La preparazione di Drosophila Gli embrioni per Live-Imaging Utilizzando il protocollo goccia

Riepilogo

Un metodo semplice, economico ed efficace per preparare gli embrioni di Drosophila per il live-imaging analisi è presentato. Il nostro protocollo prevede l'umidità e lo scambio di gas e non comprimere l'embrione di Drosophila. Questo metodo è adatto per GFP-based di immagini dal vivo di embrioni di Drosophila utilizzando uno stereomicroscopio o microscopio composto verticale.

Abstract

Proteina fluorescente verde (GFP)-base timelapse live-imaging è una tecnica potente per lo studio della regolazione genetica dei processi dinamici come la morfogenesi dei tessuti, l'adesione cellula-cellula, o morte cellulare. Embrioni di Drosophila che esprimono GFP sono prontamente ripreso utilizzando la microscopia confocale o stereoscopica. Un obiettivo di vivere-imaging protocollo è quello di minimizzare gli effetti dannosi, come la disidratazione e ipossia. Precedenti protocolli per la preparazione di embrioni di Drosophila per il live-imaging analisi hanno coinvolto messa embrioni dechorionated in olio alocarburi e sandwich di loro tra un alocarburi gas-permeabile membrana e un coprioggetto

Protocollo

Preparazione

1. Raccogliere embrioni su standard di succo di uva piastre di agar ^4. E 'conveniente usare un sistema automatizzato Drosophila Egg Collector (flymax scientifico apparecchiature Ltd.). Utilizzando sincrono messo in scena le collezioni embrione ridurrà il numero di dechorionations che devono essere eseguite in modo da ottenere un numero adeguato di embrioni allo stadio di sviluppo desiderato.
2. Preparare una diapositiva dechorionation allegando un pezzo di nastro biadesivo ad un vetrino da microscopio, rimuovere il supporto dal nastro.
3. Preparare la camera di immagini dal vivo, tagliando un pezzo di tessuto per adattarsi nel pozzo della camera. Posizionare il tessuto nel bene e bagnato con acqua distillata.
4. Mix alocarburi olio (Halocarbon Products Corp.) serie 700 viscosità e serie 56 con un rapporto di 1:1. La miscela possono essere memorizzati e utilizzati a tempo indeterminato.
5. Luogo diverse piccole gocce di olio alocarburi sulla superficie di un coprioggetto (22 x 40 mm, n. 2). Il volume non è critica, ma dovrebbe essere nell'ordine dei microlitri 20-40.

Procedura

1. Con l'aiuto di uno stereomicroscopio, raccogliere gli embrioni dal succo d'uva-agar piastre utilizzando una pinza da gioielliere (n. 5) o un pennello molto fine. Gli embrioni tendono ad attaccarsi l'un l'altro e per le pinze punte ', sono facilmente riuniti in gruppi.
2. Con l'aiuto di uno stereomicroscopio, abbassare delicatamente le macchie di embrioni che hanno aderito alle punte della pinza sulla superficie del nastro sul vetrino dechorionation.
3. Anche in questo caso con lo stereomicroscopio, delicatamente spingere o ictus gli embrioni con il lato della pinza in modo da rompere il corion esterno ceroso senza rottura della membrana interna vitellina (l'embrione esploderà se la membrana vitellina è rotto).
4. Una volta che il corion esterno è stato rotto, stuzzicare l'embrione dal corion, l'embrione dechorionated tende ad aderire alla superficie della pinza. Fare attenzione a non toccare l'embrione dechorionated alla superficie del nastro.
5. Non appena un embrione è dechorionated, rapidamente trasferimento alla goccia di olio precedentemente preparato alocarburi sul vetrino. Toccare la punta della pinza portando l'embrione dechorionated alla superficie della goccia di olio alocarburi - questo sloggia l'embrione dal forcipe nell'olio.
6. Confermare il trasferimento di un embrione alla goccia di petrolio. Questo può essere fatto a occhio nudo, a condizione che si lavora su uno sfondo nero e utilizzare una fibra ottica fonte di illuminazione fissata a un angolo obliquo.
7. Prima di tentare di dechorionate un altro embrione, pulire qualsiasi tipo di olio dalla pinza. Pinza rivestiti in olio hanno meno di acquisto sulla superficie corion, dechorionation rendendo più difficile.
8. Dechorionated embrioni sono vivace nell'olio alocarburi. Uso di pinze o un pennello e durante la visualizzazione attraverso uno stereomicroscopio, spingere l'embrione alla parte inferiore della goccia di olio e sistemare nella posizione desiderata.
9. Rapidamente invertire il coprioggetto sopra il pozzo della camera di immagini dal vivo. Confermano che gli embrioni sono a riposo contro il vetrino con l'orientamento desiderato. Grazie alla loro galleggiabilità in olio, gli embrioni ora galleggiano sulla superficie inferiore del coprioggetto. Fissare il coprioggetto alla camera di imaging dal vivo con del nastro adesivo. Ventilare la camera da taglio buchi nel nastro nella zona in cui il nastro si estende il divario tra la fine del vetrino e la fine del pozzo della camera di immagini dal vivo.
10. Un microscopio a fluorescenza in posizione verticale o uno stereomicroscopio a fluorescenza possono ora essere utilizzati per l'immagine degli embrioni.

Discussione

Descriviamo un nuovo metodo di preparazione di embrioni di Drosophila per l'analisi di immagini dal vivo, che noi chiamiamo il protocollo goccia. Purtroppo, non è possibile utilizzare il protocollo goccia se si lavora con un microscopio invertito. In questo caso la tecnica del sandwich (come descritto nel già astratto) deve essere utilizzato e la compressione degli embrioni rimane una preoccupazione.

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