JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

В этой статье обсуждается подробный протокол для количественной оценки длины теломер с использованием модифицированного терминального рестрикционного фрагмента, который обеспечивает быстрое и эффективное прямое измерение длины теломер. Этот метод может быть применен к различным клеточным источникам ДНК для количественной оценки длины теломер.

Аннотация

Существует несколько различных методов измерения длины теломер, каждый из которых имеет свои преимущества и недостатки. В традиционном подходе, анализах фрагментации теломер (TRF) используется технология гибридизации ДНК, в которой образцы геномной ДНК расщепляются рестрикционными ферментами, оставляя повторные повторы ДНК теломер и некоторые суб-теломерные ДНК. Их разделяют электрофорезом в агарозном геле, переносят на фильтровальную мембрану и гибридизовывают с олигонуклеотидными зондами, меченными либо хемилюминесценцией, либо радиоактивностью, чтобы визуализировать фрагменты рестрикции теломер. Такой подход, требующий большего количества ДНК, чем другие методы, такие как ПЦР, может измерять распределение длины теломер популяции клеток и позволяет измерять, выраженные в абсолютных килобазах. Эта рукопись демонстрирует модифицированную процедуру гибридизации ДНК для определения длины теломер. Геномную ДНК сначала расщепляют рестрикционными ферментами (которые не режутТеломеры) и разделяют электрофорезом в агарозном геле. Затем гель сушат и ДНК денатурируют и гибридизуют in situ с радиоактивно меченным олигонуклеотидным зондом. Эта гибридизация in situ позволяет избежать потери ДНК теломер и улучшает интенсивность сигнала. После гибридизации гели визуализируются с использованием экранов люминофора, а длина теломера определяется количественно с помощью графической программы. Эта процедура была разработана лабораториями Drs. Вудринг Райт и Джерри Шей в Университете Техаса Юго-Западный 1 , 2 . Здесь мы приводим подробное описание этой процедуры с некоторыми изменениями.

Введение

Теломеры, расположенные на концах хромосом, представляют собой нуклеотидные повторы последовательности TTAGGG (на человеческих хромосомах), которые играют критическую роль в защите клеточной генетической информации 3 , 4 , 5 . Теломеры составляют несколько тысяч пар оснований в длину и служат для защиты целостности остальной части хромосомы во время репликации ДНК. Репликация хромосом не идеальна, в результате чего концы хромосомы не полностью копируются. Эта неэффективность в репликации называется «проблемой конечной репликации» и приводит к потере некоторых повторов теломер в течение каждого раунда репликации 6 , 7 . Длина теломера может быть восстановлена ​​после деления клеток теломеразой, ферментом, который заменяет потерянные последовательности теломер 8 , 9 . Теломераза, однако, неАктивируется в большинстве соматических клеток человека, и в результате со временем теломеры сокращаются, что в конечном итоге приводит к клеточному старению 10 . Из-за сокращения теломер теломеры рассматриваются как биомаркер старения и риск развития возрастных заболеваний 11 , 12 . Кроме того, на длину теломер могут влиять генетические, экологические и факторы образа жизни и другие стимулы, такие как окислительный стресс, что указывает на то, что длина теломер может играть роль биомаркера в токсикологических, эпидемиологических и поведенческих исследованиях 13 , 14 , 15 .

В этой статье демонстрируется методика измерения длины теломер с использованием модифицированного анализа терминального рестрикционного фрагмента (TRF), адаптированного из Mender и Shay 2 и Kimura et al. 16 , и аналогично Герберту, Шей и РигуHt 1 и Haussmann and Mauck 17 . Традиционно анализ TRF включает процедуру Саузерн-блоттинга. Саузерн-блоты считаются «золотым стандартом» для изучения длины теломер и активно используются для изучения длины теломер лейкоцитов в эпидемиологических исследованиях 18 . Этот анализ TRF использует переваренную геномную ДНК, остающуюся после повторов теломер. Затем фрагменты ДНК отделяют гель-электрофорезом, денатурируют и переносят на нитроцеллюлозную мембрану. Последовательности теломер гибридизуются с олигонуклеотидным зондом теломер. Вместо переноса отделенных теломер на мембрану другие методы TRF используют методы гибридизации в геле с денатурацией ДНК и без нее. Включение денатурации важно при рассмотрении обнаружения междоузельных теломер, о чем сообщалось у некоторых видов 19 . Процедуры, в которых отсутствуют денатурирующие шаги,Одноцепочечные выемки ДНК в концевых теломерах и не будут связываться с интерстициальными последовательностями теломер 18 .

Помимо анализа TRF, существует несколько других методов измерения длины теломер, каждый из которых имеет свои преимущества и недостатки. Метод Flow-FISH может измерять среднюю длину теломер отдельных клеток отдельного типа клеток с использованием проточной цитометрии 16 , 20 . Хотя он может точно маркировать теломеры с помощью высокоспецифических зондов и уменьшать человеческую ошибку с помощью автоматизации, Flow-FISH является дорогостоящим, менее эффективным и требует свежих образцов и высококвалифицированного техника, ограничивая его возможности для эпидемиологических исследований 16 . Кроме того, этот метод не учитывает потенциальные изменения количества хромосом в популяции клеток. Другая методика, qPCR, широко используется в качестве средства измерения длины теломер для эпидемиологических исследований 16 из-за его высокой пропускной способности, низкой стоимости и потребности в небольших количествах ДНК по сравнению с другими методами. Однако qPCR может измерять только среднее содержание теломерной ДНК по отношению к одному копирующему гену и, таким образом, является косвенной оценкой средней длины теломер. Это также приводит к большому коэффициенту дисперсии в сравнительных исследованиях по сравнению с южными блотами, что приводит к сомнительной точности 21 .

Процедура TRF имеет свои недостатки, которые ограничивают ее использование для некоторых исследований. Методы TRF требуют большого количества ДНК по сравнению с другими методами (от 2 до 3 мкг на образец). Это ограничивает применение техники для изучения длины теломер клинических образцов, для которых может быть собрана достаточная геномная ДНК и не может быть использована на деградированных образцах ДНК. Кроме того, анализ TRF является дорогостоящим и трудоемким, что требует 4-5 дней для получения результатов. Однако TRF дает низкий коэффициент дисперсииПредоставляя его воспроизводимость. Хотя этот протокол отличается от традиционного Саузерн-блоттинга (с использованием гибридизации на месте in situ), эти два метода принципиально одинаковы.

Представленная здесь методика представляет собой комбинацию Саузерн-блоттинга и in-gel-гибридизации; Связывая стадию денатурации ДНК с Саузерн-блоттингом с гибридизацией in-gel. Эта комбинация обладает дополнительным преимуществом улучшенной мощности зондирующего сигнала по сравнению с Саузерн-блоттингом и последовательно дает количественные результаты в нашей лаборатории. Кроме того, использование радиоактивных зондов, а не хемилюминесцентных зондов, дает более высокую интенсивность сигнала и позволяет визуализировать и количественно с помощью фосфоримагера, делая анализ TRF удобным для пользователя.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

протокол

1. Извлечение геномной ДНК

  1. Выполните экстракцию геномной ДНК из клеток (здесь, клеточная линия BJ-hTERT) для анализа с использованием коммерческого набора для экстракции ДНК в соответствии с инструкциями производителя.
  2. Измерьте концентрацию ДНК спектрофотометром. Если концентрация ДНК составляет менее 100 мкг / мл, осадить ДНК этанолом и повторно суспендировать в объеме ТЕ-буфера (10 мМ Трис-Cl, 0,1 мМ ЭДТА (этилендиаминтетрауксусная кислота), рН 8,0), чтобы обеспечить концентрацию ДНК 100-600 мкг / мл).

2. Оценка целостности ДНК

ПРИМЕЧАНИЕ. В этой части протокола описывается оценка целостности ДНК с использованием системы гель-электрофореза с гелем размером 11 см x 14 см. Могут также использоваться другие системы и размеры гелей, но время миграции и время миграции ДНК могут меняться.

  1. Подготовьте 1% агарозный гель, объединив 1 г агарозы сорта электрофореза в 100 мл 1х буфера TAE (40 мМ Trэто база; 20 мМ уксусной кислоты; 2 мМ ЭДТА; PH 8,5) и микроволновой печи до растворения агарозы и прозрачного раствора. Охлаждают раствор при комнатной температуре до достижения 50 ° C (приблизительно 15-20 минут).
  2. В то время как раствор агарозы охлаждается, подготовьте поддон для литья под давлением, добавив литейные концевые ворота в литейный лоток. Чтобы предотвратить утечку агарозы, охладите концевые ворота до 4 ° C перед прикреплением к литейному лотку.
  3. После охлаждения агарозного раствора до 50 ° С добавьте 10 мкл бромида этидия (10 мг / мл в dH 2 O) и вылейте раствор агарозы в лоток для литья геля. Добавьте гребенку в лоток для литья.
  4. Дайте раствору агарозы затвердеть в течение 45 мин при комнатной температуре.
  5. Подготовьте образцы ДНК для электрофореза путем разбавления 25 нг геномной ДНК с использованием 1х ТЕ-буфера до конечного объема 9 мкл и добавьте 1 мкл 10х Загрузочного красителя (0,25% (мас. / Об.) Бромфенолового синего, 0,25% (мас. / Об.) Ксилола Цианол FF, 30% (об. / Об.) Глицерина). Хорошо перемешать.
  6. Подготовьте гелевую электрофорезную систему для миграции ДНК, заполнив систему электрофореза 1х буфером TAE, чтобы уровень буфера был на несколько миллиметров выше геля. Загрузите лунки геля всей ДНК-образцами. Добавьте 5 мкл ДНК-лестницы в одну лунку.
  7. Проведите миграцию ДНК при 100 В в течение приблизительно 2 ч или до тех пор, пока синий красок бромфенола не будет примерно на полпути через гель.
  8. Образуйте гель с помощью трансиллюминатора ультрафиолетового света или его эквивалента.
    ПРИМЕЧАНИЕ. Образцы ДНК с хорошей целостностью имеют полосы с высоким молекулярным весом без размытия (то есть из-за стриженной или сломанной ДНК). Если полоски ДНК размазаны, они имеют низкую целостность и не подходят для Саузерн-блот-анализа, и ДНК необходимо повторно изолировать со свежими клетками.

3. Выращивание геномной ДНК

  1. Выполните переваривание геномной ДНК в конечном объеме 20-40 мкл.
    ПРИМЕЧАНИЕ. Объемы большеЧем 40 мкл будет переполнять лунки агарозного геля.
    1. Объедините 3 мкг геномной ДНК и соответствующее количество 10х буфера для ДНК-анализа (поставляемого с рестрикционными ферментами), чтобы конечная концентрация составляла 1 х в микротрубке. Добавьте 1 мкл рестрикционного фермента RsaI (10000 Ед / мл) и 1 мкл рестрикционного фермента HinfI (10000 Ед / мл) в каждую пробирку. Отрегулируйте конечный объем, используя стерильный деионизированный H 2 O. Хорошо перемешайте. Центрифуга кратковременно (10 - 15 с при 16000 xg), чтобы все компоненты находились в нижней части трубки.
  2. Инкубируйте переваривания при 37 ° C в течение ≥16 ч. После переваривания храните переваренную ДНК при 4 ° C или -20 ° C не более чем на 2 дня при необходимости 17 .

4. Геномный ДНК-гель-электрофорез

ПРИМЕЧАНИЕ. В этой части протокола описывается процедура использования системы электрофореза в геле 20 см х 25 см. Различные гелевые электролитыМогут быть использованы несколько переменных, в том числе напряжение, время миграции и количество буфера электрофореза, добавляемого в систему, чтобы получить оптимальные результаты.

  1. Подготовьте 0,6% раствор агарозы, объединив 2,25 г агарозы сорта гель-электрофореза с 375 мл буфера для электрофореза либо 1x TAE, либо 0,5x TBE (110 мМ трис-основания, 90 мМ борной кислоты, 2,5 мМ ЭДТА, рН 8,3).
    ПРИМЕЧАНИЕ. Для теломер менее 8000 кБ рекомендуется использовать 0,5x TBE, тогда как 1x TAE рекомендуется для теломеров от 8 000 до 20 000 кБ 1 .
  2. Микроволновый раствор до растворения агарозы и раствор прозрачный. Дайте раствору остыть в течение 15-20 минут при комнатной температуре или до тех пор, пока агароза не достигнет 50 ° C.
  3. В то время как раствор агарозы охлаждают, подготовьте гель-электрофорезную систему для гелевого литья, как описано на этапе 2.2. Налейте раствор агарозного геля в лоток для литья геля. Поместите гребень вГель. Дайте гелю затвердеть в течение 45 минут при комнатной температуре.
  4. Подготовьте переваренные образцы ДНК для электрофореза. Для реакции 40 мкл добавьте 0,4 мкл 10-кратного загрузочного красителя в каждый образец переваренной ДНК. Кратко центрифугируйте (10-15 с, 16 000 xg), чтобы весь раствор находился на дне трубки.
  5. Подготовьте гель-электрофорезную систему для миграции ДНК. Удалите торцевые ворота и расческу от геля. Заполните систему электрофореза гелем 1x TAE или 0,5x TBE до линии заполнения, гарантируя, что гель полностью погружен в буфер.
  6. Загрузите лунки геля с образцами ДНК таким образом, чтобы между образцами была пустая лунка. Избегайте появления пузырьков или прокалывания геля. Добавьте 10 мкл ДНК-лестницы в лунки на противоположных концах геля.
    ПРИМЕЧАНИЕ. Тип лестницы ДНК будет зависеть от длины теломер, которая будет варьироваться от человека к человеку и между источниками клеток.
  7. Проведите гель-электрофорез при 150 В в течение 30 мин, чтобы быстро перемещать ДНК в гель; Затем отрегулируйте напряжение до 57 В и работайте в течение 18-24 часов.

5. Гель-флуоресцентная визуализация и гибридизация

  1. Через 18-24 ч выключите источник электрофореза в геле. Удалите гель для литья геля с помощью геля из буфера для электрофореза. Отрежьте верхний правый угол геля, чтобы служить в качестве ориентира для ориентации геля.
  2. Подготовьте кусок фильтровальной бумаги, разрезая бумагу немного больший размер, чем гель. Поместите фильтровальную бумагу поверх геля в литейный лоток и дайте бумаге впитать избыток раствора на геле. Осторожно удалите пузырьки воздуха между фильтровальной бумагой и гелем, используя пипетку в качестве ролика, чтобы выжать пузырьки по бокам.
  3. Удалите гель из литейного лотка, перевернув гель и фильтровальную бумагу, чтобы бумага была под гелем. Перенесите гель с фильтровальной бумагой в гелевую сушилку и накройтеГель с пластиковой пленкой. Удалите все пузырьки воздуха между пластиковой пленкой и гелем, используя пипетку в качестве ролика.
  4. Высушите гель в течение 2 ч при 50 ° С.
  5. После высыхания удалите пластиковую пленку и перенесите гель и фильтровальную бумагу в стеклянную посуду, содержащую 250 мл деионизированной воды (достаточной для покрытия гелем). Осторожно удалите фильтровальную бумагу и инкубируйте гель при комнатной температуре в течение 15 мин. Гель будет тонким, прочным и легким в обращении без разрыва.
  6. Приготовить 5x раствор SSC (750 мМ NaCl, 75 мМ цитрата натрия) в деионизированной воде.
  7. Положите гель поверх нейлоновой сетки (12 x x 12 дюймов). Сверните нейлоновую сетку и гель вместе, убедившись, что гель не контактирует с самим собой. Поместите сетку и гель в гибридизационную трубку ( например , 12 в трубке диаметром 1,5 дюйма).
    ПРИМЕЧАНИЕ. При правильной прокатке гель будет контактировать с нейлоновой сеткой с обеих сторон.
  8. Объединить 100 мл 5 × SSC и 12 мкл зеленого флуоресцентного нуклеинового ряда aЦид, и помещают в пробирку для гибридизации. Защитите раствор от света и инкубируйте в течение 30 минут при 42 ° C в гибридизационной печи с вращением.
  9. Удалите нейлоновую сетку / гель из трубки для гибридизации, разверните рулон и поместите в стеклянную тарелку, содержащую 250 мл деионизированной воды, и аккуратно удалите нейлоновую сетку. Образуйте гель, используя фосфоримагер. Используйте флуоресцентные настройки: 520 BP, 40 Blue и 488 нм. Установите фотоумножитель (PMT) на 375, фокусную плоскость - +3 мм, а чувствительность - на нормальную. Сохраните изображение в файл.

6. Гибридизация

  1. Подготовьте радиоактивный зонд теломера.
    1. Объединить 2 мкл (2 нг) зонда теломера (5- (CCC TAA) 4 3 '), 2,5 мкл 10х полинуклеотид-киназного реакционного буфера, 3 мкл γ- 32 P-dATP (6000 Ки / ммоль), 4 мкл T4 Полинуклеотид-киназу и без ДНКазы, стерильную деионизированную воду до конечного объема 20 мкл в микрометреПробирка с центрифугой.
      Предостережение: При использовании радиоактивности следует соблюдать радиоактивные меры безопасности и правила техники безопасности.
  2. Кратко центрифугируют (10-30 с при 16000 × g) и инкубируют в водяной бане при 37 ° C в течение 1 часа. Центрифугируют в течение 10-30 с при 16000 × g и инкубируют при 65 ° C в течение 20 минут, чтобы остановить реакцию.
  3. Используя колонку микроспина хроматографии G-25, смешайте содержимое колонны путем встряхивания, затем центрифугируйте в течение 1 мин при 700 × g при комнатной температуре. Откажитесь от фильтрата.
  4. Загрузите раствор радиоактивного зонда в колонку для хроматографии G-25 и центрифугируйте в течение 2 минут при 700 × g. Сохраните фильтрат.
    ПРИМЕЧАНИЕ. Сохраните фильтрат, так как в нем содержится радиоактивный зонд-теломер. При необходимости радиоактивный зонд можно хранить при температуре 4 ° C.
  5. Подготовьте 250 мл денатурирующего раствора, состоящего из 1,5 М NaCl и 0,5 М NaOH в стерильной деионизированной воде.
  6. Поместите гель в стеклянную чашку, содержащую 250 мл денатурирующего раствора и инкубатораВ течение 15 мин при комнатной температуре. Удалите денатурирующий раствор и замените 250 мл стерильной деионизированной воды. Инкубируйте в течение 10 мин на орбитальном шейкере (40-50 об / мин) при комнатной температуре.
  7. Подготовьте 250 мл нейтрализующего раствора, состоящего из 1,5 NaCl и 0,5 М Трис-хлористоводородной кислоты, рН 8,0 в стерильной деионизированной воде.
  8. Удалите деионизированную воду и замените 250 мл нейтрализационного раствора и инкубируйте в течение 15 мин при комнатной температуре.
  9. Во время инкубации в нейтрализующем растворе готовят 50 мл раствора для гибридизации, состоящего из 5 × SSC, 5 × раствора Денхардта (0,1% неионного синтетического полимера, 0,1% поливинилпирролидина, 0,1% бычьего сывороточного альбумина), 10 мМ динатрийфосфата (Na 2 HPO 4 ) и 1 мМ тетрафосфата натрия пирофосфата (Na 4 P 2 O 7 · 10 H 2 O) в стерильной деионизированной воде.
  10. Сверните гель в нейлоновой сетке и поместите в гибридизационную трубку (шаг5.7). Добавить 20 мл раствора для гибридизации и инкубировать в печи для гибридизации при 42 ° C в течение 10 минут с вращением.
  11. Удалите раствор гибридизации и замените 20 мл свежего раствора для гибридизации. Добавьте полностью зонд теломера и инкубируйте в печи для гибридизации при 42 ° C в течение ночи с вращением.

7. Гель-мытье, экспозиция с использованием фосфорного экрана и радиоизображение

  1. Подготовить 500 мл 2x SSC раствора (300 мМ NaCl, 30 мМ цитрата натрия) в стерильной деионизированной воде.
  2. Подготовьте 250 мл 0,1х SSC (15 мМ NaCl, 1,5 мМ цитрата натрия) и 0,1% додецилсульфата натрия (SDS) в деионизированной воде.
  3. Удалите гель и сетку из трубки для гибридизации и поместите в стеклянную чашку, содержащую 250 мл 2x SSC. Разверните и удалите нейлоновую сетку с тарелки. Поместите стеклянную чашку на орбитальный шейкер и инкубируйте в течение 15 минут при комнатной температуре.
  4. Удалите 2x SSC и замените 250 мл 0.1x SSC и 0.1% SDS, и инкубировать в течение 15 мин на орбитальном шейкере при комнатной температуре.
  5. Во время инкубации выведите экран Phosphor на ластик изображения в течение 15 минут.
  6. Удалите 0.1x SSC и 0,1% раствор SDS и замените 250 мл 2x SSC. Инкубируйте 15 минут на орбитальном шейкере.
  7. Удалите гель из раствора 2 SSC и либо заверните гель в пластиковую пленку, либо положите в термоусадочный чехол. Удалите все пузырьки и воздушные карманы между гелем и пластиковой пленкой или пластиковым пакетом. Поместите гель в кассету экспозиции с помощью экрана Phopshor. Разогреть экран Фосфора на геле в течение ночи.
  8. Изобразите выставленный экран Фосфора, используя фосфоример.

8. Количественная длина тела

  1. Откройте файл фосфоримагера, содержащий флуоресцентное изображение зеленого флуоресцентного геля, окрашенного нуклеиновой кислотой ( рисунок 1 ).
  2. Выберите «Инструменты», а затем «Расстояние по пикселям»9 ;. Используя мышь, нарисуйте линию от нижней части геля до середины первой полосы маркера и запишите расстояние. Повторите эту процедуру для каждого диапазона маркеров ( рисунок 2 ). Эти расстояния будут использоваться в графической программе, как описано ниже.
  3. Откройте фосфоримацию радиоактивно меченного геля ( рис. 3 ). Выберите «Диспетчер объектов», а затем «Сетка». Установите сетку в 1 столбец и 150 строк. Отрегулируйте сетку так, чтобы она простиралась от верхней части геля до нижней части геля. Отрегулируйте ширину сетки равной ширине полосы, щелкнув по краю сетки и перетянув ширину сетки, чтобы она была равна ширине полосы.
  4. Скопируйте эту сетку (чтобы ширина и высота ящиков остались прежними) и переместите вторую сетку на пустую дорожку (для фоновых целей). Продолжайте копировать и перемещать дополнительные сетки для дополнительных выборочных дорожек.
    ПРИМЕЧАНИЕ. Когда закончите, должно бытьСетки для каждой полосы выборки и одна сетка пустой полосы для фона ( рисунок 4 ).
  5. Выберите «Анализ», а затем «Объемный отчет». Выберите все сетки для отчета. После отображения отчета по объему дважды щелкните отчет, чтобы активировать электронную таблицу. Сохраните файл электронной таблицы. Данные для этого файла будут Под полосой «Том».
  6. Откройте соответствующую графическую программу и создайте новые данные и таблицу. Выберите «Y: введите и постройте одно значение Y для каждой точки», затем выберите «Создать».
  7. Обозначьте первый столбец (Столбец X) как «Измеренное расстояние» и пометьте второй столбец (Столбец Y) как «Молекулярный вес». Введите молекулярные массы маркера каждой маркерной полосы в столбце Y. Введите расстояния миграции, полученные на шаге 8.2, соответствующие каждому маркеру молекулярной массы.
  8. Перейдите в «Анализ» и выберите «Анализ», а затем «Нелинейная регрессия»On (curve fit) "и выберите 'OK'. На следующем экране выберите «Экспоненциальный», а затем «Один фазовый распад». Выберите вкладку «Диапазон» и введите «150» в «количестве точек, определяющих кривую», и отметьте «Создать таблицу координат XY для экспорта или копирования кривой в другую программу».
    ПРИМЕЧАНИЕ. Результат «нелинейное соответствие данных 1» содержит молекулярную массу для каждого расстояния в Y-строке.
  9. Для анализа выборочных полос выберите область анализа, которая находится выше и ниже фактических полос теломера. Не используйте всю длину полосы ( рисунок 5 ). Определите места сетки для области анализа каждой полосы.
  10. Выберите «Файл», «Создать» «Создать новую таблицу и график». Выберите «Y: введите и постройте одно значение Y для каждой точки», затем выберите «Создать». Копирование и вставка значений громкости фоновой полосы (значений интенсивности) из файла электронной таблицыВ первый столбец (X) и значения объема (значения интенсивности) из полосы выборки в первый столбец Y. Если имеется несколько выборочных дорожек, скопируйте каждый набор значений объема из файла электронной таблицы в дополнительные столбцы Y в программе графического отображения файл.
  11. Удалите значения из столбца фона (X) и каждой выборки (Y), которые находятся за пределами областей анализа, определенных на шаге 8.8.
    ПРИМЕЧАНИЕ. Таблица данных должна содержать только значения в тех местах сетки, которые соответствуют областям анализа.
  12. Выберите «Анализ», затем «Анализ» и «Преобразование». Нажмите «ОК». Выберите «Преобразовать значения Y с помощью Y = YX». Это преобразует данные в Data 2 (преобразованное значение интенсивности (Y) = интенсивность образца (Y) - интенсивность фона (X)).
    1. Выберите «Анализ», затем «Анализ», «Анализ столбцов» и «Статистика столбцов». Выберите ОК. Вкладка «Col. Показаны данные Transform of Data 2 'В строке «Сумма», Σ (Int i ).
  13. Выберите «Файл», «Создать», «Создать новую таблицу и график». Выберите «Y: введите и постройте одно значение Y для каждой точки», затем выберите «Создать». Скопируйте и вставьте данные столбца Y с страницы результатов «Нейлин-подгонка данных 1, кривая» в новый столбец X. Скопируйте и вставьте данные столбца Y из страницы результатов «Преобразование данных 2» в новый столбец Y. Выберите «Анализ», затем «Анализ» и «Преобразование». Нажмите «ОК». Выберите «Преобразовать значения Y с помощью Y = Y / X».
    1. Выберите «Анализ», затем «Анализ», «Анализ столбцов» и «Статистика столбцов». Выберите ОК. Вкладка «Col. Статистика Transform of Data 3 'отображается в строке «Sum», Σ (Int i / MW i ). MW = молекулярная масса.
  14. Чтобы вычислить среднюю длину теломера (TL) для каждого образца, используйтеФормула TL = Σ (Int i ) / Σ (Int i / MW i ).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Результаты

Были проанализированы три концентрации ДНК (1, 2 и 3 мкг), выделенные из клеточной линии BJ-hTERT (теломераза, иммортализованные фибробласты крайней плоти человека) 22 и мононуклеарные клетки периферической крови человека (РВМС) для длины теломер. В таблице 1...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Обсуждение

После электрофореза геномный ДНК-мазок выше 800 пар оснований. Это может произойти, если рестрикционные ферменты являются дефектными или необходимы дополнительные ферменты (как описано выше). Второе возможное объяснение состоит в том, что белок все еще прикреплен к ДНК. При определении ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Авторы признают поддержку Университета Питтсбургского института рака по биобезопасной онкологии, которая частично поддерживается наградой P30CA047904.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Biologics
Rsa1, restriction enzymeNew England Biolabs, IncR0167S10,000 U/mL, DNA digestion.  Comes with Cutsmart Buffer (digestion buffer)
Hinf1, restriction enzymeNew England Biolabs, IncR0155S10,000 U/mL, DNA digestion.  Comes with Cutsmart Buffer (digestion buffer)
Seakem GTG AgaroseLonza50071electrophoresis grade agarose
Optikinase affymetrix78334X 500 UNT4 Polynucleotide Kinase
SYBR Green Nucleic Acid Stain IThermoFisher ScientificS7567Syber Green
exactGene DNA Ladder 24- kBFisher ScientificBP2580100
C-Strand Probe (3'-(G3AT2)4-'5)Integrated DNA TechnologiesCustom ordered DNA oligonucleotide
Gamma-ATP-P32Perkin ElmerBLU502ZRadioisotope
Qiagen Blood and Cell Culture DNA Mini KitQiagen13323DNA extraction kit
GE Illustra Microspin G-25 columnGE Healthcare Life Sciences27-5325-01For purification of readioactive oligo probe
Ficoll 400non-ionic synthetic polymer
Equipment/Software
Owl A5 Gel electrophoresis system (20 cm x 25 cm)ThermoFisher ScientificA5Gel electrophoresis
Horizon 11.4 Gel electrophoresis system (11 cm x 14 cm)Corel Life Sciences11068020Gel electrophoresis
Nylon mesh, 50, 12" x 12"Ted Pellam, Inc41-12105
GE Storage Phosphor ScreensGE Healthcare Life Sciences28-9564-75
Phosphor Screen Exposure CassetteGE Healthcare Life Sciences63-0035-44
Isotemp Hybridzation IncubatorFisher Scientific13-247-20Q
Cylindrical hybridization tubesFisher Scientific13-247-300
The Belly Dancer orbital shakerSigma-aldrichZ768499-1EAOrbital shaker
Typhoon 9400ABIFor imaging of gels and phosphor screens
GraphPad Prism 6GraphPadVersion 6.05Graphing Program
Microsoft ExcelMicrosoftOffice 365Spreadsheet program
NanodropThermo ScientificNanodrp 2000Spectrophotometer

Ссылки

  1. Herbert, B. S., Shay, J. W., Wright, W. E. Analysis of telomeres and telomerase. Curr Protoc Cell Biol. , Chapter 18 Unit 18 16(2003).
  2. Mender, I., Shay, J. W. Telomere Restriction Fragment (TRF) Analysis. Bio Protoc. 5 (22), (2015).
  3. Blackburn, E. H. Telomeres and Telomerase: The Means to the End (Nobel lecture). Angew Chem Int Ed Engl. 49 (41), 7405-7421 (2010).
  4. Greider, C. W. Telomerase Discovery: The Excitement of Putting Together Pieces of the Puzzle (Nobel lecture). Angew Chem Int Ed Engl. 49 (41), 7422-7439 (2010).
  5. Szostak, J. W. DNA Ends: Just the Beginning (Nobel lecture). Angew Chem Int Ed Engl. 49 (41), 7386-7404 (2010).
  6. Watson, J. M., Riha, K. Telomeres, Aging, and Plants: From Weeds to Methuselah - A Mini-Review. Gerontology. 57 (2), 129-136 (2011).
  7. Lu, W., Zhang, Y., Liu, D., Songyang, Z., Wan, M. Telomeres-Structure, Function, and Regulation. Exp Cell Res. 319 (2), 133-141 (2013).
  8. MacNeil, D. E., Bensoussan, H. J., Autexier, C. Telomerase Regulation from Beginning to the End. Genes (Basel). 7 (9), 64(2016).
  9. Fouquerel, E., Opresko, P. Convergence of The Nobel Fields of Telomere Biology and DNA Repair. Photochem Photobiol. , Epub ahead of print (2016).
  10. Bernadotte, A., Mikhelson, V. M., Spivak, I. M. Markers of Cellular Senescence. Telomere Shortening as a Marker of Cellular Senescence. Aging (Albany NY). 8 (1), 3-11 (2016).
  11. Opresko, P. L., Shay, J. W. Telomere-Associated Aging Disorders. Ageing Res Rev. , Epub ahead of print 1568-1637 (2016).
  12. Chiodi, I., Mondello, C. Telomere and Telomerase Stability in Human Diseases and Cancer. Front Biosci (Landmark Ed). 1 (21), 203-224 (2016).
  13. Blackburn, E. H., Epel, E. S., Lin, J. Human Telomere Biology: A Contributory and Interactive Factor in Aging, Disease Risks, and Protection. Science. 350 (6265), 1193-1198 (2015).
  14. Lindqvist, D., et al. Psychiatric Disorders and Leukocyte Telomere Length: Underlying Mechanisms Linking Mental Illness with Cellular Aging. Neurosci Biobehav Rev. 55, 333-364 (2015).
  15. Bodelon, C., Savage, S. A., Gadalla, S. M. Telomeres in Molecular Epidemiology Studies. Prog Mol Biol Transl Sci. 125 (113), (2014).
  16. Kimura, M., et al. Measurement of telomere length by the Southern blot analysis of terminal restriction fragment lengths. Nat Protoc. 5 (9), 1596-1607 (2010).
  17. Haussmann, M. F., Mauck, R. A. TECHNICAL ADVANCES: New strategies for telomere-based age estimation. Mol Ecol Resour. 8 (2), 264-274 (2008).
  18. Nussey, D. H., et al. Measuring telomere length and telomere dynamics in evolutionary biology and ecology. Methods Ecol Evol. 5 (4), 299-310 (2014).
  19. Delany, M. E., Krupkin, A. B., Miller, M. M. Organization of telomere sequences in birds: evidence for arrays of extreme length and for in vivo shortening. Cytogenet Cell Genet. 90 (1-2), 139-145 (2000).
  20. Baerlocher, G. M., Vulto, I., de Jong, G., Lansdorp, P. M. Flow cytometry and FISH to measure the average length of telomeres (flow FISH). Nat Protoc. 1 (5), 2365-2376 (2006).
  21. Sanders, J. L., Newman, A. B. Telomere length in epidemiology: a biomarker of aging, age-related disease, both, or neither. Epidemiol Rev. 35, 112-131 (2013).
  22. Parikh, D., Fouquerel, E., Murphy, C. T., Wang, H., Opresko, P. L. Telomeres are partly shielded from ultraviolet-induced damage and proficient for nucleotide excision repair of photoproducts. Nat Commun. 6, 8214(2015).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

125

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены