Идентификация натуральных продуктов для биоконтроля под контролем биопроб с помощью тонкослойной хроматографии - прямая биоавтография

Резюме

Описано использование тонкослойной хроматографии, прямого биоавтографического анализа и жидкостной хромато-масс-спектрометрии для идентификации микробных природных продуктов, проявляющих антагонизм по отношению к грибковым патогенам, с использованием патогена Sclerotinia sclerotiorum и биопестицидных изолятов Bacillus в качестве модельной системы.

Аннотация

Тонкослойная хроматография-прямая биоавтоазография (TLC-DB) — это хорошо зарекомендовавший себя биоанализ, используемый для выделения и идентификации натуральных продуктов (НЧ), которые являются антагонистами по отношению к целевому патогену. Это быстрый, недорогой и простой вариант выделения и идентификации НЧ под контролем биопробы, который зависит от разделения с помощью ТСХ в сочетании с непосредственным применением целевого патогена для изучения биологической активности. Обычно он используется для анализа биоактивных растительных экстрактов, обнаружения ингибирующей активности в отношении бактерий, грибков и ферментов. Тем не менее, он обладает большим потенциалом в открытии бактериальных НЧ, особенно для оценки бактериальных НЧ против соответствующих сельскохозяйственных патогенов, что ценно для открытия и разработки новых биопестицидов для сельскохозяйственной отрасли. Кроме того, это настраиваемый протокол, который может быть применен к другим патогенам-мишеням или источникам НЧ в исследовательских программах, связанных с открытием и идентификацией биологически активных соединений. В данной работе мы описываем модельную систему для обнаружения и идентификации НЧ-биопестицидов с использованием TLC-DB с Bacillus spp. и сельскохозяйственным патогеном Sclerotinia sclerotiorum.

Введение

Грибковые сельскохозяйственные патогены приводят к значительным потерям качества урожая и урожайности во всем мире, усугубляя экономические проблемы и проблемы предложения стабильной глобальной системы производства продовольствия ^1,2. Повреждение патогенами можно предотвратить путем выведения сортов, устойчивых к инфекции, и использования интегрированных систем управления сельскохозяйственными культурами, включая севообороты и методы управления земельными ресурсами для подавления распространения патогенов ^3,4. Хотя эти методы уменьшают ущерб сельскохозяйственным культурам, химические пестициды обычно используются в тандеме для активного уничтожения грибковых репродуктивных структур в поле и дальнейшего предотвращения повреждений и снижения урожайности. Несмотря на свою эффективность, использование химических пестицидов имеет много недостатков, включая ущерб окружающим экосистемам, снижение плодородия почвы, связанные с этим риски для здоровья человека и развитие устойчивости к патогенам, что приводит к тому, что^{каждый год требуются} более высокие дозы пестицидов.

Продукты для борьбы с вредителями и патогенами на основе микробов долгое время считались потенциальными альтернативами или дополнением к синтетическим пестицидам. С начала 1900-х годов Bacillus thuringiensis широко используется для борьбы с сельскохозяйственными вредителями и патогенами в качестве обработки семян, в качестве опрыскивания листьев и при непосредственной обработке почвы⁸. Такие продукты были названы биопестицидами и характеризуются как природные микроорганизмы или биохимические вещества, которые могут убивать, подавлять или снижать энергию целевого вредителя или патогена. Биопестициды могут контролировать рост патогена с помощью различных механизмов^{, но} чаще всего это происходит за счет секреции вторичных метаболитов. Вторичные метаболиты, часто называемые природными продуктами, не участвуют в первичном метаболизме, но образуются в качестве эволюционного преимущества, позволяющего вытеснить другие микроорганизмы^.

Биопестициды имеют множество преимуществ по сравнению со своими синтетическими аналогами. Они представляют низкий риск токсичности для окружающей среды, животного мира и человека по сравнению с синтетическими продуктами для борьбы с вредителями ^9,10. Поскольку большинство биопестицидов естественным образом существовали в окружающей среде на протяжении тысячелетий, пути биоразложения микробных метаболитов существуют в окружающей среде, ограничивая возможность загрязнения почвы или экосистемы и сокращая время пребывания, которое способствует тому, что синтетические пестициды^{настолько разрушительны} для окружающей среды. Кроме того, многие биопестициды, используемые для смягчения патогенной инфекции, также проявляют свойства, способствующие росту растений, что может повысить биодоступность питательных веществ и вызвать системную устойчивость растений¹².

Чаще всего биопестициды применяются в виде микробного инокулюма, а НЧ выделяются живыми микроорганизмами in situ ^12,13. В таком случае выявление источника активности биопестицида имеет большое значение. Это дает представление о механизме действия биопестицида, помогает обосновать защиту микроорганизма с помощью патента и может оказать значительное научное влияние, если их структура является новой. Однако наиболее важным является то, что идентификация биоактивного источника информирует о возможностях разработки рецептуры для последующего биопестицидного продукта. Если НЧ сам по себе активен, его можно использовать в качестве фабрики биомолекул для крупномасштабного производства биопестицидов. Кроме того, многие НЧ, которые были исследованы для биоконтроля, также имеют потенциальное применение в медицине человека, что делает их еще^{более экономически} ценными8.

Анализы тонкослойной хроматографии и прямой биоавтографии (TLC-DB) являются недорогим и простым методом выделения и идентификации биопестицидцидных метаболитов под контролем биологической активности. Несмотря на то, что этот метод обычно используется для отделения тестирования биологической активности фитохимических веществ от сырых растительных экстрактов, он также обладает большим потенциалом для анализа микробных^{экстрактов.} TLC обеспечивает быстрое и недорогое отделение НЧ в сыром микробном экстракте, а после покрытия суспензией возбудителя среды легко визуализируются зоны, содержащие активные метаболиты. Эти зоны могут быть соскоблены с пластины и извлечены для химического анализа с помощью ультравысокоэффективной жидкостной хроматографии в сочетании с масс-спектрометрией (UPLC-MS) для идентификации известных метаболитов. Метаболиты, которые не соответствуют ранее зарегистрированным соединениям, могут быть выделены в больших количествах с помощью жидкостной хроматографии для проведения исследований по выяснению структуры с использованием таких методов, как спектроскопия ядерного магнитного резонанса и рентгеновская кристаллография^.

В данной статье описана модельная система для обнаружения и идентификации НЧ-биопестицидов с использованием TLC-DB с Bacillus spp. и сельскохозяйственным патогеном Sclerotinia sclerotiorum. На рисунке 1 представлен схематический обзор процедуры TLC-DB.

Рисунок 1: Схематический обзор шагов 4-7 процедуры TLC-DB. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

протокол

Подробная информация о реагентах и оборудовании, использованных в этом исследовании, приведена в Таблице материалов.

1. Выбор кандидатов на биоконтроль микроорганизмов

1. С помощью тестов на конкурентных планшетах отбирают микробные изоляты, которые проявляют антагонизм по отношению к интересующему патогену.
   Примечание: Для демонстрации этого протокола были отобраны девять изолятов Bacillus , которые проявляли антагонизм по отношению к S. sclerotiorum , включая виды Bacillus atrophaeus, mojavensis и subtilis .

2. Подготовка СМИ

1. Готовят картофельный декстрозный агар (ППК), растворив 39 г среды на литр воды.
2. Приготовьте Pseudomonas F agar, добавив 45 г среды на литр воды.
3. Приготовьте картофельный отвар декстрозы (ПДБ) с 1% агаром, добавив 24 г среднего, и 0,24 г агара на литр воды.
4. Приготовьте дрожжево-глюкозо-марганцевый (YGM) бульон. Создают буферный раствор, состоящий из 2,5 г KH₂PO₄ и 2,5 г K₂HPO₄ на 100 мл воды, и солевой раствор, состоящий из 0,58 г MnSO₄. Н₂0, 0,5 г NaCl и 0,05 г FeSO_4,7 Н₂0 на 100 мл воды.
   1. Далее добавьте 1 г дрожжевого экстракта, 1,25 г декстрозы, 400 мл воды, 5 мл буферного раствора, 5 мл раствора соли и 90 мл воды, чтобы соли металлов не выпали в осадок в растворе.
5. Автоклав - стерилизуйте фильтрующий материал, разлейте агар в пластины Петри размером 100 х 15 мм и дайте всему остыть до комнатной температуры перед использованием.

3. Подготовка патогенов

1. Культивируют пять планшетов Sclerotinia sclerotiorum на КПК (приготовленном на шаге 2.1) и инкубируют при 25 °C в течение 3 дней.

4. Приготовление экстракта натурального продукта

1. Культивируйте каждый бактериальный изолят на Pseudomonas F Agar (приготовленном на шаге 2.2) и выращивайте до тех пор, пока не будут обнаружены отдельные колонии.
2. Субкультивируют одиночные колонии бактерий в 25 мл среды YGM в центрифуге или культуральных пробирках и инкубируют с встряхиванием в течение 3 суток.
3. Переложите по 5 мл аликвот каждого экстракта в 1 л YGM и инкубируйте в тех же условиях еще 3 дня.
4. Центрифугируйте каждую культуру при 3000 x g в течение 15 мин при 25 °C для гранулирования клеток.
5. Сцедите и промойте надосадочную жидкость трижды этилацетатом для извлечения метаболитов из питательной среды.
6. Соедините и высушите слой этилацетата каждого из них с помощью ротационного испарения.
7. Повторно растворите экстракт в минимальном количестве метанола, переложите его в небольшой сцинтилляционный флакон и снова высушите путем ротационного выпаривания.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Если экстракт высыхает до маслянистого или смолистого материала, лиофилизируйте материал, чтобы получить сухой порошок, который можно точно взвесить.

5. Подготовка пластин TLC

1. Подготовьте тарелку размером 20 см х 20 см, проведя линию в 2 см от дна и в 2 см от верха тарелки. В нижней части расположите девять точек на расстоянии 2 см друг от друга. Над верхней линией поместите четыре точки на расстоянии 4 см друг от друга.
2. Растворите 5 мг каждого экстракта в 15 μл метанола и нанесите 5 μL каждого экстракта на девять точек, отмеченных нижней линией, с помощью пипетки. Дайте каждому пятну экстракта высохнуть на пластине TLC и нанесите еще 5 мкл аликвоты на то же место. Повторяйте до тех пор, пока весь материал не будет загружен на пластину TLC.
3. Проявите пластину TLC в резервуаре для проявки, используя раствор дихлорметана и метанола в соотношении 1:2 до тех пор, пока растворитель не достигнет линии, отмеченной на расстоянии 2 см от верхней части пластины (примерно 45 минут).
4. После проявления снимите пластину TLC и нанесите ряд положительных регуляторов на четыре точки, отмеченные над линией растворителя. Используются четыре концентрации одного и того же контроля. Для S. scl. 0,5 мкг/мл, 5 мкг/мл, 50 мкг/мл и 500 мкг/мл гигромицина В являются положительными контрольными.
5. Прежде чем весь растворитель испарится с пластины, поместите ее в стерилизованную этанолом коробку для пластин TLC.

6. Прямой биоавтографический анализ

1. Автоклавируйте материалы, которые будут использоваться в анализе (стеклянные компоненты хроматографического распылителя, металлический шпатель, четыре листа бумажного полотенца, целлюлозную или фильтровальную бумагу, воду и фильтрующий материал) в большой стакан, покрытый фольгой.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Бумажные материалы (бумажное полотенце, целлюлозная бумага) должны быть завернуты в оловянную фольгу, чтобы избежать намокания в автоклаве.
2. Подключите источник воздуха, манометр и распылитель хроматографии с помощью стерилизованных этанолом трубок из ПТФЭ. Подсоедините фильтр HEPA между распылителем хроматографии и манометром.
3. Соберите мицелиальный мат пяти планшетов с патогеном с помощью стерильного металлического шпателя в центрифужную пробирку объемом 50 мл с помощью стерильного шпателя.
   ПРИМЕЧАНИЕ: При необходимости используйте небольшой объем жидкого бульона, чтобы помочь удалить мицелий, и перенесите его с помощью стерильной пипетки.
4. Добавьте 25 мл PDB, обогащенного агаром и стерильными стеклянными шариками, в центрифужную пробирку объемом 50 мл и делайте вихрь в течение 5 минут, чтобы разрушить мицелиальный мат.
5. Перенесите мицелиальную суспензию в распылитель для хроматографии с помощью стерильного шприца с наконечником иглы, чтобы убедиться, что большие куски мицелия не забьют распылитель для хроматографии.
6. Поместите ранее разработанные пластины TLC на стерильные бумажные полотенца в колпак с ламинарным потоком, чтобы уменьшить контакт рук с пластиной во время наложения суспензии носителя.
7. Увеличьте давление воздуха примерно до 4 бар и нанесите три слоя суспензии на пластину TLC, позволяя пластине полностью высохнуть между нанесениями.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Три слоя были признаны оптимальным количеством. Меньше этого, и возбудителю не хватает сред для роста. Более того, среда слишком густая, что может не допустить контакта патогена с активными метаболитами.
8. Добавьте 500 мл стерильной воды в стерилизованную пластиковую коробку для тарелок и положите стерилизованные сложенные листы целлюлозы или фильтровальную бумагу с каждой стороны, чтобы удержать влагу.
9. Поместите готовую пробирную пластину на четыре пустые чашки Петри в коробке.
10. Инкубируйте анализ в течение от 3 дней до 1 недели или до тех пор, пока ровный слой мицелия не вырастет равномерно по всей пластине TLC, за исключением положительного контроля и зоны ингибирования (ZOIs).

7. Жидкостная хроматография, масс-спектрометрический анализ

1. Сфотографируйте завершенный анализ с помощью фотографии.
2. Рассчитайте коэффициент удержания для каждой зоны торможения, разделив расстояние от нижней линии до ZOI на расстояние от нижней линии до верхней линии.
3. Соскребите диоксид кремния с зон торможения и поместите его в микроцентрифужные пробирки.
4. Добавьте 500 μL метанола в каждую пробирку и сделайте вихрь, чтобы извлечь метаболиты из диоксида кремния.
5. Центрифугируйте при давлении 8 500 x g при 20 °C в течение 10 минут и перелейте надосадочную жидкость в небольшой флакон.
6. Выпарить до сухости путем ротационного выпаривания или под струей азота.
7. Повторно суспендируйте экстракт в 50 мкл метанола во флаконе LC.
8. Проанализируйте метаболиты в зоне ингибирования ЛХ-МС и сравните их с метаболитами в сыром экстракте, чтобы определить, какие метаболиты в сыром экстракте отвечают за ингибирование патогена¹⁶.
9. Используя род и вид исходного микроорганизма и массы, идентифицированные в ZOI, выполните поиск в литературе и соответствующих базах данных, таких как Antibase и Dictionary of Natural Products, для идентификации метаболитов.

Результаты

После разделения микробных экстрактов с помощью ТСХ, метаболиты должны быть распределены вдоль пластины ТСХ вертикально. При видимом свете может быть трудно увидеть метаболиты, которые не поглощаются в видимом диапазоне света. Таким образом, визуализация в ультрафиолетовом свете может помочь увидеть разделение метаболитов, как видно на рисунке 2A, B. После инкубационного периода патоген должен казаться равномерно расти по всей пластине, за исключением положительного контроля и зон ингибирования, где находятся активные метаболиты, изображенные на рисунке 2C.

Рисунок 2: Разделение микробных экстрактов с помощью TLC. (A) Разработанный планшет TLC, содержащий девять экстрактов Bacillus , визуализированных в видимом свете, и (B) в ультрафиолетовом свете с длиной волны 320 нм перед применением грибкового инокулята. (C) Завершенный биоавтографический анализ с наблюдением роста патогена по всей пластине, за исключением тех случаев, когда рост подавляется вокруг положительного контроля, и ZOI каждого экстракта. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

Метаболиты, выделенные из зон ингибирования, анализируют с помощью ЖХ-МС и сравнивают с сырым экстрактом для определения НЧ, ответственных за антагонизм по отношению к возбудителю. Совместимые метаболиты должны иметь одинаковое время удержания и молекулярные ионы, чтобы считаться совместимыми. После идентификации активных метаболитов бактериальную культуру можно выращивать в больших количествах для выделения активных метаболитов, представляющих интерес для структурной химии или биологических исследований.

Обсуждение

TLC-DB является ценным и хорошо зарекомендовавшим себя инструментом исследования НЧ, а также простой и недорогой альтернативой методам выделения под контролем биотестирования на микропланшетах¹⁷. Он требует минимальных временных и материальных ресурсов по сравнению с микропланшетными анализами, которые требуют разделения метаболитов с помощью методов жидкостной хроматографии. Это очень универсальный анализ, который может быть использован для обнаружения антибактериальных, противогрибковых, антипаразитарных и антиоксидантных НЧ в дополнение к ингибиторам ферментов 18,19,20,21,22,23. Несмотря на то, что наиболее часто он используется для обнаружения и идентификации биологически активных фитохимических веществ, тот же метод может быть применен для бактериальных НЧ, как описано в настоящем протоколе^. Кроме того, протокол может быть оптимизирован для использования с различными источниками НЧ и целевыми патогенами, чтобы помочь в обнаружении и оценке новых биологически активных НЧ.

Среда, используемая для роста бактерий, и растворитель, используемый для экстракции, могут значительно повлиять на результаты разработки натуральных продуктов. Среда, используемая в этом протоколе, оптимизирована для бактерий, которые продуцируют циклические липопептиды, включая Pseudomonas и Bacillus spp. Но при изучении других родов следует учитывать другие среды и источники питательных веществ. Можно выбрать завершение TLC-DB с использованием одного и того же микроорганизма, выращенного в различных средах, для оценки всей широты разнообразия метаболитов одного изолята или использовать идентичные условия роста для более широкого спектра изолятов. Выбор растворителя для экстракции также влияет на обнаруживаемые натуральные продукты. Общеизвестно, что большинство биологически активных НЧ имеют низкую или умеренную полярность, что делает этилацетат подходящим выбором из-за его низкой температуры кипения, что облегчает его удаление. Однако, если вы хотите также исследовать полярные и неполярные фракции, можно провести многократную экстракцию с другими растворителями. В качестве альтернативы, бесклеточный экстракт может быть лиофилизирован и использован в анализе, чтобы увидеть, как все метаболиты высвобождаются в среду. Тем не менее, часто на пластину TLC необходимо загружать больше материала, чтобы учесть компоненты высушенной среды в лиофилизированном материале. Аналогичным образом, если этот метод используется с другим патогеном, таким как посевной материал, используемые среды и условия инкубации должны быть оптимизированы для получения 5 агаровых пластин мицелия, используемых для анализа TLC-DB.

TLC-DB имеет преимущество по сравнению с контактной и иммерсионной биоавтографией, поскольку в ней используется тончайший слой агара и инокулюма, сводя к минимуму зависимость от диффузии метаболитов в слой агара, что может позволить меньшему количеству натуральных продуктов индуцировать ингибирование патогенов¹⁷. Ранее опубликованные результаты с использованием биоавтографических методов TLC использовали споровую суспензию патогена для завершения анализа¹⁷. Несмотря на то, что это позволяет точно контролировать концентрацию суспензии, индуцирование спороношения некоторых грибов^может быть чрезвычайно сложным и трудоемким. Эта модификация значительно упрощает анализ и позволяет завершить анализ с использованием грибковых патогенов, которые трудно спорулировать и которых ранее можно было избежать при использовании этого метода.

Масса бактериального экстракта, используемого в анализе, может повлиять на результаты. Если на планшет TLC нанести слишком мало экстракта, возможно, что минимальная ингибирующая концентрация активного соединения не будет превышена, и биологическая активность не будет обнаружена. В результате, в некоторых случаях, как видно на рисунках 1 и 2, имеет смысл перегружать пластину TLC, что ставит под угрозу разделение для возможности легко обнаруживать активность. Аналогичным образом, патогенная нагрузка, распыляемая на пластину, не должна быть слишком низкой, так как не будет нанесено достаточно среды для поддержки роста патогена. Этот метод может быть легко настроен для работы с различными бактериальными экстрактами и патогенами, а количество микробного экстракта и инокулюма, указанное в протоколе, обеспечивает обнаружение биологической активности для нескольких патогенов и микробных экстрактов. Если по завершении анализа не наблюдается зон торможения, это может свидетельствовать об одном из следующих признаков. Во-первых, активные метаболиты могут отсутствовать в применяемом экстракте из-за использования несовместимых сред для роста бактерий или из-за того, что активность бактерий не является результатом производства НЧ. Дисковый диффузионный анализ экстракта может быть завершен для подтверждения или опровержения существования активных НЧ в экстракте. Если дисковый диффузионный анализ не показывает подавления патогенов, можно протестировать другие среды, чтобы определить, производят ли другие условия биоактивные НЧ. Если дисковый диффузионный анализ показывает, что экстракт подавляет патоген, то может потребоваться нанесение большего количества бактериального экстракта на планшет TLC, и в этом случае можно попытаться провести другой анализ.

Сравнение метаболитов в ZOI с сырым экстрактом имеет важное значение для идентификации активных НЧ. В этом анализе метаболиты из сырого экстракта могут метаболизироваться или модифицироваться патогеном, что может наблюдаться с помощью ЖХ-МС. Таким образом, только метаболиты, которые встречаются как в сыром экстракте, так и в ZOI, могут рассматриваться как НЧ, продуцируемые исследуемыми бактериями. Если невозможно соотнести метаболиты, извлеченные из ZOI, с метаболитами в сыром экстракте, можно приготовить планшет TLC, как описано на шаге 5. Не завершая биоавтографический анализ, извлеките метаболиты из пластины TLC в то же время удержания, которое наблюдалось в завершенном анализе. Это должно обеспечить более легкую корреляцию между метаболитами в ZOI и сырым экстрактом, вызывающим подавление патогенов.

Одним из недостатков TLC-DB является то, что разрешение TLC значительно меньше, чем при использовании традиционных методов скрининга микролунок, для разделения которых требуется жидкостная хроматография. Таким образом, множественные метаболиты обычно существуют в зоне ингибирования, где некоторые метаболиты могут не вносить вклад в биологическую активность. Эта проблема может быть вызвана практикой перегрузки планшета TLC для более четкого наблюдения за биологической активностью. Недавно были опубликованы работы с использованием высокопроизводительного TLC (HP-TLC), который значительно улучшает разрешение и может позволить автоматизировать разработку TLC, что в противном случае невозможно при использовании обычного TLC 14,21,22,23. Кроме того, пластины могут быть разработаны во втором измерении (2D-TLC) для дальнейшего разделения метаболитов с аналогичным временем удержания. При этом следует оценить, является ли увеличение затрат времени и материалов оправданным компромиссом для повышения разрешения, полученного от HP- и 2D-TLC²⁵.

Материалы

Name	Company	Catalog Number	Comments
0.5-5 mL single channel Pipette	VWR	CA11020-004
10 mL Thin Layer Chromatography Sprayer	VWR	KT422530-0010
100 x 15 mm Petri plates	VWR	89038-970
100-1000 µL pipette tips	VWR	76322-164
100-1000 µL single channel pipette	VWR	76169-240
15 mL sterile centrifuge tubes	VWR	CA21008-918
1 L glass bottle	Millipore Sigma	CLS13951L	Must be autoclave safe
1 mL sterile syringe with needle	Thomas Scientific	8935L75	Detachable needle is recommended
2 mL Microcentrifuge tube	VWR	87003-298
50 mL sterile centrifuge tubes	VWR	CA21008-940
5 mL pipette tips	VWR	CA11020-008
7 mL scintilation vials	VWR	76538-962
95% ethanol	Thermo Fisher Scientific	A412-500
Autoclave	Cole-Parmer	UZ-01850-34	8 L, 115 VAC
Bacteriological agar	VWR	97064-336
bin	Thomas Scientific	1216H91
D-Glucose	VWR	BDH9230-500G
Dichloromethane ≥99.8% ACS	VWR	BDH1113-4LG
Ethyl Acetate ≥99.8% ACS	VWR	BDH1123-4LG
Filter paper	VWR	CA28297-846
Grinding Beads	VWR	12621-148
Hygromycin B	VWR	CA80501-074
Iron Sulfate Heptahydrate	VWR	97061-542
Laminar flow hood	CleanTech	1000-6-A
LC-MS	Waters	LITR10064178	UPLC/MS/MS TQD system
Lyophilizer	Labconco	700201000	Temperature collector -50 °C
Manganese Sulfate Hydrate	VWR	CAAA10807-14
Methanol ≥99.8% ACS	VWR	BDH2018-5GLP
Paper towel	VWR	89402-824
Potato Dextrose Agar	VWR	CA90000-758
Potato Dextrose Broth	VWR	CA90003-494
Potsasium Phosphate Dibasic	VWR	470302-246
Potsasium Phosphate Monobasic	VWR	470302-252
Pressure Gauge 6mm Union Straight 0-10 bar (0-145 psi)	Tameson	F25U6
Pseudomonas F Agar	VWR	90003-352	Also known as Flo Agar
PTFE Tubing	Sigma Aldrich	58697-U	1/16 inch inner diameter
Sodium Chloride	VWR	BDH9286-500G
Spatula	VWR	82027-490
Sterile Inoculation loops with needle	VWR	76534-512
Tinfoil	Thomas Scientific	1086F24	Can be purchased from supermarket
TLC Silica Gel 60 RP-18 F254S 25 Glass Plates 20 X 20 cm	Thomas Scientific	1205Q12
Vacuum Pump	Labconco	1472100	98 L/min
Vortex	VWR	76549-928	Must accomadate 15 mL and 50 mL centrifuge tubes
Whatman in-line HEPA-VENT	Millipore Sigma	WHA67235000	10 filters, 1/4 to 3/8 inch inlet/outlet
	VWR	97063-370