JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

This protocol describes a new intraoperative imaging technique that uses a ruthenium complex as a source of chemiluminescent light emission, thereby producing high signal-to-noise ratios during in vivo imaging. Intraoperative imaging is an expanding field that could revolutionize the way that surgical procedures are performed.

Özet

Intraoperative imaging techniques have the potential to make surgical interventions safer and more effective; for these reasons, such techniques are quickly moving into the operating room. Here, we present a new approach that utilizes a technique not yet explored for intraoperative imaging: chemiluminescent imaging. This method employs a ruthenium-based chemiluminescent reporter along with a custom-built nebulizing system to produce ex vivo or in vivo images with high signal-to-noise ratios. The ruthenium-based reporter produces light following exposure to an aqueous oxidizing solution and re-reduction within the surrounding tissue. This method has allowed us to detect reporter concentrations as low as 6.9 pmol/cm2. In this work, we present a visual guide to our proof-of-concept in vivo studies involving subdermal and intravenous injections in mice. The results suggest that this technology is a promising candidate for further preclinical research and might ultimately become a useful tool in the operating room.

Giriş

Son yıllarda, görüntüleme teknolojileri doktorlar hastalığı teşhis ve monitör yol devrim var. Bu görüntüleme teknolojileri, ancak bu tür pozitron emisyon tomografisi (PET), tek foton emisyon bilgisayarlı tomografi (SPECT), bilgisayarlı tomografi (BT) ve manyetik rezonans görüntüleme (MRI) gibi tüm vücut görüntüleme sistemleri, büyük ölçüde sınırlı olmuştur. Özellikle dikkat kanseri ödenmiştir ve teknolojik görüntüleme devrimler büyük ölçüde bu hastalığın teşhis ve tedavi edilir şekilde düzeldi. ameliyathane: Bu ilerlemelere rağmen, bu görüntüleme teknolojileri sadece uymaz bir yer var. Tüm vücut görüntüleme teknikleri, cerrahi planlamada yardımcı olabilir, bunlar genellikle tümör dokusunun tüm kaldırıldı veya artık tümör dokusu cerrahi sınırların 1'de gizli kalır olsun hekimler gerçek zamanlı olarak belirlemeye yardımcı olmak için yeterince yüksek uzaysal çözünürlük yoksundur. Hiçbir infiltratif emin yapmaTümör marjları geride en önemli cerrahi hedeflerinden biridir ve cerrahlar titiz ve tedbirli doku rezeksiyonu arasında sıkı-ip yürümek gerekir edilir. Çok fazla çıkarılırsa, hastada istenmeyen yan etkiler arttırılmış olur çok az kaldırılan ise, nüks oranları, 3 2 artmıştır. Nedenle, doğru tümör marjları tasvir için çok önemlidir ve biz kemilüminesan intraoperatif görüntüleme aksi kurulan teknikleri ile tespit edilmemiş kalabileceği malign doku görselleştirmek için cerrahlara yardımcı olarak tümör marjlarının belirlenmesi doğruluğunu geliştirmek için yardımcı olabilir inanıyoruz.

Şu anda intraoperatif görüntüleme sistemleri gibi olası yarar için araştırılan birçok görüntüleme teknolojileri vardır. Bu β- ve γ-radyasyon yayan sondalar 4, optik floresan 5, Raman spektroskopisi 6 dahil >, 7 ve Cherenkov ışıma 8, 9. Ancak bugüne kadar, bunların hiçbiri, standart klinik araçlar olarak kullanılır hale gelmiştir. Optik floresan görüntüleme şimdiye kadar bu tekniklerin en umut verici olduğu kanıtlanmıştır ve en çok araştırdı nedenle etti. Zaten birçok uygulama için değerli bir araç olarak gösterilmiş olsa da, bu sınırlamalar olmadan değildir. Gerçekten de, asıl dezavantajı doğal autofluorescent biyolojik doku tarafından üretilen arka plan floresan olduğunu. Bu arka plan otofloresan sinyali, floresan sinyalinin üretimi için gerekli olan, harici bir ışık kaynağı tarafından, florofor ilave olarak, çevre doku uyarılmasının bir ürünüdür. Pratik açıdan bakıldığında, bu otofloresans potansiyel ameliyathanede bu teknolojinin faydasını sınırlayabilir düşük sinyal-gürültü oranları, yol açabilir.

Müdürfloresan görüntüleme üzerinden Kemiluminesan görüntüleme avantajı uyarma ışık gerekli olmasıdır. Bunun bir sonucu olarak, herhangi bir arka plan otofloresansı yoktur. Kemiluminesan görüntülemede, uyarma enerjisi yerine kimyasal oluşturulur. Bu işlem, daha yüksek bir sinyal-ses oranlarına neden olabilir, bu nedenle herhangi bir istenmeyen arka plan sinyali üretir ve. Bu sonuçta cerrahi sınırların daha hassas ve doğru algılama neden olabilir. Biraz şaşırtıcı bir ameliyat görüntüleme tekniği olarak bu yaklaşımın yarar 10 keşfedilmemiş kalmıştır. Gerçekten de, bu tekniğin en yakın örnek, farelerde 11, 12, 13, miyeloperoksidaz tarafından luminol oksitlenmesidir. merhaba ile düşük arka plan sinyali sonuçlanan (1) en az otofloresans: kemilüminesans biyomedikal görüntüleme aşağıdaki avantajları sunabilir araştırma oldukça keşfedilmemiş alan nedenleGher sinyal-gürültü oranları; (2) görünür gelen yakın-kızılötesi değişen kemilüminesan emisyonların ayarlanabilir dalga boyları; ve (3), bir bağlayıcı teknolojileri ile bir araya getirilmiş ve zaten mevcut biyomoleküllerin hedef olduğunda, hedef moleküler görüntüleme sondaları 14 tüm kütüphanelerin erişim sağlayan fonksiyonalitesine sahip kimyasal olarak ışık veren kompleksleri.

Bu proof-of-prensibi çalışma rutenyum tabanlı görüntüleme maddesi kullanarak biyomedikal ortamda kemilüminesan görüntülemenin potansiyel yarar göstermektedir. Bu bileşiğin kemilüminesan özellikleri iyi 1960'ların ortalarında 15 kadar uzanan araştırmaları ile incelenmiştir. Kimyasal aktivasyonu üzerine, madde, tıbbi görüntüleme amacıyla uygundur 600 nm 16 ° ışık üretir. Aktivasyon enerjisi uyarılmış durumda su 17 -foll 650 ns ömrü vardır yol açan bir redoks reaksiyonu sonucu elde edilenBu heyecanlı devletin gevşeme üzerine foton kuşağının borçlu. Bir özel tasarlanmış uzaktan nebulizatör kullanımı sayesinde, biz bileşik hem ex vivo ve in vivo tespit başardık. İlk deneylerin sonuçları bu teknolojinin daha fazla araştırılması düşündüren, oldukça ümit vericidir.

Protokol

Etik deyimi: onaylanmış bir protokole ve Memorial Sloan Kettering Kanser Merkezi (MSK) Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) etik kuralları uyarınca göre yapıldı tarif edilen in vivo hayvan deneylerinde tümü.

Bir püskürtme cihazı 1. İnşaat

  1. Iki vidayı (x 25 mm 2 4) kullanılarak kısım B (12.7 x 10.7 x 1.8 cm 3) merkezinde dik ahşap parça A (12.5 x 2.5 x 1.8 cm 3) takın. Ahşap parça C takın (11 × 2.5 × 1.8 cm 3) C bölümü (11 x 2.5 x 1.8 cm 3) hala hareket ettirilebilir şekilde bir vida kullanılarak kısım A (12.5 x 2.5 x 1.8 cm 3) ortasına. Bkz: Şekil 1.
  2. iki döngüler, ya bir tane oluşturmak yoluyla iki delik plastik 3 oz küçük püskürtücü (D) sprey şişe tetik alt ucundan Matkap ve paslanmaz çelik çubuk itin (1/16 "çelik 10 cm) (E) tetikleyici yan.
  3. kaymasını kablo bağları önlemek için koli bandı (F) ile sprey şişesinin alt kısmını sarın. Iki plastik kablo bağları kullanarak ahşap parça C (11 x 2.5 x 1.8 cm 3) (28 cm) (G) sprey şişesi takın.
  4. 011 servo motor (I) kesiniz ve servo kontrolü (H) gevşek kablolar ile yeniden bağlayın. Ardından, koli bandı kullanarak ahşap kısım A (12.5 x 2.5 x 1.8 cm 3) üstüne servo motora takın.
  5. ataç (K) kullanarak servo motor koluna bir kalem (J) takın. Sıkıca plastik kaplı büküm telleri (L) kullanılarak çelik çubuk döngüler kalem dış kısımlarını bağlamak ve koli bandı ile kalem üzerinde biter sabitleyin.
  6. servo motor kontrol ünitesinin manyetik kablo konnektörünü (M) kesiniz ve hoparlör kablosu (N) onu takın. Sonra, odun parçası B (12.7 x 10.7 x 1.8 cm 3) servo motor kontrol ünitesini bantlayın. yarısında manyetik konnektörleri ile bir w1 kablosunu kesin ve bakır s gevşek ucuna bir parçasını takmakPeaker kablosu (1 M). Mevcut w1 kablo ve 9V pil (manyetik) i2 geçiş anahtarı ve p1 gücü bağlayın.

Yöntem 2. Hassasiyet Belirlenmesi

  1. 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü içinde, 260 ug (347 nmol), 52 ug (69 nmol), 26 ug (34 nmol) miktarlarında ters osmoz, su (100 uL) içinde [Ru (bpy) 3] Cl2 çözeltilerini hazırlamak 5 ug (6.9 nmol), 3 ug (3.5 nmol), 520 ng (694 pmol), 260 ng (347 pmol), 52 ng (69 umol), 26 ng (34 pmol), 5 ng (6.9 pmol), 3 ng (3.5 umol).
  2. Her biri 100 uL karıştırın [Ru (bpy) 3] Cl amonyum seryum nitrat sulu çözeltisi, 100 uL 2 çözeltisi ((NH4) 2 Ce (NO 3) 6) bir mikroskop lamı üzerine, su (25 mM) 'de.
  3. Görüntüleme yazılımı başlatarak biyoparlaklık okuyucuda satın ayarlayın.
    1. kullanıcı profiline oturum açın ve Acqui bakmaklan de kontrol paneli. "Başlatma" ve enstrüman hazır olana kadar bekleyin tıklayın.
    2. denetlenmeyen "Görüntüleme Modu" için bakın ve "Işıklı" ve "Fotoğraf" işaretli olduğundan emin olun ve "Floresan".
    3. Değiştir "Temas Süresi" 20 s "Lüminesans" ayarı. "Kutulamanın": aşağıdaki gibidir: "Lüminesans" için kalan ayarları ayarlayın Orta; "F / durdur": 1; ve "Emisyon Filtresi": Açık.
      NOT: pozlama süreleri enstrümantasyon ve kullanılan deneysel ayarlarına göre adapte edilmesi gerekebilir, sunulan kurulum farklı ise.
    4. "Temas Süresi" For: "Fotoğraf," aşağıdaki ayarları kullanın Auto; "Binning": Orta; ve "F / durdur": 8. "Görüş Alanı" açılır menüsünden için target.Look görüntüleme göre "Konu Boy" ayarlayın. Başlangıç ​​ayarı "C" dir c arasında "B" olarak değiştirin (14 cm mesafedenamera ve örnek aşaması).
  4. Oksitleyici madde korumak için görüntüleme odasının zemininde siyah inşaat bir kağıda üzerinde mikroskobik slayt koyarak nebulizatör ayarlayın. Bir 100 μLdroplet karıştırın [Ru (bpy) 3] CI2 solüsyonunun sulu bir çözeltisi, 100 uL (NH4) 2 Ce ile (NO 3) 6. yeşil kutu çarpı dikkate alınmalıdır.
    1. siyah inşaat kağıt üzerinde görüntüleme konuyu yerleştirin, ilgi alanı yeşil ışık kutusu crosshair merkezinde olacak şekilde numune sahnede sergiledi. ahşap destek plastik sprey şişesinde ayırarak nebülizatör hazırlayın. plastik hazne içine (su / etanol 1: 3) ve ahşap destek yerine tekrar trietilamin ihtiva eden bir çözelti doldurun.
    2. biyolüminesans okuyucu içinde nebulizatör yerleştirin ve güç kablosu nebulizatör kablosu çıkarılmış olduğundan emin olun. Emin olun güç anahtarıaçık, geçiş anahtarı kapalıdır ve kırmızı LED yanıyor püskürtme memesi kafası tarafından görüntüleme konuya doğru kameradan görünüm tıkanıklığı en aza indirerek sprey akışı, görüntüleme konuyla ilgili ilgi alanına doğru işaret edilmektedir böyle nebülizatör yerleştirin.
    3. Sprey onları kalkan (mikroskobik slaytlar ya da enjeksiyon sitelerinde örneğin, beyaz işaretleri) herhangi bir potansiyel sıcak noktalar üzerinde inşaat küçük kağıt, siyah parçalarını yerleştirin. Bir yerde görüntüleme konu nebulizer veya manyetik kapı mandalı ile karışmaz şekilde görüntüleme bölmesi içindeki nebulizatör uzaktan kord en az 40 cm. görüntüleme sistemi kapağını kapatın.
      NOT: Crosshair ayarı "adlı Alanında" dayalı boyutu değişecektir "Görüntü Living;" Bu "B" olarak ayarlanmış olduğundan emin olun.
  5. görüntüleme dizisi başlatarak bir görüntü kazanır. içinde "Acquire" Click "Toplama Kontrol Paneli." ilk görüntüleme dizisine üzerindeence, istenen (önerilir) ise Otomatik kaydetmeyi etkinleştirmek ve bir veri klasörünü seçin. dizinin sonuna kadar "Edit Görüntüleme Etiketler" iletişim geçiyoruz.
    NOT: kontrol yazılımı cihazın eylemleri adım-adım, gerçek zamanlı olarak gösterir. ölçüm hazırlanması ve doğru pozisyonda örnek sahne taşındıktan sonra, kamera deklanşörü açılır ve ölçüm zamanını sayar. deklanşör açılış ayrıca makine tarafından oluşturulan bir tık sesi ile duyulabilir.
  6. kemilüminesansını oluşturmak için geçiş şalteri üç kez geçerek: obtüratör açılır gibi, trietilamin solüsyonu üç patlamaları (su / etanol içinde 3, sprey patlama başına 0.24 ± 0.04 ml 1) püskürtün.
    NOT: Numune sahne Ölçüm sırasında hareket edecektir. Bu izin enstrümanın içinde yeterli (en az 40 cm) kablo bırakın. Çözelti artan borusu ile talip olabilir nebulizatör ile püskürtülür olduğunu ve borunun hiçbir hava kabarcığı olmadığından emin olun. Birkaç yedek Batterie varihtiyaç halinde hazır nebulizer için s.

Vivo Görüntüleme 3. Sistemik İntravenöz Enjeksiyonu Sonrası

  1. 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü içinde, [Ru (bpy) 3] Cl2 nmol 8 ila 33 ihtiva eden fosfat tamponlu tuz (PBS) çözeltisi, 100 uL hazırlar. Sulu bir çözeltisi (NH4) 2 Ce hazırlama (NO 3), aynı zamanda, su (25 mM) 6.
  2. İntravenöz, sağlıklı farelerin kuyruk venine 100 uL [Ru (bpy) 3] CI2 enjekte (n = 5).
  3. CO 2 boğulma yoluyla enjeksiyondan sonra fareler 10 dakika euthanize.
    1. Daha sonra kalp ve akciğerleri maruz U-şeklinde kaburga kemer kaldırmak, gövde bir Y-cut ile cildi çıkarın. Sol ventrikül 18 bir 24 gauge iğne yoluyla PBS 20 mL sağ atriyum bir çıkış kesme ve enjekte fareler serpmek. Dikkatle göbek kesticilt ve böbrek ve karaciğer maruz kalmaktadır. görünür bir kesim oluşturmak için organları aracılığıyla uzunlamasına kesin.
  4. Aşağıdaki değişikliklerle, adım 2.3-2.6 anlatıldığı gibi tedarik ayarlayın.
    1. İyice nebülizör plastik hazne yıkandıktan sonra, bunun yerine trietilamin su (NH4) içindeki bir 2 Ce (NO 3) 6 (25 mM) ile doldurun.
      NOT: iyice kristalize beri, her kullanımdan sonra nebulizatör memesini durulanması önemlidir (NH 4) 2 Ce (NO 3) 6 birkaç kullanımdan sonra püskürtme memesini yok edebilir.
  5. Görüntüleme için, bütün hayvanlar veya organ örnekleri kullanın.
    1. Bütün karın görüntüleme için, kamera ve cihazın arka işaret kafa bakacak açık karın fare karkas yerleştirin. Organı ortalamak yeşil ışık kutusu crosshair (örneğin, karaciğer veya böbrek) yansıması.
    2. Fveya organ görüntüleme ve miktar bireysel, görüntüleme cihazdan fare kaldırmak ve onu aşağı pin. Önceden açılmış gövdesinden başlayarak, iç organların (örneğin, böbrek, karaciğer, akciğer, kas, dalak, beyin, kalp) tüketim. kas dokusu çıkarılması için arka bacak deri yoluyla kesti. Dikkatle beyin çıkarılması için bir neşter ile kafatası açın.
      1. ilgi organ karaciğer, böbrek veya dalak ise, uzunlamasına ikiye tüm organları kesilmiş bir petri veya siyah inşaat kağıt parçası üzerinde her organı yerleştirin.
    3. Tek organlar için kemilüminesan izleyici nispi emisyon kurmak için adımlar 2,3-2,6 açıklanan prosedürü uygulayın.

Lenf nodu 4. İn Vivo Görüntüleme

  1. [Ru (bpy) 3] Cl2 80 nmol ihtiva eden bir PBS çözeltisinden 10 uL hazırlayın. Sulu bir çözeltisi (NH4) 2 Ce hazırlayın (NO 3) 6 waAynı zamanda ter (25 mM).
  2. subdermal, sağlıklı farelerin arka bacağına çözeltisinin 10 ul enjekte edilir (n = 5). Bir negatif kontrol olarak, saf PBS 10 uL karşı taraftaki pençenin enjekte edilir. Enjeksiyondan sonra CO 2 boğulma yoluyla 15 dakika fareler Kurban. popliteal lenf düğümlerine kadar lenf kanalları ortaya çıkarmak için her iki arka ayakları üzerinde cilt kaldırmak.
  3. Adım 3.4 anlatıldığı gibi satın ayarlayın.
  4. , Her iki arka bacak popliteal lenf düğümleri kaldırmak bolun ve miktar tayini amacıyla, (aşama 3.5.3) daha önce açıklandığı gibi, bir Petri tabağına oksidan ile püskürtülür.

Sonuçlar

Protokol 1. bölümde tarif edilen vaporizatör, sistemin düşük bir maliyetle kolayca mevcut malzemelerden yapılabilir. Uzak tetikli bir biyolojik olarak ışık veren okuyucu içinde indirgeme / oksitleme maddesinin püskürtülmesi (Şekil 1) için bir ilave olacak şekilde tasarlanmıştır. Tasarım lensten 14 cm mesafeden biyoparlaklık okuyucunun içinde nebulizer güvenli çalışması için izin verir. lensin Hiçbir sisleme veya bulanıklaştırma işlemi s?...

Tartışmalar

Burada, optik kemilüminesan muhabir tarafından oluşturulan fotonların emisyon yoluyla doku ortaya koymaya yeteneğine sahip bir teknoloji sundu. Diğer aksine, daha bu kemilüminesans muhabir sistemi radyoaktif olmayan ve çok yüksek hassasiyet seviyelerinde tespitini kolaylaştırır bir görüntüleme probu istihdam, teknoloji 4, 5, 6, 7, 8,...

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Teşekkürler

The authors thank Prof. Jan Grimm and Mr. Travis Shaffer for their helpful discussions and Mr. David Gregory for editing the manuscript. Technical services provided by the MSK Animal Imaging Core Facility, supported in part by NIH Cancer Center Support Grant P30CA008748-48, are gratefully acknowledged. The authors thank the NIH (K25 EB016673 and R21 CA191679, T.R. and 4R00CA178205-02, B.M.Z.), the MSK Center for Molecular Imaging and Nanotechnology (T.R.), the Tow Foundation (B.C.), and the National Science Foundation Integrative Graduate Education and Research Traineeship (IGERT 0965983 at Hunter College for B.C. and T.M.S.) for their generous support. The research reported in this publication was supported by funding from the King Abdullah University of Science and Technology.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Wood part A (12.5 × 2.5 × 1.8 cm) Woodcraft131404Cut from a 3/4” x 24” x 30” birch plywood sheet
Wood part B (12.7 × 10.7 × 1.8 cm)Woodcraft131404Cut from a 3/4” x 24” x 30” birch plywood sheet
Wood part C (11 × 2.5 × 1.8 cm)Woodcraft131404Cut from a 3/4” x 24” x 30” birch plywood sheet
Screws (4 × 25 mm)Screwfix79939
Harmon Face Values 3 oz mini sprayerBed, Bath and Beyond
stainless steel rod (10 cm of 1/16” steel)Metals Depot Int. Inc.2192
Pencil Classic HBPapermate58592
Paper clipOffice Depot221720
speaker cableRCA Inc.AH1650SN
Energizer 9V alkaline batteryEnergizer Holdings Inc.EN22
Hitech HS-82MG Micro Servo Motor, 3.4 kg/cm output torque @ 6VHitech RCD USA Inc.32082S
NameCompanyCatalog NumberComments
28 cm plastic cable tiesGeneral Electric Inc.50725
Duct tape3M Inc.3939
littleBits w1 wirelittleBits Inc.w1 wire
littleBits p1 powerlittleBits Inc.p1 power
littleBits i2 toggle switchlittleBits Inc.i2 toggle switch
littleBits 011 servolittleBits Inc.011 servo
20 cm plastic covered wire twist tiesFour Star Plastics71TIE8000
Tris(2,2′-bipyridyl)dichlororuthenium(II) hexahydrateSigma-Aldrich Inc.224758
Ammonium cerium(IV) nitrateSigma-Aldrich Inc.22249
IsofluoraneBaxter Healthcare1001936060
PBSSigma-AldrichPBS1
EthanolSigma-Aldrich2854
TriethylamineSigma-Aldrich Inc.T0886
WaterWater was purified using a Milipore Mili-Q (R ≥ 18 MΩ)
Female nude (outbred) miceJackson Laboratories1929age 5 - 6 weeks
Strain C57BL/6J  
NU/J male mice at Jackson Laboratories2019age 6 – 8 weeks
IVIS 200 bioluminescence readerCaliper Live Science
Live Image 4.2 softwarePerkin-Elmer128165
Microscope slidesThermoScientific4951PLUS4

Referanslar

  1. Fong, Y., Giulianotti, P. C., Lewis, J., Koerkamp, B. G., Reiner, T. . Imaging and Visualization in The Modern Operating Room: A Comprehensive Guide for Physicians. , (2015).
  2. Nguyen, Q. T., Tsien, R. Y. Fluorescence-guided surgery with live molecular navigation - a new cutting edge. Nat. Rev. Cancer. 13 (9), 653-662 (2013).
  3. Weissleder, R., Pittet, M. J. Imaging in the era of molecular oncology. Nature. 452, 580-589 (2008).
  4. Heller, S., Zanzonico, P. Nuclear probes and intraoperative gamma cameras. Semin. Nucl. Med. 41 (3), 166-181 (2011).
  5. van Dam, G. M., et al. Intraoperative tumor-specific fluorescence imaging in ovarian cancer by folate receptor-α targeting: first in-human results. Nat. Med. 17 (10), 1315-1319 (2011).
  6. Zavaleta, C. L., et al. A Raman-based endoscopic strategy for multiplexed molecular imaging. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 110 (25), E2288-E2297 (2013).
  7. Harmsen, S., Bedics, M. A., Wall, M. A., Huang, R., Detty, M. R., Kircher, M. F. Rational design of a chalcogenopyrylium-based surface-enhanced resonance Raman scattering nanoprobe with attomolar sensitivity. Nat. Commun. 6, 1-9 (2015).
  8. Thorek, D. L., et al. Positron Lymphography: Multimodal, High-Resolution, Dynamic Mapping and Resection of Lymph Nodes After Intradermal Injection of 18F-FDG. Nucl. Med. 53 (9), 1438-1445 (2012).
  9. Thorek, D. L. J., Riedl, C. C., Grimm, J. Clinical Cerenkov Luminescence Imaging of 18F-FDG. Nucl. Med. 55 (1), 95-98 (2014).
  10. Gross, S., et al. Bioluminescence imaging of myeloperoxidase activity in vivo. Nat. Med. 15 (4), 455-461 (2009).
  11. Lee, J. -. J., White, A. G., Rice, D. R., Smith, B. D. In vivo imaging using polymeric nanoparticles stained with near-infrared chemiluminescent and fluorescent squaraine catenane endoperoxide. Chem. Commun. 49 (29), 3016-3018 (2013).
  12. Lee, D., et al. In vivo imaging of hydrogen peroxide with chemiluminescent nanoparticles. Nat. Mater. 6 (10), 765-769 (2007).
  13. Baumes, J. M., et al. thermally activated, near-infrared chemiluminescent dyes and dye-stained microparticles for optical imaging. Nat. Chem. 2 (12), 1025-1030 (2010).
  14. Siraj, N., et al. Fluorescence, Phosphorescence, and Chemiluminescence. Anal. Chem. 88 (1), 170-202 (2016).
  15. Hercules, D. M., Lytle, F. E. Chemiluminescence from Reduction Reactions. Am. Chem. Soc. 88 (20), 4745-4746 (1966).
  16. Kerr, E. Annihilation electrogenerated chemiluminescence of mixed metal chelates in solution: modulating emission colour by manipulating the energetics. Chem. Sci. 6, 472-479 (2015).
  17. Montalti, M., Credi, A., Prodi, L., Gandolfi, M. T. . Handbook of Photochemistry 3rd Ed. , 379-404 (2006).
  18. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole Animal Perfusion Fixation for Rhodents. J. Vis. Exp. (65), e3564 (2012).
  19. Büchel, G. E., et al. Near-infrared intraoperative chemiluminescent imaging. ChemMedChem. , (2016).
  20. Ntziachristos, V., Ripoll, J., Wang, L. V., Weissleder, R. Looking and Listening to Light: the Evolution of Whole-Body Photonic Imaging. Nat. Biotechnol. 23, 313-320 (2005).
  21. Koch, J. H., Gyarfas, E. C., Dwyer, F. P. Biological Activity of Complex Ions Mechanism of Inhibition of Acetylcholinesterase. Austral. J. Biol. Sci. 9 (3), 371-381 (1956).
  22. Juris, A., Balzani, V., Barigelletti, F., Campagna, S., Belser, P., Zelewsky, A. V. Ru(II) polypyridine complexes: photophysics, photochemistry, electrochemistry, and chemiluminescence. Coord. Chem. Rev. 84, 85-277 (1988).
  23. Knoll, J. D., Turro, C. Control and utilization of ruthenium and rhodium metal complex excited states for photoactivated cancer therapy. Coord. Chem. Rev. 282, 110-126 (2015).
  24. Haley, T. J. Pharmacology and toxicology of the rare earth elements. J. Pharm. Sci. 54 (5), 663-670 (1965).
  25. Siekierski, S., Mioduski, T., Salomon, M. . IUPAC Commission on Solubility Data. Solubility Data Series. Vol 13. Scandium, Yttrium, Lanthanum, and Lanthanide Nitrates. , (1983).
  26. Reiner, T., Jantke, D., Marziale, A. N., Raba, A., Eppinger, J. Metal-Conjugated Affinity Labels: A New Concept to Create Enantioselective Artificial Metalloenzymes. ChemistryOpen. 2, 50-54 (2013).
  27. Zanarini, S., et al. Synthesis and Electrochemiluminescence of a Ru(bpy)3-Labeled Coupling Adduct Produced on a Self-Assembled Monolayer. J. Phys. Chem. C. 112 (8), 2949-2957 (2008).
  28. Liu, R., Lv, Y., Hou, X., Yang, L., Mester, Z. Protein Quantitation Using Ru-NHS Ester Tagging and Isotope Dilution High-Pressure Liquid Chromatography-Inductively Coupled Plasma Mass Spectrometry Determination. Anal. Chem. 84 (6), 2769-2775 (2012).
  29. Jantke, D., et al. Synthetic strategies for efficient conjugation of organometallic complexes with pendant protein reactive markers. J. Organomet. Chem. 744, 82-91 (2013).
  30. Aoki, Y., et al. An experimental xenograft mouse model of diffuse pontine glioma designed for therapeutic testing. J Neurooncol. 108 (1), 29-35 (2012).
  31. Forster, R. J., Bertoncello, P., Keyes, T. E. Electrogenerated Chemiluminescence. Annual Rev. Anal. Chem. 2, 359-385 (2009).
  32. Connell, T. U., James, J. L., White, A. R., Donnelly, P. S. Protein Labelling with Versatile Phosphorescent Metal Complexes for Live Cell Luminescence Imaging. Chem. Eur. J. 21 (40), 14146-14155 (2015).
  33. Zhou, X., et al. Synthesis, labeling and bioanalytical applications of a tris(2,2′-bipyridyl)ruthenium(II)-based electrochemiluminescence probe. Nat. Protoc. 9 (5), 1146-1159 (2014).
  34. Bœuf, G., et al. Encapsulated Ruthenium(II) Complexes in Biocompatible Poly(d,l-lactide-co-glycolide) Nanoparticles for Application in Photodynamic Therapy. ChemPlusChem. 79 (1), 171-180 (2014).
  35. Loizidou, M., Seifalian, A. M. Nanotechnology and its applications in surgery. Brit. J. Surgery. 97 (4), 463-465 (2010).
  36. Barry, N. P. E., Sadler, P. J. Challenges for Metals in Medicine: How Nanotechnology May Help To Shape the Future. ACS Nano. 7, 5654-5659 (2013).
  37. Hasan, K., Bansal, A. K., Samuel, I. D. W., Roldán-Carmona, C., Bolink, H. J., Zysman-Colman, E. Tuning the Emission of Cationic Iridium (III) Complexes Towards the Red Through Methoxy Substitution of the Cyclometalating Ligand. Nat.Sci. Rep. 5, 1-15 (2015).
  38. Truong, J., et al. Chemiluminescence detection with water-soluble iridium(III) complexes containing a sulfonate-functionalised ancillary ligand. Analyst. 139 (22), 6028-6035 (2014).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Biyom hendislikSay 121RutenyumSeryumKemil minesansntraoperatif g r nt lemeLenf d mleriIn vivo

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır