C57BL/6マウスでタウロコレートナトリウム誘発重篤急性膵炎

要約

重度の急性膵炎の動物モデルは、初期段階での病態生理学的変化の研究を可能にし、炎症事象の進化の観察を促進する。ここでは、麻酔をしたC57BL/6マウスの膵管内へのタウロコレートナトリウムの逆行注入による重症急性胆道膵炎の誘導プロトコルを提供する。

要約

タウロキ酸ナトリウム注入による胆道急性膵炎誘導は、臨床胆汁性膵炎の発症に対応するヒト臨床状態および炎症性イベントの再現の表現により、科学界によって広く使用されている。膵臓の損傷の重症度は、注入胆汁酸の濃度、速度、および体積を測定することによって評価することができる。この研究は、プロトコルの再生に使用される材料と方法の最新のチェックリストを提供し、この急性膵炎(AP)モデルの主な結果を示しています。これまでの出版物のほとんどは、ラットでこのモデルを再現することに限定されています。我々は、この方法をマウスに適用し、研究に関連する可能性のある追加の利点(すなわち、これらの動物のための試薬および抗体の兵器の入手可能性とマウスの遺伝子組み換え株で作業する可能性)を提供する。マウスの急性膵炎誘導に関しては、C57BL/6マウスの3分間の注入速度10μL/minで2.5%タウロコレートナトリウムを定義した体系的なプロトコルを提示し、誘導の12時間以内に重症度の最大レベルに達し、その結果を検証する結果を強調する。練習と技術により、麻酔の誘導から注入の完了までの合計推定時間は、動物1匹につき25分である。

概要

ヒトでは、胆石の存在は、胆汁の末端部の閉塞による膵炎の最も一般的な原因であり、膵臓分泌物の流れを中断し、膵臓で激しい炎症プロセスを引き起こし、血清および炎症性メディエーター中の消化酵素の濃度が増加する^1,2。

急性膵炎(AP)の発症を説明するために、2つの異なる理論が提案されている。「共通チャネル」理論は、胆嚢に存在する石が遠位共通胆管系を妨げ、胆汁分泌が膵管に逆行して流れることを示唆している。第2の理論(「ダクト閉塞」理論)は、過剰胆石による膵管閉塞が十二指腸への膵分泌の流れの閉塞を引き起こし、管性高血圧^症を引き起こすことを示唆している。急性胆道膵炎につながるメカニズムは完全には理解されていませんが、結果は激しい炎症プロセスです。消化酵素の噴火と膵臓の自己消化は、組織病理学的変化、アセンチズル液および血清中の炎症性サイトカイン(IL-1β、IL-6、TNF-α)の増加、および急性相タンパク質の増加を招く^4,5,6.

重症急性膵炎は、複数の臓器の関与と高い死亡リスクのために臨床的な注意を払うに値する状態です。急性膵炎(AP)の再生のための動物モデルは、疾患の病態生理学的メカニズムを説明し、疾患の初期段階から始まる炎症性事象の進化を監視するのに役立つ重要である。これは通常、診療所^2,7では不可能^です。さらに、膵臓組織へのアクセスは前臨床試験で容易であり、臨床状態に関連する変化の解明を好む⁸イソジェニック種と共に、望ましくない変数を排除し、人間の状態で観察された結果と臨床的類似性をミラーリングする⁹。

ラットおよびマウス種における急性膵炎の誘導のための胆道モデルおよび非胆道モデルは、科学文献において頻繁に研究されてきた。誘導の非胆道方法には、コレシストキニン分泌酵素またはそのアナログセリフィン¹⁰の上格刺激用量の投与が含まれる。L-アルギニンのほぼ致死量の投与;またはエチオニン¹¹を補充コリン欠損の食事の投与.これらの方法は、再現しやすく、膵炎をもたらすが、理論的にはAPを引き起こすメカニズム(すなわち、膵管内の胆汁分泌の還流)を複製しない。胆道モデルに対処する技術は、膵管への胆汁酸の逆行注入に基づいており、このプロトコルを実行するために十分な訓練を受けた研究者を必要とします。いくつかの研究は、ラット(これらの実験は外科的処置を伴うため、技術的な理由から)^12,13でこの方法を使用して公開されています。しかし、マウスのアプローチは、炎症の研究でより興味深い結果を提供するかもしれない^3,14,15。本研究では、C57BL/6麻酔マウスにタウロコレートナトリウムを注入して重症急性膵炎を再生するためのステップのチェックリストを示す。

抗体の実験や遺伝子やタンパク質発現の分析を必要とする研究では、これらの動物のための材料の武器が大きくなり、等原性およびノックアウト種で作業する可能性があるため、マウスの使用が好^ましい。マウスC57BL/6は、もともと抗腫瘍活性および免疫学の研究のために開発されたマウスの近親交配株である。この株は、等性であることのために研究者によってますます好まされており、実験でより少ない数の動物の使用を意味し、同じグループ^17,18間の結果の変動が少ないことを意味する結果のより大きな再現性を可能^にする。

Peridesら (2010)¹⁴ は、タウロコール酸ナトリウム注入によるマウスにおけるAP誘導のためのプロトコルを発表した。ここでは、C57BL/6マウスのタウロコレートナトリウム濃度(2.5%)を使用して、定義された体積と注入速度を使用してこのモデルを更新します(図1)。重症度の最大レベルは、マウスの誘導の12時間以内に達する。血清中および腹腔におけるIL-6濃度の上昇は、APの進行と相関している。練習では、麻酔の誘導から注入の完了までの合計推定時間は、動物1匹につき25分である。訓練を受けた研究者がこの実験を行うことは不可欠です。溶液が一般的な胆管に適切に注入されるように、タウロコレートナトリウムの代わりにメチレンブルーを使用していくつかのパイロットトレーニングセッションを行います。

プロトコル

このプロトコルは、USP医学部の動物の使用のための倫理委員会によって承認されました, Num. プロジェクト: 1343/2019-CEUA: FMUSP.このプロトコルについては、C57BL/6マウス、6週間齢、2g±20個の重さを用いた(n=9/群)。

1. 腹腔内術

1. 1 mLシリンジと13x0.45mm針26G 1/2を使用して、キシラジン(10mg/kg)およびケタミン溶液(体重0.1mL/10g)を使用して動物を麻酔する。つまんで十分な麻酔の深さを確認します。加熱パッドを使用して体温をコントロールします。すべての外科材料が無菌であることを確認してください。
2. 5%ポビドネ-ヨウ素溶液で腹部をきれいにし、トリマーを使用して胸部と下腹部の間の毛を取り除きます(約2 ^cm2)。70%アルコールで手術領域をきれいにしてください。
3. 手術用テープを使用して、外科用ボード上の動物を固定します。はさみを使用して、腹部の上部に、そしてxiphoidプロセスの下に1cm、水平に皮膚の5ミリメートルをカットします。腹骨の切り抜きを繰り返します。これは、空洞の最小限の露出で腹腔の原因となります.

2. 膵臓の位置を特定し、露出する

1. レトラクタの助けを借りて、肝臓をマウスの頭に向かって引っ張り、腸から約1cm離します。
2. タウロコレートナトリウム(膵頭部)を注入される膵臓の領域を見つけます。肝臓の下の肝臓を参照して十二指腸を見つけます, 右側に (マウスが見られているように左側).十二指腸は小腸の最初の部分であり、胃の最後の部分に接続されています。
3. 鉗子の助けを借りて、動物の頭部に向かって肝臓を持ち上げ、小腸部分をそっと引っ張る。小腸の2つの側面端を6-0ポリプロピレン縫合糸で固定し、共通の胆管の遠位部分をよりよく見る。

3. 重症急性膵炎誘導

1. 逆行注入が肝臓に漏れるのを防ぐために、近位共通胆管をマイクロ容器クリップで一時的に閉塞させる。一般的な胆管は十二指腸の肝臓側で見ることができ、十二指腸との接合部は白く見えます。腹腔から臓器を露出する。
2. 0.54mmポリエチレンチューブに接続された0.4mmの針で共通の胆管にアクセスするために、ペリアンプルリー領域(小腸の壁の白っぽい部分)を穿刺します。
3. 8-0で遠位共通胆管の一時的な閉塞を作る十二指腸に漏れ出すナトリウムタウロホレート溶液を防止するための縫合糸。
4. 注入ポンプを開始し、2.5%のナトリウムタウロキロ酸溶液(生理食塩水で希釈)を10 μL/10 g体重の一定速度で3分間プログラムします。
5. 注入後、マイクロ容器クリップを取り外し、一時的な8-0縫合、および胆汁膵管からの注射針を胆汁の生理的流れを再構成する。
6. 最後に、6-0非吸収性モノフィラメントポリプロピレン縫合糸で腹部を縫合する。開腹術と縫合端の終わりまでの時間は最大 30 分です ( 図 1 参照)。
7. 手術後、木の削りくずと水と食品 のアドリビタムが並ぶポリエチレンボックスに動物を収容します。
8. コントロールマウスは実験マウスと同様に扱うが、食糸物は生理食糸のみで構成されるようにする。手術およびカンヌレーションによって引き起こされる炎症性バイアスを排除するために、コントロールグループ(SHAM)で生理食症溶液(10 mL/分、3分間)の注入と外科的処置を行う。
9. トラマドール12.5mg/kgを皮下8時間おきに使用し、手術後の回復後から開始してください。

4. 分析方法

1. AP誘導後12時間で、キシラジン(10mg/kg)とケタミン(80mg/kg)で動物を麻酔し、眼窩神経叢を介して約250μLの血液を採取する。
   1. 背中の皮膚をそっと押さえ、眼球の突起を少し突き出し、目を上向きにして配置します。
   2. 動物の目に局所麻酔薬を含む目の軟膏の滴を植え付ける。
   3. 毛細管の端を目の内側の隅に置き、~30°~45°の角度で眼球の下にそっと挿入します。血流が始まるまで毛細管を回転させます。手順に力を使う必要はないことに注意してください。
   4. コレクションが終わったら、まぶたをガーゼで軽い圧縮で閉じておくことでホメオスタシスを確実にします。鋭利な容器¹⁹に毛細管管を捨てる。
   5. 遠心分離液(700 x g、15分)を、アミラーゼおよびIL-6投薬用の上清をストックする(ステップ4.7および4.8)。
2. CO2窒息によりマウスを安楽死させる。
3. 腹腔に4mLの氷冷1x PBSを注入するために27G針を使用してください。腹部の皮膚をテンニングし、針が任意の臓器を穿刺しないように腹膜にゆっくりと押されることを確認します。注射後、腹骨を10sに軽くマッサージし、腹骨に付着した細胞を除去する。
4. はさみとピンセットを使用して、内皮に小さな切り傷(0.5cm)を作り、筋肉を整え、腹腔を露出させます。腹根に球根ピペットを挿入し、流体を収集します。脂肪組織や他の臓器を吸引しないように注意してください。
5. できるだけ多くの流体を収集し、氷の上に保持チューブに収集した細胞懸濁液を堆積させます。シャープ容器²⁰内の電球ピペットを捨てます。腹膜液を遠心分離し(250 x g,5分)、上清をIL-6の加毒用にストックします(ステップ4.9)。
6. 十二指腸に隣接する膵領域を収集します (<5mm).
7. 10%ホルマリンに固定して膵臓を処理し、パラフィンに組み込みます。
   1. ヒマトキシリンとエオシンでスライドを染色し、軽い顕微鏡下で組織病理学的分析を行う。シュミットのプロトコル²¹ (膵浮腫、アシナル細胞、傷害/壊死、膵炎)を使用してAPの程度を評価します。
8. メーカーの推奨に従って市販のキットを使用してアミラーゼ(U/dL)を測定します。
9. メーカーの推奨に従って、商用キットを使用してLuminexアッセイによってIL-6を測定します。
10. 必要に応じて、ステップ4.1および4.4で得られた血清および腹膜液上清を-80°Cの冷凍庫に保管してください。

結果

膵炎重症度は、0が不在に対応するシュミットの^scale21 に従って0-3の間で採点され、1は軽度の存在(<25%)に対応し、2は中程度の存在(25〜50%)に対応し、3は強烈な存在(>50%)に対応する(表1)。測定は、血漿アミラーゼ活性、膵浮腫、アシナル細胞、傷害/壊死、膵炎(H&E染色切片の組織学的分析による)およびIL-6細胞カイン濃度を血清およびPerC液?...

ディスカッション

タウロコレートナトリウム注入による急性膵炎を誘導する方法は、ラット^22,23,24に既に示されている。2008年、2010年、2015年に出版された3つの同様の作品は、プロトコル^3,14,15の参考文献として機能^しました。本研究では、C57BL/6マウスでこの方法を再現す...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
0.4 mm needle	INTRAG MEDICAL TECH	90183210	30G
0.54 mm polyethylene tube	Tygon	730010	-
Styrofoam block	-	-	-
masking tape for mounting the mouse	Missner	1236	-
Infusion pump scheduled to 10µL / min.	Havard aparatus-Peristaltic Pump Series	MA1 55-7766	Model 66 Small Peristaltic
Scissors and forceps
Antiseptic providine iodine	Pfizer	12086OR	antisepsis
70% ethanol	SIGMA	459836	Mix 700 mL 100% ethanol with 300 mL dH2O
Razor blade	Lord	bdk9a1ghk6	For trichotomy
Sodium taurocholate	Sigma-Aldrich	86339- 1G	CAS NUMBER- 345909-26-4
microvessel clip	Medicon Surgical	56.87.35	Approximator, opening 4.0 mm, closing pressure 30 - 40 g
6-0 prolene	Bioline	5162	Suture line
Ketamin NP (cloridrato de dextrocetamina) 50mg/mL	Cristália
Xilazine 2%	Syntec
Sterile saline solution (0.9% (wt/vol) saline)	Farmace	105851
Methyl Blue	Sigma-Aldrich Chemicals	M5528
MILLIPLEX MAP Mouse Cytokine/Chemokine Magnetic Bead Panel - Immunology Multiplex Assay	MERCK	MCYTOMAG-70K	Simultaneously analyze multiple cytokine and chemokine biomarkers with Bead-Based Multiplex Assays using the Luminex technology, in mouse serum, plasma and cell culture samples.
Amylase Assay	Labtest	11
Desmarres retractor 13-mm width	ROBOZ	RS-6672