JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Потребность в новых подходах к изучению сайтов контакта мембран (МКС) возросла в связи с возрастающим интересом к изучению этих клеточных структур и их компонентов. Здесь мы представляем протокол, который объединяет ранее доступные технологии микроскопии для идентификации и количественного определения внутриорганелловых и межорганелловых белковых комплексов, которые находятся в MCS.

Аннотация

Сайты контакта с мембраной (MCS) представляют собой области близкого расположения мембран, которые позволяют и регулируют динамический обмен различными биомолекулами (т.е. кальцием и липидами) между сопоставленными органеллами без участия слияния мембран. МКС необходимы для клеточного гомеостаза, а их функции обеспечиваются резидентными компонентами, которые часто существуют в виде мультимерных белковых комплексов. MCS часто вовлекают эндоплазматический ретикулум (ER), основной участок синтеза липидов и клеточного хранения кальция, и особенно важны для органелл, таких как митохондрии, которые исключены из классических везикулярных транспортных путей. В последние годы МКС между ЭР и митохондриями были широко изучены, поскольку их функции сильно влияют на клеточный метаболизм/биоэнергетику. В этих местах контакта начали идентифицироваться несколько белков, в том числе мембранные тросы, кальциевые каналы и белки переноса липидов, что повышает потребность в новых методологиях и технических подходах для изучения этих компонентов MCS. Здесь мы описываем протокол, состоящий из комбинированных технических подходов, которые включают анализ с бесконтактным лигированием (PLA), окрашивание митохондрий и сегментацию 3D-визуализации, которые позволяют обнаруживать белки, которые физически близки друг к другу (>40 нм) и находятся на одной мембране в ER-митохондриях MCS. Например, мы использовали два ER-закрепленных белка переноса липидов, ORP5 и ORP8, которые, как было показано ранее, взаимодействуют и локализуются в ER-митохондриях и ER-плазматических мембранах. Связав PLA ORP5-ORP8 с программным анализом программного обеспечения для визуализации клеток, удалось оценить расстояние комплекса ORP5-ORP8 от поверхности митохондрий и определить, что около 50% взаимодействия ORP5-ORP8 PLA происходит в субдоменах ER в непосредственной близости от митохондрий.

Введение

Межорганеллярная коммуникация является определяющей характеристикой эукариотических клеток. Одним из способов, с помощью которого органеллы взаимодействуют, является образование участков мембранного контакта (MCS), которые представляют собой тесные мембранные оппозиции между двумя органеллами, которые поддерживаются структурными и функциональными белками, такими как связывания, белки переноса липидов и кальциевыеканалы. MCS могут устанавливаться между похожими или разными органеллами, и они опосредуют обмен клеточными компонентами, что важно для поддержания клеточного гомеостаза. На сегодняшний день идентифицировано несколько МКС, включая эндоплазматический ретикулум (ЭР)-митохондрии, ЭР-плазматическую мембрану (ПМ) и ЭР-липидно-капельные (ЛД) контакты1. Среди них те, которые образуются между ЭР и митохондриями (MERCS), являются одними из наиболее изученных, поскольку они участвуют в регуляции нескольких клеточных функций, включая липидный и кальциевый гомеостаз2. Поскольку митохондрии в значительной степени исключены из классических везикулярных транспортных путей, они полагаются на MERCS и их молекулярные составляющие для импорта ключевых липидов или предшественников липидов из ER. Невезикулярный транспорт этих липидов через MERCS обеспечивает поддержание надлежащего липидного состава митохондрий, а также их функциональной и структурной целостности3.

Учитывая решающее участие MCS в различных клеточных функциях, интерес к более глубокому пониманию их молекулярных компонентов значительно возрос в последние годы. Для углубления знаний о MCS было использовано несколько типов подходов, основанных на визуализации. Среди них флуоресцентный зондовый анализ с бесконтактным лигированием (PLA) широко используется в качестве индикатора обилия MCS путем обнаружения межорганелловых белок-белковых взаимодействий (в диапазоне обнаружения 40 нм) на эндогенных уровнях4. Например, MERCS были визуализированы и количественно оценены с помощью PLA между несколькими парами белков митохондрий-ER, включая VDAC1-IP3R, GRP75-IP3R, CypD-IP3 и PTPIP51-VAPB 5,6,7,8. Несмотря на то, что эта технология использовалась для обнаружения и количественной оценки межорганелловых белок-белковых взаимодействий, присутствующих в MCS 5,7,9,10,11, в большинстве исследований PLA не сочетали с окрашиванием органелл. Следовательно, количественный метод, позволяющий измерять близость между взаимодействиями PLA и ассоциированными органеллами, до сих пор не разработан. Таким образом, до сих пор в случае белков ER их взаимодействие внутри мембранных субдоменов, контактирующих с другими органеллами, не отличалось от их взаимодействия в широко распространенной сети ER.

В данной статье мы опишем протокол для обнаружения PLA-взаимодействий между белками, находящимися в мембране одной и той же органеллы, и анализа их близости к мембране органеллы-партнера в MCS. Этот протокол был разработан на основе двух предпосылок: 1) предыдущие исследования, показывающие, что в условиях гиперэкспрессии белки переноса липидов ER ORP5 и ORP8 совместно локализуются и взаимодействуют в ER-митохондриях и ER-PM MCS 12,13,14,15 и что ORP5 локализуется в контактах ER-LD 16,17; 2) существующие технологии, включая PLA, конфокальную микроскопию, мечение органелл и анализ 3D-изображений.

протокол

1. Митохондриальное окрашивание и анализ с бесконтактным лигированием (PLA)

  1. Планшет 0,5 x 10 5-2 x 10 5 клеток HeLa, поддерживаемых в модифицированной среде Eagle (DMEM) Dulbecco с добавлением 10% FBS, 1% пенициллина/стрептомицина и 1% заменимых аминокислот при 37 °C с 5% CO2, в стеклянных покровных стеклах диаметром 13 мм в1,5 в 24-луночных планшетах при разведении, обеспечивающем слияние 75%-90% клеток в день процедуры.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Следует отметить, что клетки HeLa могут быть подвергнуты дополнительному лечению, такому как лечение миРНК и/или трансфекция плазмиды ДНК, перед окрашиванием митохондриями и PLA.
  2. Митохондриальное окрашивание
    1. Промойте клетки один раз в предварительно разогретой до 37 °C среде без сыворотки. Инкубируют клетки в предварительно подогретой безсывороточной среде в течение 10 мин при 37 °C с 5%СО2.
    2. Приготовьте 1 мкМ красный митохондриальный маркер в предварительно подогретой безсывороточной среде.
    3. Инкубируют клетки с 500 мкл раствора митохондриальных маркеров в течение 30 мин при 37 °C с 5% CO2. Во время обработки митохондриальными маркерами и последующих шагов протокола держите клетки на покровных стеклах максимально защищенными от света.
    4. После инкубации промывают клетки 1 раз в предварительно подогретой безсывороточной среде и 2 раза в 1 растворе в фосфатно-солевом буфере (PBS). Выполняйте этот шаг как можно быстрее, так как длительные этапы промывки перед фиксацией могут повлиять на морфологию митохондрий.
    5. Удалите 1x PBS с покровных стекол и зафиксируйте клетки, инкубируя их в свежеприготовленном 4% PFA (в 1x PBS) в течение 30 минут при комнатной температуре (в темноте) под химическим колпаком. Промывайте 3 раза в течение 2 минут в 500 мкл 1x PBS (с помощью одноразовых пипеток или вакуумной системы, подключенной к насосу).
    6. Извлеките 1x PBS и инкубируйте покровные стекла с 500 мкл 50 мМ NH4Cl в течение 15 минут при комнатной температуре (в темноте). Промыть 1x в течение 2 минут в 500 мкл 1x PSB с помощью вакуумной системы.
    7. Промыть 3 раза в течение 2 мин в 500 мкл блокирующего буфера 1 (BB1, 1% BSA, 0,1% сапонин в 1x PBS) для ORP5-ORP8 PLA или блокирующего буфера 2 (BB2, 2% BSA, 0,1% нормальной козьей сыворотки, 0,1 сапонина в 1x PBS) для ORP8-PTPIP51 PLA.
    8. Переложите покровные стекла с 24-луночной пластины во влажную камеру. После переноса покровных стекол в камеру добавьте 100 мкл BB (BB1 или BB2, в зависимости от используемых пар антител), чтобы избежать сухости.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Камеру влажности, защищенную от света, можно легко и быстро получить, завернув чашку Петри (пластиковую или стеклянную) в алюминиевую фольгу и добавив несколько кусочков влажного бумажного полотенца по периферии чашки Петри.
  3. Анализ на бесконтактное лигирование (PLA)
    ПРИМЕЧАНИЕ: Протокол PLA соответствует инструкциям производителя с небольшими изменениями.
    1. Инкубация первичных антител
      1. Приготовьте рабочий раствор первичных антител. Разбавьте анти-ORP5 кролика (1:150) плюс мышиный анти-ORP8 (1:200) в BB1, мышиный анти-ORP8 (1:200) плюс кроличий анти-PTPIP51 (1:200) в BB2 и кролик анти-ORP5 (1:150) плюс мышиный анти-PTPIP51 (1:200) в BB1. Приготовьте (не менее) 40 мкл раствора первичных антител на покровное стекло (например, 0,27 мкл кроличьего анти-ORP5, 0,2 мкл мышиного анти-ORP8, 39,53 мкл BB1).
      2. Удалите BB из предыдущей промывки (шаг 1.2.8) с помощью вакуумной системы и добавьте 40 мкл раствора первичных антител к покровным стеклам. Выдерживают 1 ч при комнатной температуре в защищенной от света влажной камере.
    2. Промывайте покровные стекла 3 раза в течение 5 минут 100 мкл соответствующего BB с помощью вакуумной системы.
    3. Инкубация зонда PLA
      1. Приготовьте рабочий раствор зондов PLA. Разведите кроличьи щупы PLA PLUS (1:5) и мышиного MINUS (1:5) в BB и перемешайте. Для каждого покровного стекла приготовьте (не менее) 40 мкл раствора зонда PLA (например, 8 мкл кроличьего зонда PLUS PLA, 8 мкл мышиного зонда MINUS PLA, 24 мкл BB). Перед использованием дайте раствору зонда PLA постоять 20 минут при комнатной температуре.
      2. Удалите BB с покровных стекол (из шага 1.3.2) с помощью вакуумной системы и добавьте 40 мкл раствора зонда PLA к покровным стеклам. Инкубировать в течение 1 ч при температуре 37°C во влажностной камере, защищенной от света.
    4. Промывайте покровные стекла 2 раза в течение 5 минут в 100 мкл 1x буфера для промывки А при комнатной температуре.
    5. Лигатура
      1. Разведите 5-кратный лигирующий буфер до 1:5 в сверхчистой воде и перемешайте. Для каждого покровного стекла приготовьте (не менее) 40 мкл лигового раствора (8 мкл 5-кратного лигаторного буфера, 31 мкл сверхчистой воды).
      2. Добавьте лигазу (1 Ед/мкл, входит в комплект PLA) к 1 лигированному буферу, приготовленному на предыдущем этапе, в разведении 1:40, и перемешайте.
      3. С помощью вакуумной системы удалить 1 промывочный буфер А (из шага 1.3.4), добавить к покровным стеклам 40 мкл раствора лигазы и инкубировать в течение 30 мин при температуре 37 °C во влажностной камере, защищенной от света.
    6. Промыть покровные стекла 2 раза в течение 2 минут в 100 мкл 1x буфера для промывки A при комнатной температуре с помощью вакуумной системы.
    7. Полимеризация
      1. Разбавьте 5-кратный буфер усиления 1:5 в сверхчистой воде и перемешайте. Для каждого покровного стекла приготовьте (не менее) 40 мкл раствора для амплификации (8 мкл буфера для амплификации 5x, 31,5 мкл сверхчистой воды).
      2. Добавьте полимеразу (10 Ед/мкл, входит в комплект PLA) к полимеризационному буферу 1x, приготовленному на предыдущем этапе, в разбавлении 1:80, и перемешайте.
      3. С помощью вакуумной системы удалить 1 промывочный буфер А (из шага 1.3.6), добавить к покровным стеклам 40 мкл раствора полимеразы и инкубировать в течение 1 ч 40 мин при 37 °C во влажностной камере, защищенной от света.
    8. Удалить раствор полимеразы с покровных стекол и промыть 2 раза в течение 10 мин в 100 мкл 1 промывочного буфера B при комнатной температуре во влажностной камере, защищенной от света.
    9. Промыть покровные стекла 1 раз в течение 1 мин в 100 мкл 0,001 промывочного буфера B при комнатной температуре в камере влажности, защищенной от света.
    10. Устанавливают покровные стекла на предметные стекла для микроскопии, используя монтажную среду с DAPI (концентрация 1,6-0,4 мкг/мл). Запечатайте лаком для ногтей.

2. Получение изображения

  1. Наблюдайте за результатами PLA и получайте изображения с помощью флуоресцентной конфокальной микроскопии с 63-кратным объективом для погружения в масло с помощью прилагаемого программного обеспечения.
  2. Установите возбуждение флуоресценции с помощью лазерного диода с длиной волны 405 нм или лазера белого света и соберите спектральные окна с помощью GaAsP PMT или гибридных детекторов. В каждой фокальной плоскости (300 нм) регистрируются флуоресцентные сигналы для PLA (λex = 488 нм, λem = 505-560 нм) и митохондрий (λex = 543 нм, λem = 606-670 нм).

3. Обработка изображений и оценка пятен PLA, ассоциированных с митохондриями

  1. Обработайте конфокальные изображения с помощью программного обеспечения для анализа изображений, которое генерирует карты расстояний между клеточными компонентами. Выполните следующие действия, чтобы создать 3D-реконструкцию пятен PLA и митохондриальной сети и получить доступ к расстоянию между ними с помощью программного обеспечения для визуализации клеток (рис. 1).
  2. Установка расширения 3D карты расстояний
    1. Установите как пакет программного обеспечения для анализа клеток с опцией XT, так и программное обеспечение MATLAB или только среду выполнения компилятора MATLAB (MRC), которую можно бесплатно загрузить с веб-сайта.
    2. Настройте программное обеспечение для анализа ячеек на запуск MATLAB при запуске XTension следующим образом: в меню Imaris (Mac OS X) или Edit (Windows) выберите Preferences, перейдите на панель Custom Tools , а затем задайте путь:
      C:\Program Files\MATLAB\R201Xa_x64\bin\win64\MATLAB .exe для Windows или/Applications/MATLAB_R201Xa.app/bin/matlab для Mac OS X.
  3. Импортируйте изображения в программное обеспечение
    1. Преобразуйте изображения конфокального стека в . IMS, либо непосредственно через раздел Arena, либо с помощью автономного конвертера файлов , который позволяет выполнять пакетное преобразование.
    2. После импорта убедитесь, что изображения остаются правильно откалиброванными. Нажмите кнопку Edit > Image Properties > Image Geometry и убедитесь, что размер воксела соответствует в X и Y размеру пикселя, ожидаемому для фактического изображения (см. калибровку изображения в программном обеспечении для съемки), и что размер воксела в Z соответствует шагу, приложенному микроскопом для создания Z-стека. Если значения неверны, измените их, чтобы обеспечить правильную оценку расстояний на следующих шагах.
    3. Отрегулируйте контрастность различных каналов в меню Display Adjustment, нажав на Edit > Show Display Adjustment. Настройте каждый канал независимо, чтобы оптимизировать отображение каждого цвета. Этот шаг не влияет напрямую на значения изображения, но необходим для установки точных пороговых значений или обнаружения слабых объектов.
    4. Ограничьте анализ одной ячейкой, обрезав изображение с помощью опций Редактировать > Обрезать 3D. Чтобы проанализировать другую ячейку в том же поле зрения, откройте то же изображение еще раз и обрежьте его по-другому.
  4. Обнаружение пятен ORP5-ORP8
    1. Чтобы обнаружить сигналы PLA, сгенерированные в месте взаимодействия ORP5 и ORP8, нажмите на опцию Add New Spots , которая создает новый набор объектов и открывает мастер обнаружения пятен.
    2. Выберите канал, на котором должно выполняться точечное обнаружение.
    3. Отрегулируйте предполагаемый диаметр XY (диапазон должен быть скорректирован, если размер объекта отличается), чтобы помочь алгоритму обнаружения пятен найти интересующие объекты. Обратите внимание, что если выбранное значение слишком велико, соседние объекты будут объединены. Если значение слишком мало, один сигнал может рассматриваться как несколько объектов, или могут быть обнаружены аберрантные сигналы.
    4. Нажмите на Вычитание фона , чтобы удалить фон изображения перед обнаружением пятна и усилить локальный контраст вокруг интересующих объектов.
    5. Отрегулируйте порог обнаружения пятен, сохранив качество (интенсивность в центре объекта) в качестве параметра порога и программного автоматического порога, или немного измените это значение, чтобы обнаружить все объекты. После завершения обнаружения пятен сохраните параметры обнаружения и повторно используйте их для обработки других изображений.
  5. Обнаружение митохондриальных сетей
    1. Найдите митохондриальную сеть для создания рендеринга поверхности, щелкнув Add new Surfaces , чтобы создать новый объект, и откройте мастер обнаружения поверхности.
    2. Выберите канал, на котором должно быть выполнено создание поверхности.
    3. Примените фильтр по Гауссу, чтобы получить более гладкую поверхность, установив флажок Сглаживание (Smooth ) и установив пороговое значение, указывающее мельчайшие детали, наблюдаемые на поверхности.
    4. Выполните вычитание фона, чтобы усилить локальные контрасты и помочь с пороговым шагом.
    5. Отрегулируйте порог для обнаружения митохондриальной сети в зависимости от интенсивности сигнала. Если сложно правильно установить порог, рекомендуется вернуться к предыдущему шагу, чтобы отрегулировать степень сглаживания и вычитания фона.
    6. При необходимости нанесите на поверхность фильтр для удаления мелких остатков, образовавшихся от порога. Для этого выберите фильтр Number of Voxels в окне классификации поверхности и поиграйте с верхним и нижним порогами, чтобы оставить только интересующие объекты. После завершения создания поверхности сохраните параметры создания и повторно используйте их для обработки других изображений.
  6. Генерация 3D-карты расстояний вокруг митохондрий
    1. Создайте карту расстояний за пределами митохондриальной поверхности, созданную ранее, следующим образом. Выберите поверхность митохондрий в окне дерева сцены. Нажмите на Image Processing > Surfaces Function > Distance Transformation. Это вызовет Matlab XTension, который попросит пользователя выбрать, должна ли карта вычисляться снаружи или внутри поверхности объекта.
    2. Выберите Outside Surface Object, чтобы измерить расстояние между пятнами PLA и поверхностью митохондрий. После создания карта расстояний отображается в виде нового канала на панели настройки отображения. В этом канале каждый пиксель имеет значение, соответствующее расстоянию до ближайшей митохондрии.
  7. Выделение расстояний объектов от ближайших митохондрий
    1. Чтобы измерить расстояние от каждой точки до ближайшей митохондрии, а также определить и визуализировать ближайшие из них, выберите точки, ранее созданные в поле дерева сцены.
    2. В статистике и подробном журнале выберите Конкретные значения (Specific Values ) (чтобы получить по одному измерению для каждой точки). Выберите Center Intensity Ch=X (где X соответствует номеру канала карты расстояний). Это позволит измерить значение центра каждой точки, которое соответствует его расстоянию до ближайшей митохондрии на карте расстояний.
    3. Экспортируйте данные в виде файла .csv, нажав на значок дискеты в левом нижнем углу окна.
    4. Чтобы извлечь подпопуляцию пятен на основе их расстояний до митохондрий, выберите пятна в дереве сцены и щелкните вкладку Фильтры .
    5. В этом окне добавьте новый фильтр, основанный на Center Intensity Ch=X, и извлеките пятна на расстоянии менее 380 нм от митохондрий, установив нижний порог на 0 мкм и верхний порог на 0,380 мкм.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Порог в 380 нм был оценен на основе реакции PLA, включающей ассоциацию между первичными и вторичными антителами (30 нм) плюс половина полной ширины при половине максимума (FWHM) сигналов усиления PLA (350 нм).
    6. Чтобы сфокусироваться на выделенных пятнах и, например, придать им особый цвет, выполните шаг дублирования, нажав кнопку «Дублировать выделение в новые области ».

Результаты

С помощью описанного выше протокола мы выявили сайты взаимодействия двух ER-закрепленных белков переноса липидов ORP5 и ORP8 и оценили их встречаемость в мембранных субдоменах ER, контактирующих с другими органеллами, в частности, с митохондриями. Для этого митохондриальная сеть в клетках He...

Обсуждение

Этот протокол был разработан для идентификации и количественной оценки межорганелловых взаимодействий белков PLA в MCS, в частности в MERCS. Новизна протокола заключается в том, что он сочетает PLA с мечением нескольких органелл, конфокальной микроскопией и анализом 3D-изображений для локали?...

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Эта работа была поддержана ANR Jeune Chercheur (ANR0015TD), программой ATIP-Avenir, Fondation pour la Recherche Medicale (n°206548) и Fondation Vaincre Alzheimer (eOTP:669122 LS 212527), I'Agence Nationale de la Recherche (ANR-11-EQPX-0029/Morphoscope, ANR-10-INBS-04/FranceBioImaging; ANR-11-IDEX-0003-02/Науки о растениях Сакле).

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
1X Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (1X DPBS)Gibco14190-094
Ammonium chloride (NH4Cl)VWR21236.291
Bovine serum albumin (BSA)SigmaA7906
Circular glass coverslips 13mm no. 1.5Agar ScientificL46R13-15
CMXRos red MitoTrackerInvitrogenM7512red mitochondrial marker
Confocal inverted microscope SP8-XLeicaDMI 6000
Corning Costar TC-Treated 24-Well PlatesMerckCLS3526
Duolink In Situ Detection Reagents Green SigmaDUO92002
Duolink In Situ Mounting Medium with DAPI SigmaDUO82040
Duolink In Situ PLA Probe Anti-Mouse MINUS SigmaDUO92004
Duolink In Situ PLA Probe Anti-Rabbit PLUSSigmaDUO92014
Duolink In Situ Wash Buffers, Fluorescence SigmaDUO82049
Gibco Opti-MEM I Reduced Serum Medium, GlutaMAX Supplement Gibco51985026serum free medium
Imaris software v 9.3BitplaneN/Acell imaging software
Incubator UINCU-line IL10VWR390-0384
Microscope slide StarFrost (3“ x 1“) Knittel Glass
mouse anti-ORP8 Santa Cruz134409
Paraformaldehyde (PFA)SigmaP6148
rabbit anti-ORP5 SigmaHAP038712
SaponinSigma84510
Ultra Pure Distilled Water, DNase/RNase freeInvitrogen10977-035

Ссылки

  1. Scorrano, L., et al. Coming together to define membrane contact sites. Nature Communications. 10, 1287 (2019).
  2. Vance, J. E. MAM (mitochondria-associated membranes) in mammalian cells: Lipids and beyond. Biochimica et Biophysica Acta - Molecular and Cell Biology of Lipids. 1841 (4), 595-609 (2014).
  3. Giordano, F. Non-vesicular lipid trafficking at the endoplasmic reticulum-mitochondria interface. Biochemical Society Transactions. 46 (2), 437-452 (2018).
  4. Söderberg, O., et al. Direct observation of individual endogenous protein complexes in situ by proximity ligation. Nature Methods. 3 (12), 995-1000 (2006).
  5. Gomez-Suaga, P., et al. The ER-mitochondria tethering complex VAPB-PTPIP51 regulates autophagy. Current Biology. 27 (3), 371-385 (2017).
  6. Han, S., et al. The role of Mfn2 in the structure and function of endoplasmic reticulum-mitochondrial tethering in vivo. Journal of Cell Science. 134 (13), jcs253443 (2021).
  7. Stoica, R., et al. ALS/FTD-associated FUS activates GSK-3β to disrupt the VAPB-PTPIP51 interaction and ER-mitochondria associations. EMBO reports. 17 (9), 1326-1342 (2016).
  8. Tubbs, E., Rieusset, J. Study of endoplasmic reticulum and mitochondria interactions by in situ proximity ligation assay in fixed cells. Journal of Visualized Experiments. (118), e54899 (2016).
  9. Cuello, F., et al. Impairment of the ER/mitochondria compartment in human cardiomyocytes with PLN p.Arg14del mutation. EMBO Molecular Medicine. 13 (6), e13074 (2021).
  10. Paillusson, S., et al. α-Synuclein binds to the ER-mitochondria tethering protein VAPB to disrupt Ca2+ homeostasis and mitochondrial ATP production. Acta Neuropathologica. 134 (1), 129-149 (2017).
  11. Tubbs, E., et al. Mitochondria-associated endoplasmic reticulum membrane (MAM) integrity is required for insulin signaling and is implicated in hepatic insulin resistance. Diabetes. 63 (10), 3279-3294 (2014).
  12. Chung, J., et al. PI4P/phosphatidylserine countertransport at ORP5- and ORP8-mediated ER-plasma membrane contacts. Science. 349 (6246), 428-432 (2015).
  13. Galmes, R., et al. ORP5/ORP8 localize to endoplasmic reticulum-mitochondria contacts and are involved in mitochondrial function. EMBO Reports. 17 (6), 800-810 (2016).
  14. Ghai, R., et al. ORP5 and ORP8 bind phosphatidylinositol-4, 5-biphosphate (PtdIns(4,5)P 2) and regulate its level at the plasma membrane. Nature Communications. 8, 757 (2017).
  15. Monteiro-Cardoso, V. F., et al. ORP5/8 and MIB/MICOS link ER-mitochondria and intra-mitochondrial contacts for non-vesicular transport of phosphatidylserine. Cell Reports. 40 (12), 111364 (2022).
  16. Du, X., et al. ORP5 localizes to ER-lipid droplet contacts and regulates the level of PI(4)P on lipid droplets. Journal of Cell Biology. 219 (1), e201905162 (2020).
  17. Guyard, V., et al. ORP5 and ORP8 orchestrate lipid droplet biogenesis and maintenance at ER-mitochondria contact sites. The Journal of Cell Biology. 221 (9), e202112107 (2022).
  18. Ran, F. A., et al. Genome engineering using the CRISPR-Cas9 system. Nature Protocols. 8 (11), 2281-2308 (2013).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

JoVE200PLA3D

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены