Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Protokol
  • Tartışmalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Drosophila embriyolar canlı görüntüleme analizi hazırlama, basit, ucuz ve etkili bir yöntem sunulmuştur. Bizim protokol nem ve gaz değişimi sağlar ve Drosophila embriyo sıkıştırmak değil. Bu yöntem, GFP tabanlı bir stereomikroskopta ya da dik bileşik mikroskop kullanarak Drosophila embriyoların canlı görüntüleme için uygundur.

Özet

Yeşil floresan proteini (GFP) timelapse canlı görüntüleme, doku morfolojilerinden, hücre-hücre adezyon veya hücre ölümü gibi dinamik süreçlerin genetik düzenleme çalışmak için güçlü bir tekniktir tabanlı. Drosophila embriyolar ifade GFP kolayca ya stereoskopik veya konfokal mikroskopi kullanılarak görüntülü. Herhangi bir canlı görüntüleme protokolü amacı, dehidratasyon ve hipoksi gibi zararlı etkileri en aza indirmek için. Drosophila embriyolar canlı görüntüleme analiz için hazırlanması için Önceki protokolleri Halokarbon yağ dechorionated embriyolar yerleştirme ve bir Halokarbon gaz geçirgen zar ve bir lamel arasında sandviç yer var

Protokol

Hazırlık

  1. Üzüm suyu standart agar plaklarına 4 embriyo toplayın. Bu otomatik bir Drosophila Yumurta Collector (flymax Bilimsel Cihazlar Ltd.) Kullanmak için uygundur. Senkron kullanarak embriyo koleksiyonları istenilen gelişimsel aşamada yeterli sayıda embriyo elde etmek için yapılmalıdır dechorionations sayısını azaltacaktır düzenledi.
  2. Çift taraflı bant, bir mikroskop lamı bir parça takarak dechorionation slayt hazırlayın; bant desteğini kaldırmak.
  3. Odanın iyi uyacak şekilde bir parça doku keserek canlı görüntüleme odası hazırlayın. Iyi doku ve distile su ile ıslatın.
  4. 1:1 oranında karıştırın Halokarbon yağı (Halokarbon Ürünleri A.Ş.) viskozite serisi 700 ve 56 serisi. Karışım saklanır ve süresiz kullanılabilir.
  5. Lamel (22 X 40 mm, No: 2) yüzey üzerinde birkaç küçük damla Halokarbon yağı koyun. Hacmi önemli değildir ama 20-40 ul sipariş olmalıdır.

Prosedür

  1. Jeweler forseps ya (5) sayılı bir çift veya çok ince bir boya fırçası kullanarak üzüm suyu agar plaklarına bir stereomikroskopta yardımı ile embriyolar toplamak. Embriyolar birbirlerine ve forseps ipuçları sopa eğilimindedir; kolayca yığınlarda toplanmıştır.
  2. Bir stereomikroskopta yardımı ile hafifçe düşük forseps ipuçları dechorionation slayt bant yüzeye yapıştırılır embriyoların yığınları.
  3. Yine stereomikroskopta kullanarak, yavaşça iç vitellin membran (vitellin membran rüptüre ise embriyo patlaması) çatlaması olmaksızın dış mumlu koryon açık kırmak için forseps yan embriyoların dürtmek veya inme.
  4. Dış koryon rüptüre edildikten sonra, koryon embriyo tease dechorionated embriyo forseps yüzeye yapışma eğilimi. Dechorionated embriyo bant yüzeyine dokunmaktan kaçının dikkat edin.
  5. En kısa sürede bir embriyo dechorionated olduğu gibi, lamel Halokarbon petrol önceden hazırlanmış damlasına kadar hızlı bir şekilde aktarın. Halokarbon yağ damlası yüzey dechorionated embriyo taşıyan forseps ucu Touch - bu yağın içine forseps embriyo püskürmesi.
  6. Yağ damlası embriyo transferi onaylayın. Bu siyah bir arka plan üzerinde çalışmak ve eğik bir açıyla fiber optik aydınlatma kaynağı kullanmak çıplak göz ile yapılabilir.
  7. Denemeden önce başka bir embriyo dechorionate için herhangi bir yağ, forseps temizleyin. Petrol kaplı Forseps dechorionation daha zor hale koryon yüzeyinde daha az satın alma var.
  8. Dechorionated embriyolar Halokarbon yağ içinde yüzen. Forseps veya bir fırça kullanma ve bir stereomikroskopta izlerken, yağ damlası alt embriyo itin ve istenilen pozisyona düzenlemek.
  9. Canlı görüntüleme odasının çok üzerinde lamel hızla çevirin. Embriyoların istenilen yönde lamel karşı dinlenme olduğunu onaylayın. Yağı kaldırma kuvveti nedeniyle embriyoların lamel alt yüzeyi karşı yüzer. Lamel canlı görüntüleme odasına bant ile sabitleyin. Bant sonu ve canlı görüntüleme odasının iyi lamel arasındaki boşluğu kapsadığı alan kaset delik keserek odasına havalandırınız.
  10. Dik bir floresan mikroskop ya da floresan stereomikroskopta embriyoların görüntü için kullanılır.

Tartışmalar

Biz asılı damla protokol dediğimiz canlı görüntüleme analizi, Drosophila embriyolar hazırlarken yeni bir yöntem açıklanmaktadır. Ne yazık ki, ters bir mikroskop ile çalışıyorsanız asılı damla protokolünü kullanmak mümkün değildir. Bu durumda sandviç tekniği (soyut yukarıda açıklandığı gibi) ve embriyoların sıkıştırma bir sorun olmaya devam ediyor olması gerekir.

Morfogenetik hareketi ile ilişkili güçleri hesaplamak için, hücre şekli ve büyüklü?...

Teşekkürler

Biz minnetle Discovery Hibe yanı sıra, Kanada Doğal Bilimler ve Mühendislik Araştırma Konseyi (NSERC) Araştırma Araçları ve Çalgı Hibe yoluyla BHR destek kabul ediyorsunuz. Ayrıca H. Oda ve örnek canlı görüntüleme sekansları kullanıldı genetik stokları sağlamak için Bloomington Drosophila stok Center kabul etmiş sayılırsınız.

Malzemeler

Mikroskop lamı, lamelleri (22 x 40 mm, No 2), çift taraflı bant, kuyumcu Kullanıcı forseps (Dumont tarzı No 5: Standart donanım ve asılı damla protokolü kullanılarak, canlı görüntüleme için embriyolar hazırlamak için gerekli malzemeleri aşağıdaki öğeleri içerir ), Halokarbon yağ serisi 56 ve 700 serisi (Halokarbon Ürünleri A.Ş.), maket bıçağı veya tek kenar jilet, kağıt mendil, makas, damıtılmış su, genel amaçlı bant ve 20-40 ul sunmak için uygun bir pipetlemeyin. Canlı görüntüleme protokolü de ısmarlama bir canlı görüntüleme odası gerektirir. Bu, standart bir mikroskop lamı (75 X 25 mm) boyutları 5 mm polikarbonat plastik levha düşünüyorum kesim ve bir rotor kullanarak slayt (20 X 55 mm) 3mm derin depresyon oluşturmak için hazırlanmıştır. Stereomikroskopta (diseksiyon mikroskobu) ve fiber optik aydınlatma kaynağı da gereklidir.

Referanslar

  1. Kiehart, D. P., Galbraith, C. G., Edwards, K. A., Rickoll, W. L., Montague, R. A. Multiple forces contribute to cell sheet morphogenesis for dorsal closure in Drosophila. J. Cell Biol. 149, 471-490 (2000).
  2. Schock, F., Perrimon, N. Cellular processes associated with germ band retraction in. , 248-2429 (2002).
  3. Reed, B. H., Wilk, R., Schock, F., Lipshitz, H. D. Integrin-dependent apposition of Drosophila extraembryonic membranes promotes morphogenesis and prevents anoikis. Curr. Biol. 14, 372-380 (2004).
  4. Wieschaus, E. p., Nusslein-Volhard, C., Roberts, D. B. . Drosophila: a practical approach. , 199-227 (1986).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Geli imsel BiyolojiSay 25Drosophilaembriyolarcanl g r nt lemeGFP

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır