JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Protokol
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Hem molekülleri etkileşen hücrelerin yüzeylerinde demirlemiş olan reseptör-ligand etkileşimi kinetiği ölçmek için bir yapışma frekans tahlil açıklanmıştır. Bu mekanik tabanlı test mikropipet basınçlı bir insan adezyon sensörü olarak kırmızı kan hücresi ve integrin αLβ2 ve hücrelerarası adezyon molekülü-1 reseptörleri ve ligandlar etkileşim olarak kullanarak örneklenir.

Özet

Mikropipet yapışma testinin iki boyutlu (2D) reseptör-ligand bağlayıcı kinetiği 1 ölçmek için 1998 yılında geliştirilmiştir. Tahlil yapışma sensörü ve etkileşen moleküllerin birini sunan hücre gibi bir insan kırmızı kan hücreleri (RBC) kullanır. RBC, tam kontrol ve bağ oluşumunu sağlamak için diğer etkileşim molekülü ifade başka bir hücre ile temas getirmek için mikromanipülasyon kullanmaktadır. Yapışma olayı birbirinden ayrı iki hücre çekerek üzerine RBC uzama olarak algılanır. RBC yüzeyinde hareketsiz ligandlar yoğunluğu kontrol ederek, yapışma olasılığı 0 ile 1 arasında orta menzilli tutulur. Yapışma olasılığı belirli bir temas süresi için iki hücre arasındaki tekrarlanan temas döngülerinin bir dizi frekans adezyon olaylar tahmin edilmektedir. Zamanla değişen bağlayıcı bir eğri oluşturur. Bağlayıcı reseptör-ligand reaksiyon kinetiği 1 olasılıklı model uydurmaeğrisi 2B yakınlık ve kapatma hızı ile döner.

Assay, IgG Fc 1-6, selektinler glycoconjugate ligandlar 6-9 ligandlar 10-13, homotypical kaderin bağlama 14, peptid ana histokompatibilite kompleksleri 15 ile T hücre reseptör ve coreceptor integrinler Fcγ reseptörleri etkileşim ile onaylanmıştır 19.

Yöntemi, microtopology 5 membran, membran çapa 2, moleküler oryantasyon ve uzunluğu 6, taşıyıcı sertlik 9, eğrilik 20 ve sıkışma kuvveti 20, yanı sıra biyokimyasal faktörler gibi biyofiziksel faktörler, 2D kinetiği düzenlemeleri ölçmek için kullanılan etkileşen moleküllerin bulunduğu iskeleti ve membran mikroçevresinin ve bu moleküller 15,17,19 yüzey örgütü, modülatörler gibi.

Bu yöntem t da kullanılır olmuşturo, değiştirilmiş bir modelini 21 kullanarak çift reseptör-ligand türleri 3,4 aynı anda bağlama, ve 19 trimolecular etkileşimleri çalışma .

Yöntemin en büyük avantajı, kendi ana membran ortamda reseptörlerinin çalışma izin vermesidir. Saflaştırılmış reseptörleri 17 kullanılarak elde edilen sonuçlar çok farklı olabilir. Ayrıca reseptör-ligand etkileşimleri de tipik biyokimyasal yöntemlerin ötesinde zamansal çözünürlüğe sahip bir alt-ikinci ölçeğinde çalışma sağlar.

Mikropipet yapışma frekans yöntemi göstermek için, α L β 2 etkinleştirmek için çözüm dimerik E-selektin ile nötrofil bağlayıcı eritrositlerde integrin α L β 2 Fonksiyonlu hücrelerarası adezyon molekülü 1 (ICAM-1) kinetik ölçüm göstermektedir.

Protokol

1. Tam kan eritrosit izolasyonu

  1. EAS-45 çözümleri hazırlayın. Tablo I tüm malzemeyi tartılır ve 100-200ml DI su içinde çözülür. 1000ml çözüm yapmak ve 8.0 pH ayarlamak için su ekleyin. 50ml Filtre ve kısım. Saklama için -20 ° C'de dondurun.

Not: Adım 1.2 Kurumsal Değerlendirme Kurulu tarafından onaylanmış protokol ile, bir hemşire olarak, eğitimli bir tıbbi profesyonel gibi olmalıdır.

  1. , EDTA içeren bir 10ml tüp içine medyan kübital venden kan 3-5ml çizin ve hemen EDTA ile kan hafifçe karıştırın ve iyice pıhtılaşmasını önlemek.
  2. Süreç kan örneği mümkün olan en kısa sürede. Santrifüj dışında tüm aşağıdaki adımları hazırlık steril tutmak için kaputun altında yapılmalıdır. 50ml santrifüj tüpüne kan transferi 5dk @ 1000rpm, 4 ° C soğuk ve steril 1077 Histopaque ve santrifüj 10ml eklemek Iki kez tekrarlayın.
  3. 10 ekleml soğuk ve steril PBS, 5min @ 1000rpm için santrifüj, 4 ° C Süpernatantı. 4 kez toplam 5 kez tekrarlayın.
  4. Iki kez steril EAS-45 (5 dk @ 1000rpm, 4 ° C) yıkayın. Çamaşır hareket eritrositlerde, yeni steril bir 15ml tüpe son sırasında.
  5. Süspanse edin eritrositlerde in10ml EAS-45.

2. Eritrositlerde biyotinilasyon

  1. Adım 1 eritrositlerde tüp alın. 5min @ 1000rpm, 4 ° C için santrifüj sonra tüm süpernatantı Her biri için birkaç flakon eritrositlerde pelet 10μl koyun ve her flakon PBS karşılık gelen miktarı (örneğin altı farklı eritrositlerde biyotinilasyon konsantrasyonlarda hazırlanması Tablo II).
  2. Tablo II göre taze Biotin-X-NHS/DMF 1:10, 1:100 dilüsyonları olun.
  3. Her flakon 0.1M borat tampon 10μl ekleyin.
  4. Hemen hesaplanan her flakon biotin çözüm miktarı (Örnek olarak bkz. Tablo II) ve vorteks ekleyin .
  5. Her RBC flakon yerleştirin.50ml konik bir tüp ve oda sıcaklığında 30 dakika rotator üzerinde inkübe içinde.
  6. 2min @ 2000rpm EAS-45 800μl her flakon 3 kere yıkayın.
  7. EAS-45 4 Her flakon ve saklamak için 100μl ekle ° C Nihai çözüm her 1μl eritrositlerde ~ 1mln olmalıdır.

3. Eritrositlerde biotin bağlantılı ligandlar * Functionalizing

  1. 2mg/ml streptavidin çözüm üreticinin talimatlarına göre hazırlayın. Aliqouted çözümü, -20 ° C'de saklanabilir
  2. Hemen streptavidin çözüm, girdap adım 2.7 (10μl) eritrositlerde eşit miktarda karıştırın ve 30 dakika için 4 rotator üzerinde inkübe ° C
  3. 2min @ 2000rpm EAS-45 500μl ile 3 kere yıkayın. 15μl EAS-45 / depolama için% 1 BSA ekleyin.
  4. 20μg/ml ligand çözüm, girdap adım 3.3 (10μl) hemen eritrositlerde eşit miktarda karıştırın ve için rotator oda sıcaklığında 30 dakika inkübe edin.
  5. , 500μl ile iki kez yıkayın EAS-45 / 1% BSA 2dk @ 2000rpm. Depolama için EAS-45 / 1% BSA 15μl ekle.

* Protein biotin bağlantı varsa protein biyotinilasyon için ticari kitler mevcuttur birini (örneğin, Thermo Scientific # 21955 EZ-Link Micro NHS PEG4 biyotinilasyon Kit) kullanımı ya da gösterildiği gibi bir ara adım olarak biotinlenmiş yakalama antikorlar video.

4. Reseptörü ve ligand yoğunlukları Kantitasyonu

  1. Doyurarak konsantrasyonları ile ilgili mAbs farklı bir flakon, reseptör taşıyan hücrelerin oda sıcaklığında 30 dakika için, adım 3 ligand kaplı eritrositlerde inkübe. Ayrı şişeleri hücrelerinde kontrolü için alakasız izotip-uyumlu antikorlar ile inkübe edin. Birincil antikorlar floresan etiketli değilse, üreticinin talimatlarına göre floresan-konjuge sekonder antikor ile inkübe edin.
  2. Ilgili floresan cal akış cytometery adım 4.1 'de hazırlanan numunelerin analizkullanılarak tespit boncuk. Şekil yoğunluklarını hesaplayınız. 1.

5. Mikropipet ve hücre odası için hazırlık

  1. PN-30 Narishige 'Manyetik Cam Mikroelektrod Yatay Çektirme veya Sutter Aletleri Mikropipet Çektirme kullanarak kılcal tüpler mikropipetler çekin.
  2. Microforge ile mikromanipülatör çekti mikropipet ucu istenen boyutta (genellikle 1-5μm gerekli çap aralıkları çalışmada kullanılmak üzere hücrelerin büyüklüğüne göre) ayarlamak için kullanın.
  3. Istediğiniz boyuta Mikroskop Kapak Cam keserek hücre odasına hazırlayın. Deneme sırasında ozmolarite değiştirmek için orta buharlaşmasını önlemek için her iki tarafın Madeni Yağ haznesi Seal.
  4. Reseptör-ligand taşıyan hücreleri odasına ekleyin.

6. Mikropipet yapışma frekans tahlil

  1. Ilgili pipetler etkileşim hücreleri aspire ve bilgisayar programlı piezoelectr ic çevirmen kontrollü temas alanı ve süresi ile diğer hücre ile temas içinde ve dışında RBC sürücü. Hücre ayrılması üzerine RBC uzama gözlemleyerek yapışma olayları algılama.
  2. Belirli bir temas süresi, temas retraksiyon döngüsü 50-100 kez tekrarlayın. Excel elektronik tablonun bir sütununda herhangi bir yapışma için yapışma ya da "0" için "1" ekleyerek gözlenen yapışma olayları kaydedin. Mikroskobik görüntüler için, örneğin, dijital medya ve video kaset kayıt cihazı kullanabilirsiniz.
  3. Yapışma frekansı karşı temas süresi eğrisi ortalama ve SEM elde etmek için her bir temas süresi için en az üç farklı hücre çiftleri kullanarak kaydedin.
  4. Kendi özel fonksiyonel abluka mAbs kullanarak ligandlar veya reseptörlerini bloke ilgisiz ligandlar (örneğin BSA) ve / veya kaplanmış eritrositlerde kullanarak kontrol için nonspesifik bağlanma eğrisi kaydedin. , Her temas süresi noktasında spesifik adezyon frekans nonspesifik yapışma frekansı 1 çıkarılması ile hesaplanır .
ove_title "> 7 Veri analizi

  1. Fit özel yapışma frekansı P ileriye ikinci mertebeden ve birinci dereceden reseptörlerinin tek bir türün ve ligandlar 1 tek bir türün arasında ters, tek adım etkileşimi açıklayan olasılıksal bir model (Denklem 1) karşı temas süresi t veri :
    figure-protocol-6089
    K 2B etkili afinitesi, k off off hızı, m r ve m l 4. adımda ölçülen ilgili reseptör ve ligand yoğunlukları vardır, ve c iletişim alanıdır. Eğri-fit, c ve K etkili 2B afinitesi gibi aynı kefeye ve topluca olarak iki parametre, A c K a ve k kapalı, vardır . Off oranı ile ürün etkin 2D oranı: c k = A c K x k kapatır.
    Spesifik adezyon frekans P çıkarma tarafından ölçülen toplam yapışma (P) 1,21 ölçülür nonspesifik yapışma fraksiyonu (P nonspesifik) hesaplanır:
    figure-protocol-6980

8. Temsilcisi Sonuçlar:

figure-protocol-7129
Integrin α L β 2 nötrofil sitesi yoğunluğu Şekil 1 Belirlenmesi. Nötrofiller ilk Rakamlar 3,4 veya E-selektin-Ig olmadan kullanılan deneysel durumu maç 10dk E-selektin-Ig 1μg/ml ile inkübe ve sonra PE-konjuge anti doyurarak konsantrasyonları (10μg/ml) -insan CD11a mAb (Klon HI111, özel Tablo bakınreaktifler ve ekipman) veya kontrol için alakasız fare IgG1, yıkanmış ve hemen analiz. Numuneler standart QuantiBRITE PE kalibrasyon boncuk BD LSR akış sitometresinde okundu. Panel A, E-selektin-Ig tedavi (mavi renk) veya tedavi edilmemiş hücreleri (yeşil renkli) ile birlikte kalibrasyon boncuk floresan histogramları (pembe) gösterir. Özel CD11a mAb boyama katı eğrileri ve ilgisiz izotip eşleştirilmiş kontrol antikor boyama, noktalı eğriler gösterilmiştir gösterilmiştir. E-selektin-Ig (tüm yıkama adımları ve FACS tampon varlığı) ile muamele edilen hücreler CD11a yoğunluğu tedavi edilmezse hücreleri ile karşılaştırıldığında görüldüğü gibi etkilemedi. Panel B yoğunluğu nicelikleme süreci gösterir. Log10 Masası'nda dört kalibrasyon boncuk histogramlar her tepe değeri ortalama floresan yoğunluğu (FI) için hesaplanmıştır (pembe daireler) ve boncuk başına çok özel PE moleküller için (üretici). Log10 fluoresc karşı boncuk başına Log10 PE moleküllerin lineer regresyonence çizilen oldu. E-selektin ile tedavi edilen hücreler için respectivly 3.99 (mavi katı daire) ve 2.23 (açık mavi daire), özel mAb ve kontrolü antikor, eşit Log10 FI (y ) değerleri. Biz x (değerler Panel B, yeşil ve mavi daireler olarak çizilir) lineer denklem çözüldü x = Log10 PE / PE olarak hücre ve:, nötrofil α L β 2 toplam sayısı mAb oranı 1:1 idi. 9587 olarak hesaplanmıştır. Yüzey yoğunluğu, nötrofil çapı 22 olarak 8.4μm kullanarak, 43 moleküller / mm 2 olarak hesaplanmıştır . ICAM-1 Yoğunluk benzer 65 mol / mikron 2 egale PE-anti-insan CD54 mAb kullanılarak akış cytometery ölçüldü.

figure-protocol-9238
Şekil 2 Mikropipet sistem şemaları. Bizim mikropipet ev sistemi monte edilmiş ve üç alt sistemlerin oluşan bir görüntüleme alt sistemi bir rec gözlemlemek için izinord ve analiz mikropipet aspire hücre hareketleri, bir hücre odasından hücreleri seçmek için etkinleştirmek için bir mikromanipülasyon alt sistemi, bir basınç alt sistemi bir mikropipetler hücreleri aspire için izin vermek. Görüntüleme alt sistemi merkezi bir 100x immersiyon yağı NA 1.25 amacı ile parça (Olympus IMT-2 IMT2) mikroskop ters. Görüntü, bir şarj çift cihazı (CCD) kamera ile bir video kaset kaydedici gönderilir. Video zamanlayıcısı zaman takip sistemi ile birleştirilir. Her mikropipet mikroskop üzerine monte edilir ve üç eksenli hidrolik mikromanipülatör yerleştirilmiş ince mekanik bir sürücü tarafından manipüle edilebilir. Newport Mekanik manipülatörler de kullanılabilir. Mikropipet sahiplerinden biri, bir piezoelektrik çevirmen üzerine monte edilmiş, sürücü piezo aktüatör için gerilim yükseltici (ev yapımı) ile, bir bilgisayar LabView kodu (istek üzerine) ve DAQ kurulu aracılığıyla sinyal çevirir tarafından kontrol edilir. Bullows bir pipet, tam bir yapışma test döngüsünde ve repeatably taşımak için. Basınç regülasyonu alt sistemi deney sırasında emme kontrol etmek için kullanılır. Hidrolik hat mikropipet tutucu bir sıvı rezervuar bağlanır. A fine mekanik pozisyoner rezervuar yüksekliği tam olarak değiştirilmesine olanak sağlar.

Mikropipetler KIMAX erime noktası borosilikat cam kapiller tüplerin (dış çapı 1.0 ± 0.07 mm ve iç çapı 0.7 ± 0.07 mm kullanılarak üretilir. Birincisi, kılcal tüpler mikropipetler PN-30 Narishige 'Manyetik Cam Mikroelektrod Yatay Çektirme kullanarak çekti. (Sutter Aletleri Mikropipet Çektirme başka bir seçenek çektirmesi) İkincisi, Microforge sistemi (dahili evde) istediğiniz boyuta açılış mikropipetler kesmek için kullanılır. Microforge sistemleri Ticari modelleri de mevcuttur.

Microsc deney sırasında mikropipetler titreşim önlemek içinyerdir, mikromanipülatörler ile birlikte, bir havalı süspansiyon masaya yerleştirilir.

figure-protocol-11479
Şekil 3 i için yapışma frekans F Koşu özgü (A) ve nonspesifik (B) 1s (kırmızı) bağlayıcı ve 10s (mavi), ICAM-1 (A) veya hIgG ile kaplı eritrositler arasında tekrarlanan yapışma test döngüsü ölçülen temas süresi ( B ) insan nötrofil ifade integrin α L β 2 F = (X 1 + X 2 + ... + X) / i (1 i test döngüsü indeksi ≤ in), X i "1" eşittir (yapışma) veya "0" (yapışma) F n (n = 50) yapışma olasılığı için en iyi tahmini olarak kullanılmıştır.

figure-protocol-12214
Şekil 4 KinetiğiICAM-1 nötrofil integrin α L β 2 bağlama ( figure-protocol-12382 .) Ölçülen Yapışma olasılık her temas süresi üç hücre çiftleri için Şekil 3'te gösterildiği gibi ortalama ve temas süresi karşı çizilmiştir. Odanın orta 1mm her Ca 2 + ve Mg 2 + dimerik artı 1μg/ml E-selektin-Ig ile α L β 2 bağlama upregüle HBSS oldu. Eritrositler üzerinde ICAM-1-Ig yakalamak için bir ara adım eritrositlerde streptavidin inkübasyon adımdan sonra 10μg/ml yakalama antikor (biotinlenmiş keçi anti-insan Fc antikoru, eBioscience) ile inkübe eklendi. Nonspesifik bağlayıcı iki farklı koşullar için kontrol etmek için kullanılır: 1) eritrositler ile kaplı değil, anti-insan-Fc yakalama antikoru ile kaplı ve eritrositler için bağlayıcı ICAM-1-Ig (O) ve 2) nötrofil yerine insan IgG ile inkübe (Δ) antikor yakalamak. 10μg/ml insan IgG E bağlayıcı en aza indirmek için orta eklendiRBC yüzeyinde yakalama antikor çözüm-selektin-Ig. Insan IgG kontrol eğrisi olarak kaydedilen Nonspesifik bağlama, belirli bir yapışma olasılığı eğrisi (elde etmek için kullanılan figure-protocol-13462 ) Denk. 2. Denklem Montaj özel yapışma olasılığı eğrisi. 1 (düz çizgi) etkili afinitesi c K = 1.4 • 10 -4 μm4 ve k off = 0.3 s -1 döndü.

Reaktif MW (g / mol) Konsantrasyon (mM) Miktarı (g)
Adenin 135,13 2 0,27
D-glikoz (dekstroz) 180,16 110 19,82
D-Mannitol 182,17 55 10,02
Sodyum Klorür (NaCl) 58,44 50 2,92
Sodyum Fosfat, Dibazik (Na HPO ) 141,95 20 2,84
L-glutamin 146,15 10 1,46

(Tablo 1). EAS-45 tampon hazırlığı (1L ).

DMF 550 ul 25 mg Biotin-XHS 0.1M biotin çözümü
0.1 biotin w / DMF 01:10 seyreltme 0.01m biotin çözümü
0.1 biotin w / DMF 1:100 seyreltme 0.001M biotin çözümü

Tablo 2 biotin çözümün hazırlanması.

biotin final konsantrasyon (mcM) 4 10 20 50 100 160
Eritrositlerde pelet stoku (ul) 10 10 10 10 10 10
1x PBS (ul) 179,2 178 176 179 178 176,8
0.1M borat tamponu (ul) 10 10 10 10 10 10
0.01m biotin çözümü (ul) 1 2 3,2
0.001M biotin çözümü (ul) 0,8 2 4

Tablo 3 eritrositlerde biyotinilasyon.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Tartışmalar

Biri, bazı kritik adımları düşünmelisiniz mikropipet yapışma frekans testinin başarılı bir şekilde kullanın. Birincisi, faiz reseptör-ligand sistemi için spesifik etkileşim kayıt emin olun. Nonspesifik kontrol ölçümleri (bkz. Şekil 3, 4) özgüllük sağlar. İdeal olarak, nonspesifik yapışma olasılıkları tüm temas süresi süreler için 0.05 altında olmalı ve her zaman noktası için spesifik ve nonspesifik yapışma olasılıklar arasında anlamlı bir fark var. Çift eritrosit yüzey liga...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Açıklamalar

Çıkar çatışması ilan etti.

Teşekkürler

Bu çalışma NIH hibe programı R01HL091020 R01HL093723, R01AI077343 ve R01GM096187 tarafından desteklenmiştir.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Reaktifi Adı Şirket Katalog # Yorumlar
10x PBS BioWhittaker

17-517Q

Kullanmadan önce 1x deiyonize su ile seyreltilir
Vacutainer EDTA BD 366643 Eritrosit izolasyonu
10ML PK100
Histopaque 1077 Sigma-Aldrich 10771 Eritrosit izolasyonu
Adenin Sigma-Aldrich A2786 EAS-45 hazırlık
D-glikoz (dekstroz) Sigma-Aldrich G7528 EAS-45 hazırlık
D-Mannitol Sigma-Aldrich 6360 EAS-45 hazırlık
Sodyum Klorür (NaCl) Sigma-Aldrich S7653 EAS-45 hazırlık
Sodyum Fosfat, Dibazik (Na & # x2082; HPO ₄) Fisher Scientific S374 EAS-45 hazırlık
L-glutamin Sigma-Aldrich G5763 EAS-45 hazırlık
Biotin-X-NHS Calbiochem 203188 Eritrositlerde biyotinilasyon
Dimetilformamid (DMF) Thermo Scientific 20673 Eritrositlerde biyotinilasyon
Borat Tampon (0.1M) Elektron Mikroskopi Bilimleri 11455-90 Eritrositlerde biyotinilasyon
Streptavidin Thermo Scientific 21125 Functionalizing Ligand
BSA Sigma-Aldrich A0336 Functionalizing Ligand
Quantibrite PE boncuklar BD Biosciences 340495 Yoğunluk kantifikasyon
Akış sitometresi BD Immunocytometry Sistemleri

BD LSR II.

Yoğunluk quanldirimi

Kılcal Tüp

0.7-1.0mm x 30 "
Kimble Cam A.Ş. 46485-1 Mikropipet çekerek
Madeni Yağ Fisher Scientific BP2629-1 Odası montaj
Mikroskop Kapak Camlar Fisher Scientific 12-544-G Odası montaj

PE α-insan CD11a

Klon HI 111
eBioscience 12-0119-71 Şekil 1 için kimyasalı
PE anti-insan CD54 eBioscience 12-0549 Şekil 1 için kimyasalı
Fare IgG1 İzotip Kontrol PE eBioscience 12-4714 Şekil 1 için kimyasalı
hidrolik mikromanipülatör Narishige MO-303 Mikropipet sistemi
Mekanik manipülatör Newport 461-xyz-m, SM-13, DM-13 Mikropipet sistemi
piezoelektrik tercümecisi Physik Instrumente P-840 Mikropipet sistemi
LabVIEW National Instruments Sürüm 8.6 Mikropipet sistemi
DAQ kurulu National Instruments USB-6008 Mikropipet sistemi
Optik tablo Kinetik Sistemleri 5200 Serisi Mikropipet sistemi

Referanslar

  1. Chesla, S. E., Selvaraj, P., Zhu, C. Measuring two-dimensional receptor-ligand binding kinetics by micropipette. Biophys. J. 75, 1553-1572 (1998).
  2. Chesla, S. E., Li, P., Nagarajan, S., Selvaraj, P., Zhu, C. The membrane anchor influences ligand binding two-dimensional kinetic rates and three-dimensional affinity of FcgammaRIII (CD16). J. Biol. Chem. 275, 10235-10246 (2000).
  3. Williams, T. E., Nagarajan, S., Selvaraj, P., Zhu, C. Concurrent and independent binding of Fcgamma receptors IIa and IIIb to surface-bound IgG. Biophys. J. 79, 1867-1875 (2000).
  4. Williams, T. E., Selvaraj, P., Zhu, C. Concurrent binding to multiple ligands: kinetic rates of CD16b for membrane-bound IgG1 and IgG2. Biophys. J. 79, 1858-1866 (2000).
  5. Williams, T. E., Nagarajan, S., Selvaraj, P., Zhu, C. Quantifying the impact of membrane microtopology on effective two-dimensional affinity. J. Biol. Chem. 276, 13283-13288 (2001).
  6. Huang, J. Quantifying the effects of molecular orientation and length on two-dimensional receptor-ligand binding kinetics. J. Biol. Chem. 279, 44915-44923 (2004).
  7. Long, M., Zhao, H., Huang, K. S., Zhu, C. Kinetic measurements of cell surface E-selectin/carbohydrate ligand interactions. Ann. Biomed. Eng. 29, 935-946 (2001).
  8. Chen, W., Evans, E. A., McEver, R. P., Zhu, C. Monitoring receptor-ligand interactions between surfaces by thermal fluctuations. Biophys. J. 94, 694-701 (2008).
  9. Wu, L. Impact of carrier stiffness and microtopology on two-dimensional kinetics of P-selectin and P-selectin glycoprotein ligand-1 (PSGL-1) interactions. J. Biol. Chem. 282, 9846-9854 (2007).
  10. Waugh, R. E., Lomakina, E. B. Active site formation, not bond kinetics, limits adhesion rate between human neutrophils and immobilized vascular cell adhesion molecule 1. Biophys. J. 96, 268-275 (2009).
  11. Zhang, F. Two-dimensional kinetics regulation of alphaLbeta2-ICAM-1 interaction by conformational changes of the alphaL-inserted domain. J. Biol. Chem. 280, 42207-42218 (2005).
  12. Lomakina, E. B., Waugh, R. E. Adhesion between human neutrophils and immobilized endothelial ligand vascular cell adhesion molecule 1: divalent ion effects. Biophys. J. 96, 276-284 (2009).
  13. Chen, W., Lou, J., Zhu, C. Forcing switch from short- to intermediate- and long-lived states of the alphaA domain generates LFA-1/ICAM-1 catch bonds. J. Biol. Chem. 285, 35967-35978 (2010).
  14. Chien, Y. H. Two stage cadherin kinetics require multiple extracellular domains but not the cytoplasmic region. J. Biol. Chem. 283, 1848-1856 (2008).
  15. Huang, J., Edwards, L. J., Evavold, B. D., Zhu, C. Kinetics of MHC-CD8 interaction at the T cell membrane. J. Immunol. 179, 7653-7662 (2007).
  16. Wasserman, H. A. MHC variant peptide-mediated anergy of encephalitogenic T cells requires SHP-1. J. Immunol. 181, 6843-6849 (2008).
  17. Huang, J. The kinetics of two-dimensional TCR and pMHC interactions determine T-cell responsiveness. Nature. 464, 932-936 Forthcoming.
  18. Sabatino, J. J., Huang, J., Zhu, C., Evavold, B. D. High prevalence of low affinity peptide-MHC II tetramer-negative effectors during polyclonal CD4+ T cell responses. J. Exp. Med. 208, 81-90 (2011).
  19. Jiang, N. Two-stage cooperative T cell receptor-peptide major histocompatibility complex-CD8 trimolecular interactions amplify antigen discrimination. Immunity. 34, 13-23 (2011).
  20. Spillmann, C. M., Lomakina, E., Waugh, R. E. Neutrophil adhesive contact dependence on impingement force. Biophys. J. 87, 4237-4245 (2004).
  21. Zhu, C., Williams, T. E. Modeling concurrent binding of multiple molecular species in cell adhesion. Biophys. J. 79, 1850-1857 (2000).
  22. Downey, G. P. Retention of leukocytes in capillaries: role of cell size and deformability. J. Appl. Physiol. 69, 1767-1778 (1990).
  23. Li, P. Affinity and kinetic analysis of Fcgamma receptor IIIa (CD16a) binding to IgG ligands. J. Biol. Chem. 282, 6210-6221 (2007).
  24. Chen, W., Zarnitsyna, V. I., Sarangapani, K. K., Huang, J., Zhu, C. Measuring Receptor-Ligand Binding Kinetics on Cell Surfaces: From Adhesion Frequency to Thermal Fluctuation Methods. Cell. Mol. Bioeng. 1, 276-288 (2008).
  25. Thoumine, O., Kocian, P., Kottelat, A., Meister, J. J. Short-term binding of fibroblasts to fibronectin: optical tweezers experiments and probabilistic analysis. Eur. Biophys. J. 29, 398-408 (2000).
  26. Ounkomol, C., Xie, H., Dayton, P. A., Heinrich, V. Versatile horizontal force probe for mechanical tests on pipette-held cells, particles, and membrane capsules. Biophys. J. 96, 1218-1231 (2009).
  27. Piper, J. W., Swerlick, R. A., Zhu, C. Determining force dependence of two-dimensional receptor-ligand binding affinity by centrifugation. Biophys. J. 74, 492-513 (1998).
  28. Li, P., Selvaraj, P., Zhu, C. Analysis of competition binding between soluble and membrane-bound ligands for cell surface receptors. Biophys. J. 77, 3394-3406 (1999).
  29. Long, M. Probabilistic modeling of rosette formation. Biophys. J. 91, 352-363 (2006).
  30. Lou, J. Flow-enhanced adhesion regulated by a selectin interdomain hinge. J. Cell. Biol. 174, 1107-1117 (2006).
  31. Yago, T., Zarnitsyna, V. I., Klopocki, A. G., McEver, R. P., Zhu, C. Transport governs flow-enhanced cell tethering through L-selectin at threshold shear. Biophys. J. 92, 330-342 (2007).
  32. Evans, E., Berk, D., Leung, A. Detachment of agglutinin-bonded red blood cells. I. Forces to rupture molecular-point attachments. Biophys. J. 59, 838-848 (1991).
  33. Zarnitsyna, V. I. Memory in receptor-ligand-mediated cell adhesion. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 104, 18037-18042 (2007).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Biyom hendislikSay 57iki boyutlu bir ba lanma afinitesi ve kineti imikropipet manip lasyonresept r ligand etkile imi

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır