимеров или наночастиц с дополнительными сборов или функциональных групп с образованием организованных многослойных композиционных пленок 22-25. Отдельно стоящие гибридные нанокомпозиты из высокой прочностью, сделанные LBL осаждения полимера и паnoparticles, были сообщены Котов и др.. 26-30. Среди многих других приложений, LBL фильмы были также исследованы на предмет их потенциального использования в терапевтических доставки 31 клеточных мембран топливных 32,33, батарей 34 и лигноцеллюлозной поверхности волокна модификации 35-37. Последнее время интерес к наноразмерных целлюлозы на основе композиционных материалов привели к подготовке и характеристике LBL многослойных целлюлозных нанокристаллов (ЧПУ), подготовленных гидролиза серной кислоты целлюлозных волокон, и положительно заряженных полиэлектролитов 38-43. Подобные исследования также были проведены с нанокристаллов целлюлозы, полученных из морских tunicin и катионных полиэлектролитов 44, с ЧПУ и ксилоглюкан 45 и ЧПУ и хитозана 46. Lbl многослойный формирование карбоксилированный nanofibrillated целлюлозы (НКЦ), полученных высокого давления гомогенизации целлюлозных волокон с катионных полиэлектролитов также былучился 47-49. Препарат, свойства и применение систем ЧПУ и nanofibrillated целлюлозы были подробно рассмотрены 50-53.

Настоящее исследование предполагает изучение LBL техники в качестве потенциального пути, чтобы собрать разрозненные лигноцеллюлозных полимеры (например, nanocellulose и лигнина) в упорядоченном моды в качестве первого шага на пути к биомиметического лигноцеллюлозной композита с пластинчатой ​​структурой. Методика Lbl был выбран за его доброкачественных условий обработки, таких как, температуры окружающей среды, давления и воды в качестве растворителя, которые условия для естественного композита 54. В этом исследовании мы сообщаем о многослойной наращиванием материальных компонентов древесины, а именно целлюлозы микрофибриллами от тетраметилпиперидина 1-оксил (ТЭМП), перекисного окисления липидов целлюлозы и изолированной лигнина в свободно стоящих пластинчатых фильмов. Два различных лигнинов используются с различными методами экстракции, один технический лигнин из Organosolv варки, а другой лигнин, выделенный из шарового размола с меньшим изменением в процессе выделения. Эти соединения в сочетании с синтетическим полиэлектролита в этой первоначального исследования, чтобы продемонстрировать возможности создания стабильных свободно стоящие фильмы с архитектурой, аналогичной родной клеточной стенки.

протокол

1. Nanofibrillated Целлюлоза Подготовка 55

  1. Настройка 3 л трехгорлая колба 2 л деионизированной воды, подвесной мешалкой, и рН зонда.
  2. Добавить делигнификации крафт-целлюлозы, 88% яркости (20 г, 1% (вес / объем, сухой массе)), 2,2,6,6-тетраметилпиперидин 1-оксил (TEMPO) (0,313 г, 0,1 ммоль / г целлюлозы) и бромид натрия (NaBr, 2,0 г, 1 ммоль / г целлюлозы) в колбу.
    1. Смешайте волокнистую массу с верхней мешалкой, пока волокно не рассеивается и не агрегаты можно увидеть в реакции.
      Примечание: дисперсия может быть оказана помощь путем смешивания суспензии в воде перед добавлением целлюлозы к 3-литровую колбу.
  3. Инициирование окисления, медленно добавляя 12%-ный раствор гипохлорита натрия (NaClO, 51,4 мл, 5 ммоль на грамм целлюлозы) к реакционной смеси.
    Примечание: консистенции в течение всей реакции, используют шприцевой насос для доставки NaClO с Расход заливки 1,5 мл / мин.
  4. Заполните второй шприц шй раствор гидроксида натрия (NaOH, 0,5 М) и вручную метр щелочной раствор в колбу по каплям для поддержания рН при 10 ± 0,2.
  5. Монитор не изменения рН с течением времени и когда все доступные гидроксильные группы целлюлозы на окисляются рН больше не будет уменьшаться, а реакция завершена.
  6. Добавить избыток EtOH потреблять оставшиеся NaClO. Примерно 6 мл пробы 200 этанола будет потреблять все 100 ммоль оригинального NaClO.
  7. Фильтр и промывают окисленного волокна тщательно очищенной водой, чтобы удалить реагенты, пока рН не станет нейтральным. С помощью отжимной центрифугой или какой-либо фильтрации устройства, как воронке Бюхнера, чтобы восстановить волокна. не хранить волокна при 4 ° С до дальнейшего использования.
    Примечание: При завершении эксперимента волокно должно иметь содержание карбоновой кислоты, как определено титрованием кондуктометрического, от 1,0 до 1,5 ммоль на грамм волокна. Там должно быть небольшая разница в появлении волокна после TEMPO окисления.
  8. Создание 3% (вес / объем, сухой массе) суспензию темп окисляется целлюлозы и смесь в блендере до воюющих суспензия не становится вязким и лопасти начинают вращаться в воздухе из-за гелеобразования суспензии.
    Примечание: Более низкие концентрации не работают так же эффективно, чтобы фибрилляции целлюлозу.
    1. Развести смешанную суспензию до 0,1% (вес / объем) и продолжают смешивание до суспензия не станет прозрачным.

2. Слой за слоем осаждения пленок для QCM-D экспериментов

  1. Подготовьте следующие водные растворы и настройки каждого раствора 0,1 М NaOH до рН 10,5: водный буферный раствор (вода и NaOH); 0,5% (вес / объем) водного раствора хлорида polydiallyldimethylammonium (PDDA); и 0,01% (вес / объем) лигнин. Доводят рН 0,1% NFC суспензии до 8,0.
    Примечание: Значение рН для этих экспериментов была повышена, так как это было ранее показано, что лигнин адсорбирует в менее агрегированном состоянии в щелочном рН 56.
  2. Чистыйс золотым покрытием кристалл кварца следующих производителей рекомендации с использованием раствора база пираньи [Внимание] (3:01 концентрированный NH 4 OH: H 2 O 2 при 60 ° С) в течение 10 мин.
    1. Промойте кристаллы с очищенной водой, сушить в потоке N 2, и сразу же вставить в проточную ячейку кристалла кварца, чтобы избежать загрязнения из воздуха.
  3. Передать буфер через проточную ячейку для получения базового реакцию резонирующего кристалла воздействию жидкости.
    1. Нанесения слоя PDDA на кристалле кварца, подвергая кристалл кварца в раствор PDDA течение 5 мин.
    2. После 5 мин вернуться в буферный раствор.
      Примечание: Этот процесс на шаге 2,3 создает одну реакцию слой, где количество полимера, нанесенного может быть определено без эффекта вязкости раствора полимера.
    3. Повторите адсорбции других полимеров в следующей последовательности с буферным Rвставлены между каждым шагом: PDDA (+) (шаг 2.3.1); лигнин (-); PDDA (+); и NFC (-). Повторите 4 раза цикла внести 16 всего слои полимеров и наночастиц.

3. Слой за слоем осаждения пленок для АСМ и эллипсометрии экспериментов

  1. Клей круглый диск из слюды на предметное стекло микроскопа с использованием быстрый эпоксидный клей. После клеевых лечит, приложите кусок ленты на слюдяной диск. Очистите ленту от вызывая поверхность слюды расщеплять.
    1. Очистите кремниевую пластину с кислотой пираньи [Внимание] (3:01 H 2 SO 4: H 2 O 2) в течение 20 мин с последующим значительным ополаскивания в воде перед слой покрытия.
  2. С решения подготовлен в 2,1, окуните либо свежесколотую слюду, которая присоединена к предметное стекло или свежеочищенной кремниевой пластины в каждом решении следующей той же последовательности протокола, изложенной в 2.3.3.
    Примечание: Этот метод создаст слои роlymers на каждой из этих поверхностей, которые могут быть вставлены в АСМ или эллипсометре, соответственно.
  3. Изображение осажденные слои с атомно-силового микроскопа. С помощью прерывистого контактного режима и консолей с наконечниками 10 нм радиус кремния (пружины 42 Н / м) при сборе изображения образца. Установить размер сканирования как 2,5 х 2,5 мкм, точка сканирования как 512 и интегрального усиления 10 для сбора конкретных примеры изображений.
  4. Для измерения толщины слоев с АСМ высушенных LBL фильмов, используйте мягкую пластиковую пипетки и шрам линию по поверхности подготовленных LBL пленок на поверхности слюды.
  5. Депозит LBL пленки для измерения эллипсометрии на кремниевые пластины. Измерьте толщину сухой пленки с фазовым модулированного эллипсометра на длине волны 632,8 нм, используя многократное угол режиме падения. Вары углы между 85 ° и 65 ° на 1 ° интервалами.

4. Подготовка свободно стоящая LBL фильм

  1. Вырезать25,4 х 7,6 мм прямоугольник из ацетата целлюлозы (CA) фильм (DS 2.5), что является толстым 0,13 мм и прикрепить к автоматизированной рукояти.
    Примечание: Ацетат целлюлозы из DS 3,0 не растворим в ацетоне так DS 2,5 Предпочтительно, чтобы восстановить слоистых пленок.
  2. Заполните каждый 500-мл химический стакан с растворами PDDA, лигнина и nanocellulose согласно концентрации и рН на стадии 2.1.
    1. Заполните три дополнительных стаканы с водным буфером для использования в качестве промывочной раствора для каждого цикла осаждения.
    2. Программирование рукояти действовать в той же последовательности как сообщалось в 2.3.3.
      Примечание: Важно использовать другой промывочный раствор после каждого соответствующего раствора полимера, потому что в процессе слой за слоем, некоторые полимер, который не плотно связан с поверхностью будет десорбировать. Перекрестное загрязнение из промывных растворов быстро вызывает осаждение полиэлектролитных комплексов, которые могут адсорбировать как "дефекты" к поверхности пленки.
  3. Изменение решения вСтакан за 250 циклов периодически, как они начинают появляться облачно из-за коллоидных комплексов. Одним из вариантов является автоматизировать обновление решение с помощью перистальтического насоса для доставки свежий раствор или буфер к выполненный на заказ поливинилхлорид (ПВХ) контейнеров с входами и выходами.
    Примечание: перемешивается решения в контейнерах помочь улучшить диффузию полиэлектролитов на поверхность.
  4. Осторожно обрежьте края высушенного образца с ножницами подвергая края CA и поместить в крытый стеклянную чашку Петри, наполненную ацетоном, чтобы растворить ЦС.
    Примечание: Два фильма изолированы после этого эксперимента с фронта и задней стороны клиентов.
  5. Замачивание изолированных пленок в ацетоне в течение 24 ч и промыть пленок неоднократно ацетоном, чтобы максимизировать удаление остаточного CA.

Результаты

QCM-D Анализ структурированных Изготовление Вуди полимерной пленки

LBL адсорбции лигнина, NFC и PDDA контролировали в реальном времени с QCM-D в двух различных экспериментах с участием двух типов лигнинов. Этот метод анализа очень чувствительны, чтобы обнаружить изменения в част?...

Обсуждение

Изготовление Nanocellulose

Для изготовления nanocellulose успешное окисление волокна целлюлозы необходимо для легкому аритмией. Окисление управляется доступного гипохлорита натрия, который должен быть добавлен медленно в известных количествах в зависимости от количества целлюло?...

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего раскрывать.

Благодарности

Эта работа была поддержана, прежде всего, программы докторской ученого Института критической технологии и прикладных наук (ICTAS) в Технологическом университете Вирджинии, в Virginia Tech Высшей школы за поддержку устойчивого программу по нанотехнологиям, а также Соединенные Штаты Департамента сельского хозяйства, НИФА номер гранта 2010-65504-20429. Авторы также благодарят вклад Рик Caudill, Стивен Маккартни и В. Трэвис Церкви в этой работе.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Sulfate pulpWeyerhaeuserdonatedbrightness level of 88%
Organosolv ligninSigma Aldrich371017discontinued
Hardwood milled wood ligninsee reference in paper
Polydiallyldimethylammonium chlorideSigma Aldrich409022Mn = 7.2 x 104, Mw = 2.4 x 105
2,2,6,6-Tetramethylpiperidine 1-oxyl (TEMPO)Sigma Aldrich214000catalytic oxidation of primary alcohols to aldehydes with a purity of 98%, molecular weight is 156.25 g/mol
Sodium bromideSigma AldrichS4547purity ≥99.0%, molecular weight 102.89
Sodium hypochloriteSigma Aldrich425044reagent grade, available chlorine 10~15%, molecular weight 74.44 g/mol
Sodium hydroxideVWRBDH7221-40.5 N aqueous solution, density 1.02 g/ml, molecular weight 40 g/mol
Sodium hydroxideAcros OrganicsAC12419-00100.1 N aquesous solution, specific gravity 1.0 g/ml, molecular weight 40 g/mol
Ammonium hydroxideAcros OrganicsAC39003-002525% solution in water, pH 13.6, density 0.89, molecular weight 35.04 g/mol
Hydrogen peroxideFisher ScientificH325-10030.0~32.0% certified ACS, pH 3.3, density 1.11
Mica sheetsTED PellaNC9655733Pelco, grade V5, 10 x 40 mm, 23 mm T, minimum air and bubbles, very clean
Sulfuric acidFisher ScientificA300-21295.0~98.0 w/w%, certified ACS plus, molecular weight 98.08 g/mol
Cellulose acetateMcMaster Carr8564K44degree of substitution 2.5
EthanolDecon Laboratories04-355-223200 proof (100%), USP
[header]
AcetoneFisher ScientificA18-4purity ≥99.5%, certified ACS reagent grade, density 0.79 g/ml, molecular weight 58.08 g/mol
Syringe pumpHarvard Apparatus552226pump 22 infusion/withdraw with standard syringe holder, flow rate 0.002 μl/hr~55.1 ml/min
Mill-Q water purification systemEMD MilliporeD3-UVDirect-Q, UV, water conductivity 18.5 MΩ·cm with 20 L reservoir
pH meterMettler ToledoSeverMulti
BalanceMettler ToledoAB135-Saccuracy 0.1 mg
Atomic force microscopeAsylum ResearchMFP-3D, Olympic fluorescent microscope stage
EllipsometerBeaglehole Instruments
Fiber centrifugeunknownbasket style centrifuge
Waring blenderWaringCommercial
Ultrasonic processorSonicsSonics 750 W, sound enclosure
Quartz crystal microbalance with dissipation monitoring (QCM-D)Q-Sense Inc.E4measure fundamental frequency of 5 MHz, and monitor odd number overtones/harmonics from 3~13, use gold-coated piezoelectric quartz crystals
Automatted dipper armLynxmotion

Ссылки

  1. Fratzl, P., et al. On the role of interface polymers for the mechanics of natural polymeric composites. Phys. Chem. Chem. Phys. 6, 5575-5579 (2004).
  2. Terashima, N., Fukushima, K., He, L. F., Takabe, K. Forage cell wall structure and digestibity. American Society of Agronomy. , 247-270 (1993).
  3. Himmel, M. E., et al. Biomass Recalcitrance: Engineering Plants and Enzymes for Biofuels Production. Science. 315, 804-807 (2007).
  4. Terashima, N., et al. Nanostructural assembly of cellulose, hemicellulose, and lignin in the middle layer of secondary wall of ginkgo tracheid. J. Wood. Sci. 55, 409-416 (2009).
  5. Fahlén, J., Salmén, L. Pore and Matrix Distribution in the Fiber Wall Revealed by Atomic Force Microscopy and Image Analysis. Biomacromolecules. 6, 433-438 (2005).
  6. Baer, E., et al. Biological and synthetic hierarchical composites. Phys. Today. 45, 60-67 (1992).
  7. Tirrell, D. A., Aksay, I., Baer, E., Calvert, P. D., Cappello, J., Dimarzio, E. A., Evans, E. A., Fessler, J. Hierarchical structures in biology as a guide for new materials technology. National Academy of Sciences. , (1994).
  8. Fengel, D., Wegener, G. . Wood: Chemistry, Ultrastructure, Reactions. , (1984).
  9. Santa-Maria, M., Jeoh, T. Molecular-Scale Investigations of Cellulose Microstructure during Enzymatic Hydrolysis. Biomacromolecules. 11, 2000-2007 (2010).
  10. Saar, B. G., et al. Label-free, real-time monitoring of biomass processing with stimulated Raman scattering microscopy. Angew. Chem. Int. Edit. 49, 5476-5479 (2010).
  11. Schmidt, M., et al. Label-free in situ imaging of lignification in the cell wall of low lignin transgenic Populus trichocarpa. Planta. 230, 589-597 (2009).
  12. Ding, S. -. Y., Himmel, M. E. The maize primary cell wall microfibril: a new model derived from direct visualization. J. Agricul. Food Chem. 54, 597-606 (2006).
  13. Turon, X., et al. Enzymatic kinetics of cellulose hydrolysis: a QCM-D study. Langmuir. 24, 3880-3887 (2008).
  14. Dammströem, S., et al. On the interactions between cellulose and xylan, a biomimetic simulation of the hardwood cell wall. BioResources. 4, 3-14 (2009).
  15. Barakat, A., et al. Studies of xylan interactions and cross-linking to synthetic lignins formed by bulk and end-wise polymerization: a model study of lignin carbohydrate complex formation. Planta. 226, 267-281 (2007).
  16. Micic, M., et al. Study of the lignin model compound supramolecular structure by combination of near-field scanning optical microscopy and atomic force microscopy. Colloids Surf. B Biointerfaces. 34, 33-40 (2004).
  17. Li, Z., et al. Nanocomposites prepared by in situ enzymatic polymerization of phenol with TEMPO-oxidized nanocellulose. Cellulose. 17, 57-68 (2010).
  18. Gradwell, S. E., et al. Surface modification of cellulose fibers: towards wood composites by biomimetics. C. R. Biologies. 327, 945-953 (2004).
  19. Kaya, A., et al. Surface plasmon resonance studies of pullulan and pullulan cinnamate adsorption onto cellulose. Biomacromolecules. 10, 2451-2459 (2009).
  20. Gustafsson, E., et al. Direct adhesive measurements between wood biopolymer model surfaces. Biomacromolecules. 13, 3046-3053 (2012).
  21. Karabulut, E., Wagberg, L. Design and characterization of cellulose nanofibril-based freestanding films prepared by layer-by-layer deposition technique. Soft Matter. 7, 3467-3474 (2011).
  22. Decher, G., Hong, J. D. Buildup of ultrathin multilayer films by a self-assembly process: II. consecutive adsorption of anionic and cationic bipolar amphiphiles and polyelectrolytes on charged surfaces. Ber. Bunsen. Phys. Chem. 95, 1430-1434 (1991).
  23. Decher, G. Fuzzy nanoassemblies: toward layered polymeric multicomposites. Science. 277, 1232 (1997).
  24. Hammond, P. T. Form and function in multilayer assembly: new applications at the nanoscale. Adv. Mater. 16, 1271-1293 (2004).
  25. Decher, G., Schlenoff, J. B. . Multilayer thin films- sequential assembly of nanocomposite materials. , (2003).
  26. Mamedov, A. A., Kotov, N. A. Free-standing layer-by-layer assembled films of magnetite nanoparticles. Langmuir. 16, 5530-5533 (2000).
  27. Mamedov, A. A., et al. Molecular design of strong single-wall carbon nanotube/polyelectrolyte multilayer composites. Nat. Mater. 1, 257-257 (2002).
  28. Podsiadlo, P., et al. Fusion of seashell nacre and marine bioadhesive analogs: high-strength nanocomposite by layer-by-layer assembly of clay and L-3,4-dihydroxyphenylalanine polymer. Adv. Mater. 19, 949-955 (2007).
  29. Podsiadlo, P., et al. Ultrastrong and stiff layered polymer nanocomposites. Science. 318, 80-83 (2007).
  30. Podsiadlo, P., et al. Can nature's design be improved upon? High strength, transparent nacre-like nanocomposites with double network of sacrificial cross links. J. Phys. Chem. B. 112, 14359-14363 (2008).
  31. Becker, A. L., et al. Layer-by-layer-assembled capsules and films for therapeutic delivery. Small. 6 (17), (2010).
  32. Taylor, A. D., et al. Fuel cell membrane electrode assemblies fabricated by layer-by-layer electrostatic self-assembly techniques. Adv. Funct. Mater. 18, 3003-3009 (2008).
  33. Ashcraft, J. N., et al. Structure-property studies of highly conductive layer-by-layer assembled membranes for fuel cell PEM applications. J. Mater. Chem. 20, 6250-6257 (2010).
  34. Lee, S. W., et al. High-power lithium batteries from functionalized carbon-nanotube electrodes. Nat. Nano. 5, 531-537 (2010).
  35. Eriksson, M., et al. The influence on paper strength properties when building multilayers of weak polyelectrolytes onto wood fibres. J. Colloid Interf. Sci. 292, 38-45 (2005).
  36. Lvov, Y. M., et al. Dry and wet strength of paper: layer-by-layer nanocoating of mill broken fibers for improved paper. 21, 552-557 (2006).
  37. Lin, Z., et al. Nanocomposite-based lignocellulosic fibers 1. Thermal stability of modified fibers with clay-polyelectrolyte multilayers. Cellulose. 15, 333-346 (2008).
  38. Cranston, E. D., Gray, D. G., Barrett, C. J. Abstracts; 32nd Northeast Regional Meeting of the American Chemical Society. , (2004).
  39. Podsiadlo, P., et al. Molecularly engineered nanocomposites: layer-by-layer assembly of cellulose nanocrystals. Biomacromolecules. 6, 2914-2918 (2005).
  40. Cranston, E. D., Gray, D. G. Formation of cellulose-based electrostatic layer-by-layer films in a magnetic field. Sci. Tech. Adv. Mater. 7, 319-321 (2006).
  41. Cranston, E. D., Gray, D. G. Morphological and optical characterization of polyelectrolyte multilayers incorporating nanocrystalline cellulose. Biomacromolecules. 7, 2522-2530 (2006).
  42. Jean, B., et al. Structural details of cellulose nanocrystals/polyelectrolytes multilayers probed by neutron reflectivity and AFM. Langmuir. 24, 3452-3458 (2008).
  43. Renneckar, S., Zink-Sharp, A., Esker Alan, R., Johnson Richard, K., Glasser Wolfgang, G. Cellulose Nanocomposites. ACS Symposium Series. , 78-96 (2006).
  44. Podsiadlo, P., et al. Layer-by-layer assembled films of cellulose nanowires with antireflective properties. Langmuir. 23, 7901-7906 (2007).
  45. Jean, B., et al. Non-electrostatic building of biomimetic cellulose-xyloglucan multilayers. Langmuir. 25, 3920-3923 (2009).
  46. de Mesquita, J. P., et al. Biobased nanocomposites from layer-by-layer assembly of cellulose nanowhiskers with chitosan. Biomacromolecules. 11, 473-480 (2010).
  47. Wågberg, L., et al. The build-up of polyelectrolyte multilayers of microfibrillated cellulose and cationic polyelectrolytes. Langmuir. 24, 784-795 (2008).
  48. Aulin, C., et al. Buildup of polyelectrolyte multilayers of polyethyleneimine and microfibrillated cellulose studied by in situ dual-polarization interferometry and quartz crystal microbalance with dissipation. Langmuir. 24, 2509-2518 (2008).
  49. Aulin, C., et al. Self-organized films from cellulose I nanofibrils using the layer-by-layer technique. Biomacromolecules. 11, 872-882 (2010).
  50. Azizi Samir, M. A., et al. Review of recent research into cellulosic whiskers, their properties and their application in nanocomposite field. Biomacromolecules. 6, 612-626 (2005).
  51. Siró, I., Plackett, D. Microfibrillated cellulose and new nanocomposite materials: a review. Cellulose. 17, 459-494 (2010).
  52. Eichhorn, S., et al. Review: current international research into cellulose nanofibres and nanocomposites. J. Mat. Sci. 45, 1-33 (2010).
  53. Habibi, Y., et al. Cellulose nanocrystals: chemistry, self-assembly, and applications. Chem. Rev. 110, 3479 (2010).
  54. Teeri, T. T., et al. Biomimetic engineering of cellulose-based materials. Trends Biotechnol. 25, 299-306 (2007).
  55. Saito, T., et al. Homogeneous suspensions of individualized microfibrils from TEMPO-catalyzed oxidation of native cellulose. Biomacromolecules. 7, 1687-1691 (2006).
  56. Pillai, K. V., Renneckar, S. Cation-π Interactions as a Mechanism in Technical Lignin Adsorption to Cationic Surfaces. Biomacromolecules. 10, 798-804 (2009).
  57. Notley, S. M., Norgren, M. Adsorption of a strong polyelectrolyte to model lignin surfaces. Biomacromolecules. 9, 2081-2086 (2008).
  58. Aulin, C., et al. Buildup of polyelectrolyte multilayers of polyethyleneimine and microfibrillated cellulose studied by in situ dual-polarization interferometry and quartz crystal microbalance with dissipation. Langmuir. 24, 2509-2518 (2008).
  59. Argun, A. A., et al. Highly conductive, methanol resistant polyelectrolyte multilayers. Adv. Mater. 20, 1539-1543 (2008).
  60. Li, Q., Renneckar, S. Molecularly thin nanoparticles from cellulose: isolation of sub-microfibrillar structures. Cellulose. 16, 1025-1032 (2009).
  61. Höök, F., et al. Variations in coupled water, viscoelastic properties, and film thickness of a Mefp-1 protein film during adsorption and cross-linking: a auartz crystal microbalance with dissipation monitoring, ellipsometry, and surface plasmon resonance study. Anal. Chem. 73, 5796-5804 (2001).
  62. Naderi, A., Claesson, P. M. Adsorption properties of polyelectrolyte-surfactant complexes on hydrophobic surfaces studied by QCM-D. Langmuir. 22, 7639-7645 (2006).
  63. Kaufman, E. D., et al. Probing protein adsorption onto mercaptoundecanoic acid stabilized gold nanoparticles and surfaces by quartz crystal microbalance and z-potential measurements. Langmuir. 23, 6053-6062 (2007).
  64. Glasser, W. G., Barnett, C. A., Sano, Y. Classification of lignins with different genetic and industrial origins. J. Appl. Polym. Sci.: Appl. Polym. Symp. , (1983).
  65. Van de Steeg, H. G. M., et al. Polyelectrolyte adsorption: a subtle balance of forces. Langmuir. 8, 2538-2546 (1992).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

88nanocelluloseLBL

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены