JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Galleria mellonella служит беспозвоночных модель для распространенных кандидоз. Здесь, мы подробно инфекции протокол и предоставлять вспомогательные данные для модели эффективности.

Аннотация

Видов Candida являются общие грибковых Комменсалами людей колонизации кожи, слизистых поверхностей и желудочно-кишечного тракта. При определенных условиях Candida могут перерасти их природных ниш, что приводит к изнурительной слизистой инфекции как хорошо как опасные для жизни системных инфекций, которые являются одним из основных направлений расследования из-за их связанные высокой смертности. Животные модели распространения инфекции существуют для изучения прогрессирования заболевания и рассекает характеристики Candida патогенности. Из них Galleria mellonella waxworm инфекции модель обеспечивает экономически экспериментальный инструмент для исследования высок объём системных вирулентности. Многие другие бактерий и эукариот инфекционные агенты эффективно изучались в G. mellonella понять патогенности, что делает его широко принятой модели системы. Тем не менее изменения в метод, используемый для заразить G. mellonella можно изменить результаты фенотипических и затруднить интерпретацию результатов. Здесь мы приводим, преимущества и недостатки waxworm модели для изучения патогенеза системный кандидоз и подробно такой подход к улучшению воспроизводимость. Наши результаты выделить диапазон кинетики смертности в G. mellonella и описывают переменные, которые можно модулировать эти кинетики. В конечном итоге этот метод стоит как этического, быстрое и эффективное подход для изучения вирулентности в модели распространения кандидоза.

Введение

Видов Candida являются общие человеческие Комменсалами, которые способны как оппортунистических патогенов в сильно ослабленным и дисбиотических пациентов. Хотя многие виды Candida могут вызывать заболевания, C. albicans является самой распространенной причиной распространения кандидоз1,2. Системных заболеваний результаты от C. albicans доступ кровоток через либо прямого проникновения ранее ограничительных хост барьеров или введение в хирургических сайтов и другие нарушения тела3. Candida видов использования ряда патогенных процессов могут вызвать системные заболевания в пределах узла, включая филаментацию, биопленки, уклонение иммунных клеток и бежать и железа, очистку4. В vitro подходы существуют для расследования индивидуальных патогенетических механизмов, но Животные модели продолжать предоставлять лучший вариант, чтобы исследовать весь исход болезни5,6. Предыдущие исследования подробно многие случаи перспективным в vitro исследования вирулентности, неспособность воспроизводить в vivo7,8. Таким образом, Животные модели по-прежнему необходимы для оценки вирулентности в vivo. Большинство моделей болезни полагаются на мышах в качестве суррогата для человека инфекции, несмотря на неспособность C. albicans естественно колонизировать мышиных систем как синантропных9. Беспозвоночных модели распространенных кандидоз включают нематоды Caenorhabditis elegans, фрукты fly Drosophila melanogasterи waxworm Galleria mellonella, хотя опасения по поводу основных различий в основных физиологии температуры тела пребывания и пути воздействия препятствовали их широкое признание10,11.

Совсем недавно была принята модель инфекции waxworm G. mellonella для модели патогенности широкого спектра бактериальных и грибковых патогенов12,,1314. Преимущества этой модели включают его относительно низкая стоимость, увеличение пропускной способности, простота использования и снижение этические соображения относительно животных благодеяние, по сравнению с мышиных моделях. Для исследователей это приводит к увеличению возможность протестировать несколько переменных, сильнее доверительные интервалы, более быстрое экспериментов и обход животных протоколов. G. mellonella служил в качестве платформы для быстро оценить C. albicans вирулентности после возмущения генов, необходимых для регулирования формирования, филаментацию и Джин биопленки через клинических изолятов11,15 ,16. Недавние исследования включили расследования противогрибковая эффективность с использованием G. mellonella для оценки фармакокинетики препарата активности и сопротивления параметры в естественных условиях , которые в противном случае вызов и много времени 17,18. Тем не менее исследования C. albicans вирулентности в G. mellonella было осложнено сообщается, что высокие уровни вариации в рамках экспериментов и несовместимые протоколы между исследовательскими группами, которые производят различные вирулентности фенотипов между мышами и waxworms11,13,19,,2021. Здесь мы приводим G. mellonella протокол стандартизировать C. albicans воспроизводимость увеличение инфекции, в экспериментах вирулентности, и продемонстрировать соответствие ранее описанных исследований вирулентности в мышиных модели.

Предыдущие исследования показали, что C. albicans спаривания локус (MTL) тип как на хромосоме 5 регулирует ячеек самобытности и спаривания компетенции аналогичные Saccharomyces cerevisiae и других грибов аскомицетов22. Большинство C. albicans изолятов гетерозиготных в локусе мТл , кодирование один из каждого из мТл и MTLα аллелей (MTL/α) и следовательно стерильные15, 23 , 24. потери одной из аллелей MTL через потери гетерозиготности (LOH) или мутация приводит к гомозиготных MTL или MTLα штаммов, которые могут пройти фенотипические переключатель от стерильного «белый» государства спаривания компетентные государственные «непрозрачного»25. Предыдущая работа подчеркнул, что потеря гетерозиготности MTL также уменьшает вирулентности в мышиных моделях системной инфекции через различные деформации стола26. Здесь мы подробно G. mellonella модель для распространения с помощью генетически аналогичны экспериментальный набор изображать вклад гетерозиготности мТл к вирулентности в G. mellonellaкандидоза. Мы покажем, что МРЛ конфигурации влияние C. albicans патогенности, где MTLα штаммы были менее вирулентные MTL/α и MTL клетки, подобные выводы в мышиных инфекции модель26.

протокол

Все методы, описанные полагаются на использование беспозвоночных хостов и не требуют одобрения институциональный уход животных и использовать Комитет (IACUC).

1. galleria mellonella Waxworm личинок

  1. Заказать личинок от оптовиков и поставщиков, не вводить, гормоны, антибиотики или другие процедуры для личинки и которые способны корабль и доставить образцов.
    1. Убедитесь в том приобрести все личинки от того же поставщика в ходе экспериментов. Будьте внимательны при заказе личинок в летние месяцы, как температура превышает 30 ° C уменьшение жизнеспособности личинки.
    2. Контролировать температуру по всему маршруту ожидается доставка и соответствующим образом планировать и доставки или выбрать ускоренной доставки для сведения к минимуму их воздействие на условия окружающей среды.
  2. Когда личинки прибывают, проверьте каждый контейнер для обеспечения жизнеспособного, здоровые личинки присутствуют. Здоровые личинки будут полностью погруженным под постельные принадлежности, перемещение и обладают светло желтый/Тан окраски с несколько личинок, содержащие черные метки или пятна вдоль тела.
  3. Храните личинок в их контейнере в вентилируемое пространство при комнатной температуре (25 ° C). В зависимости от первоначального состояния личинки они могут использоваться для до двух недель.

2. Культура подготовка Galleria mellonella инфекции

Примечание: Надлежащего лаборатории наряд должен носить в течение этой части протокола, включая перчатки, лабораторный халат и защитные очки.

  1. Сделайте дрожжи Пептон Декстроза плиты жидкости и агар (YPD). Подготовка 1 x-фосфатный буфер (PBS) и 70% растворы этанола.
  2. Расти штаммов C. albicans будет введен на ночь в 3 мл свежего YPD в стандартных культуры трубы на вращающийся барабан на средней скорости и 30 ° C.
  3. Вращать клетки вниз на 2500 x g 5 мин в настольной центрифуги. Слить супернатанта, стараясь не нарушить Пелле ячейки.
    1. Ресуспензируйте клетки полностью в 5 мл ПБС неоднократные закупорить или vortexing. Повторите центрифугирования и ресуспендирования клеток в два раза больше PBS для обеспечения удаления всех культуры средств массовой информации.
  4. После окончательного мыть Ресуспензируйте клеток в 1 мл PBS и передавать их на пробки microcentrifuge.
  5. Проводить набор серийных разведений в PBS для генерации 1: 100, 1:1, 000 и картирование разрежения серии.
    Примечание: Альтернативные разведениях может быть необходимо достичь желаемого клеток.
    1. С помощью Горяева, подсчитать ячейки от 1: 100 или 1:1,000 разрежения. Чаще всего 1:1,000 разрежения обеспечивает соответствующую ячейку подсчитывает для культур, C. albicans .
    2. Расчет общей концентрации клеток в пределах первоначальной культуры с помощью математика сетка Горяева, направленных для между 30-300 клетки быть подсчитанным в сетке Центральной 5 x 5. Счетчик автоматизированной клеток может использоваться в качестве альтернативы; Однако использование оптической плотности для определения клеток приветствуется как морфология клеток (размер, форма и т.д.) может существенно повлиять на ее точность.
  6. Используя измеренные клеток, сделайте новый разрежения 2, 5х107 кл/мл в ПБС в пробки microcentrifuge. Это раствора будет служить основой для каждой прививки G. mellonella с C. albicans. Каждая инъекция потребует 10 мкл этой посевным материалом для инфекционных дозы 250.000 клеток C. albicans .
  7. Подтвердите точность инфекционных дозы, покрытие правильный объем картирование разрежения на 100 единиц образуя колонии (CFUs) на YPD агар для каждой культуры, которые будут использоваться в инфекции.
  8. Инкубации клеток количество пластин из шага 2.7 для 48 часов (h) при 30 ° C и подсчитать количество колоний на пластину. Между 80 и 120 колоний представляет собой приемлемый диапазон для точности в посевным материалом.

3. инфекции Galleria mellonella личинки с Candida культур

Примечание: Надлежащего лаборатории наряд должен носить в течение этой части протокола, включая перчатки, лабораторный халат и защитные очки.

  1. Добавьте 1 мл 100% этанола и 1 мл ПБС в двух отдельных microcentrifuge трубы. Этанола и PBS будет использоваться для мытья иглу между инфекции.
  2. Спред небольшое количество waxworm кроватей в пустой, стерильные Петри 100 x 15 мм, которая разместится личинок после прививки для каждой независимой штамма. Кроме того постельные принадлежности ограничивает соблюдение мертвых G. mellonella личинок на Петри блюдо поверхности.
  3. Стерилизуйте 26 G, 10 мкл шприц, принимая и стирания 10 мкл 70% этанола, три раза, после чего три автомойки с 10 мкл ПБС. Вихрь прививка разрежения C. albicans и занять 10 мкл культуры. Убедитесь, что есть нет пузырьков воздуха в шприц, как инъекции воздуха способствует смерти и осложнит течению анализ.
  4. Откройте контейнер, содержащий G. mellonella личинок и осторожно перевернуть постельные принадлежности с пальцем, чтобы раскрыть личинки. Выберите личинки, которые находятся в добром здравии, выявленные активное движение, светло желтый/коричневый цвет и отсутствие черной пигментации на теле личинки. Эти личинки следует быть аналогичного размера через экспериментальных полный набор.
  5. Забрать одну личинок и удерживайте его нежно между индекс/средний палец и большой палец похож на держа карандаш. Ролл личинки на его обратно, поэтому ноги вверх. Провести полную длину тела между пальцами и большого пальца, так что личинки не может свернуться или тянуть от инъекций.
    Примечание: При желании, стерилизуйте месте инъекции, используя ватный тампон, смоченный в 100% этанола.
  6. Вращать шприц так скос иглы обращена вверх и медленно вставьте кончик иглы, включая длину фаски в тело на стыке с задней левой ноги. Убедитесь, что игла проникает в тело и не просто нажимаем тела личинки внутрь. Не использовать силу в проникновении тело, как игла может пробить полностью личинки быстро. Аккуратно лифтинг с иглой подтвердит соответствующим проникновения. Придать посевным материалом Candida полный 10 мкл и извлеките иглу.
  7. Повторите шаг 3.3-3.5 для каждого личинки. Чтобы предотвратить ячейку, оседая, вихревой Candida культур для прививки после каждого третьего инъекции. Как элемент управления придать набор G. mellonella 10 мкл ПБС.
  8. Совместное дом 10 личинки вводят от той же культуры Candida в каждом Петри 100 x 15 мм, после прививки. Инкубируйте личинки при 37 ° C в течение восьми дней, проверка личинки каждые 24 ч для мониторинга смерти.
    1. Оценить смертность первоначально по темной пигментации, формирование черные пятна или органов и отсутствие движения. Для подтверждения смертности, используйте пинцет нежно рулон умирающий личинок на их обратно и слегка толкать нижней личинки с помощью пинцета. Non оперативность как отмечалось отсутствие видимых движения тела или ног оценивается как смерть и личинки, удаляются из Петри.
  9. Запись личинки смертности в течение времени. Личинки, которые начинают окукливаются в моли могут быть включены в анализ, но должны быть удалены, если они начинают линьки. Pupating личинок может подвергаться цензуре от конечной точки анализа как вирулентность различия между личинки и куколки являются неясными.
  10. Оценка статистической значимости, используя статистический тест Mantel-Кокс.

Результаты

Здесь мы демонстрируем воспроизводимый метод для использования waxworms G. mellonella расследовать модель распространенных кандидоз инфекции с использованием C. albicans. Хранения, обслуживания и отбора личинок для инфекции являются критическим компонентом обеспечивая...

Обсуждение

Модель waxworm G. mellonella стоит как эффективный инструмент для быстрого и воспроизводимость анализа C. albicans вирулентности. Этот подробный протокол опирается на последовательной доставки определенных инфекционных дозы на тот же сайт через партию личинок. Инфекционные доза имеет гл?...

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

Авторы хотели бы отметить помощь, Памела Вашингтон и Лия Андерсон в получении Galleria mellonella для использования в данном исследовании.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Galleria mellonellaSnackworms.comBuy twice as many worms as expected to use
10 uL, Model 1701 N SYR Cemented needle, 26G, type 2 syringeHamilton80000
Petri dish, 100X15 mm, 500 packFisherFB0875712
Microcentrifuge tube, 1.7 mL, 500 packVWR87003-294
Phosphate Buffered Saline (Biotechnology grade), 500 mLVWR97062-818
Ethanol absolute, ≥99.5% pure, 500 mLMillipore SigmaEM-EX0276-1S
autoclaved ddH2O

Ссылки

  1. Kauffman, C. A., et al. Prospective multicenter surveillance study of funguria in hospitalized patients. The National Institute for Allergy and Infectious Diseases (NIAID) Mycoses Study Group. Clinical Infectious Diseases. 30 (1), 14-18 (2000).
  2. Horn, D. L., et al. Epidemiology and outcomes of candidemia in 2019 patients: data from the prospective antifungal therapy alliance registry. Clinical Infectious Diseases. 48 (12), 1695-1703 (2009).
  3. Pfaller, M. A., Diekema, D. J. Epidemiology of invasive candidiasis: a persistent public health problem. Clinical Microbiology Reviews. 20 (1), 133-163 (2007).
  4. Sardi, J. C., Scorzoni, L., Bernardi, T., Fusco-Almeida, A. M., Mendes Giannini, M. J. Candida species: current epidemiology, pathogenicity, biofilm formation, natural antifungal products and new therapeutic options. Journal of Medical Microbiology. 62, 10-24 (2013).
  5. Segal, E., Frenkel, M. Experimental in Vivo Models of Candidiasis. J Fungi (Basel). 4 (1), (2018).
  6. Conti, H. R., Huppler, A. R., Whibley, N., Gaffen, S. L. Animal models for candidiasis. Current Protocols in Immunology. 105, 11-17 (2014).
  7. Heymann, P., et al. The siderophore iron transporter of Candida albicans (Sit1p/Arn1p) mediates uptake of ferrichrome-type siderophores and is required for epithelial invasion. Infection and Immunity. 70 (9), 5246-5255 (2002).
  8. Priest, S. J., Lorenz, M. C. Characterization of Virulence-Related Phenotypes in Candida Species of the CUG Clade. Eukaryotic Cell. 14 (9), 931-940 (2015).
  9. Savage, D. C., Dubos, R. J. Localization of indigenous yeast in the murine stomach. J Bacteriol. 94 (6), 1811-1816 (1967).
  10. Ewbank, J. J., Zugasti, O. C. elegans: model host and tool for antimicrobial drug discovery. Disease Models & Mechanisms. 4 (3), 300-304 (2011).
  11. Amorim-Vaz, S., Delarze, E., Ischer, F., Sanglard, D., Coste, A. T. Examining the virulence of Candida albicans transcription factor mutants using Galleria mellonella and mouse infection models. Frontiers in Microbiology. 6, 367 (2015).
  12. Harding, C. R., Schroeder, G. N., Collins, J. W., Frankel, G. Use of Galleria mellonella as a model organism to study Legionella pneumophila infection. Journal of Visualized Experiments. (81), e50964 (2013).
  13. Jacobsen, I. D. Galleria mellonella as a model host to study virulence of Candida. Virulence. 5 (2), 237-239 (2014).
  14. Tsai, C. J., Loh, J. M., Proft, T. Galleria mellonella infection models for the study of bacterial diseases and for antimicrobial drug testing. Virulence. 7 (3), 214-229 (2016).
  15. Hirakawa, M. P., et al. Genetic and phenotypic intra-species variation in Candida albicans. Genome Research. 25 (3), 413-425 (2015).
  16. Dunn, M. J., Kinney, G. M., Washington, P. M., Berman, J., Anderson, M. Z. Functional diversification accompanies gene family expansion of MED2 homologs in Candida albicans. PLoS Genetics. 14 (4), (2018).
  17. Astvad, K. M. T., Meletiadis, J., Whalley, S., Arendrup, M. C. Fluconazole Pharmacokinetics in Galleria mellonella Larvae and Performance Evaluation of a Bioassay Compared to Liquid Chromatography-Tandem Mass Spectrometry for Hemolymph Specimens. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 61 (10), (2017).
  18. Mesa-Arango, A. C., et al. The non-mammalian host Galleria mellonella can be used to study the virulence of the fungal pathogen Candida tropicalis and the efficacy of antifungal drugs during infection by this pathogenic yeast. Med Mycol. 51 (5), 461-472 (2013).
  19. Brennan, M., Thomas, D. Y., Whiteway, M., Kavanagh, K. Correlation between virulence of Candida albicans mutants in mice and Galleria mellonella larvae. FEMS Immunology and Medical Microbiology. 34 (2), 153-157 (2002).
  20. Fuchs, B. B., O'Brien, E., Khoury, J. B., Mylonakis, E. Methods for using Galleria mellonella as a model host to study fungal pathogenesis. Virulence. 1 (6), 475-482 (2010).
  21. Kavanagh, K., Fallon, J. P. Galleria mellonella larvae as models for studying fungal virulence. Fungal Biology Reviews. 24 (1-2), 79-83 (2010).
  22. Hull, C. M., Johnson, A. D. Identification of a mating type-like locus in the asexual pathogenic yeast Candida albicans. Science. 285 (5431), 1271-1275 (1999).
  23. Legrand, M., et al. Homozygosity at the MTL locus in clinical strains of Candida albicans: karyotypic rearrangements and tetraploid formation. Molecular Microbiology. 52 (5), 1451-1462 (2004).
  24. Lockhart, S. R., et al. In Candida albicans, white-opaque switchers are homozygous for mating type. Genetics. 162 (2), 737-745 (2002).
  25. Miller, M. G., Johnson, A. D. White-opaque switching in Candida albicans is controlled by mating-type locus homeodomain proteins and allows efficient mating. Cell. 110 (3), 293-302 (2002).
  26. Wu, W., Lockhart, S. R., Pujol, C., Srikantha, T., Soll, D. R. Heterozygosity of genes on the sex chromosome regulates Candida albicans virulence. Molecular Microbiology. 64 (6), 1587-1604 (2007).
  27. Herrero, A. B., et al. KRE5 gene null mutant strains of Candida albicans are avirulent and have altered cell wall composition and hypha formation properties. Eukaryotic Cell. 3 (6), 1423-1432 (2004).
  28. Hall, R. A., et al. The Mnn2 mannosyltransferase family modulates mannoprotein fibril length, immune recognition and virulence of Candida albicans. PLoS Pathogens. 9 (4), 1003276 (2013).
  29. Wojda, I. Immunity of the greater wax moth Galleria mellonella. Journal of Insect Science. 24 (3), 342-357 (2017).
  30. Bergin, D., Reeves, E. P., Renwick, J., Wientjes, F. B., Kavanagh, K. Superoxide production in Galleria mellonella hemocytes: identification of proteins homologous to the NADPH oxidase complex of human neutrophils. Infection and Immunity. 73 (7), 4161-4170 (2005).
  31. Lange, A., et al. Genome Sequence of Galleria mellonella (Greater Wax Moth). Genome Announcements. 6 (2), (2018).
  32. Krappmann, S. Lightning up the worm: How to probe fungal virulence in an alternative mini-host by bioluminescence. Virulence. 6 (8), 727-729 (2015).
  33. Chowdhary, A., Voss, A., Meis, J. F. Multidrug-resistant Candida auris: 'new kid on the block' in hospital-associated infections. Journal of Hospital Infection. 94 (3), 209-212 (2016).
  34. Delarze, E., Ischer, F., Sanglard, D., Coste, A. T. Adaptation of a Gaussia princeps Luciferase reporter system in Candida albicans for in vivo detection in the Galleria mellonella infection model. Virulence. 6 (7), 684-693 (2015).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

141Candida albicansGalleria mellonellawaxworm

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены