Протокол на основе лазерной микродиссекции для анализа протеомного профиля гранул нейромеланина LC-MS/MS

Резюме

Здесь представлен надежный протокол для выделения гранул нейромеланина из посмертной субстанции nigra pars compacta человека с помощью лазерной микродиссекции. Этот пересмотренный и оптимизированный протокол значительно минимизирует необходимое время для сбора образцов, уменьшает требуемое количество образца и улучшает идентификацию и количественную оценку белков с помощью анализа LC-MS / MS.

Аннотация

Нейромеланин представляет собой черно-коричневатый пигмент, присутствующий в так называемых гранулах нейромеланина (НМГ) в дофаминергических нейронах черной субстанции pars compacta. Помимо нейромеланина, НМГ содержат различные белки, липиды и металлы. Хотя NMG-содержащие дофаминергические нейроны преимущественно теряются при нейродегенеративных заболеваниях, таких как болезнь Паркинсона и деменция с тельцами Леви, о механизме образования НМГ и роли НМГ в здоровье и болезни известно лишь немного. Таким образом, необходимы дальнейшие исследования молекулярной характеристики НМГ. К сожалению, стандартные протоколы выделения белков основаны на ультрацентрифугировании градиента плотности и поэтому требуют большого количества тканей человека. Таким образом, здесь установлен автоматизированный протокол на основе лазерной микродиссекции (LMD), который позволяет собирать NMG и окружающую ткань черной субстанции (SN) с использованием минимального количества ткани непредвзятым, автоматизированным способом. Иссеченные образцы впоследствии анализируются масс-спектрометрией для расшифровки их протеомного состава. С помощью этого рабочего процесса было идентифицировано 2079 белков, из которых 514 белков были идентифицированы исключительно в NMG и 181 в SN. Настоящие результаты были сопоставлены с предыдущим исследованием с использованием аналогичного подхода, основанного на LMD, достигшего перекрытия 87,6% для обоих протеомов, что подтверждает применимость пересмотренного и оптимизированного протокола, представленного здесь. Чтобы подтвердить текущие результаты, интересующие белки были проанализированы с помощью целевой масс-спектрометрии, например, параллельных экспериментов по мониторингу реакций (PRM).

Введение

Каждая ткань состоит из гетерогенной смеси различных типов клеток, но специфическое выделение одного типа клеток часто необходимо для более точной характеристики. Лазерная микродиссекция (LMD), соединяющая микроскоп с лазерным применением, является мощным инструментом для специфического выделения областей тканей, отдельных клеток или клеточных подструктур из сложного композита. Применение LMD в сочетании с масс-спектрометрией (LMD-MS) уже успешно реализовано для нескольких исследовательских вопросов, включая выделение ДНК¹, РНК² и белков ^3,4,5. В этом протоколе описан пересмотренный и оптимизированный протокол LMD-MS для протеомного анализа посмертной ткани мозга человека и субклеточных компонентов для расшифровки новых патомеханизмов болезни Паркинсона.

Нейромеланин представляет собой черный, почти нерастворимый пигмент, обнаруженный в катехоламинергических, дофамин-продуцирующих нейронах черной субстанции pars compacta⁶. Вместе с белками и липидами он накапливается в органеллоподобных гранулах, окруженных двойной мембраной, называемой гранулами нейромеланина (NMGs)^7,8,9. НМГ можно наблюдать с трехлетнего возраста у человека, увеличиваясь в количестве и плотности в процессе старения^10,11. На сегодняшний день нет определенной гипотезы об образовании нейромеланина, но одно предположение заключается в том, что нейромеланин образуется в результате окисления дофамина¹². Другие гипотезы основаны на ферментативной продукции нейромеланина (например, тирозиназы)¹³. Было обнаружено, что сам нейромеланин обладает высоким сродством связывания с липидами, токсинами, ионами металлов и пестицидами. Исходя из этих выводов, предполагается, что образование НМГ защищает клетку от накопления токсичных и окислительных веществ и от токсинов окружающей среды^14,15. Помимо этой нейропротекторной функции, есть доказательства того, что нейромеланин может вызывать нейродегенеративные эффекты, например, путем насыщения железом и последующего катализа свободных радикалов^16,17. Кроме того, нейромеланин, высвобождаемый во время нейродегенеративных процессов, может разлагаться перекисью водорода, которая может ускорить некроз реактивными металлами и другими токсичными соединениями, ранее связанными с нейромеланином, и может способствовать нейровоспалению и повреждению клеток¹⁸. Однако до сих пор точная роль НМГ в нейродегенеративных процессах, как при течении болезни Паркинсона, четко не изучена. Тем не менее, НМГ, по-видимому, участвуют в патогенезе болезни Паркинсона, и их специфический анализ имеет первостепенное значение для разгадки их роли в нейродегенерации. К сожалению, обычным лабораторным животным (например, мышам и крысам) и клеточным линиям не хватает NMG¹⁹. Поэтому исследователи особенно полагаются на посмертную ткань мозга для своего анализа. В прошлом выделение НМГ центрифугированием градиента плотности основывалось на наличии большого количества ткани черной субстанции ^20,21. Сегодня LMD представляет собой универсальный инструмент для специального выделения NMG из образцов человеческого мозга, чтобы затем проанализировать их с помощью LC-MS / MS.

В этом протоколе представлена улучшенная и автоматизированная версия предыдущего протокола²² для выделения NMG и окружающих тканей (SN), что позволяет быстрее генерировать образцы, большее количество идентифицированных и количественных белков и значительное сокращение необходимых количеств тканей.

протокол

Использование мозговой ткани человека было одобрено комитетом по этике Рурского университета в Бохуме, Германия (номер файла 4760-13), в соответствии с немецкими правилами и руководящими принципами. Этот протокол был применен к коммерчески полученным срезам ткани substantia nigra pars compacta . Графический обзор представленного протокола показан на рисунке 1.

1. Сечение тканей

1. Предварительно охладите криостатную камеру.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Каждая ткань требует различных температур криостата, которые можно найти в соответствующем протоколе поставщика.
2. Очистите нож из нержавеющей стали с 70% этанолом и установите его в держатель лезвия.
3. Перенесите ткань из морозильной камеры -80 °C в криостат с помощью ледяного ящика и дайте ей приспособиться к температуре криостатной камеры в течение 15 минут.
4. Однозначно маркируйте мембранные слайды карандашом.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Для сбора проб на основе LMD требуются мембранные слайды ПЭТ/ПЕН. Обращайтесь с мембранными слайдами ПЭТ/ПЕН с осторожностью, так как они чрезвычайно хрупкие.
5. Нанесите каплю коммерческой замороженной срезной среды на держатель ткани. Прежде чем он будет полностью заморожен, поместите ткань на замороженный слой среды и дайте ей затвердеть, чтобы ткань была соединена с держателем ткани.
6. Установите держатель ткани в криостатную камеру и отрегулируйте его ориентацию перед началом сечения. Оптимальная ориентация держателя зависит от ориентации ткани.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Может потребоваться обрезать ткань до тех пор, пока не будет достигнута плоскость сечения, необходимая для срезов.
7. Прежде чем будет достигнута область ткани, представляющая интерес, отрегулируйте настройку разреза до желаемой толщины ткани.
   ПРИМЕЧАНИЕ: 5 или 10 мкм является рекомендуемой толщиной для этого протокола, поскольку было установлено, что участки толщиной 20 мкм несовместимы со сбором образцов²² на основе LMD.
8. Вырежьте две секции и отбросьте их.
9. Положите противокатаную пластину.
10. Отрежьте участок ткани, осторожно откройте антирулонную пластину, возьмите мембранный слайд и предотвратите сворачивание ткани, разместив участок ткани на мембранном слайде.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Хранение мембранных слайдов при комнатной температуре перед адгезией обеспечивает точное прикрепление образца. Несколько секций могут быть помещены на один и тот же мембранный слайд, но перекрытие тканей должно быть предотвращено.
11. Храните участки тканей, размещенные на мембранных слайдах в криостате, до тех пор, пока не будет завершено сечение.
12. Храните криосекционную ткань при -20 °C до дальнейшей обработки или непосредственно приступайте к процедуре ниже. Храните разрезанные тканевые слайды при -80 °C до дальнейшего использования.

2. Лазерная микродиссекция и катапультирование давлением

ПРИМЕЧАНИЕ: Поскольку гранулы нейромеланина видны без какого-либо окрашивания из-за их черно-коричневатого цвета, для этого протокола окрашивание не требуется. Тем не менее, различные процедуры окрашивания могут быть объединены с этим протоколом, если это необходимо. Имейте в виду, что использование блокирующих растворов или антител повлияет на анализы LC-MS / MS.

1. Включите систему MicroBeam и откройте соответствующее программное обеспечение на компьютере (см. Таблицу материалов).
2. Поместите слайд тканевой мембраны в SlideHolder на RoboStage, повернув ткань вверх.
   ПРИМЕЧАНИЕ: В зависимости от устройства LMD может потребоваться размещение мембранного слайда таким образом, чтобы ткань была обращена вниз. Как правило, отбор проб осуществляется в среде с контролируемой температурой для обеспечения оптимальных и воспроизводимых условий.
3. Установите микроскоп на нужное увеличение (здесь используется 50-кратное) для обзорного сканирования.
4. Используйте функцию Scan, которую можно найти в окне Navigator интерфейса программного обеспечения, чтобы получить обзорное сканирование участка ткани. Найдите верхний левый угол и нижний правый угол интересующей области и выберите их в интерфейсе программного обеспечения. Затем выберите Сканировать все ROI , чтобы выполнить сканирование.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Обзорное сканирование не является обязательным, но оно обеспечивает лучшую ориентацию на слайде и может быть сохранено для последующего использования.
5. Отрегулируйте увеличение микроскопа для соответствующей ткани, которое в 400 раз в данном случае гранул нейромеланина.
6. Поиск области с гранулами нейромеланина. Выберите Анализ поля зрения в программном интерфейсе, выберите Инвертировать результат и установите пороговое значение для каналов RGB таким образом, чтобы только гранулы нейромеланина выделялись красным цветом в окне предварительного просмотра. Нажмите OK , чтобы использовать скорректированные настройки для поля зрения.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Может случиться так, что небольшие объекты, имеющие темный цвет, также будут выбраны. Чтобы учесть это, отбросьте все объекты, занимающие площадь менее 100^мкм2 , прежде чем выделять гранулы нейромеланина. Для этого откройте Список элементов, нажав на иконку на панели инструментов, выберите рассматриваемый слайд и упорядочите элементы по областям. Выберите области размером менее 100^мкм2 и удалите их.
7. Отрегулируйте настройки лазера, используя область слайда, которая покрыта только мембраной.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуется использовать мастер настройки лазера резки и следовать инструкциям программного обеспечения. Требуемые настройки лазера могут отличаться в разных слайдах. Для 5-мкм секций с 400-кратным увеличением типичные настройки составляют 32 энергии и 51 фокус для резки и 28 энергий и -1 фокус для лазерной импульсной катапультации (LPC).
8. Отрегулируйте настройки скорости для позиционирования и резки , чтобы обеспечить надлежащую изоляцию.
   ПРИМЕЧАНИЕ: 30% скорость была признана оптимальной для изоляции НМГ.
9. Заполните крышку пробирки для сбора проб сверхчистой водой объемом 50 мкл и вставьте колпачок в коллектор RoboMover.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Трубчатый коллектор, используемый для настоящих экспериментов, может нести одну пробирку для сбора проб за раз.
10. Расположите RoboMover над RoboStage II с помощью программного интерфейса, чтобы начать сбор образцов.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для этого откройте окно RoboMover, в котором отображается коллектор. Нажмите на колпачок пробирки для сбора образцов, отображаемый в окне RoboMover, чтобы переместить колпачок в рабочую зону. Отрегулируйте оптимальную высоту перемещения и рабочей высоты в окне RoboMover. В противном случае вода в крышке может упасть на горку или катапультированные объекты не достигнут крышки.
11. Запустите лазер. Управляйте настройками энергии и фокусировки во время лазерного процесса и при необходимости регулируйте настройки. Обеспечьте надлежащую изоляцию и катапультирование изолированных объектов в колпачок пробоотборника по крайней мере для первых десяти объектов.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Правильная изоляция и катапультирование должны быть проверены визуально. Оба должны привести к созданию свободной от тканей области размером с предварительно выбранный объект в срезе ткани (см. Рисунок 2C,D). Отрегулируйте настройки лазера, если объект остается прикрепленным к срезу ткани после резки и катапультирования. Для катапультирования вариант CenterRoboLPC хорошо подходит для изоляции НМГ. Параметры катапультирования можно настроить для каждого выбранного объекта в списке элементов.
12. После завершения выборки переместите RoboMover в исходное положение. Извлеките пробирку для сбора проб.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Когда количество собранных объектов довольно мало, а объекты достаточно велики, сбор образцов может быть обеспечен нажатием кнопки Cap Check, которая поместит крышку трубки для сбора образцов под микроскоп, чтобы можно было подсчитать количество объектов внутри воды в колпачке (см. Рисунок 2H).
13. Открутите образец с помощью центрифуги. Короткие спины 5 с с увеличением центробежной силы за счет ускорения центрифуги были признаны достаточными. На этом этапе храните образцы при -80 °C, так как все образцы должны быть дополнительно обработаны вместе.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для сравнения протеомного профиля ткань, окружающая НМГ, также была выделена после их иссечения. Выделение окружающих тканей выполняли при 50-кратном увеличении.
14. Высушите образцы в вакуумном концентраторе. Было установлено, что 1,5 ч достаточно для 50 мкл воды.
15. Солюбилизируют и лизируют ткань в 40 мкл муравьиной кислоты в течение 20 мин (комнатная температура).
16. Усиливают лизис тканей путем обработки ультразвуком при 45 кГц (килогерц) в течение 5 мин в ванне с ультразвуком. Наполните ванну с ультразвуком льдом, чтобы предотвратить таяние трубок. Храните образцы при температуре -80 °C до дальнейшей обработки.

3. Триптическое пищеварение

1. Разморозка образцов на льду.
2. Полностью высушите образцы в вакуумном концентраторе.
3. Заполните образец 50 мкл подходящего буфера пищеварения, например, бикарбонатом аммония 50 мМ.
4. После добавления 1,25 мкл 200 мМ 1,4-дитиотрейтола инкубируют образцы в течение 30 мин при 60 °C и 300 об/мин с помощью термомикшера и затем охлаждают их до комнатной температуры (RT).
5. Затем инкубируют образцы на RT в течение 30 мин в темноте после добавления 1,36 мкл 0,55 М йодоацетамида.
6. Добавьте подходящее количество трипсина в образцы и инкубируйте образцы в течение ночи (~16 ч) при 37 °C.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Для 1 000 000^мкм2 было признано достаточным 0,1 мкг трипсина.
7. Добавьте 2,6 мкл 10% трифторуксусной кислоты (TFA) в образцы, чтобы остановить пищеварение (конечная концентрация 0,5% TFA).
8. Полностью высушите образцы с помощью вакуумного концентратора. Затем заполните образцы до определенного конечного объема с 0,1% TFA. Образцы НМГ заполняли до 20 мкл, из которых 5 мкл использовали для одного масс-спектрометрического (МС) эксперимента.
9. Храните образцы при температуре -80 °C до дальнейшего использования. Определение концентрации пептидов с помощью анализа аминокислот или другого подходящего метода количественной оценки (например, Direct Detect).
   ПРИМЕЧАНИЕ: Низкие количества проб могут не поддаваться количественной оценке с использованием упомянутых методов. Чтобы обеспечить одинаковую загрузку образца, каждый образец должен содержать одинаковое количество изолированной ткани, и каждый образец должен рассматриваться одинаково.

4. Высокоэффективная жидкостная хроматография и масс-спектрометрия

ПРИМЕЧАНИЕ: Следующий высокопроизводительный масс-спектрометрический (MS) анализ жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) оптимизирован для конкретной системы LC с устройством улавливающей колонны и масс-спектрометром, используемым здесь (см. Таблицу материалов). Для других систем LC и MS рекомендуется адаптация параметров.

1. Используя программное обеспечение Xcalibur, настройте параметры ВЭЖХ следующим образом.
   1. Колонка ловушки: Установите температуру на 60 °C, скорость потока до 30 мкл/мин, работающий буфер до 0,1% трифторуксусной кислоты.
   2. Аналитическая колонка C18 с обратной фазой: установите температуру на уровне 60 °C, скорость потока до 30 мкл/мин, работающий буфер A до 0,1% трифторуксусной кислоты, работающий буфер B до 84% ацетонитрила и градиент до 5%-30% работающего буфера B в течение 98 мин.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Адаптация градиента может быть неизбежной и настоятельно рекомендуется при использовании различных тканей или клеток. Общее время градиента может изменяться из-за загрузки образца в начале градиента и промывки образца в конце градиента. Общий градиент в этом протоколе состоит из 7-минутной загрузки образца и дополнительной промывки колонны в течение 15 минут, что приводит к общему времени градиента 120 мин.
2. Создайте метод сбора данных (DDA) с помощью XCalibur Instrument Setup, который можно найти в меню дорожной карты программного обеспечения HPLC.
3. На вкладке Глобальные параметры определите режим инфузии Жидкостная хроматография, Ожидаемая пиковая ширина LC (30 с) и Состояние заряда по умолчанию (2).
4. Перейдите на вкладку Параметры сканирования и добавьте следующие сканы и фильтры в указанном порядке: MS OT, MIPS, Интенсивность, Состояние заряда, Динамическое исключение и ddMS2 OT HCD.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Подробные настройки параметров для каждого сканирования и фильтра можно найти в дополнительной таблице 1. Оптимальные настройки MS и DDA могут варьироваться для конкретного используемого масс-спектрометра, а также типа образца и, следовательно, должны быть адаптированы.
5. Подготовка образцов путем растворения 200-400 нг пептидов образца в определенном объеме 0,1% TFA в инертных масс-спектрометрических стеклянных флаконах. Если определение концентрации неприменимо из-за низкого количества пробы, проверьте одинаковую загрузку образца, сравнив общий ионный ток (TIC).
   ПРИМЕЧАНИЕ: Для этого откройте полученный файл масс-спектрометрических измерений в подходящем программном обеспечении, например, FreeStyle, и проверьте хроматограмму. Интенсивность должна быть сопоставимой для всех образцов. Репрезентативный ИТК показан на рисунке 3.
6. Проанализируйте необработанные данные, полученные с помощью протеомного подходящего программного обеспечения, например, MaxQuant²³, Progenesis QI для протеомики или Proteome Discoverer, и выполните статистический анализ данных на основе исследовательского вопроса.

5. Анализ протеомных необработанных данных с использованием MaxQuant

ПРИМЕЧАНИЕ: Подробная информация о параметрах MaxQuant приведена в Дополнительной таблице 2. Они кратко описаны ниже.

1. Загрузите необработанные файлы в программное обеспечение MaxQuant в заголовке необработанных данных, нажав кнопку Загрузить.
2. Назначьте имена образцов, щелкнув Установить эксперимент.
3. Определите параметры, специфичные для группы. Во-первых, добавьте изменения. В связи с обработкой образцов выберите деамидацию (NQ), окисление (M) и карбамидометилирование (N-член) в качестве переменных модификаций и добавьте карбамидометилирование (C) в качестве фиксированной модификации.
4. Выберите Трипсин в качестве фермента пищеварения во вкладке Пищеварение .
5. Добавьте опцию бесплатной количественной оценки меток LFQ на вкладке Label Free Quantification . Если необходимо обработать более 10 файлов, выберите параметр Fast LFQ , чтобы сократить время обработки. Добавьте опцию iBAQ в качестве меры для количественной оценки белка²⁴.
6. Убедитесь, что все остальные параметры группы остаются в заводских настройках.
7. Перейдите на вкладку Глобальные параметры и добавьте файл FASTA, производный от uniprot.org на вкладке Последовательности . Измените правило идентификатора соответствующим образом и добавьте идентификатор таксономии, в данном случае 9606 для homo sapiens.
8. Для количественной оценки белка выбирайте пептиды Unique и Razor .
9. Убедитесь, что все остальные глобальные параметры остаются в заводских настройках.
10. Нажмите «Пуск» и извлеките белковые группы.txt выходные данные после анализа MaxQuant для дальнейшего анализа в Perseus.

6. Статистический анализ с использованием Персея

1. Загрузите белковые группы.txt файл в Perseus, добавьте значения iBAQ в качестве основных столбцов и отсортируйте все остальные столбцы в соответствии с их типом.
2. Отфильтровывайте приманки и загрязняющие вещества, фильтруя строки на основе категориального столбца.
3. Фильтрация результатов на основе допустимых значений. В данном случае, когда в анализ были включены только два образца, было выбрано минимальное число из одного допустимого значения.
4. Экспортируйте выходные данные Perseus в формате .txt для дальнейшей обработки, например, в Excel, и оцените результаты по исследовательскому вопросу.

7. Валидация выбранных белков

ПРИМЕЧАНИЕ: Обычно используемыми методами валидации данных РС являются, например, иммунологическое окрашивание или вестерн-блот. Из-за темного цвета и аутофуоресценции нейромеланина иммунологическое окрашивание белков внутри гранул нейромеланина либо пероксидазой хрена, либо флуорофор-конъюгированными антителами неприменимо. Для анализа Вестерн Блотт потребуется очень большое количество посмертной ткани. Поэтому выбранные белки проверяются целевой масс-спектрометрией, и в данном случае были поставлены эксперименты по параллельному мониторингу реакций (PRM).

1. Выберите белки для проверки. Выбирайте пептиды этих белков, уже обнаруженных в экспериментах DDA. Пептиды не должны содержать пропущенных расщеплений или модификаций для обеспечения надежной количественной оценки.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Причин для валидации одного конкретного белка может быть несколько, например, дифференциальное содержание в исследуемых условиях. Для репрезентативных результатов был выбран цитоплазматический динеин 1 тяжелой цепи 1, который, как было установлено, эквивалентно распространен в образцах НМГ и SN и поэтому может быть использован в качестве эталона для обеспечения равной загрузки образца.
2. Используйте выбранные пептиды для настройки первой версии PRM-метода с помощью программного обеспечения ВЭЖХ. Сохраните все настройки хроматографии и глобальных параметров из метода DDA.
3. Добавьте MS OT и tMS² OT HCD в качестве типов сканирования. Убедитесь, что параметры для MS OT совпадают с параметрами метода DDA. Подробные настройки метода PRM можно найти в дополнительной таблице 1.
4. Для tMS² OT HCD добавьте выбранные пептиды в качестве списка включения. Поэтому добавьте аминокислотную последовательность и значение m/z, наблюдаемое в измерениях DDA. Для первого эксперимента PRM не добавляйте окна времени удержания или устанавливайте t start равным 0, а t stop равным 120 (для 120-минутного градиента).
5. Оцените метод PRM после измерения с помощью подходящего программного обеспечения, например, Skyline, и получите время удержания пептидов, добавленных в список включения. Для включенных пептидов проверьте, что сопоставимые пики наблюдаются по крайней мере для трех ионов-предшественников в сканировании MS1 и пяти фрагментов ионов в сканировании MS2 с погрешностью низкой массы (±5 ppm).
6. Уточните метод PRM, например, увеличив разрешение для сканирования tMS² OT HCD и добавив окна времени хранения в список включения.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Было обнаружено, что окна времени удержания в 3 мин хорошо подходят для настоящих экспериментов (наблюдаемое время удержания в первом эксперименте PRM ± 1,5 мин).
7. С помощью усовершенствованного PRM-метода выполняют количественную оценку интересующих пептидов и белков на основе пиковой области как на уровнях MS1, так и на УРОВНЯХ MS2 с помощью соответствующего программного обеспечения.

Результаты

Специфическая изоляция NMG и ткани SN является наиболее важным шагом для успешного применения этого протокола. Используя функцию анализа поля зрения в программном обеспечении LMD, предоставляемом поставщиком, NMG могут быть автоматически выбраны в зависимости от цвета. Поэтому не...

Обсуждение

LMD является широко применимым методом выделения определенных областей тканей, отдельных клеток или субклеточных структур. В пересмотренном и автоматизированном протоколе, представленном здесь, этот метод применяется для специфической изоляции гранул нейромеланина (NMG) и NMG-окружающи?...

Материалы

Name	Company	Catalog Number	Comments
1,4-dithiothreitol	AppliChem	A1101
Acetonitrile	Merck	1.00029.2500
Ammonium bicarbonate	Sigma-Aldrich	A6141
Formic acid	Sigma-Aldrich	56302
Iodoacetamide	AppliChem	A1666,0100
Micro Tube 500	Carl Zeiss	415190-9221-000
Orbitrap Fusion Lumos Tribrid mass spectrometer	Thermo Fisher Scientific	IQLAAEGAAPFADBMBHQ
PALM MicroBeam	Zeiss	494800-0014-000
PEN Membrane slide	Carl Zeiss	415190-9041-000
substantia nigra pars compacta tissue slices	Navarrabiomed Biobank (Pamplona, Spain)
Trifluoroacetic acid	Merck	91707
Trypsin sequencing grade	Serva	37283.01
Ultimate 3000 RSLC nano LC system	Thermo Fisher Scientific	ULTIM3000RSLCNANO
Name of Software	Weblink/Company	Version
FreeStyle	Thermo Fisher Scientific	1.6
MaxQuant	https://www.maxquant.org/	1.6.17.0
PALMRobo	Zeiss	4.6 pro
Perseus	https://www.maxquant.org/perseus/	1.6.15.0
Skyline	https://skyline.ms/project/home/software/Skyline/begin.view	20.2.0.343
XCalibur	Thermo Fisher Scientific	4.3