JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Burada 3D mikroskopi ve analizler (3D immuno-DNA FISH) izledi DNA FISH immünofloresan ve DNA dizileri tarafından histon modifikasyonları eşzamanlı tespiti için bir protokol açıklar.

Özet

3D konfokal mikroskopi ardından 3 boyutlu korunmuş çekirdekleri üzerinde DNA problar kullanılarak floresan in situ hibridizasyon (3D DNA FISH) bireysel hücrelerin alt bölgeler kromozomal gen lokuslarının yeri veya tüm ülkelerle görselleştirmek için en doğru yolu gösterir. Bu tip analiz çekirdeğin küresel mimari gibi nükleer boşluk içinde belirli lokus ve genomik bölgenin davranışının fikir verir. Immunofluorescence, diğer taraftan, nükleer proteinlerin tespiti (modifiye edilmiş histon, histon türevleri ve değiştiriciler, transkripsiyon faktörleri ve makine, nükleer alt-bölme, vb) izin verir. Immünofloresan ve 3B DNA FISH birleştirme içinde önemli bir sorun çekirdeğin 3D mimarisi yanı sıra antikor tarafından tespit edilen epitopu korumak için bir taraftan, ve diğer taraftan, DNA prob nüfuz tespit etmesi için gen lokus veya kromozom bölgeleri 1-5. Burada 3D korunmuş çekirdeklerinde genomik lokus ile kromatin modifikasyonları görselleştirme birleştiren bir protokol sağlar.

Giriş

Epigenetik mekanizmalar tetik kuruluş ve gelişim ve hücre tipi özel transkripsiyonel profilleri kalıtım. Bir düzeyde bu aktif veya sessiz genomik bölgelerde tanımlar kromatin paketlenmesi modülasyonu içerir. Daha büyük ölçekte, genom ve nükleer mimarisinin küresel 3D organizasyonu da transkripsiyonel desen kontrolünde bir rol oynamaktadır. Böylece, bu epigenomic özelliklerin diseksiyonu genler 6-11 düzenlenir nasıl tam bir anlayış için önemlidir.

Kombine immünofloresan ve 3D DNA FISH spesifik etkileşimler / çekirdeğin içinde DNA dizileri ve / veya protein dernekler değerlendirerek, biyokimyasal ve moleküler analizler tamamlamak için eşsiz bir fırsat sunmaktadır. Bunun yanında, bu tür kromatin immünopresipitasyon (ChIP-seq) veya derin dizileme ile birleştiğinde kromozom yakalama konformasyon olarak genom yüksek verimlilik teknikleri (4C-seq, 5C, Hi-C) küresel dat sağlamakhücre popülasyonlarının 12 üzerinde, immünofloresan / DNA FISH teknikleri tek hücre düzeyinde analiz sağlar.

Burada 3D mikroskopi ve analizler (3D immuno-FISH) izledi DNA FISH immünofloresan ve DNA dizileri tarafından histon modifikasyonları eşzamanlı tespiti için bir protokol açıklar. Bu protokolün avantaj DNA ve protein yapılarının korunması kombine görselleştirme olduğunu. Bu alanda tecrübemiz mevcut protokoller geliştirmek ve kolaylaştırmak için bize sağladı. Bu rekombinasyon geçiren lenfosit çift-sarmallı DNA mola tespit etmek için bu protokol kullanılmıştır, ancak bu yöntem, diğer proteinlere ve diğer hücre türleri uygulanabilir.

Protokol

1. Fluorophores DNA Prob Etiketleme: Nick Çeviri (~ 6 saat)

  1. Temizlik BAC DNA (Maxi-prep göre hazırlanmış) ve plazmit veya PCR ürünleri, H2O içinde tekrar süspanse edilir, tüm etiketleme için de kullanılabilir. Not sağlam bir FISH sinyal için, sondalar, en az 10 kb kapsar gerektiğini.
  2. RNaz DNA inkübe bir 37 30 dakika ° C (Bütün çözeltiler Tablo 1'de listelenmiştir).
  3. 16. az 2 saat süreyle nick translation reaksiyon inkübe ° C (Tablo 2 ve 3). Doğrudan etiketleme Alternatif yöntemler (: BALIK Etiket, Invitrogen Örnek) kullanılabilir.
  4. -80 Az bir saat süreyle reaksiyon inaktive -20 ° C'de ° C ya da gece boyunca
  5. % 2'lik agaroz jel üzerinde prob boyutu belirleyin. Smear yaklaşık 300-500 bp (Cy5-probların smear görünmez olduğunu unutmayın) de çoğunluğu ile, 100 ve 1000 bp arasında olmalıdır. DNA yeteri kadar sindirilmeyen, daha fazla DNA Pol I veDNaz I reaksiyona eklenmiş, ve 16 ° C de iki saat daha inkübe edilebilir
  6. Karanlıkta iki saat için H 2 0 dolu iki litrelik bardak 0.025 mm filtrelerde probları arındırın.
  7. Aşağıdaki gibi probları ile bloke etme faktörleri ekleyin: Manşon-1 DNA'sının 10 ug, Hybloc DNA ve 10 ug DNA probları 10 ug için somon sperm 100 ug. -20 ° C'de saklayın DNA probları

2. Prob Yağış / Denatürasyon / Ön tavlama (3-4 saat)

  1. 0.3 ug ve DNA probu 1 mg arasında lamel başına kullanılır. 3M NAAC (pH 5.2) ve% 100 etanol, 2.5 hacim, 0.1 hacim ile karıştırın sondalar, -80 az bir saat süreyle inkübe ° C ya da gece boyunca -20 ° C'de ve 4 13,000 rpm'de aşağı dönüş ° C'de 30 dakika süre ile. DNA probu miktarı DNA kalitesi ve hibridizasyon nükleer bölgesine bağlı olarak ayarlanabilir dikkat ediniz. Doğrudan etiketleme Alternatif yöntemler azaltılmış miktarda kullanımına izin verebilirprob. Bir slayt üzerinde birden fazla DNA FISH sinyal tespiti için, farklı prob (tekrar dizileri gibi, ön-tavlanmış olmamalıdır problar hariç) birlikte çökeltilebilir. Aynı zamanda yapılmış olan deneyler için sondalar da bir arada çökeltilebilir. Granüller hafifçe (problar küçük miktarlarda çöktürülür ise, topak görünür olmayan) ikinci floroforlar göre renkli olmalıdır.
  2. Kuru granül ve 37-45 karanlıkta (Eppendorf bir termomikser kullanılarak) sallama ile lamel başı (bkz. Tablo 4) 15 ul hibridizasyon tamponu içinde tekrar süspansiyon onları ° C (yaklaşık 20 dakika için).
  3. 75-95 az 5 dakika boyunca denatüre probları ° C.
  4. 30-60 dakika boyunca 37 ° C de problar Ön tavlama. Ön tavlama uzunluğu probların karmaşıklığı ve kalitesine bağlı olarak ayarlanabilir.
  5. Gecede hibridizasyon için lamelleri (bakınız Bölüm 3) için sondalar uygulayın.

3. 3Boyutlu DNA FISH - İlk Gün (~ 3 saat)

  1. Sigara yapışık hücrelere 1x PBS (lamel başına 5-10 ul 1x PBS ~ 2x10 5 hücre) küçük bir hacimde yoğunlaşmış ve bir poli-L-lisin kaplı lamel ortasına düştü. Bağlanan hücreler, en az 24 saat (~% 70 kesişme noktası) (lamelleri% 0.1 jelatin ile kaplanmış olabilir) lamelleri üzerinde kültive edilmesi gerekmektedir. 18x18 kare için 24-24 mm lamelleri 6 oyuklu plakalar yerleştirilir, ve protokol boyunca, her bir çözelti, iki ml (alternatif olarak yuvarlak 1.5 mm lamelleri 12/24-well plakalar içinde konulabilir) çukur başına kullanılır.
  2. RT (% 4 PFA stok -20 ° C'de saklanır bölünüp edilebilir) 10 dakika boyunca,% 2 paraformaldehid / 1 x PBS, pH değeri 7-7.4 de hücre düzeltildi. Paraformaldehit (% 16) çözelti halinde satın alınabilir, veya% 4 stok çözeltileri, toz / zerreciklerinin dan hazırlanabilir. Paraformaldehyde toz> 60 ° buz üzerinde C (pH çözülme kolaylaştırmak için 8-9 yükseltilebilir), soğutmalı aşağı ayarlamak az 1x PBS içinde çözülüred pH 7-7.4 için, süzüldü, şahin içinde bölünüp ve -20 ° C de hafta için saklanır
  3. 1 x PBS içinde üç kez durulama sonra, buz üzerinde 5 dakika boyunca buzlu-soğuk% 0.4 Triton-X-100/1 x PBS içinde hücreler geçirgenliği. Geçirgenliği uzunluğu hücre tipine bağlı olarak ayarlanabilir Not:. DNA FISH immunofloresan ile birlikte ise, immun (bakınız Bölüm 4) bu aşamada yapılmalıdır.
  4. 37, bir saat boyunca 0.1 mg / 1 x PBS içinde ul RNaz A ° C'de 1x PBS içinde inkübe hücreler üç durulama sonrasında Lameller parafilm ilgili çözüm veya nemli bir odasında bir slayt 100 ul bir damla üzerine hücre yüzü aşağı yerleştirilir. Lameller sonra dikkatlice forseps ile çıkarılır. Herhangi bir direnç karşılaşılırsa, lamelleri hücrelere hasar görmesini önlemek için, 1 x PBS ile su altında olmalıdır.
  5. 1 x PBS içinde üç kez durulama sonra, buz üzerinde 10 dakika boyunca buzlu-soğuk% 0.7 Triton-X-100 / 0.1 M HCl içinde hücreler geçirgenliği.
  6. Üç durular sonra in 1 x PBS, oda sıcaklığında 30 dakika için 1.9 M HCl içinde denatüre hücreler. Seçenek olarak ise, hücreler en az 30 dakika süre ile 75-80 ° C sıcaklıkta% 50 formamid / 2 x SSC içinde denatüre edilebilir olabilir. Hibridizasyon uzunluğu (ve sıcaklık) hücre tipine bağlı olarak optimize edilebileceğini not edin.
  7. Buz 1x PBS içinde üç durular sonra, ° C karanlık ve nemli odasında 37 gecede probları ile hücrelerin melezleşme. Lameller bir slayt üzerinde prob 15 ul damla üzerine hücre yüzü aşağı yerleştirilir ve lastik çimento ile mühürlenir.

4. 3 boyutlu Immuno-BALIK - İlk Gün (~ 6-7 saat)

  1. Kombine immünofloresan / DNA balık, immüno-leke% 0.4 Triton-X-100 (Basamak 3.3) içinde geçirgenliği sonra yapılmalıdır.
  2. Oda sıcaklığında 30 dakika (% 2.5 bovin serum albümini (BSA),% 10 normal keçi serumu,% 0.1 Tween-20) için solüsyon engelleme hücreler inkübe edin. Bloke etme çözeltisi, filtre edilmiş 1.5 ml Eppendorfs içinde bölünüp m depolanır-20 ° C'de onths
  3. Bir nemli oda içinde oda sıcaklığında bir saat boyunca, protein ya da bloke edici çözelti içinde seyreltilmiş ilgi histon modifikasyonu karşı yükseltilmiş birincil antikor ile hücreler inkübe edin. Burada H2AX (; ayrıntılar için bakınız Tablo 5 γ-H2AX, Millipore) ve fosforlu serin-139 karşı bir antikor örneğini gösterir. Lameller parafilm ilgili çözüm veya nemli bir odasında bir slayt 100 ul bir damla üzerine hücre yüzü aşağı yerleştirilir. Lameller sonra dikkatlice forseps (1 x PBS, gerekirse su basması) ile çıkarılır. Not seyreltme ve kuluçka süresini antikor ve hücre-tipi kalitesine bağlı olarak ayarlanabilir olabilir.
  4. % 0.2 BSA /% 0.1 Tween-20/1 x PBS, sallama ile oda sıcaklığında üç kez 5 dak. Yıkayın hücrelerini
  5. Karanlık ve nemli odasına RT az bir saat için bir çözüm engelleme seyreltilmiş uygun fluorofor-konjuge sekonder antikor hücreleri inkübe edin. Burada bir algılama ile bir örneğini gösterirİkinci keçi anti-fare antikoru (Alexa Fluor 488 veya 555, Invitrogen; ayrıntılar için Tablo 5'e bakınız). Hapten-konjuge sekonder antikor (biotin, digoxigenin, vb) de kullanılabilir. Bu durumda, uygun algılama (streptavidin, anti-Dig, vs) için ilave bir adım aşırı gece DNA-FISH hibridizasyon önce ya da sonra gerçekleştirilebilir.
  6. % 0.1 hücreleri yıkayın Tween-20 / 1x PBS, karanlıkta sallayarak RT az üç kere 5 dk.
  7. Karanlıkta oda sıcaklığında 10 dakika boyunca% 2 paraformaldehid / 1 x PBS içinde post-fix hücreler.
  8. Yukarıda RNaz A (Adım 3.4) inkübasyon DNA BALIK devam edin.

5. 3 boyutlu DNA FISH / Immuno-BALIK - İkinci Gün (~ 2 saat)

  1. Dikkatlice dikkatle forseps ile çıkarın ve yıkama çözeltisi içeren kuyularda koyun, 2x SSC, sel lamelleri kauçuk çimento çıkarın.
  2. 37 30 dak ° sallayarak karanlıkta C 2x SSC hücreleri yıkayın.
  3. Sallama ile karanlıkta oda sıcaklığında 30 dakika için 2x SSC içinde hücreleri yıkayın.
  4. Sallama ile karanlıkta oda sıcaklığında 30 dakika süre ile 1 x SSC içinde yıkayın hücrelerini formamid denatürasyon durumunda, yıkama aşağıdaki ile değiştirilmesi gerektiğini not:. 3 yıkamaya 2x SSC, 5,% 50 formamid / 2 x SSC ve 3 yıkar 37, her bir dak ° C.
  5. Toplam DNA counterstaining için 1.5 ug / ml DAPI (4,6-diamidino-2-fenilindol) ihtiva eden Altın montaj orta uzatmak hücreleri monte edin. Lameller bir slayt üzerinde orta montaj 10-15 ul damla üzerine hücre yüzü aşağı yerleştirilir ve oje ile mühürlenir. Slaytlar -20 ° C'de ay tutulur

6. 3D Mikroskopi ve Analiz

  1. 3D görüntüler farklı mikroskop sistemleri ile elde edilebilir. Deneylerde, 0,3 mikron ile ayrılmış optik bölümleri bir Leica SP5 AOBS konfokal sistemi (Acousto-Optik Beam Splitter) üzerinde toplanır. Unutmayın optika arasındaki mesafeyil düzlemleri analiz tipine bağlı olarak ayarlanabilir.
  2. 3D görüntü yığınlarından farklı yazılım ve araçları kullanılarak analiz edilebilir. Biz faiz lokusların arasındaki mesafe ölçümlerini değerlendirmek ve alt nükleer bölmeleri veya proteinler ile ilgi lokusların dernek farklı analiz Image J yazılımı kullanın.
  3. Farklı hücre tipleri veya aşamaları arasında karşılaştırma, farklı ilgi lokusları arasında karşılaştırılması: Tüm istatistiksel analizler anlamlılık pairwise değerlendirmesi (ler) ile (veya daha fazla) farklı biyolojik koşulların ikisini karşılaştırmak için yapılmaktadır. Tüm istatistiksel testlerde, P değerleri ≤ 5.00E-2 (a = 0.05) (1.00E-2 olarak anlamlı alınır ≤ p ≤ 5.00E-2 * anlamlı; 1.00E-3 ≤ p ≤ 1.00E-2 * * çok önemli; P <1.00E-3 *** çok önemli).

Iki allel arasındaki mesafeleri tüm dağılımlarının istatistiksel analizi. Biz ilk cBiz nonparametrik iki örnekli Kolmogorov-Smirnov (KS) testi 13,14 kullanabilirsiniz ampirik inter-allelik mesafelerin dağılımları farklılıklar önemini değerlendirmek iki alleles.To arasında ölçülen uzaklıkları tüm aralığında kümülatif dağılım frekans eğrileri onstruct.

Optimal bir mesafe kesme kullanarak iki allel yakın ilişki (yani eşleştirme) istatistiksel analizi. İki allel veya lokus arasındaki mesafelerde en sağlam farklılıkların aralığını belirlemek için, biz iki kuyruklu Fisher testi 15 s bir dizi kullanın. Yani, her ölçülen mesafe bir şartla anlamlı iki örnek arasındaki kısa mesafelerde daha fazla temsil edilip biz testi. P-Değerler dağıtımında en az iki alleli yakın ilişki (yani eşleştirme) için bir cut-off olarak kabul edilmelidir mesafeleri aralığını gösterir. Ardından iki kuyruklu Fisher exact t testi kullanılırtanımlanan kesim değeri 15 iki allel eşleştirme önemini değerlendirmek o. Bu çoklu test düzeltmeler yapılmıştır 16 Fisher test toplam sayısı için hesap uygulanır.

Alt-nükleer bölmeleri veya proteinler ile ilgi odağı ilişkisi istatistiksel analizi. İki kuyruk Fisher-exact testi farklı bölmeleri veya proteinler 15 ile ilgi odağı dernek önemini analiz etmek için kullanılır.

Sonuçlar

DNA ve immüno-FISH B ve T lenfosit gelişimi sırasında antijen reseptörünün bir lokus, V (D) J rekombinasyon işlemi ile bağlantılı olarak nükleer organizasyon değişiklikleri çalışması için Skok laboratuvar kullanılmaktadır. Yukarıda ayrıntılı teknikleri) bize i odağının iki ucu (kasılma) arasında) mesafeleri ölçmek için ii) allel veya lokus (eşleştirme) arasındaki mesafeleri ölçmek, iii), lokus içindeki iv meydana DNA hasarı analiz etkinleştirmek allellerin yerini değerlendirmek ...

Tartışmalar

Yukarıda ayrıntılı teknikler lenfositler 30,31 geliştirme İmmunoglobulin ve Tcra / d loci V (D) J rekombinasyon düzenleme analiz etmek için, laboratuar kullanılmıştır. Biz bu tekniği farklı hücre tiplerinde çeşitli nükleer proteinler, nükleer bölmeleri ve lokus tespiti için adapte edilebilir eminiz. Protokol değişiklikler gerekli olabilir, ve bu durumda, odaklanmak için önemli adımlar aşağıdaki gibidir. İlk olarak, geçirgenliği uzunluğu hücre tipine bağlı ...

Açıklamalar

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarının olmadığını beyan ederim.

Teşekkürler

Biz tartışmalar ve yorumlar için Skok laboratuar, özellikle Susannah Hewitt, üyelerine teşekkür etmek istiyorum. Bu çalışma Sağlık hibe Ulusal Enstitüsü R01GM086852, RC1CA145746 (JAS) tarafından desteklenmektedir. JAS Bir Lösemi ve Lenfoma Derneği bilgindir. JC Kanser Araştırma Enstitüsü Irvington Enstitüsü üyesidir. MM Ulusal Bilim Vakfı Hibe Bütünleştirici Lisansüstü Eğitim ve Araştırma Staj (NSF IGERT 0333389) tarafından desteklenmektedir.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Reaktif / Malzeme Adı Şirket Katalog Numarası Yorumlar
H2O Balıkçı # BP2470
RNaz A Sigma # R4642
dNTP Sigma # DNTP100
Alexa dUTP Invitrogen # C11397 C-11401
Cy3 veya Cy5, dUTP Balıkçı # 45-001-xxx
DNaz I Roche # 04536282001
DNA Pol I Biolabs # M0209
0.025 mikron filtre MilliporE # VSWP02500
Manşon-1 DNA 1 mg / ml Invitrogen # 18440
Hybloc DNA 1 mg / ml Uygulamalı Genetik # MHB
Somon sperm Sigma # D1626 toz H2O içinde 10 mg / ml 'de tekrar süspanse edilmesi
NAAC (Sodyum Asetat, pH 5.2, tampon çözeltisi) Sigma # S7899
Ficoll 400 (Mol Biol grade) Balıkçı # 525
Polivinilpirolidon (Mol Biol grade) Balıkçı # BP431
Dekstran sülfat tozu Sigma # D8906
SSPE (Tuzlu-Sodyum Fosfat-EDTA) 20x çözümü Balıkçı # BP1328
Formamid Balıkçı # BP227
Lameller Balıkçı # 12-548-B
Slaytlar Balıkçı # 12-550
6-well plate Balıkçı # 0720080
10x PBS, Balıkçı # MT-46-013-CM
Poli-L-lisin çözelti Sigma # P8920
Paraformaldehyde, zerreciklerinin,% 95 Sigma # 441244
Triton-X-100, Mol Biol dereceli Sigma # T8787
BSA (Bovine Serum Albumin) Fraksiyon V Balıkçı # BP 1600
Normal keçi serumu Vektör Labs # S-1000
Tween-20, Mol Biol dereceli Sigma # P9416
SSC (Salin Sodyum Sitrat) 20x çözümü Balıkçı # BP1325
Altın antifade reaktifi uzatmak Invitrogen # P36930
DAPI (4 ',6-diamidino-2-fenilindol) Sigma # D9542
En testi tek kat kauçuk çimento Sanat veya ofis malzemeleri mağazaları
Tablo 1. Özgül reaktifleri ve küçük ekipman.

Referanslar

  1. Chaumeil, J., Okamoto, I., Heard, E. X-chromosome inactivation in mouse embryonic stem cells: analysis of histone modifications and transcriptional activity using immunofluorescence and FISH. Methods in enzymology. , 376-405 (2004).
  2. Cremer, M., et al. Multicolor 3D fluorescence in situ hybridization for imaging interphase chromosomes. Methods Mol. Biol. 463, 205-239 (2008).
  3. Chaumeil, J., Augui, S., Chow, J. C., Heard, E. Combined immunofluorescence, RNA fluorescent in situ hybridization, and DNA fluorescent in situ hybridization to study chromatin changes, transcriptional activity, nuclear organization, and X-chromosome inactivation. Methods Mol. Biol. 463, 297-308 (2008).
  4. Solovei, I., Cremer, M. 3D-FISH on cultured cells combined with immunostaining. Methods Mol. Biol. 659, 117-126 (2010).
  5. Markaki, Y. The potential of 3D-FISH and super-resolution structured illumination microscopy for studies of 3D nuclear architecture: 3D structured illumination microscopy of defined chromosomal structures visualized by 3D (immuno)-FISH opens new perspectives for studies of nuclear architecture. BioEssays : news and reviews in molecular, cellular and developmental biology. 34, 412-426 (2012).
  6. Heard, E., Bickmore, W. The ins and outs of gene regulation and chromosome territory organisation. Current opinion in cell biology. 19, 311-316 (2007).
  7. Misteli, T. Beyond the sequence: cellular organization of genome function. Cell. 128, 787-800 (1016).
  8. Fraser, P., Bickmore, W. Nuclear organization of the genome and the potential for gene regulation. Nature. 447, 413-417 (2007).
  9. Cremer, T., et al. Chromosome territories--a functional nuclear landscape. Current opinion in cell biology. 18, 307-316 (2006).
  10. Mao, Y. S., Zhang, B., Spector, D. L. Biogenesis and function of nuclear bodies. Trends in genetics : TIG. 27, 295-306 (2011).
  11. Dostie, J., Bickmore, W. A. Chromosome organization in the nucleus - charting new territory across the Hi-Cs. Current opinion in genetics & development. 22, 125-131 (2012).
  12. van Steensel, B., Dekker, J. Genomics tools for unraveling chromosome architecture. Nature. 28, 1089-1095 (2010).
  13. Massey, F. J. The Kolmogorov-Smirnov Test for Goodness of Fit. Journal of the American Statistical Association. 253, 1951 (1951).
  14. Collins, A., et al. RUNX transcription factor-mediated association of Cd4 and Cd8 enables coordinate gene regulation. Immunity. 34, 303-314 (2011).
  15. Fisher, R. A. On the interpretation of χ2 from contingency tables, and the calculation of P. Journal of the Royal Statistical Society. 85, 87-94 (1922).
  16. Benjamini, Y. H., Yosef, Controlling the false discovery rate: a practical and powerful approach to multiple testing. Journal of the Royal Statistical Society, Series B (Methodological). 57, 125-133 (1995).
  17. Fitzsimmons, S. P., Bernstein, R. M., Max, E. E., Skok, J. A., Shapiro, M. A. Dynamic changes in accessibility, nuclear positioning, recombination, and transcription at the Igkappa locus. J. Immunol. 179, 5264-5273 (2007).
  18. Fuxa, M., et al. Pax5 induces V-to-DJ rearrangements and locus contraction of the immunoglobulin heavy-chain gene. Genes Dev. 18, 411-422 (2004).
  19. Goldmit, M. Epigenetic ontogeny of the Igk locus during B cell development. Nature. 6, 198-203 (2005).
  20. Hewitt, S. L. Association between the Igk and Igh immunoglobulin loci mediated by the 3' Igk enhancer induces 'decontraction' of the Igh locus in pre-B cells. Nature. 9, 396-404 (2008).
  21. Johnson, K. IL-7 Functionally Segregates the Pro-B Cell Stage by Regulating Transcription of Recombination Mediators across Cell Cycle. Journal of Immunology. , (2012).
  22. Karnowski, A., et al. Silencing and nuclear repositioning of the lambda5 gene locus at the pre-b cell stage requires Aiolos and OBF-1. PLoS ONE. 3, e3568 (2008).
  23. Kosak, S. T. Subnuclear compartmentalization of immunoglobulin loci during lymphocyte development. Science. 296, 158-162 (2002).
  24. Liu, H., et al. Yin Yang 1 is a critical regulator of B-cell development. Genes Dev. 21, 1179-1189 (2007).
  25. Parker, M. J. The pre-B-cell receptor induces silencing of VpreB and lambda5 transcription. Embo J. 24, 3895-3905 (2005).
  26. Roldan, E., et al. Locus 'decontraction' and centromeric recruitment contribute to allelic exclusion of the immunoglobulin heavy-chain gene. Nature immunology. 6, 31-41 (2005).
  27. Skok, J. A. Nonequivalent nuclear location of immunoglobulin alleles in B lymphocytes. Nature. 2, 848-854 (2001).
  28. Skok, J. A. Reversible contraction by looping of the Tcra and Tcrb loci in rearranging thymocytes. Nature immunology. 8, 378-387 (2007).
  29. Xiang, Y., Zhou, X., Hewitt, S. L., Skok, J. A., Garrard, W. T. A multifunctional element in the mouse Igkappa locus that specifies repertoire and Ig loci subnuclear location. Journal of Immunology. 186, 5356-5366 (2011).
  30. Hewitt, S. L. RAG-1 and ATM coordinate monoallelic recombination and nuclear positioning of immunoglobulin loci. Nature immunology. 10, 655-664 (2009).
  31. Deriano, L., et al. The RAG2 C terminus suppresses genomic instability and lymphomagenesis. Nature. 471, 119-123 (2011).
  32. Brown, K. E., Baxter, J., Graf, D., Merkenschlager, M., Fisher, A. G. Dynamic repositioning of genes in the nucleus of lymphocytes preparing for cell division. Molecular cell. 3, 207-217 (1999).
  33. Fernandez-Capetillo, O., Lee, A., Nussenzweig, M., Nussenzweig, A. H2AX: the histone guardian of the genome. DNA repair. 3, 959-967 (2004).
  34. Croft, J. A., et al. Differences in the localization and morphology of chromosomes in the human nucleus. The Journal of cell biology. 145, 1119-1131 (1999).
  35. Chaumeil, J., Le Baccon, P., Wutz, A., Heard, E. A novel role for Xist RNA in the formation of a repressive nuclear compartment into which genes are recruited when silenced. Genes Dev. 20, 2223-2237 (2006).
  36. Walter, J., et al. Towards many colors in FISH on 3D-preserved interphase nuclei. Cytogenetic and genome research. 114, 367-378 (2006).
  37. Toomre, D., Bewersdorf, J. A new wave of cellular imaging. Annual review of cell and developmental biology. 26, 285-314 (2010).
  38. Schermelleh, L., Heintzmann, R., Leonhardt, H. A guide to super-resolution fluorescence microscopy. The Journal of cell biology. 190, 165-175 (2010).
  39. Dobbie, I. M. OMX: a new platform for multimodal, multichannel wide-field imaging. Cold Spring Harbor protocols. , 899-909 (2011).
  40. Boyle, S., Rodesch, M. J., Halvensleben, H. A., Jeddeloh, J. A., Bickmore, W. A. Fluorescence in situ hybridization with high-complexity repeat-free oligonucleotide probes generated by massively parallel synthesis. Chromosome research : an international journal on the molecular, supramolecular and evolutionary aspects of chromosome biology. 19, 901-909 (2011).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

GenetikSay 72Molek ler BiyolojiBiyoinformatikKanser BiyolojisiPatolojiBiyomedikal M hendisli imm nolojiintran kleer UzayN kleer MatriksFloresans In situ Hibritle meBALIK3D DNA FISHDNAimm nofloresanimm no FISH3D mikroskopiN kleer organizasyoninterfaz ekirdeklerkromatin modifikasyonlar

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır