JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Этот протокол описывает косвенную нейрон-астроцитов сокультивирования для анализа на секции нейрон-глиальных взаимодействий.

Аннотация

Правильное развитие нейронов и функции является предпосылкой развивающегося и взрослого мозга. Однако механизмы, лежащие в основе высоко контролируемого формирования и поддержания сложных нейронных сетей не совсем понятны до сих пор. Открытые вопросы , касающиеся нейронов в области здравоохранения и болезни разнообразны и идущие от понимания базового развития к исследованию патологий , связанных с человека, например, болезнь Альцгеймера и шизофрения. Наиболее детальный анализ нейронов может быть выполнена в пробирке. Тем не менее, нейроны требуют клетки и нуждаются в дополнительной поддержке астроцитов для их выживания в долгосрочной перспективе. Эта клеточная гетерогенность находится в конфликте с целью расчленения анализа нейронов и астроцитов. Мы представляем здесь анализ клеточной культуры, которая позволяет для долгосрочного совместного культивирования чистых первичных нейронов и астроцитов, которые разделяют ту же химически определенной среде, в то же время физическиразделены. В этой установке, культуры выжить в течение до четырех недель, и анализ подходит для разнообразия исследований, касающихся взаимодействия Нейрон-глии.

Введение

На протяжении последних десятилетий, общая интерпретация функции нейроглия превратилась из приписывание лишь поддерживает к активной регулирующей роли в отношении функции нейронов 1. Из - за их влияния на видных гомеостаза мозга в здоровье и болезни 2, астроциты представляют особый интерес для научного сообщества. За последние несколько лет, разнообразие исследований были сосредоточены на нейрон-глиальных взаимодействий в естественных условиях и в пробирке 3. Тем не менее, большинство систем культивирования не позволяют проводить раздельный анализ обоих типов клеток и их соответствующих secretomes.

Несколько подходов используют прямое сокультивации нейронов и глии для достижения длительное выживание и физиологически соответствующее развитие нейронной сети 4-6. Настоящий протокол достигает тех же целей, сохраняя при этом оба типа клеток физически разделенных 7. По сравнению с conditioned среда приближается к 8,9, наша система позволяет исследовать двунаправленную связь между нейронами и астроцитов. Экспрессия секретируемых сигнальных молекул может контролироваться в то время как клетки нагноиться в совместно используемой среде. Эта возможность особенно актуальна, так как астроциты выпустить растворимые факторы, такие как цитокины, факторы роста и внеклеточных матричных молекул 10,11, тем самым регулируя нейронную рост и функционирование 7,12. Таким образом, было показано , что добавление к Тромбоспондин ганглиозных клеток сетчатки в пробирке индуцирует образование синапсов 13. Тем не менее, другие еще неизвестные факторы , которые необходимы для визуализации синапсы функциональных 13. Кроме того, молекулы, выпущенные астроцитов должны быть определены для того, чтобы понять основы нейрон-глиальных взаимодействий.

Культивирование первичных нейронов и астроцитов от мышей и крыс было описано ранее 14-16. Мы тутпредставляет элегантный и универсальный инструмент для объединения обоих типов клеток в косвенном сокультивирования подхода. Так как эти две культуры физически разделены еще разделяя ту же среду, влияние нейронов, астроциты и растворимых молекул, могут быть проанализированы по отдельности, создавая тем самым мощный инструмент для исследования взаимодействия нейрон-глия.

протокол

Эксперименты с мышами были в соответствии с Законом немецкой и Немецкого общества Neuroscience руководящих принципов животноводства. Комитеты по уходу за животными и использования Рурского университета Бохума предоставили соответствующие разрешения.

1. Подготовка и культивирование корковых астроцитов

Примечание: Выполните следующие действия протокола по меньшей мере за 7 дней, прежде чем перейти к следующему шагу, как астроцитов культуры должны развиться в сливающихся монослоев до того, как нейроны получают. Первичные астроциты получают из смешанных глиальных культур, полученных из мышат мыши вокруг постнатальный день (P) 0-3. Три мозга (6 кортикальных) в Т75 колбы должны быть использованы.

  1. Подготовьте астроцитов среду, дополнив Дульбекко в модификации Дульбекко (DMEM) с 10% об / об сыворотки лошади и 0,1% об / об гентамицином в стерильных условиях. Хранить среду при температуре 4 ° С в течение до 2-х недель.
  2. Пальто 3x T75 колб Wiй 10 мкг / мл поли-D-лизин (PDL, в клеточной культуре сорта воды) в течение не менее 1 ч при 37 ° С в присутствии 6% об / об CO 2. После того, как покрытие, мыть колбы дважды фосфатно-буферном солевом растворе (PBS) для удаления несвязанных катионов, и добавить 9 мл астроцитов среду.
  3. Для приготовления мозгов, добавляют 10 мл раствора Хенкса сбалансированный солевой раствор (HBSS) до 1х 10 см чашку Петри и 1 мл HBSS до 1х 15 мл трубки (независимо от количества мозгов, который будет использоваться). Держите пару хирургических ножниц, 2 тонких щипцов и бинокля в пределах досягаемости для процедуры.
  4. Обезглавьте 3 щенков быстро с хирургическими ножницами и собирать головы в пустой 10 см блюдо.
    1. Выполните подготовку кортикальных под бинокля. С помощью двух тонких щипцов, удалить кожу спины от черепа в средней линии, начиная от шеи вверх к уровню глаз. После этого, мозг с его кровеносных сосудов видна под черепом.
    2. Зафиксируйте голову на ростральной конце с парой щипцов и надрезать средней линии черепа, начиная с заднего конца. Впоследствии, обрезать правую и левую половины черепа, чтобы разоблачить мозга.
    3. Закройте кончик пинцетом и поместить его вентрально под мозгом. Поднимите мозг из черепа и передать его в HBSS заполненные 10 см чашку Петри. Продолжайте таким же образом с остальными образца до тех пор, пока все мозги собираются в чашке.
  5. После сбора мозги, начните с разделения кортикальных зажимая от заднего мозга, используя пару щипцов, как ножницами. Выполните срединный разрез между двумя полушариями с одной парой щипцов. Тщательно исправить мозг с пинцетом и отрезать среднего мозга и обонятельные луковицы с использованием второго пинцет, чтобы в конечном итоге с корковой половинок.
  6. Закрепите одну корковую половину с одной парой щипцов и кожица мозговые оболочки из полушарий, отделив их еПЗУ боковой край, а затем потянув их от поверхности коры мозга с помощью второго щипцов.
  7. Флип коркового половину с ее поверхности, обращенной вниз по направлению к тарелке; тщательно проанализируем и удалить в форме полумесяца гиппокамп с помощью одной пары щипцов. Передача одиночных кору в коническую 15 мл трубки, используя один закрытый щипцов для проведения индивидуальной коры головного мозга.
  8. После сбора всех, транзита кору в стерильный ламинарный и начать с подготовки к диссоциации корковой ткани.
  9. Добавить 1 мл DMEM к 2 мл реакционной трубки и добавляют 0,1% вес / об папаин (30 единиц). Инкубируют суспензию в водяной бане при 37 ° С до тех пор, пока раствор не выяснены развивается (около 3 мин). Добавить 0,24 мг / мл L-цистеин и 20 мкг / мл ДНКазы и слегка встряхнуть.
    Примечание: При проведении ферментации, приблизительно 1 мл раствора фермента необходим.
  10. Фильтр (размер пор 0,22 мкм), чтобы получить 1 стерильный мл раствора перед добавлениемона в корковой ткани. Инкубировать пробирки в течение 30 мин - 1 ч при 37 ° С (то есть, на водяной бане).
    Примечание: Шаги 1.11 - 1.14 являются критическими и должны быть завершены в течение 15 мин.
  11. Для прекращения реакции пищеварение, добавьте 1 мл астроцитов среды и тщательно растирают переваренной ткани с использованием 1 мл пипетки. Для растирания, аккуратно переместить поршень пипетки, таким образом, аспирационных и экструзией суспензии корковой ткани.
  12. После того, как ткань была диссоциируют в одной клеточной суспензии, добавляют 5 мл астроцитов среду и центрифуге в течение 5 мин при 216 х г.
  13. Аспирируйте супернатант осторожно из полученной гранулы и клетки вновь суспендируют в 1 мл среды астроцитов.
  14. Добавьте клеточные суспензии в колбах Т75 пополнился 9 мл астроцитов среды (см 1.2).
  15. Инкубируйте клетки при 37 ° С в инкубаторе в присутствии 6% об / об CO 2. После 4 дней, выполнить первую полную среду изменения (10 мл). После этого изменить культуру среду каждые 2 - 3 d.
  16. После 7 суток, проверьте, если клетки сформировали сливающийся монослой. Если нет, то ждать еще 2 - 3 дня до полного слияния культуры не достигается.
    Примечание: астроциты отображение больших приглаженных клеточных тел, локализуются в нижней части колбы и не развивают заметных клеточных процессов. Они отличаются от небольших фазоконтрастных ярких клеток - предшественников и микроглии , расположенных на верхней части монослоя 17.
  17. Для того, чтобы избавиться от клеток-предшественников и получить чистую культуру астроцитов, поместите Т75 колб на орбитальный шейкер и потрясите культур O / N при 250 оборотах в минуту. Убедитесь , что температура регулируется до 37 ° С , и что фильтр колбы герметизирован лабораторной пленкой для предотвращения испарения CO 2.
  18. На следующий день, аспирата среду и добавляют 10 мл свежей культуральной среды пополнен с 20 мкМ цитозин-1-β-D-арабинофуранозида (AraC) для eliminaт.е остаточные делящиеся клетки.
    Примечание: инкубация с AraC в течение 2 - 3 г в инкубаторе при температуре 37 ° С, 6% СО 2 приведет к чистой астроцитов культуры.
  19. Следить за чистотой Астроцитарная культур путем визуального осмотра под световым микроскопом. Если остаточная фаза-контрастные яркие клетки - предшественники и микроглии по- прежнему находятся на вершине астроцитов монослоя 17 (см шаг 1.16), повторите шаги с 1.18 и 1.19.
    Примечание: Вырожденное и чистые астроцитов монослоев может поддерживаться в течение до 14 суток в инкубаторе (37 ° C, 6% v / v 2 CO) , прежде чем перейти к следующему шагу. Изменение половину среды каждые 3 d. Не собирать, замораживании и оттаивании астроцитов, так как эти клетки теряют свои свойства нейрональные поддерживающие через процедуру хранения.

2. Подготовка астроциты для непрямого сокультивирования

Примечание: 48 - 72 часа перед приготовлением нейроны, астроциты передачи на КВЖДл-культуры вставок. Как правило, один Т75 колба обеспечивает достаточное количество клеток для поддержки нейрональных культур, полученных с одним препаратом.

  1. Поместите столько вставок по мере необходимости в 24-луночных пластин. Шерсть каждая вставка с 10 мкг / мл PDL (растворенный в клеточной культуре сорта воды) в течение приблизительно 1 ч при температуре 37 ° С, 6% об / об СО 2. После инкубации промыть вставки дважды PBS. В то же время, приступить к подготовке астроцитов.
    Примечание: Вставки заполненные PBS могут храниться до тех пор, астроцитов клеточная суспензия не готова к использованию.
  2. Аспирируйте астроцитов среды (с AraC) и мыть культуры один раз с 10 мл PBS, чтобы обеспечить любую остаточную сыворотку удаляют.
  3. Добавить 3 мл 0,05% трипсин-ЭДТА (этилендиаминтетрауксусной кислоты) в колбы и инкубировать клетки для обработки трипсином при 37 ° С, 6% об / об CO 2 в течение примерно 10 мин.
  4. Управление отряду клеток путем визуального осмотра с помощью микроскопа и facilitaт.е отряд клеток, нажав на сторону колбы против рабочего стола.
    Примечание: Шаги 2.5 - 2.8 являются критическими и должны быть завершены в течение 15 - 20 мин.
  5. После обработки трипсином, осторожно повторно приостанавливать клетки в 7 мл среды астроцитов и передачи клеточной суспензии в пробирку 15 мл. Центрифуга в течение 5 мин при 216 х г.
  6. Тщательно аспирата супернатант и ресуспендируют осадок клеток в 1 мл среды астроцитов.
  7. Граф клеток с использованием счетной камере.
  8. Заполните дно лунки 24-луночного планшета с 500 мкл астроцитов среды и передавать 25000 клеток в 500 мкл среды астроцитов в каждую отдельную вставку. Инкубируйте культуру при 37 ° С, 6% об / об CO 2.
    Примечание: После того, как 42 - 72 ч культуры достигнет примерно 100% слияния. На этой стадии чистота культуры может быть проверена с помощью иммуноцитохимию 11. Вырожденное культуры не может поддерживаться в течение до 7 суток до приступить кследующий шаг. Изменение половину среды каждые 3 d.

3. Получение первичной нейронах гиппокампа

Примечание: первичных нейронов гиппокампа мыши должна быть получена из E15.5 - E16 эмбрионов, приуроченных беременных мышей.

  1. Готовят нейронную среду (MEM с добавлением 10 мМ пирувата натрия, 0,1% вес / об овальбумина, 2% об / об B27 средней добавки и 0,1% об / об гентамицин (стерильный фильтрованный)), и средней подготовки (HBSS с 0,6% вес / V глюкозы и 10 мМ HEPES (4- (2-гидроксиэтил) -1-пиперазин этансульфоновая кислота)). Предварительно теплый и предварительно уравновешивают нейронную среду в фильтровальных колбах при температуре 37 ° С, 6% об / об CO 2.
  2. Поместите стекольных покровные (диаметр 12 мм), в лунки 24-луночных пластин (использовать специальные покровные, которые зазубрены для использования с клеточной культуры вставки).
    1. Шерсть в течение не менее 1 ч с 15 мкг / мл поли-DL-орнитина в воде (клеточной культуры сорта) при 37 ° С. Используйте по меньшей мере, 500 мкл на лунку, чтобы гарантировать, чтопокровные полностью покрыты. Промыть лунки дважды PBS. Оставьте PBS в лунки до посева клеток. Убедитесь в том, что скважины не высыхают.
  3. Рассекать гиппокампе, подготовить 3x 10 см блюда, заполненные приготовления среды и 1x 2 мл пробирку с 1 мл препарата среды. Приготовьте ножницы и 2 тонких щипцов.
  4. Жертвоприношение беременной мыши путем смещения шейных позвонков, стерилизовать живота промывкой 70% об / об этаноле, и открыть живот с помощью острых ножниц. Вырежьте бисерные матка тщательно с ножницами и передать в орган 1x 10 см чашку, наполненную подготовки среды.
  5. Затем удалите эмбрионов из матки. Аккуратно разрежьте матку и удалить амнион без ущерба для эмбрионов с помощью 2 щипцов. После этого, обезглавить каждого эмбриона с ножницами и перенесите головы во вторую 10-см чашку, поставляемой с приготовления среды.
  6. Приступить к подготовке руководителей (по аналогии с ДГОвания описано в 1.4 - 1.7).
    1. Зафиксировать голову с парой щипцов и надрезать черепа и кожи в области шеи близко к задним мозгом перпендикулярно к нейрооси. Используйте вторую пару щипцов, чтобы поднять оба черепа и кожного покрова, и изогнуть мягкую ермолку в направлении ростральной конце головки, тем самым подвергая мозг.
    2. С помощью 2-х щипцов, отсоединить мозг от полости черепа. Чтобы сделать это, близко 1 пара щипцов и отделить мозг от черепа, начиная с обонятельной луковицы и движется в направлении заднего мозга. Собрать мозги в другой 10 см чашку, наполненную подготовки среды.
  7. Dissect гиппокампа от кортекса фрагментов, как описано выше для получения астроцитов (этап 1.6). Удалить гиппокампа от каждого полушария и собирают их в 2 мл трубки, заполненной средой подготовки.
  8. После завершения рассечение, передать трубку к стерильным скамейке ламинарного потока и Digesт ткани гиппокампа с 1 мл раствора, содержащего переваривание папаин. Приготовьте раствор пищеварение, как описано на стадии 1.9 - 1.10, но используют МЕМ вместо DMEM.
    Примечание: Шаги 3.9 - 3.12 являются критическими и должны быть завершены в течение 10 - 15 мин.
  9. После завершения пищеварения, осторожно вывести раствор переваривания нежным всасыванием с пипеткой.
  10. Промыть гиппокампа 3 раза нейрон среды путем последовательного добавления и затем осторожно аспирацией 1 мл свежей культуральной среды в цикле стирки. Не центрифугировать клеточной суспензии.
  11. После заключительной стадии промывки, тщательно растирают ткани в 1 мл среды нейрон.
  12. Подсчитайте клеток с использованием счетнокамерное и пластинчатые 35000 клеток в 500 мкл среды нейрон в одной лунке 24-луночного планшета (пластины, упомянутой в разделе 3.2).
    Примечание: Необязательно, ячейка аликвоты может быть контрастным трипановым синим, чтобы оценить жизнеспособность клеточного препарата. Контроль плотности металлизации путем визуального осмотрионов с помощью микроскопа (как правило, 90 - 110 клеток на поле зрения стандартного объектива 10X).
  13. Место нейроны в термостате при температуре 37 ° С, 6% об / об СО 2 в течение 1 часа.
  14. Сообщение инкубации, возьмите подготовленные вставки (затравку сливающийся астроцитов монослоев) из инкубатора (см шаг 2.8). Обмен среды путем аспирационных астроцитов среды и заменив его на 500 мкл свежей среды нейрон.
    Примечание: Пластины должны укрывают вырожденные астроцитов монослоев после 2 - 3 DIV (Days in vitro).
  15. Поместите вкладыши с астроциты тщательно в лунки, которые содержат нейронные культуры (этап 3.13) с помощью стерильного пинцета.
  16. Поместите полученный косвенную нейрон-астроцитов сокультивирования обратно в инкубатор при температуре 37 ° С, 6% об / об CO 2.
    Примечание: В этих условиях нейроны могут быть выращены до 4-х недель в полностью определенной среде. Нет средних изменений не требуется. Для длительного времени культур, рекомендуется заполнить еMPTY лунки стерильной водой для того, чтобы уменьшить испарение с 24-луночного планшета.
  17. Выполнить в пробирке клеток анализы после желаемого периода культивирования (например, для иммуногистохимии, ПЦР, Вестерн - блоттинга, электрофизиологических записей (патч зажим или многоэлектродная массив)) 7,15,18.
    Примечание: Система культуры также подходит для острого и хронического медикаментозного лечения культур 11.

Результаты

Анализ нейрональных культур посредством непрямого системы сокультивирования многогранно и может быть выполнена на различных стадиях культивирования созревания. В связи с тем, что клетки могут сохраняться в течение до 4 недель, долгосрочные исследования культур воз?...

Обсуждение

Основной целью текущего протокола является полностью отдельными нейронными и астроцитарные культуры, сохраняя при этом их в общей среде. По этой причине, чистота культур, полученных должно быть проверено в начале процедуры. Мы рекомендуем использовать нейрон специфические тубулина, ?...

Раскрытие информации

The authors have nothing to disclose.

Благодарности

The present work was supported by the German research foundation (Deutsche Forschungsgemeinschaft DFG: GRK 736, Fa 159/22-1; the research school of the Ruhr University Bochum (GSC98/1) and the priority program SSP 1172 "Glia and Synapse", Fa 159/11-1,2,3).

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Reagents
B27Gibco (Life Technologies)17504-044
Cell-culture-grade waterMilliQ
Cytosine-β-D-arabinofuranoside (AraC)Sigma-AldrichC1768CAUTION: H317, H361
DMEMGibco (Life Technologies) 41966-029
DNAseWorthingtonLS002007
GentamycinSigma-AldrichG1397CAUTION: H317-334
GlucoseServa22700
HBSSGibco (Life Technologies)14170-088
HEPESGibco (Life Technologies)15630-056
Horse serumBiochrom AGS9135
L-CysteineSigma-AldrichC-2529
MEMGibco (Life Technologies)31095-029
OvalbuminSigma-AldrichA7641CAUTION: H334
PapainWorthington3126
PBSself-made
Poly-D-lysineSigma-AldrichP0899
Poly-L-ornithineSigma-AldrichP3655
Sodium pyruvateSigma-AldrichS8636
Trypsin-EDTAGibco (Life Technologies)25300054
Equipment
24-well-platesThermoscientific/Nunc142475
24-wells-plate (for the  indirect co-culture)BD Falcon353504
BinocularLeicaMZ6
Cell-culture insertsBD Falcon353095
CentrifugeHeraeusMultifuge 3S-R
Counting ChamberMarienfeld650010
ForcepsFST Dumont (#5)11254-20
glass cover slips (12 mm)Carl Roth (Menzel- Gläser)P231.1
IncubatorThermo ScientificHeracell 240i
Micro-tube (2 mL)Sarstedt72,691
MicroscopeLeicaDMIL
Millex Syringe-driven filter unitMilliporeSLGV013SL
Orbital shakerNew Brunswick ScientificInnova 4000
ParafilmBemisPM-996
Petri dishes (10 cm)Sarstedt833,902
pipette (1 mL)GilsonPipetman 1000
Sterile work benchThe Baker CompanyLaminar Flow SterilGARD III
Surgical scissorsFST Dumont14094-11
SyringeHenry Schein9003016
T75 flaskSarstedt833,911,002
tube (15 mL)Sarstedt64,554,502
Water bathGFLWater bath type 1004

Ссылки

  1. Volterra, A., Meldolesi, J. Astrocytes, from brain glue to communication elements: the revolution continues. Nat Rev Neurosci. 6, 626-640 (2005).
  2. Barreto, G. E., Gonzalez, J., Torres, Y., Morales, L. Astrocytic-neuronal crosstalk: implications for neuroprotection from brain injury. Neurosci Res. 71, 107-113 (2011).
  3. Araque, A., Carmignoto, G., Haydon, P. G. Dynamic signaling between astrocytes and neurons. Annu Rev Physiol. 63, 795-813 (2001).
  4. Dityatev, A., et al. Activity-dependent formation and functions of chondroitin sulfate-rich extracellular matrix of perineuronal nets. Dev Neurobiol. 67, 570-588 (2007).
  5. Robinette, B. L., Harrill, J. A., Mundy, W. R., Shafer, T. J. In vitro assessment of developmental neurotoxicity: use of microelectrode arrays to measure functional changes in neuronal network ontogeny. Front Neuroeng. 4, 1 (2011).
  6. Voigt, T., Opitz, T., de Lima, A. D. Synchronous Oscillatory Activity in Immature Cortical Network Is Driven by GABAergic Preplate Neurons. J Neurosci. 21 (22), 8895-8905 (2001).
  7. Geissler, M., Faissner, A. A new indirect co-culture set up of mouse hippocampal neurons and cortical astrocytes on microelectrode arrays. J Neurosci Methods. 204, 262-272 (2012).
  8. Yu, C. Y., et al. Neuronal and astroglial TGFbeta-Smad3 signaling pathways differentially regulate dendrite growth and synaptogenesis. Neuromolecular Med. 16, 457-472 (2014).
  9. Yu, P., Wang, H., Katagiri, Y., Geller, H. M. An in vitro model of reactive astrogliosis and its effect on neuronal growth. Methods Mol Biol. 814, 327-340 (2012).
  10. Kucukdereli, H., et al. Control of excitatory CNS synaptogenesis by astrocyte-secreted proteins Hevin and SPARC. PNAS. 108, E440-E449 (2011).
  11. Pyka, M., Busse, C., Seidenbecher, C., Gundelfinger, E. D., Faissner, A. Astrocytes are crucial for survival and maturation of embryonic hippocampal neurons in a neuron-glia cell-insert coculture assay. Synapse. 65, 41-53 (2011).
  12. Navarrete, M., Araque, A. Basal synaptic transmission: astrocytes rule!. Cell. 146, 675-677 (2011).
  13. Christopherson, K. S., et al. Thrombospondins are astrocyte-secreted proteins that promote CNS synaptogenesis. Cell. 120, 421-433 (2005).
  14. Kaech, S., Banker, G. Culturing hippocampal neurons. Nat Protoc. 1, 2406-2415 (2006).
  15. Geissler, M., et al. Primary hippocampal neurons, which lack four crucial extracellular matrix molecules, display abnormalities of synaptic structure and function and severe deficits in perineuronal net formation. J Neurosci. 33, 7742-7755 (2013).
  16. Dzyubenko, E., Gottschling, C., Faissner, A. Neuron-Glia Interactions in Neural Plasticity: Contributions of Neural Extracellular Matrix and Perineuronal Nets. Neural Plast. 2016, 5214961 (2016).
  17. McCarthy, K. D., de Vellis, J. Preparation of separate astroglial and oligodendroglial cell cultures from rat cerebral tissue. J Cell Biol. 85, 890-902 (1980).
  18. Pyka, M., et al. Chondroitin sulfate proteoglycans regulate astrocyte-dependent synaptogenesis and modulate synaptic activity in primary embryonic hippocampal neurons. Eur J Neurosci. 33, 2187-2202 (2011).
  19. Eroglu, C. The role of astrocyte-secreted matricellular proteins in central nervous system development and function. J Cell Commun Signal. 3, 167-176 (2009).
  20. Ethell, I. M., Ethell, D. W. Matrix metalloproteinases in brain development and remodeling: synaptic functions and targets. J Neurosci Res. 85, 2813-2823 (2007).
  21. Theocharidis, U., Long, K., ffrench-Constant, C., Faissner, A., Dityatev, A. l. e. x. a. n. d. e. r., Wehrle-Haller, B. e. r. n. h. a. r. d., Asla, P. i. t. k. &. #. 2. 2. 8. ;. n. e. n. . Prog Brain Res. 214, 3-28 (2014).
  22. Dityatev, A., Rusakov, D. A. Molecular signals of plasticity at the tetrapartite synapse. Curr Opin Neurobiol. 21, 353-359 (2011).
  23. Ippolito, D. M., Eroglu, C. Quantifying synapses: an immunocytochemistry-based assay to quantify synapse. JoVe. , (2010).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

Neuroscience117

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены